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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aspectos de interés sobre las acuaporinas en las plantas]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Investigaciones Agropecuarias Jorge Dimitrov Dirección de Investigaciones y Servicios Ambientales ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Aquaporine are proteins that regulated the water&#8217;s movement across the cellular membranes. It is comprobated the participation of this transporters participation on plant response against the abiotic stress. It is purpose of this article to resume essential aspects about the aquaporines such as: structure and function, regulation and their participation on plant response against abiotic stress]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REVISI&Oacute;N    BIBLIOGR&Aacute;FICA</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Aspectos    de inter&eacute;s sobre las acuaporinas en las plantas </font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Interest    aspects about aquaporines in plants</font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ms.C. Licet    Ch&aacute;vez Su&aacute;rez,<sup>I</sup> Alexander &Aacute;lvarez Fonseca,<sup>II</sup>    Dr.C. Ramiro Ram&iacute;rez Fern&aacute;ndez<sup>III</sup></font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Investigador    Agregado de la Direcci&oacute;n de Investigaciones y Servicios Ambientales,    Instituto de Investigaciones Agropecuarias &#8220;Jorge Dimitrov&#8221;, carretera    v&iacute;a Manzanillo km 17, Bayamo, Granma, Cuba.    <br>   <sup>II</sup>Reserva Cient&iacute;fica de la Direcci&oacute;n de Investigaciones    y Servicios Ambientales, Instituto de Investigaciones Agropecuarias &#8220;Jorge    Dimitrov&#8221;, carretera v&iacute;a Manzanillo km 17, Bayamo, Granma, Cuba.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>III</sup>Investigador Titular de la Direcci&oacute;n de Investigaciones    y Servicios Ambientales, Instituto de Investigaciones Agropecuarias &#8220;Jorge    Dimitrov&#8221;, carretera v&iacute;a Manzanillo km 17, Bayamo, Granma, Cuba.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las acuaporinas    son prote&iacute;nas que regulan el movimiento de agua a trav&eacute;s de las    membranas celulares. Se ha comprobado la participaci&oacute;n de estos transportadores    en la respuesta de las plantas ante estr&eacute;s abi&oacute;tico. Es prop&oacute;sito    de este trabajo rese&ntilde;ar aspectos fundamentales sobre las acuaporinas    tales como: estructura y funci&oacute;n, regulaci&oacute;n y su participaci&oacute;n    en la respuesta de la planta ante el estr&eacute;s abi&oacute;tico.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> acuaporinas, estructura, funci&oacute;n, regulaci&oacute;n,    estr&eacute;s abi&oacute;tico.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Aquaporine are    proteins that regulated the water&#8217;s movement across the cellular membranes.    It is comprobated the participation of this transporters participation on plant    response against the abiotic stress. It is purpose of this article to resume    essential aspects about the aquaporines such as: structure and function, regulation    and their participation on plant response against abiotic stress.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    aquaporine, structure, function, regulation, abiotic stress.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Las acuaporinas    (AQPs) son prote&iacute;nas formadoras de canales que regulan la entrada y salida    de agua en la c&eacute;lula. Estas prote&iacute;nas se encuentran presentes    en todos los organismos y tienen pesos moleculares de entre 26 y 35 kDa (1).    <br>       <br>   Los estudios sobre las acuaporinas han conducido a la comunidad cient&iacute;fica    a descubrir otras funciones de las mismas, m&aacute;s all&aacute; del transporte    de agua a trav&eacute;s de las membranas. El transporte de solutos de gran significado    fisiol&oacute;gico, tales como el CO<sub>2</sub>, H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>,    boro, o &aacute;cido sil&iacute;cico, permite relacionar las acuaporinas con    muchas funciones, que incluyen el metabolismo del carbono, la respuesta ante    el estr&eacute;s oxidativo, y la nutrici&oacute;n mineral de la planta (2).    <br>       <br>   Cuando las plantas detectan cambios en la disponibilidad de agua en el medio    que las rodea, sufren una alteraci&oacute;n en el potencial osm&oacute;tico;    para balancear este cambio, las c&eacute;lulas vegetales regulan la expresi&oacute;n    de sus AQPs. Se ha demostrado que est&iacute;mulos ambientales como sequ&iacute;a    y salinidad, as&iacute; como incrementos en la s&iacute;ntesis del &aacute;cido    absc&iacute;sico, traen como consecuencia cambios en la regulaci&oacute;n de    los niveles de expresi&oacute;n de AQP (3).    <br>       <br>   Es objetivo del presente trabajo rese&ntilde;ar brevemente aspectos fundamentales    sobre las acuaporinas tales como su estructura, funci&oacute;n y regulaci&oacute;n,    as&iacute; como su actividad en la planta en condiciones de estr&eacute;s abi&oacute;tico.        <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <strong>Descubrimiento de las acuaporinas</strong>    <br>       <br>   El transporte de agua a trav&eacute;s de las membranas biol&oacute;gicas, proceso    fundamental de los organismos vivos, fue motivo de estudio y debate por largas    d&eacute;cadas. Inicialmente, se pens&oacute; que el agua atravesaba la membrana    celular exclusivamente difundiendo entre sus mol&eacute;culas lip&iacute;dicas.    Una v&iacute;a ciertamente restringida que no concordaba con observaciones biof&iacute;sicas    en c&eacute;lulas con alta permeabilidad al agua, tal como el eritrocito de    mam&iacute;fero. As&iacute;, tempranos estudios biof&iacute;sicos condujeron    a predecir la existencia de canales de membrana que facilitaran el paso del    agua (3).    <br>       <br>   Aunque las bases biof&iacute;sicas del transporte de agua a trav&eacute;s de    las membranas biol&oacute;gicas hab&iacute;an sido anunciadas tan temprano como    en la d&eacute;cada de los 50, es el descubrimiento de las acuaporinas en 1992,    el que populariz&oacute; el concepto de canales de agua de membrana (4).    <br>       <br>   En el a&ntilde;o 2003, Peter Agre, investigador de la Universidad Johns Hopkins    (Baltimore, USA), recibi&oacute; el Premio Nobel de Qu&iacute;mica por haber    identificado una prote&iacute;na que permit&iacute;a el paso selectivo de agua    a trav&eacute;s de la membrana celular, a la cual denomin&oacute; &#8220;acuaporina&#8221;.    Los trabajos hab&iacute;an comenzado hac&iacute;a m&aacute;s de una d&eacute;cada,    cuando en los hemat&iacute;es se descubri&oacute; una prote&iacute;na inicialmente    llamada CHIP-28 (channel-like integral protein-prote&iacute;na integral semejante    a canal de 28 kD ), que explicaba la elevada permeabilidad al agua en las membranas    que la pose&iacute;an. Posteriormente a su clonaci&oacute;n y secuenciaci&oacute;n,    se sugiri&oacute; el nombre de acuaporina-1 (AQP1) para esta prote&iacute;na,    el cual fue adoptado oficialmente por la Organizaci&oacute;n del Genoma Humano    en 1997 (5).    <br>       <br>   Luego se describieron varias prote&iacute;nas del mismo tipo, las cuales han    recibido el mismo nombre seguido de un n&uacute;mero secuencial en relaci&oacute;n    con la cronolog&iacute;a de su descubrimiento. A partir de ah&iacute; la investigaci&oacute;n    alrededor de estas prote&iacute;nas se ha incrementado notablemente y en la    actualidad se han determinado gran parte de sus caracter&iacute;sticas moleculares    y funcionales y se han descubierto varios miembros adicionales de esta familia    (2).    <br>   <strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Estructura de las acuaporinas    <br>       <br>   </strong></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las    AQPs son prote&iacute;nas transmembranosas que delimitan un canal de 2 nm de    largo por 0,3 nm de ancho (Figura 1), su di&aacute;metro es de aproximadamente    0,28 nm.    <br>       <br>   Se calcula que las AQP son capaces de transportar 3 mil millones de mol&eacute;culas    de agua por segundo. As&iacute;, una porci&oacute;n de membrana de 10 cm<sup>2</sup>    filtrar&iacute;a un litro de agua en unos siete segundos (3).    <br>       <br>   Todas las AQPs presentan una similitud estructural bastante notable (<a href="/img/revistas/ctr/v35n3/f0105314.gif">Figura    1</a>). Tienen sus segmentos amino y carboxilo terminal intracelulares. Est&aacute;n    conformadas por dos dominios muy semejantes entre s&iacute;, unidas por el lazo    C (6). Exhiben seis h&eacute;lices transmembrana (7) y los lazos B y E son esenciales    para la permeabilidad al agua del canal, es decir, son vitales en la formaci&oacute;n    del poro (8). Todas son tetram&eacute;ricas (9), aunque algunas pueden formar    olig&oacute;meros m&aacute;s peque&ntilde;os, como AQP4.     
<br>       <br>   El canal es hidrof&oacute;bico, por lo cual las mol&eacute;culas de agua formar&iacute;an    una fila estableciendo puentes de hidr&oacute;geno con amino&aacute;cidos polares    espec&iacute;ficos dispuestos a lo largo del camino de permeabilidad. En el    centro del canal, el di&aacute;metro es ligeramente mayor al de una mol&eacute;cula    de agua. Aunque la longitud de esta restricci&oacute;n es solo la de un amino&aacute;cido,    ello bastar&iacute;a para bloquear el paso de iones y otros solutos m&aacute;s    grandes, ya que no existe la estructura necesaria para despojarlos de sus capas    de hidrataci&oacute;n.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La barrera para el paso de protones est&aacute; constituida por un fuerte dipolo    formado por dos segmentos proteicos que contienen la secuencia asparagina-prolina-alanina    (NPA), que reorienta las mol&eacute;culas de agua interrumpiendo las interacciones    entre una mol&eacute;cula y la siguiente, lo cual elimina la posibilidad del    transporte simult&aacute;neo de protones (10). Las dos asparaginas del triplete    NPA contienen residuos polares para la formaci&oacute;n de puentes de hidr&oacute;geno    y producen una reorientaci&oacute;n transitoria del dipolo de la mol&eacute;cula    de agua. As&iacute;, las mol&eacute;culas de agua que penetran en el poro disponen    sus ox&iacute;genos hacia abajo, pero al interactuar con ambas asparaginas giran    y contin&uacute;an su paso con el ox&iacute;geno mirando hacia arriba (<a href="/img/revistas/ctr/v35n3/f0205314.gif">Figura    2</a>). En la zona m&aacute;s estrecha del canal existe una ciste&iacute;na    cuyo grupo sulfhidrilo determina la sensibilidad a los iones mercurio (3).    
