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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[La simbiosis micorrizíca arbuscular en plantas de arroz (Oryza sativa L.) sometidas a estrés hídrico: Parte I. Mejora la respuesta fisiológica]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Rice (Oryza sativa L.) is the most important crop for human consumption is grown conventionally in flooded conditions throughout their cycle. However, approximately half the surface of rice in the world does not have sufficient water to maintain optimal growth conditions. One possible way to increase rice production to meet demand is to improve the efficient use of water by arbuscular mycorrhizal fungi (AMF). The research was conducted at the Experimental Station of Zaidín, Granada Spain, with mycorrhizal and non-mycorrhizal rice plant under controlled conditions and with three water management, without stress (25 mL), moderate stress (10 mL) and severe stress (5 mL) for 15 days, in order to evaluate the effect of AMF inoculation of rice plants subjected to hydric stress and after the plants recovered. The results show that rice can benefit from the symbiosis MA and improve long-term development after a period of water stress. In fact, at each level of irrigation, the mycorrhizal plants showed a 50 % increase in aerial fresh mass and 40 % photosynthetic efficiency compared to non-mycorrhizal plants. Besides, the proline content increased with hydric stress in mycorrizal and non-mycorrizal plants.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="4">La  simbiosis micorriz&iacute;ca arbuscular en plantas de arroz (Oryza sativa L.)  sometidas a estr&eacute;s h&iacute;drico. Parte I. Mejora la respuesta fisiol&oacute;gica</font></strong></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="3"><strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Arbuscular  mycorrhizae symbiosis in plants of rice (Oryza sativa L.) subject to hydric stress.  Part I. Physiological response improvement </font></strong></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">M.Sc.  Michel Ruiz S&aacute;nchez,<sup>I</sup> y Dr.C. Ricardo Pol&oacute;n P&eacute;rez,<sup>II</sup>  Bannie V&aacute;zquez Del Llano,<sup>III</sup> M.Sc. Yaumara Mu&ntilde;oz Hern&aacute;ndez,<sup>IV</sup>  y M.Sc. Nelson Cu&eacute;llar Olivero,<sup>V</sup> Dr.C. Juan M. Ruiz-Lozano,<sup>VI</sup></font></strong></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>  Investigador Agregado de la Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica de Base  &laquo;Los Palacios&raquo;    <br> <sup>II</sup>Investigador Auxiliar de la Unidad  Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica de Base &laquo;Los Palacios&raquo;    <br> <sup>III</sup>Especialista  del departamento de Biofertilizantes y Nutrici&oacute;n de las Plantas, Instituto  Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA), gaveta postal 1, San Jos&eacute;  de las Lajas, Mayabeque, Cuba, CP 32 700.    <br> <sup>IV</sup>Profesora Asistente  de la Filial MES &laquo;Los Palacios&raquo;, calle 22 e/ 19 y 21, no. 1916, Los  Palacios, Pinar del R&iacute;o, Cuba, CP 22 900.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> VProfesor Auxiliar de la  Filial MES &laquo;Los Palacios&raquo;, calle 22 e/ 19 y 21, no. 1916, Los Palacios,  Pinar del R&iacute;o, Cuba, CP 22 900.    <br> <sup>VI</sup>Profesor Titular del Departamento  de Microbiolog&iacute;a del Suelo y Sistemas Simbi&oacute;ticos, Estaci&oacute;n  Experimental Del Zaid&iacute;n, CSIC, Granada, Espa&ntilde;a.</font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p><hr>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  El arroz (Oryza sativa L.) es el cultivo m&aacute;s importante para el consumo  humano, convencionalmente es cultivado en condiciones de inundaci&oacute;n durante  todo su ciclo. Sin embargo, aproximadamente la mitad de la superficie de arroz  en el mundo no tiene agua suficiente para mantener condiciones &oacute;ptimas  de crecimiento. Una forma posible de aumentar la producci&oacute;n de arroz para  satisfacer la demanda es mejorar el uso eficiente del agua por medio de los hongos  micorr&iacute;zicos arbusculares (HMA). La investigaci&oacute;n se realiz&oacute;  en la Estaci&oacute;n Experimental del Zaid&iacute;n, Granada, Espa&ntilde;a,  con plantas de arroz micorrizadas y no micorrizadas en condiciones controladas  y con tres manejos de agua; sin estr&eacute;s (25 mL), estr&eacute;s moderado  (10 mL) y estr&eacute;s intenso (5 mL), durante 15 d&iacute;as, con el objetivo  de evaluar el efecto de la inoculaci&oacute;n de HMA en plantas de arroz sometidas  a estr&eacute;s h&iacute;drico y despu&eacute;s de recuperadas las plantas. Los  resultados muestran que el arroz se puede beneficiar de la simbiosis MA y mejorar  su desarrollo a largo plazo despu&eacute;s de un per&iacute;odo de estr&eacute;s  h&iacute;drico. De hecho, en cada nivel de riego, las plantas micorrizadas mostraron  incremento de un 50 % de masa fresca a&eacute;rea y un 40 % la eficiencia fotosint&eacute;tica  en comparaci&oacute;n con las plantas no micorrizadas. Adem&aacute;s se increment&oacute;  el contenido de prolina a medida que fue m&aacute;s intenso el estr&eacute;s h&iacute;drico  tanto en plantas micorrizadas como en las no micorrizadas.</font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras  clave:</strong> simbiosis micorr&iacute;zica arbuscular, arroz, estr&eacute;s  h&iacute;drico, eficiencia, prolina.</font></p><hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Rice (Oryza sativa L.) is the most important crop for human consumption is grown  conventionally in flooded conditions throughout their cycle. However, approximately  half the surface of rice in the world does not have sufficient water to maintain  optimal growth conditions. One possible way to increase rice production to meet  demand is to improve the efficient use of water by arbuscular mycorrhizal fungi  (AMF). The research was conducted at the Experimental Station of Zaid&iacute;n,  Granada Spain, with mycorrhizal and non-mycorrhizal rice plant under controlled  conditions and with three water management, without stress (25 mL), moderate stress  (10 mL) and severe stress (5 mL) for 15 days, in order to evaluate the effect  of AMF inoculation of rice plants subjected to hydric stress and after the plants  recovered. The results show that rice can benefit from the symbiosis MA and improve  long-term development after a period of water stress. In fact, at each level of  irrigation, the mycorrhizal plants showed a 50 % increase in aerial fresh mass  and 40 % photosynthetic efficiency compared to non-mycorrhizal plants. Besides,  the proline content increased with hydric stress in mycorrizal and non-mycorrizal  plants.</font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key  words:</strong> arbuscular mycorrhizal symbiosis, rice, water stress, ephycacy,  proline.</font></p><hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  arroz (Oryza sativa L.) es el cultivo m&aacute;s importante para el consumo humano,  constituyendo el alimento b&aacute;sico para m&aacute;s de la mitad de la poblaci&oacute;n  mundial. Tiene la particularidad evolutiva de ser semi-acu&aacute;tico y convencionalmente  se cultiva en condiciones de inundaci&oacute;n continua durante la mayor parte  de su ciclo de crecimiento (1). Necesita gran cantidad de agua, cuya escasez tiene  una influencia negativa sobre el crecimiento de la planta, el rendimiento y la  determinaci&oacute;n de la calidad (2).     <br>     <br> Sin embargo, aproximadamente  la mitad de la superficie de arroz en el mundo no tiene agua suficiente para mantener  condiciones de inundaci&oacute;n y el rendimiento se reduce en cierta medida por  la sequ&iacute;a. Incluso el estr&eacute;s de agua intermitentes en las etapas  cr&iacute;ticas puede resultar en una considerable reducci&oacute;n del rendimiento  y el fracaso de los cultivos (3).     <br>     <br> La demanda de la producci&oacute;n  de arroz sigue en aumento debido al continuo crecimiento de la poblaci&oacute;n  mundial, se prev&eacute; llegar a unos 8 mil millones en 2030 y por tanto hay  necesidad de seguir aumentando su producci&oacute;n en un 40 % en los pr&oacute;ximos  20 a&ntilde;os (3).     <br>     <br> Se ha demostrado que la simbiosis de micorrizas  arbusculares (MA) puede proteger a las plantas hospederas contra los efectos perjudiciales  del d&eacute;ficit de agua (4). Los estudios realizados hasta la fecha, han sugerido  varios mecanismos por los que la simbiosis MA puede aliviar el estr&eacute;s por  sequ&iacute;a en las plantas hospederas. Los m&aacute;s importantes son: la absorci&oacute;n  directa y la transferencia de agua a trav&eacute;s de las hifas f&uacute;ngicas  a la planta hu&eacute;sped (5); cambios en las propiedades de retenci&oacute;n  de agua del suelo; mejor ajuste osm&oacute;tico de las plantas MA (6); la mejora  del intercambio de gases en la planta y uso eficiente del agua, as&iacute; como  la protecci&oacute;n contra el da&ntilde;o oxidativo generado por el estr&eacute;s  h&iacute;drico (7).     