<br>       <br>   <strong>Las acuaporinas en las plantas</strong>    <br>       <br>   Los estudios acerca de las acuporinas proporcionan perspectivas &uacute;nicas,    en m&uacute;ltiples aspectos de la biolog&iacute;a vegetal. Primeramente las    acuaporinas despertaron un inter&eacute;s considerable debido a la actividad    como canal de agua. Este descubrimiento era inesperado en plantas y cambi&oacute;    el conocimiento sobre el transporte de agua a trav&eacute;s de la membrana (11,    12), lo que condujo a los investigadores a revisar muchos aspectos de las relaciones    h&iacute;dricas de las plantas y a relacionar esos aspectos con el nuevo contexto    fisiol&oacute;gico. Actualmente se ha comprobado que estas prote&iacute;nas    son m&aacute;s que canales de agua (13), pues transportan, adem&aacute;s, sustratos    de gran significado fisiol&oacute;gico. Estudios de expresi&oacute;n en ovocitos    de Xenopus laevis tambi&eacute;n muestran que, similar a como ocurre en acuagliceroporinas    en bacterias y animales, algunas isoformas de acuaporinas vegetales pueden transportar    peque&ntilde;os solutos neutros tales como glicerol (14), urea (15), formamida,    acetamida (16), metilamonio (17), &aacute;cido b&oacute;rico (18), &aacute;cido    sil&iacute;cico (19), o &aacute;cido l&aacute;ctico (20). El transporte de amon&iacute;aco    (NH<sub>3</sub>), amonio (NH<sub>4+</sub>) y CO<sub>2</sub>, tambi&eacute;n    se ha detectado (17, 21).    <br>       <br>   Durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han caracterizado AQP en m&aacute;s    de 30 especies vegetales, incluyendo mono y dicotiled&oacute;neas. Como en los    animales, presentan una estructura tetram&eacute;rica y cada mon&oacute;mero    posee un poro funcional individual; algunas se inhiben por mercuriales. Su gran    abundancia en plantas, comparada con las de los animales, sugiere varias posibilidades.    Una de ellas es que las AQP en plantas se puedan encontrar distribuidas en membranas    de los diferentes compartimentos celulares (mitocondria, cloroplasto, peroxisoma,    ret&iacute;culo endopl&aacute;smico, complejo de Golgi y diferentes tipos de    vacuolas y ves&iacute;culas). La presencia de AQP en los diferentes compartimentos    pudiera ser el mecanismo que las c&eacute;lulas utilizan para regular los cambios    en el potencial osm&oacute;tico que sufren durante los diferentes tipos de estr&eacute;s    a los que las plantas se ven continuamente sometidas. Una segunda posibilidad    ser&iacute;a que la expresi&oacute;n de algunas AQP puede depender, ya sea del    estado de desarrollo de la planta, o de las condiciones ambientales a las que    est&aacute; expuesta (22).    <br>       <br>   Se ha encontrado que las acuaporinas en las plantas exhiben una marcada multiplicidad    de isoformas, lo que confirma lo planteado anteriormente. La secuenciaci&oacute;n    del genoma estableci&oacute; que el n&uacute;mero de genes de acuaporinas en    Arabidopsis es 35 (23, 24) y 33 en arroz (Oryza sativa) (25). Adem&aacute;s    se han identificado 36 isoformas en ma&iacute;z (Zea mays L.) (26) y 37 en tomate    (Solanum lycopersicum L.) (27).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Teniendo en cuenta la homolog&iacute;a en la secuencia, las acuaporinas de las    plantas se pueden subdividir en cuatro subgrupos que se corresponden con las    diferentes localizaciones celulares (28). Las prote&iacute;nas intr&iacute;nsecas    del tonoplasto (PIT) y las prote&iacute;nas intr&iacute;nsecas de la membrana    plasm&aacute;tica (PIP) corresponden a acuaporinas que se expresan de forma    abundante en la membrana vacuolar y plasm&aacute;tica, respectivamente. Las    PIP se subdividen en dos subgrupos filogen&eacute;ticos PIP1 y PIP2. Debido    a su abundancia, las PIPs y las PITs representan v&iacute;as centrales para    el transporte de agua transcelular e intracelular (29). Un tercer grupo comprende    las prote&iacute;nas intr&iacute;nsecas de membrana semejantes a Nodulina26    (PIN) por ejemplo, que presentan homolog&iacute;a con GmNod26, una acuaporina    abundante en la membrana peribacteroide de los n&oacute;dulos simbi&oacute;ticos    fijadores de nitr&oacute;geno de ra&iacute;ces de soya (Glycine max Merr.) (30).    Las PINs est&aacute;n presentes en plantas no leguminosas, donde se localizan    en la membranas plasm&aacute;tica e intracelulares (31). El cuarto grupo de    acuaporinas vegetales est&aacute; integrado por las prote&iacute;nas peque&ntilde;as    intr&iacute;nsecas b&aacute;sicas (SIP: small basic intrinsic proteins), (32)    y se localizan en su mayor&iacute;a en el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico    (33).    <br>       <br>   Aunque las cuatro clases de acuaporinas se conservan entre las especies de plantas,    esta familia gen&eacute;tica muestra signos de reciente y r&aacute;pida evoluci&oacute;n    (25). Adem&aacute;s algunas especies de plantas han adquirido adicionales y    nuevos tipos de acuaporinas. Por ejemplo, un hom&oacute;logo del GipF (bacterial    glicerol facilitator) ha sido adquirido, mediante transferencia horizontal de    genes (34), por el musgo Physcomitrella patens, y el genoma de este organismo    y el de algunas plantas superiores codifican una quinta clase de acuaporinas,    que est&aacute;n estrechamente relacionadas, pero claramente diferente a las    PIPs.    <br>       <br>   Los estudios sobre la funci&oacute;n integral de las acuaporinas en plantas    se han visto limitados de alguna manera, por la elevada diversidad gen&eacute;tica    en estos organismos, la carencia de inhibidores espec&iacute;ficos y dificultades    metodol&oacute;gicas para medir el transporte de agua. Sin embargo existen evidencias    sustanciales, basadas en la alteraci&oacute;n de las funciones de las acuaporinas    por el mercurio o la gen&eacute;tica reversa, que muestran que las acuaporinas    contribuyen significativamente al transporte de agua en las ra&iacute;ces (35)    y en tejidos internos de hojas que transpiran (36).    <br>       <br>   El transporte de agua mediado por las acuaporinas es tambi&eacute;n crucial    durante el movimiento de la hoja y de los p&eacute;talos (37), la reproducci&oacute;n    (38), la elongaci&oacute;n celular (39) y la germinaci&oacute;n de la semillas    (40). Tambi&eacute;n se ha propuesto el papel de las acuaporinas intracelulares    en la osmorregulaci&oacute;n de las c&eacute;lulas vegetales (41). Se ha informado    que las acuaporinas participan en el balance y la eficiencia en el uso del agua    en las plantas (42, 28).    <br>   <strong>    <br>   Regulaci&oacute;n de la funci&oacute;n de las acuaporinas</strong>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Las modificaciones post-traduccionales son fundamentales en la regulaci&oacute;n    de la estructura y funci&oacute;n de las prote&iacute;nas, y por tanto para    modular y controlar la actividad de las mismas, su localizaci&oacute;n subcelular,    su estabilidad y su interacci&oacute;n con otras prote&iacute;nas. Se ha identificado    residuos de serina en los extremos N terminal y C terminal, de varias acuaporinas    de las plantas (43). En particular, se identificaron dos sitios de fosforilaci&oacute;n    en el extremo C terminal de las acuaporinas de Arabidopsis AtPIP2;1 (44) y At-PIP2;6    (45) y de espinaca Spinacea oleracea SoPIP2;1 (46). Adem&aacute;s, todas las    AtPIPs muestran un sitio conservado de fosforilaci&oacute;n en el lazo B (47).    Basado en el an&aacute;lisis funcional en Xenopus laevis se propuso que la fosforilaci&oacute;n    de SoPIP2;1 en este sitio y en la Ser262 (en el extremo C terminal) fue capaz    de regular su actividad de transporte de agua (47).    <br>       <br>   La espectrometr&iacute;a de masa y otros adelantos recientes en la prote&oacute;mica    de membrana se han utilizado en la descripci&oacute;n de los patrones de modificaci&oacute;n    co- y post-traduccional en acuaporinas (28). Dichos estudios confirman que las    acuaporinas de membrana plasm&aacute;tica en Arabidopsis pueden ser fosforiladas    en m&uacute;ltiples sitios del extremo C-terminal. Tambi&eacute;n se revel&oacute;    que el extremo N-terminal de PIP2s pueden ser metilados en sitios adyacentes.    En particular, la Lys3 y el Glu6 en AtPIP2 llevan una dimetilaci&oacute;n y    una monometilaci&oacute;n, respectivamente (48). Este es el primer informe de    prote&iacute;nas de membrana metiladas en plantas.    <br>       <br>   Estudios de marcaje in vivo e in vitro, experimentos con anticuerpos antifosfop&eacute;ptido    y an&aacute;lisis de espectrometr&iacute;a de masa han proporcionado evidencias    directas de la fosforilaci&oacute;n tambi&eacute;n de residuos de Ser en los    extremos N y C terminal de las acuaporinas de Phaseolus vulgaris PvTIP3;1 y    GmNOD26 (43, 49). Se han purificado prote&iacute;nas quinasas dependientes de    calcio que act&uacute;an sobre las acuaporinas (50, 51). Aunque la mayor&iacute;a    de las acuaporinas de las plantas no muestran glicosilaci&oacute;n, este tipo    de modificaci&oacute;n se observ&oacute; en GmNOD26 (52).    <br>       <br>   La actividad de las acuaporinas puede ser afectada por el estado oligom&eacute;rico    de la prote&iacute;na. Estas se encuentran generalmente de forma tetram&eacute;rica,    tanto in vitro como in vivo. La tetramerizaci&oacute;n involucra interacciones    entre los mon&oacute;meros vecinos, a trav&eacute;s de las a-helices y los lazos    extramembrana, los cuales contribuyen a la estabilidad del tetr&aacute;mero    (53). Algunos experimentos muestran que varias acuaporinas forman homotetrameros    estables (54, 55, 56). Sin embargo, varias isoformas de las plantas forman heterotetr&aacute;meros    (53).    <br>       <br>   Tambi&eacute;n se ha informado la regulaci&oacute;n de la permeabilidad de las    acuaporinas PIPs por el calcio y el pH (57, 58, 59). La permeabilidad de la    membrana plasm&aacute;tica al agua, en suspensiones celulares de Arabidopsis,    o en c&eacute;lulas de la ra&iacute;z, se reduce en presencia de Ca<sup>2+</sup>    y bajo pH (57). La acidosis citos&oacute;lica se observa durante la falta de    ox&iacute;geno o anoxia resultante del anegamiento del suelo y se asocia a la    reducci&oacute;n de la permeabilidad al agua de las c&eacute;lulas de la ra&iacute;z    (58). Resulta interesante que en Xenopus laevis las acuaporinas de Arabidopsis    AtPIP2;1, At-PIP2;2, AtPIP2;3 y AtPIP1;2, se cierran despu&eacute;s de un cambio    del pH citos&oacute;lico de siete a seis. Se plantea que el residuo responsable    de este tipo de regulaci&oacute;n en el cierre de AtPIP2;2 es la His 197, que    se localiza en el lazo D intracelular. La sustituci&oacute;n de la His 197 por    un residuo de Ala, reduce el efecto de la acidificaci&oacute;n citos&oacute;lica    (58).