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Una forma posible de aumentar la producci&oacute;n  de arroz para satisfacer la demanda de crecimiento de la poblaci&oacute;n es mejorar  la eficiencia del uso del agua en condiciones de d&eacute;ficit h&iacute;drico  en el arroz por medio de la simbiosis MA. El objetivo de esta primera parte es  evaluar la respuesta fisiol&oacute;gica de algunos par&aacute;metros en las plantas  de arroz micorrizadas y no micorrizadas sometidas a estr&eacute;s h&iacute;drico  a los 30 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante (DDT).</font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  <strong><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </font></strong></font></p>    <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</font></strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>      <br> La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en la Estaci&oacute;n Experimental  del Zaid&iacute;n, Granada, Espa&ntilde;a, en el cultivo del arroz (Oryza sativa  L.), variedad comercial de ciclo corto INCA LP-5, en condiciones controladas (c&aacute;mara  de cultivo) durante su fase vegetativa de crecimiento. El experimento parte de  una etapa inicial de semillero inoculado y no inoculado con el hongo micorr&iacute;zico  arbuscular (Glomus intraradices) a una dosis de 100 g por cada kg de sustrato.  Las plantas fueron trasplantadas a los 14 d&iacute;as despu&eacute;s de germinaci&oacute;n  (DDG) a macetas de 400 g de sustrato. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; otra inoculaci&oacute;n  en el momento del trasplante (5 g de in&oacute;culo por maceta), justo debajo  de las pl&aacute;ntulas de arroz.    <br>     <br> Tratamientos:    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> T1. Plantas  MA + 25 mL (Control)    <br> T2. Plantas MA + 10 mL    <br> T3. Plantas MA + 5 mL    <br>  T4. Plantas noMA + 25 mL (Control)    <br> T5. Plantas noMA + 10 mL    <br> T6. Plantas  noMA + 5 mL    <br>     <br> Los tratamientos fueron distribuidos siguiendo un dise&ntilde;o  experimental completamente aleatorizado. Los datos de cada muestreo fueron sometidos  a an&aacute;lisis de varianza simple (ANOVA), seguido por la prueba de Duncan  para (p&pound;0,05) (8).     <br>     <br> <strong>Condiciones de crecimiento</strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <br> Las plantas fueron cultivadas entre 60-70 % de humedad relativa, las temperaturas  de d&iacute;a y noche fueron de 23 y 19&ordm;C, respectivamente, con un fotoper&iacute;odo  de 16 horas luz y ocho horas de oscuridad, a una intensidad de la luz de 250 &micro;E.m-2s-1  medido, con un Licor (Lincoln, NE, EE.UU., modelo LI - 188B).    <br>     <br> Durante  los primeros 30 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante, cada planta recibi&oacute;  25 mL de soluci&oacute;n nutritiva (9), a excepci&oacute;n del f&oacute;sforo  (P), que se redujo a un 25 % a fin de evitar la inhibici&oacute;n de la colonizaci&oacute;n  de las micorrizas arbusculares. Este volumen de soluci&oacute;n nutritiva se aplic&oacute;  tres veces por semana en d&iacute;as alternos. Los tratamientos controles (sin  estr&eacute;s h&iacute;drico) recibieron 25 mL de soluci&oacute;n nutritiva tres  veces por semana. El estr&eacute;s h&iacute;drico moderado, consisti&oacute; en  la aplicaci&oacute;n de la misma cantidad de nutrientes diluidos en 10 mL de agua.  El estr&eacute;s h&iacute;drico intenso, consisti&oacute; en la aplicaci&oacute;n  de la misma cantidad de nutrientes diluidos en 5 mL de agua.    <br>     <br> <strong>Suelo  y material biol&oacute;gico</strong>    <br>     <br> El sustrato empleado consisti&oacute;  en una mezcla de suelo procedente de la Estaci&oacute;n Experimental del Zaid&iacute;n,  Granada, Espa&ntilde;a, tamizado (2 mm), con arena (&lt;1 mm) y vermiculita, en  proporci&oacute;n 1 suelo: 2 arena:6 vermiculita (v/v/v). La arena y la vermiculita  fueron autoclaveadas a 120oC, durante 20 minutos y el suelo se esteriliz&oacute;  a vapor fluente (a 100oC, durante 1 hora, tres d&iacute;as consecutivos). El suelo  ten&iacute;a un pH de 8,1 (agua); 1,81 % de materia org&aacute;nica, y las siguientes  concentraciones de nutrientes (mg.kg-1): nitr&oacute;geno (N) 2,5; f&oacute;sforo  (P) 6,2 (NaHCO3- P extra&iacute;ble); potasio (K) 132.     <br>     <br> El hongo micorr&iacute;zico  arbuscular utilizado fue Glomus intraradices (Schenck y Smith), perteneciente  a la colecci&oacute;n de la Estaci&oacute;n Experimental del Zaid&iacute;n, Granada,  Espa&ntilde;a (aislado EEZ 01).     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Se realizaron mediciones antes del estr&eacute;s  (AE), despu&eacute;s del estr&eacute;s (DE) y de la recuperaci&oacute;n (DR),  coincidiendo con los 30, 45 y 70 DDT respectivamente, donde se evalu&oacute; la  eficiencia fotosint&eacute;tica del fotosistema II, por ciento de colonizaci&oacute;n  simbi&oacute;tica en la ra&iacute;z, masa fresca parte a&eacute;rea y radical.  Adem&aacute;s se determin&oacute; la prolina en las plantas a los 45 DDT y 70  DDT.    <br>     <br> <strong>Indicadores evaluados</strong>    <br>     <br> Porcentaje de colonizaci&oacute;n  y producci&oacute;n de biomasa. A los 30, 45 y 70 DDT se separ&oacute; el sistema  radical de la parte a&eacute;rea de las planta y se determin&oacute; la masa fresca  de ambas y el por ciento de colonizaci&oacute;n del sistema radical (10). La parte  a&eacute;rea se fraccion&oacute; en muestras de 1 g, las cuales se congelaron  en el momento del muestreo con nitr&oacute;geno l&iacute;quido para determinar  el contenido de prolina.    <br>     <br> Eficiencia fotosint&eacute;tica. La eficiencia  del fotosistema II, se midi&oacute; con un FluorPen FP100 (Photon Systems Instruments,  Brno, Rep&uacute;blica Checa), que permite una evaluaci&oacute;n no invasiva del  funcionamiento del aparato fotosint&eacute;tico de las plantas mediante la medici&oacute;n  de la fluorescencia de la clorofila A. El FluorPen cuantifica el rendimiento cu&aacute;ntico  del fotosistema II como la relaci&oacute;n entre el rendimiento actual del fotosistema  adaptados a la luz (Fv) y el m&aacute;ximo rendimiento del fotosistema II adaptado  a la luz (Fm), (11). Las mediciones se tomaron en el tercio superior de plantas,  repitiendo la evaluaci&oacute;n cuatro veces en cada planta (12).    <br>     <br> Contenido  de prolina. Se determin&oacute; por el m&eacute;todo de Bates et al., 1973 (13)  y se expres&oacute; en nmol.g-1 de masa seca. Utilizando reactivo de ninhidrina.  Para lo cual se realiz&oacute; una curva patr&oacute;n a partir de una soluci&oacute;n  de prolina (1 mM) con las siguientes concentraciones: 0, 25, 50, 100, 200 y 300  &micro;M) de prolina y se midi&oacute; la absorbancia a 530 nm. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="3"><strong>RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N </strong></font></FONT></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  No se observ&oacute; colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica en las plantas no  inoculadas con el hongo MA, como era de esperar. Los valores de colonizaci&oacute;n  de las ra&iacute;ces aumentaron con el tiempo (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>    <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f1"></a></font></p>    <p align="center"><img src="/img/revistas/ctr/v33n4/f0106412.gif" width="352" height="290"></p>    
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Antes de iniciar el estr&eacute;s (30 DDT), el porcentaje de colonizaci&oacute;n  de las ra&iacute;ces fue solo del 13 %. Despu&eacute;s del per&iacute;odo del  estr&eacute;s h&iacute;drico inducido durante 15 d&iacute;as (45 DDT) la colonizaci&oacute;n  de las ra&iacute;ces aument&oacute; hasta el 23 %, presentando las plantas que  recibieron 10 o 5 mL de soluci&oacute;n nutritiva un porcentaje ligeramente superior  a las que hab&iacute;an permanecido como control (25 mL de soluci&oacute;n nutritiva).      <br>     <br> Despu&eacute;s de la recuperaci&oacute;n del estr&eacute;s durante 25  d&iacute;as adicionales (70 DDT) en el sistema radical se alcanz&oacute; m&aacute;s  del 45 % de colonizaci&oacute;n MA. Los tratamientos que recibieron 10 mL de soluci&oacute;n  nutritiva mostraron los porcentajes de colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z m&aacute;s  altos (53 %).     <br>     <br> En la actualidad, se acepta que la simbiosis MA protege  a la planta hospedadora frente a los efectos negativos del d&eacute;ficit h&iacute;drico,  mejorando la tolerancia de planta frente a la sequ&iacute;a mediante una combinaci&oacute;n  de efectos nutricionales, f&iacute;sicos y celulares (14).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> La simbiosis  MA generalmente aumenta el crecimiento de la planta hospedadora debido a la mejor  nutrici&oacute;n de la misma (15). Los efectos beneficiosos de los hongos micorr&iacute;zicos  sobre el crecimiento de plantas en condiciones de sequ&iacute;a se han demostrado  en varias especies de plantas (16). En esta investigaci&oacute;n, los efectos  positivos de la simbiosis MA sobre el crecimiento de las plantas solo se precian  a los 70 DDT. Esto indica que, en las plantas de arroz y en las condiciones de  cultivo ensayadas, la colonizaci&oacute;n por G. intraradices estimul&oacute;  el crecimiento de la planta, aunque tard&oacute; m&aacute;s tiempo que en otras  plantas hospedadoras. Por lo tanto, para obtener beneficios de la simbiosis, el  arroz debe ser cultivado en condiciones no inundadas. Las condiciones aer&oacute;bicas  en el suelo estimulan la colonizaci&oacute;n de ra&iacute;ces de arroz por los  hongos MA (2).    <br>     <br> La masa fresca de la parte a&eacute;rea (MFA) y de la  ra&iacute;z (MFR) antes del inicio del estr&eacute;s (30 DDT) fueron similares  en plantas MA y plantas noMA (<a href="#f2">Figura 2A, B</a>).</font></p>    <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f2"></a></font></p>    <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/ctr/v33n4/f0206412.gif" width="342" height="472"></font></p>    
<p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>      <br> Despu&eacute;s del per&iacute;odo de estr&eacute;s (45 DDT), tanto la MFA  como la MFR disminuyeron significativamente en los tratamientos bajo estr&eacute;s  intenso (5 mL de soluci&oacute;n nutritiva) en comparaci&oacute;n con el tratamiento  control bien regado (25 mL de soluci&oacute;n nutritiva), esta disminuci&oacute;n  fue similar en las plantas MA y en las noMA, provocada por el estr&eacute;s h&iacute;drico  inducido (17). Tras la recuperaci&oacute;n de la sequ&iacute;a durante 25 d&iacute;as,  la MFA mostr&oacute; un aumento significativo en las plantas MA, en comparaci&oacute;n  con las plantas noMA. De hecho, en cada manejo de agua aplicado, las plantas MA  mostraron un incremento del 50 % de MFA en comparaci&oacute;n con plantas noMA.      <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Una tendencia similar se observ&oacute; para la MFR, pero, en ese caso,  las diferencias no fueron significativas para las plantas que hab&iacute;an sido  regadas con 10 mL de soluci&oacute;n nutritiva, resultados que corresponden a  los de otros autores (18).    <br>     <br> Este resultado puede estar relacionado con  el hecho de que solo a los 70 DDT las plantas de arroz alcanzaron un nivel considerable  de la colonizaci&oacute;n MA (entre 44 a 53 %). La literatura sobre la simbiosis  MA refleja que no hay un valor umbral de colonizaci&oacute;n de las ra&iacute;ces  para que se produzca la mejora del crecimiento vegetal. Esto depende m&aacute;s  bien, de las especies vegetales y f&uacute;ngicas que participan en la simbiosis  y de las condiciones espec&iacute;ficas de cultivo.</font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Sin embargo, generalmente se asume que una mayor tasa de colonizaci&oacute;n de  las ra&iacute;ces por el hongo mejorar&aacute; los efectos de la MA sobre el desarrollo  de la planta (19, 20). Otros investigadores encontraron niveles comparables de  colonizaci&oacute;n MA (que van desde 14 a 51 %) en las ra&iacute;ces de 13 variedades  de arroz cultivadas tambi&eacute;n en condiciones aer&oacute;bicas (2). En cualquier  caso, para determinar con m&aacute;s precisi&oacute;n la causa de la mejora del  crecimiento de las plantas de arroz estudiadas, se evaluaron los efectos de la  micorrizaci&oacute;n sobre una variedad de procesos bioqu&iacute;micos en la planta.      <br>     <br> <strong>Eficiencia fotosint&eacute;tica</strong>    <br>     <br> La eficiencia  del fotosistema II se evalu&oacute; mediante la fluorescencia de la clorofila  A (<a href="#f3">Figura 3</a>). Antes de que se iniciara el per&iacute;odo de  estr&eacute;s (30 DDT) la eficiencia fotosint&eacute;tica del fotosistema II fue  similar en plantas MA y noMA. Despu&eacute;s del per&iacute;odo de sequ&iacute;a  (45 DDT) las plantas MA exhiben una mayor eficiencia fotosint&eacute;tica, en  comparaci&oacute;n con las plantas noMA.</font></p>    <p align="center"><a name="f3"></a>    <br>  <img src="/img/revistas/ctr/v33n4/f0306412.gif" width="348" height="294"></p>    
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  La simbiosis MA mejor&oacute; este par&aacute;metro en un 44 %, cuando las plantas  se regaron con 10 mL de soluci&oacute;n nutritiva y un 40 % en las plantas que  se regaron con 5 mL. Cuando las plantas se recuperaron durante 25 d&iacute;as  adicionales (70 DDT), la eficiencia fotosint&eacute;tica aument&oacute; en todos  los tratamientos sin diferencias significativas entre plantas MA y plantas noMA.</font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  En esta investigaci&oacute;n, las plantas MA mostraron un mejor rendimiento del  fotosistema II cuando se sometieron a estr&eacute;s h&iacute;drico. Los valores  m&aacute;s altos de eficiencia fotosint&eacute;tica en las plantas MA (cercanos  al m&aacute;ximo te&oacute;rico de 0,83) indican que el aparato fotosint&eacute;tico  de estas plantas fue menos da&ntilde;ado por el estr&eacute;s impuesto (21). Este  efecto puede haber contribuido al crecimiento alcanzado por las plantas MA, probablemente  mediante la mejora de la fijaci&oacute;n de CO2 durante y despu&eacute;s del estr&eacute;s.  De hecho, varios estudios han demostrado una correlaci&oacute;n positiva entre  la tolerancia al estr&eacute;s h&iacute;drico y el mantenimiento de la eficiencia  del fotosistema II, que a su vez tambi&eacute;n mantiene la productividad de la  plantas (22, 23).    <br>     <br> <strong>Contenido de prolina </strong>    <br>     <br> El  contenido de prolina a los 45 DDT en la parte a&eacute;rea de las plantas MA y  las plantas noMA se increment&oacute; a medida que disminuy&oacute; el estatus  h&iacute;drico en la planta, comportamiento que nos asevera que las plantas se  estresaron por efecto del estr&eacute;s h&iacute;drico inducido (<a href="#f4">Figura  4</a>). De hecho, las plantas regadas con 10 o 5 mL de soluci&oacute;n nutritiva  mostraron mayor contenido de prolina en comparaci&oacute;n con su correspondiente  control (25 mL), comportamiento opuesto a la respuesta de la eficiencia fotosint&eacute;tica,  que pudo ver favorecida por influencia de la micorr&iacute;zaci&oacute;n y un  estado h&iacute;drico superior en las plantas controles (23).</font></p>    <p align="center"><a name="f4"></a>    <br>  <img src="/img/revistas/ctr/v33n4/f0406412.gif" width="344" height="314"></p>    
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  En cualquier caso, la cantidad de prolina en cada r&eacute;gimen h&iacute;drico  fue ligeramente superior en las plantas noMA que en las plantas MA. Despu&eacute;s  de la recuperaci&oacute;n de la sequ&iacute;a (70 DDT) el contenido de prolina  continu&oacute; siendo mayor en las plantas que hab&iacute;an sido previamente  sometidos a la sequ&iacute;a (10 o 5 mL).     <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Sin embargo, no hubo diferencias  significativas entre las plantas MA y las plantas noMA para cada r&eacute;gimen  h&iacute;drico.</font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Muchas especies vegetales disminuyen el potencial osm&oacute;tico de sus c&eacute;lulas  mediante la s&iacute;ntesis y acumulaci&oacute;n de osmolitos compatibles, tales  como la prolina, que participa en el ajuste osm&oacute;tico. De esta manera, las  plantas mejoran su tolerancia frente a la sequ&iacute;a (24, 25). Adem&aacute;s  de actuar como un osmoprotector, la prolina tambi&eacute;n sirve como un regulador  de radicales hidroxilo, como soluto que protege a las macromol&eacute;culas frente  a la desnaturalizaci&oacute;n y como medio para reducir la acidez en la c&eacute;lula  (26). Este efecto se relaciona con la protecci&oacute;n de la planta frente a  la deshidrataci&oacute;n a trav&eacute;s de mecanismos de defensa primarios de  sequ&iacute;a. As&iacute;, las plantas MA podr&aacute;n necesitar una menor cantidad  de prolina que el resto de los tratamientos noMA (23, 27, 28).</font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Conclusiones    <br>  </strong>    <br> De esta investigaci&oacute;n se puede concluir que las plantas de  arroz se micorrizaron en condiciones aer&oacute;bicas durante su fase vegetativa  a partir de los 30 DDT, con valores porcentuales entre 12 y 50 %, condici&oacute;n  que les permiti&oacute; a las mismas tolerar el d&eacute;ficit h&iacute;drico  impuesto y mejorar su respuesta en las variables evaluadas. Se increment&oacute;  a largo plazo el crecimiento de las plantas de arroz micorrizadas, su eficiencia  fotosint&eacute;tica y el contenido de prolina con respecto a las plantas no micorrizadas,  aunque el grado de intensidad del estr&eacute;s h&iacute;drico fue intenso.</FONT></p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Agradecimiento</strong>    <br>      <br> Al Dr.C. Juan Manuel Ruiz Lozano (Investigador Cient&iacute;fico del CSIC)  por todo su apoyo y gu&iacute;a durante la investigaci&oacute;n.</font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS</strong></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>      <!-- ref --><br> 1. Kamoshita, A.; Babu, R. C.; Boopathi, N. M. y Fukai, S. Phenotypic and  genotypic analysis of drought-resistance traits for development of rice cultivars  adapted to rainfed environments. Field Crops Res., 2008, vol. 109, p. 1-23.    <br>      <!-- ref --><br> 2. Vallino, M.; Greppi, D.; Novero, M.; Bonfante, P. y Lupotto, E. Rice root  colonization by mycorrhizal and endophytic fungi in aerobic soil. Ann. Appl. Biol.,  2009, vol. 154, p. 195-204.    <br>     <!-- ref --><br> 3. Bernier, J.; Atlin, G. N.; Serraj, R.;  Kumar, A. y Spaner, D. Breeding upland rice for drought resistance. J. Sci. Food  Agric., 2008, vol. 88, p. 927-939.    <br>     <!-- ref --><br> 4. Ruiz-Lozano, J. M.; Porcel, R.  y Aroca, R. Evaluation of the possible participation of drought-induced genes  in the enhanced tolerance of arbuscular mycorrhizal plants to water deficit. In:  Varma A, editor. Mycorrhiza: state of the art, genetics and molecular biology,  eco-function, biotechnology, eco-physiology, structure and systematics, 3rd ed.  Germany: Springer-Verlag. 2008. p. 185-205.    <br>     <!-- ref --><br> 5. Alberdi, Miren; &Aacute;lvarez,  Maricel; Valenzuela, E.; Godoy, R.; Olivares, E. y Barrientos, M&oacute;nica.  Respuesta al d&eacute;ficit h&iacute;drico de plantas de Nothofagus dombeyi inoculadas  con un hongo ectomicorr&iacute;cico espec&iacute;fico (Descolea ant&aacute;rctica  Sing) y no espec&iacute;fico (Pisolithus tinctorious (Pers.) Coker &amp; Couch).  Revista Chilena de Historia Natural, 2007, vol. 80, p. 479-491. ISSN: 0716-078X.    <br>      <!-- ref --><br> 6. Ghneim, H. T.; Rosales, A.; Aguilar, M.; Pieters, A.; P&eacute;rez, I.  A. y Torrealba, G. Identificaci&oacute;n de cultivares de arroz con alta capacidad  de ajuste osm&oacute;tico para el mejoramiento gen&eacute;tico de la tolerancia  a la sequ&iacute;a. Agronom&iacute;a Tropical, 2003, vol, 56, no. 4, p. 677-687.    <br>      <br> 7. Porcel, R.; Azc&oacute;n, R. y Ruiz-Lozano, J. M. Evaluation of the role  of genes encoding for D1-pyrroline-5-carboxylate synthetase (P5CS) during drought  stress in arbuscular mycorrhizal Glycine max and Lactuca sativa plants. Physiol  Mol Plant Pathol., 2004a, vol. 65, p. 211-221.    <br>     <!-- ref --><br> 8. Duncan, D. B. Multiple  range and multiple F-tests. Biometrics, 1955, vol. 11, p. 1-42.    <br>     <!-- ref --><br> 9. Hoagland,  D. R. y Arnon, D. I. The water-culture method for growing plants without soil.  Calif Agric Exp Station Circular, 1950, vol. 347, p. 1-32.    <br>     <!-- ref --><br> 10. Phillips,  J. M. y Hayman, D. S. Improved procedure of clearing roots and staining parasitic  and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection.  Trans Br Mycol Soc., 1970, vol. 55, p. 159-161.    <br>     <!-- ref --><br> 11. Oxborough, K. y Baker,  N. R. Resolving chlorophyll a fluorescence images of photosynthetic efficiency  into photochemical and non-photochemical components-calculation of qP and Fv&acute;/Fm&acute;  without measuring Fo&acute;. Photosynth Res., 1997, vol. 54. pp. 135-142.    <br>      <!-- ref --><br> 12. Dell&#8217;Amico, J.; Rodr&iacute;guez, P.; Torrecillas, A.; Morte, Asun  y S&aacute;nchez-Blanco, Mar&iacute;a de J. Influencia de la micorrizaci&oacute;n  en el crecimiento y las relaciones h&iacute;dricas de plantas de tomate sometidas  a un ciclo de sequ&iacute;a y recuperaci&oacute;n. Cultivos Tropicales, 2002,  vol. 23, no. 1, p. 29-34.    <br>     <!-- ref --><br> 13. Misra, N. y Saxena, P. Effect of salicylic  acid on proline metabolism in lentil grown under salinity stress. Plant Science,  2009, vol. 177, p. 181-189.    <br>     <!-- ref --><br> 14. Ruiz-Lozano, J. M. Arbuscular mycorrhizal  symbiosis and alleviation of osmotic stress: new perspectives for molecular studies.  Mycorrhiza, 2003, vol. 13, p. 309-317.    <br>     <!-- ref --><br> 15. Porras-Soriano, A.; Soriano-Mart&iacute;n,  M. L.; Porras-Piedra, A. y Azc&oacute;n, R. Arbuscular mycorrhizal fungi increa,sed  growth, nutrient uptake and tolerance to salinity in olive trees under nursery  conditions. Journal of Plant Physiology, 2009, vol. 166, p. 1350-1359.    <br>     <!-- ref --><br>  16. Azc&oacute;n, R. y Barea, J. M. Mycorrhizosphere interactions for legume improvement.  In: Khanf MS, Zaidi A, Musarrat J, editors. Microbes for legume improvement. Vienna:  Springer; 2010, p. 237-271.    <br>     <!-- ref --><br> 17. Barnab&aacute;s, B.; J&auml;ger, K. y  Free, A. The effect of drought and heat stress on reproductive processes in cereals.  Plant, Cell and Environment., 2008, vol. 31, p. 11-38.    <br>     <br> 18. Bolandnazar,  S.; Aliasgarzad, N.; Neishabury, M. R. y Chaparzadeh, N. Mycorrhizal colonization  improves onion (Allium cepa L.) yield and water use efficiency under water deficit  condition. Scientia Horticulturae, 2007, vol. 114. p. 11-15.    <br>     <!-- ref --><br> 19. Gutjahr,  C.; Banba, M.; Croset, V.; An, K.; Miyao, A.; An, G.; Hirochika, H.; Imaizumi-Anraku,  H. y Paszkowski, U. Arbuscular mycorrhizaspecific signaling in rice transcends  the common symbiosis signalling pathway. Plant Cell, 2008, vol. 20, p. 2989-3005.    <br>      <!-- ref --><br> 20. Gutjahr, C.; Casieri, L. y Paszkowski, U. Glomus intraradices induces  changes in root system architecture of rice independently of common symbiosis  signalling. New Phytologist., 2009, vol. 182, p. 829-837.    <br>     <!-- ref --><br> 21. Loggini,  B.; Scartazza, A.; Brugnoli, E. y Navari-Izzo, F. Antioxidative defense system,  pigment composition and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected  to drought. Plant Physiol., 1999, vol. 119, p. 1091-1099.    <br>     <!-- ref --><br> 22. Germ, M.;  Kreft, I. y Osvald, J. Influence of UV-B exclusion and selenium treatment on photochemical  efficiency of photosystem II, yield and respiratory potential in pumpkins (Cucurbita  pepo L.). Plant Physiol Biochem., 2005, vol. 43. p. 445-448.    <br>     <!-- ref --><br> 23. Porcel,  R. y Ruiz-Lozano, J. M. Arbuscular mycorrhizal influence on leaf water potential,  solute accumulation and oxidative stress in soybean plants subjected to drought  stress. J. Exp. Bot., 2004, vol. 55, p. 1743-1750.    <br>     <!-- ref --><br> 24. Saccardi, K.;  Pineau, B.; Roche, O. y Cornic, G. Photochemical efficiency of photosystem II  and xantophyll cycle components in Zea mays leaves exposed to water stress and  high light. Photos Res., 1998, vol. 56, p. 57-66.    <br>     <!-- ref --><br> 25. Cattivelli, L.;  Rizza, F.; Badeck, F. W.; Mazzucotelli, E.; Mastrangelo, A. M.; Francia, E.; Mare,  C.; Tondelli, A. y Stanca, M. Drought tolerance improvement in crop plants: An  integrated view from breeding to genomics. Field Crops Research., 2008, vol. 105,  no. 1-2, p. 1-14.    <br>     <!-- ref --><br> 26. Vendruscolo, E. C. G.; Schuster, I.; Pileggi, M.;  Scapim, C. A.; Molinari, H.B.C.; Marur, C. J. y Vieira, L. G. E. Stress-induced  synthesis of proline confers tolerance to water deficit in transgenic wheat. Journal  of Plant Physiology, 2007, vol. 164, no. 10, p. 1367-1376.    <br>     <!-- ref --><br> 27. Mostajeran,  A. y Rahimi-Eichi, V. Effects of Drought Stress on Growth and Yield of Rice (Oryza  sativa L.) Cultivars and Accumulation of Proline and Soluble Sugars in Sheath  and Blades of Their Different Ages Leaves. American-Eurasian J. Agric. &amp; Environ.  Sci., 2009, vol. 5, no. 2, p. 264-272.    <br>     <!-- ref --><br> 28. Aroca, R.; Aguacil, M.; Vernieri,  P. y Ruiz-Lozano, J. M. Plant responses to drought stress and exogenous ABA application  are differently modulated by mycorrhization in tomato and an ABA-deficient mutant  (sitiens). Microb Ecol., 2008, vol. 56, p. 704-719.    </font></p>    <p>&nbsp;</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido:  23 de febrero de 2012    <br> Aceptado: 17 de julio de 2012</font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><em><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">M.Sc.  Michel Ruiz S&aacute;nchez</font></font></em><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">,</font>  Investigador Agregado de la Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica de Base  &laquo;Los Palacios&raquo;. Email: <a href="mailto:mich@inca.edu.cu">mich@inca.edu.cu</a>  </font></p>      ]]></body><back>
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