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Por otro lado, las acuaporinas en las plantas son destinadas espec&iacute;ficamente    a ciertas membranas. Estudios de inmunocitoqu&iacute;mica e inmunodetecci&oacute;n    han permitido determinar que la mayor&iacute;a de las acuaporinas est&aacute;n    localizadas tanto en la membrana plasm&aacute;tica, la membrana vacuolar o la    membrana peribacteroide de los n&oacute;dulos fijadores de nitr&oacute;geno    de la ra&iacute;z.    <br>       <br>   Para arribar a este destino, las acuaporinas deben ser transportadas a trav&eacute;s    de v&iacute;as secretoras que incluyen el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico,    el complejo de Golgi y dentro de diferentes tipos de ves&iacute;culas, de acuerdo    a la membrana blanco. La regulaci&oacute;n del tr&aacute;fico de las acuaporinas    entre membranas, por tanto pudiera representar un mecanismo b&aacute;sico para    modular la permeabilidad de las membranas al agua en respuesta a diferentes    condiciones ambientales y de disponibilidad de agua (53).    <br>       <br>   Otro mecanismo de regulaci&oacute;n de la actividad de las acuaporinas, pudiera    ser las fuerzas de cohesi&oacute;n / tensi&oacute;n en presencia de altas concentraciones    de solutos osm&oacute;ticos (60). Acorde a este modelo, los osmolitos excluidos    del canal pudieran causar tensi&oacute;n (presiones negativas) dentro del poro    e inducir una deformaci&oacute;n de la prote&iacute;na y eventualmente su cierre.    <br>       <br>   En conjunto, estos estudios muestran que en cada acuaporina de las plantas pueden    ocurrir diversas modificaciones, lo que refleja posiblemente los complejos mecanismos    que participan en la regulaci&oacute;n de su actividad. Aunque se han hecho    significativos progresos, se requiere un mejor conocimiento de la expresi&oacute;n    de las mismas en compartimentos subcelulares espec&iacute;ficos y en los diferentes    tipos celulares (28).    <br>   <strong>    <br>   Papel de las acuaporinas en la respuesta de la planta al estr&eacute;s abi&oacute;tico</strong>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Las plantas necesitan continuamente ajustar su estatus acuoso en respuesta a    las condiciones cambiantes del medio y las acuaporinas juegan un papel importante    en estos procesos (61, 62). En particular, estudios gen&eacute;ticos y fisiol&oacute;gicos,    han proporcionado evidencias del papel de las acuaporinas en la regulaci&oacute;n,    en respuesta al estr&eacute;s abi&oacute;tico, del transporte de agua de la    ra&iacute;z y de la conductividad hidr&aacute;ulica de la misma (Lpr) (62, 63).    Por ejemplo la exposici&oacute;n de plantas de Arabidopsis a la salinidad (100    mM NaCl) indujo una r&aacute;pida (tiempo promedio de 45 minutos) y significativa    disminuci&oacute;n (-70 %) en la Lpr, que fue mantenida al menos 24 horas (64).    Mientras que el efecto a largo plazo del estr&eacute;s por NaCl se explica por    una completa inhibici&oacute;n transcripcional de las acuaporinas, el mecanismo    molecular involucrado en la temprana disminuci&oacute;n de la Lpr por el NaCl    no se ha explicado todav&iacute;a completamente. Estos mecanismos involucran    un ligero decrecimiento en la cantidad total de las prote&iacute;nas AtPIP1,    a los 30 minutos despu&eacute;s de la exposici&oacute;n al NaCl, y un transporte    de isoformas AtPIP1 y AtPIP2 entre la membrana plasm&aacute;tica y los compartimentos    celulares, que pudiera contribuir a reducir la abundancia de AtPIPs en la membrana    plasm&aacute;tica y por tanto de la conductividad hidr&aacute;ulica de las c&eacute;lulas    de la ra&iacute;z estresada por salinidad (65).    <br>       <br>   La congelaci&oacute;n es otro tipo de estr&eacute;s abi&oacute;tico que inhibe    la Lpr, y en este contexto se estableci&oacute; la relaci&oacute;n entre la    regulaci&oacute;n de las acuaporinas y las especies reactivas del ox&iacute;geno    (66). En pepino (Cucumis sativus L.), por ejemplo, el per&oacute;xido de hidrogeno    (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) acumulado en respuesta a la congelaci&oacute;n    y el tratamiento de las ra&iacute;ces con H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, inhibe    la Lpr en igual magnitud que la congelaci&oacute;n. En Arabidopsis tambi&eacute;n    se observ&oacute; una disminuci&oacute;n r&aacute;pida en la Lpr en respuesta    a 2 mM de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> (28). Debido a su extensi&oacute;n (&gt;    70 %) y rapidez (tiempo medio alrededor de ocho minutos), esta disminuci&oacute;n    se debe indudablemente a la inhibici&oacute;n de las acauporinas de las ra&iacute;ces.    <br>       <br>   La hal&oacute;fita Mesembryanthemum crystallinum se ha tomado como modelo de    estudio, para conocer el papel de las AQP&#8217;s durante la exposici&oacute;n    de las plantas a la salinidad y el estr&eacute;s osm&oacute;tico. De las cuatro    AQPs que se han estudiado hasta el momento (McPIP1;4, McPIP1;2, McTIP1;2 y McPIP2;1),    se observ&oacute; que una de ellas, McPIP2;1, s&oacute;lo se expresa en la ra&iacute;z,    espec&iacute;ficamente, en la epidermis y en la endodermis. Adem&aacute;s, se    constat&oacute; un aumento en los niveles de prote&iacute;na de esta acuaporina    en respuesta al estr&eacute;s salino. Estos resultados sugieren que McPIP2;1    tiene un papel importante en el transporte de agua en las ra&iacute;ces y por    consiguiente en la adaptaci&oacute;n de la planta a la salinidad. Para comprender    mejor la participaci&oacute;n de la acuaporina McPIP2;1 en la adaptaci&oacute;n    de la planta a la salinidad esta AQP se ha estudiado con mayor detalle desde    el punto de vista funcional, de distribuci&oacute;n y de regulaci&oacute;n<sup>A</sup>.    <br>       <br>   Numerosos estudios se han dirigido a comprender los factores que participan    en la regulaci&oacute;n de la actividad y expresi&oacute;n de las TIP. La actividad    de las TIP se regula por se&ntilde;ales del desarrollo as&iacute; como ambientales,    tanto a nivel transcripcional como post-transcripcional. Otros estudios han    mostrado que la expresi&oacute;n de las TIP se regula por la salinidad (67).    An&aacute;lisis sistem&aacute;ticos de la expresi&oacute;n de las TIP, en respuesta    al estr&eacute;s abi&oacute;tico se han llevado a cabo en Arabidopsis y ma&iacute;z    (Z. mays) (68, 69). Los resultados indican que la mayor&iacute;a de las TIP    fueron reprimidas por la salinidad y la sequ&iacute;a en ambos cultivos. En    arroz (Oryza sativa L.) la expresi&oacute;n de OsTIP1;1 se increment&oacute;    bajo estr&eacute;s salino (70). La correlaci&oacute;n entre los niveles de ARNm    de las TIP y el volumen de savia circulante sugiere una relaci&oacute;n entre    la toma de agua por las ra&iacute;ces y la expresi&oacute;n de las TIP (25).    <br>       <br>   Se ha informado sobre la caracterizaci&oacute;n de la acuaporina TaNIP (Triticum    asetivum L. nodulin 26-like intrinsic protein) (71). Este gen se identific&oacute;    en el mutante de trigo tolerante a la salinidad RH8706-49 sometido a estr&eacute;s    salino. La sobreexpresi&oacute;n de este gen en Arabidopsis permiti&oacute;    una mayor tolerancia a la salinidad que las plantas silvestres. Las plantas    transg&eacute;nicas acumularon mayor cantidad de K<sup>+</sup>, Ca<sup>++</sup>    y prolina y menor contenido de Na+ en comparaci&oacute;n con el fenotipo silvestre.    Tambi&eacute;n en las plantas transformadas se observ&oacute; la activaci&oacute;n    de la expresi&oacute;n de otros genes asociados al estr&eacute;s. Se demostr&oacute;    que la acuaporina TaNIP se expresa en la membrana plasm&aacute;tica.     <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La mayor&iacute;a del transporte simpl&aacute;stico de agua en las plantas ocurre    v&iacute;a acuaporinas pero no se conoce hasta qu&eacute; punto contribuyen    al estatus acuoso de la planta bajo condiciones favorables y bajo estr&eacute;s    abi&oacute;tico. Debido a ello se ha sobreexpresado la acuaporina de membrana    plasm&aacute;tica de Arabidopsis PIP1b, en plantas de tabaco transg&eacute;nicas    (72). En condiciones favorables de crecimiento, la sobreexpresi&oacute;n de    PIP1b increment&oacute; de forma significativa la tasa de crecimiento de las    plantas, la tasa de transpiraci&oacute;n, la densidad estom&aacute;tica y la    eficiencia fotosint&eacute;tica. Por el contrario, la sobreexpresi&oacute;n    de PIP1b no tuvo un efecto beneficioso bajo estr&eacute;s salino. Estos autores    sugieren que el transporte de agua a trav&eacute;s de la v&iacute;a simpl&aacute;stica    de las acuaporinas representa un factor limitante para el crecimiento y vigor    de las plantas en condiciones favorables, mientras que el incremento de este    tipo de transporte, no tiene un efecto beneficioso bajo estr&eacute;s salino.    <br>       <br>   Por otro lado la expresi&oacute;n de algunos genes que codifican acuaporinas    de la membrana plasm&aacute;tica, tales como el gen RD28 de Arabidopsis y NeMip2    y NeMip3 de Nicotiana excelsior, se estimulan bajo estr&eacute;s por sequ&iacute;a    (73, 74). En contraste la expresi&oacute;n del gen MIPA, que codifica para una    acuaporina de la membrana plasm&aacute;tica en Mesembryanthemum crystallinum    es reprimida bajo estr&eacute;s por salinidad (74), mientras que la expresi&oacute;n    del gen PIP1b de Arabidopsis no se altera de forma significativa en condiciones    estresantes (75). La reducci&oacute;n de los niveles de expresi&oacute;n del    gen PIP1a en Arabidopsis por medio de una construcci&oacute;n antisentido bajo    un promotor 35S, result&oacute; en un cambio significativo en la morfolog&iacute;a    de la ra&iacute;z y un incremento en la masa de la misma (76); sin embargo,    no se afect&oacute; el potencial h&iacute;drico ni el peso de la planta. En    otras investigaciones se redujeron los niveles de expresi&oacute;n de un hom&oacute;logo    de PIP1b en tabaco (NtAQP1) (35), por un m&eacute;todo similar a los autores    anteriores. Esto result&oacute; en una mayor sensibilidad al polietil&eacute;nglicol,    menor conductividad hidr&aacute;ulica de la ra&iacute;z y disminuci&oacute;n    en la tasa de transpiraci&oacute;n, que en aquellas plantas que no fueron transformadas,    bajo estr&eacute;s por sequ&iacute;a.    <br>       <br>   Durante el estr&eacute;s osm&oacute;tico se han informado aumentos de la expresi&oacute;n    de AQP en diferentes tejidos y especies vegetales, como pl&aacute;ntulas y partes    a&eacute;reas de A. thaliana, tallos de tomate, anteras e inflorescencia del    coliflor, ra&iacute;ces y partes a&eacute;reas del arroz y hojas y ra&iacute;ces    de girasol. En contraste, se ha observado que el estr&eacute;s osm&oacute;tico    causa una disminuci&oacute;n de la expresi&oacute;n de AQP en hojas, ra&iacute;ces    y tallos de Nicotiana glauca y hojas de Mesembryanthemum crystallinum. Trabajos    recientes apoyan el papel de algunas AQP en la tolerancia al estr&eacute;s h&iacute;drico.    Se ha observado que la represi&oacute;n de la expresi&oacute;n de AQP resulta    en cambios en la conductividad hidr&aacute;ulica de las ra&iacute;ces, velocidad    de transpiraci&oacute;n, permeabilidad osm&oacute;tica y capacidad de las plantas    para recuperarse en suelos deficientes en agua (22).    <br>       <br>   En la hal&oacute;fita M. crystallinum se ha observado que existe una regulaci&oacute;n    diferencial en los niveles de expresi&oacute;n de las diferentes AQP por estr&eacute;s    salino y por estr&eacute;s osm&oacute;tico. Durante el estr&eacute;s salino    se reduce la expresi&oacute;n de AQP en hojas, mientras que se incrementa en    la ra&iacute;z. El estr&eacute;s osm&oacute;tico causa un aumento de AQP en    hojas y ra&iacute;ces, que contrasta con la disminuci&oacute;n causada por el    estr&eacute;s salino. Estos hallazgos sugieren que la planta es capaz de discriminar    exactamente entre el estr&eacute;s i&oacute;nico y el estr&eacute;s osm&oacute;tico,    posiblemente a trav&eacute;s de diferentes mecanismos de transducci&oacute;n    de se&ntilde;ales involucrados en la adaptaci&oacute;n a estos tipos de estr&eacute;s    (3, 22).    <br>       <br>   Otros autores evaluaron los niveles de ARNm de la acuaporina HtPIP2;4, adem&aacute;s    de algunos indicadores fisiol&oacute;gicos (77), en condiciones de salinidad,    en dos l&iacute;neas de cebada (Hordeum vulgare L.), una tolerante y otra resistente.    Obtuvieron que el tratamiento salino disminuy&oacute; m&aacute;s la transpiraci&oacute;n    y la conductividad hidr&aacute;ulica, en la l&iacute;nea sensible que en la    tolerante. Este efecto fue paralelo a la m&aacute;s r&aacute;pida y persistente    inhibici&oacute;n de la acuaporina, en el cultivar sensible que en el tolerante,    por lo que concluyeron que los cambios en los niveles de expresi&oacute;n de    las acuaporinas est&aacute;n implicados en el control de la conductividad hidr&aacute;ulica    de la planta completa y en la regulaci&oacute;n de las relaciones h&iacute;dricas    en el tallo.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   A nivel de la planta completa el principal efecto de la sequ&iacute;a es la    reducci&oacute;n de la transpiraci&oacute;n a trav&eacute;s del cierre estom&aacute;tico.    No obstante, en condiciones extremas, la elevada tensi&oacute;n en el xilema    puede conducir a la oclusi&oacute;n por embolizaci&oacute;n. Algunos autores    propusieron que las acuaporinas tienen una funci&oacute;n espec&iacute;fica    en el relleno del embolismo y la recuperaci&oacute;n de la conductancia axial    del tallo despu&eacute;s de la sequ&iacute;a, en experimentos de inhibici&oacute;n    con mercurio, en Vitis vinifera L. (78) Resultados similares se obtuvieron en    la especie Populus trichocarpa (79).    <br>       <br>   Por otro lado, en Juglans nigra L., una especie maderable, los transcriptos    y las prote&iacute;nas correspondientes a dos hom&oacute;logos de las PIP2,    mostraron variaciones estacionales y se acumularon en el par&eacute;nquima xilem&aacute;tico    durante las bajas temperaturas del invierno, lo que sugiere tambi&eacute;n una    funci&oacute;n espec&iacute;fica de las acuaporinas en la reparaci&oacute;n    del embolismo; teniendo en cuenta que esta se lleva a cabo por la hidr&oacute;lisis    del almid&oacute;n en las c&eacute;lulas parenquim&aacute;ticas adyacentes y    la exudaci&oacute;n de los az&uacute;cares resultantes dentro de la ves&iacute;cula.    El influjo de agua concomitante trae consigo que se rompa la burbuja de aire    y se repare el embolismo (80).    <br>       <br>   El anegamiento de los suelos conlleva a una aguda falta de ox&iacute;geno de    las ra&iacute;ces de las plantas, lo que impone un fuerte estr&eacute;s a las    mismas. Otros autores delinearon las bases celulares de este proceso en ra&iacute;ces    de Arabidopsis como se mostr&oacute; en el cap&iacute;tulo sobre la regulaci&oacute;n    de la funci&oacute;n de las acuaporinas (58). Se ha planteado adem&aacute;s,    que este tipo de regulaci&oacute;n puede evitar la excesiva diluci&oacute;n    de la savia xilem&aacute;tica despu&eacute;s de la inundaci&oacute;n o en per&iacute;odos    posteriores favorecer la acumulaci&oacute;n del etileno, lo que en cambio induce    la diferenciaci&oacute;n del aer&eacute;nquima (81). En Arabidopsis, ocurre    una represi&oacute;n general de los genes de las PIP y las TIP en respuesta    a la hipoxia. Por el contrario, la expresi&oacute;n de AtNIP2;1 se induce marcadamente    despu&eacute;s de la inundaci&oacute;n y la hipoxia (82). La acuaporina AtNIP2;1,    transporta &aacute;cido l&aacute;ctico y puede, por tanto, ser una v&iacute;a    para la liberaci&oacute;n de los productos de la fermentaci&oacute;n de las    c&eacute;lulas radicales para contribuir a la regulaci&oacute;n del pH y la    adaptaci&oacute;n metab&oacute;lica a la hipoxia por un per&iacute;odo prolongado    (20).    <br>       <br>   Es ampliamente conocida la funci&oacute;n del &aacute;cido absc&iacute;sico    (ABA) en la respuesta de la planta frente a la sequ&iacute;a en la inducci&oacute;n    del cierre estom&aacute;tico y otros mecanismos de defensa de la planta (83).    Se ha sugerido que esta hormona influye en la conductancia hidr&aacute;ulica    de la planta, regulando la actividad y la expresi&oacute;n de las acuaporinas    (isoformas PIPs) en l&iacute;neas transg&eacute;nicas de ma&iacute;z, por lo    que contribuye a mantener el estatus h&iacute;drico de la planta en condiciones    de sequ&iacute;a (84).    <br>       <br>   Por otro lado se inform&oacute; que la expresi&oacute;n de AtPIP2;2, AtPIP2;4,    AtPIP2;5, y AtPIP2;7, que son permeables al H2O2 en c&eacute;lulas de levaduras,    fueron moduladas diferencialmente por los diferentes tipos de estr&eacute;s    abi&oacute;tico (85). En particular, la expresi&oacute;n de AtPIP2;2, AtPIP2;4    y AtPIP2;7, fue inhibida por la aplicaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>    y por la sequ&iacute;a. Los autores concluyeron que la regulaci&oacute;n concomitante    en la expresi&oacute;n de ciertos miembros de la familia de acuaporinas puede    jugar un papel importante en la respuesta de la planta mediada por el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>,    frente a condiciones ambientales cambiantes. Mientras que otros autores tambi&eacute;n    relacionaron el efecto del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, con la regulaci&oacute;n    de las acuaporinas y el control de las propiedades hidr&aacute;ulicas de la    ra&iacute;z en Phaseolus vulgaris (86).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <strong>Consideraciones finales</strong>    <br>       <br>   Las acuaporinas son los &uacute;nicos transportadores moleculares de agua en    las plantas y su estudio ha mejorado significativamente el conocimiento sobre    los mecanismos integrados de transporte de agua, en las ra&iacute;ces, en particular.    Sin embargo, en vistas de los complejos mecanismos de expresi&oacute;n y regulaci&oacute;n    de las acuaporinas, su papel en la regulaci&oacute;n del transporte de agua    y en muchos otros procesos fisiol&oacute;gicos, que incluyen la germinaci&oacute;n    de las semillas, regulaci&oacute;n de los estomas y el transporte de agua en    las hojas, merecen investigaciones futuras.    <br>       <br>   Otro desaf&iacute;o futuro es comprender c&oacute;mo las acuaporinas pueden    ser espec&iacute;ficamente situadas en subdominios espec&iacute;ficos de las    membranas en las c&eacute;lulas vegetales y c&oacute;mo esto contribuir&aacute;    a su especializaci&oacute;n funcional. El mecanismo celular que determina el    transporte de las acuaporinas y su relocalizaci&oacute;n celular en respuesta    a los diferentes est&iacute;mulos ser&aacute;, sin lugar a dudas, objeto de    intensas investigaciones en los pr&oacute;ximos a&ntilde;os.     <br>   Por &uacute;ltimo, las funciones de las acuaporinas deben ser integradas a la    fisiolog&iacute;a de la planta como un todo. Esto requiere una mejor comprensi&oacute;n    de c&oacute;mo las varias actividades de transporte de las acuaporinas se acoplan    con aquellas de otras prote&iacute;nas transportadoras. Tambi&eacute;n debe    ser esclarecida la cadena de eventos que conllevan al control de las funciones    de las acuaporinas mediante se&ntilde;ales locales o a larga distancia, durante    el desarrollo o en respuesta a se&ntilde;ales de estr&eacute;s bi&oacute;tico    y abi&oacute;tico.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>REFERENCIAS</strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 1. Du, S.; Dai,    Q.; Chen, C.; Liu, T.; Tian, X.; Gong, Y.; Sun, Y. y Wang, J. Molecular cloning    and characterization of the plasma membrane aquaporin gene (OvPIP) from Orychophragmus    violaceus. African Journal of Biotechnology, 2011, vol. 10, no. 19, pp. 3709-3714.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   2. Maurel, C.; Verdoucq, L.; Luu, D. y Santoni, V. Plant Aquaporins: membrane    channels with multiple integrated functions. Annu. Rev. Plant Biol., 2008, vol.    59, pp. 595-624.    <br>       <!-- ref --><br>   3. Coppo, J. A. Acuaporinas. Rev. Vet., 2008, vol. 19, no. 2, pp. 167-178.    <br>       <!-- ref --><br>   4. Maurel, C.; Kado, R. T.; Guern, J. y Chrispeels, M. J. Phosphorylation regulates    the waterchannel activity of the seed-speci?c aquaporin a-TIP. EMBO J., 1995,    vol. 14 pp. 3028-3035.    <br>       <!-- ref --><br>   5. Agre, P. Molecular physiology of water transport: aquaporin nomenclature    workshop. Mammalian aquaporins. Biol. Cell., 1997, vol. 89, pp. 255-257.    <br>       <!-- ref --><br>   6. Jung, J. S.; Preston, G. M.; Smith, B. L.; Guggino, W. B. y Agre, P. Molecular    structure of the water channel through aquaporin CHIP: the hourglass model.    J. Biol. Chem., 1994, vol. 269, pp. 14648-14654.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   7. Vanos, C. H.; Deen, P. M. y Dempster, J. A. Aquaporins: water selective channels    in biological membranes. Biochim Biophys Acta, 1994, vol. 1197, pp. 291-309.    <br>       <!-- ref --><br>   8. De Groot, B. L.; Engel, A. y Gubmuller, H. A refined structure of human aquaporin-1.    FEBS Letters, 2001, vol. 504, pp. 206-211.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Waltz, T.; Smith B. L.; Zeidel, M. L.; Engel, A. y Agre, P. Biologically    active two-dimensional crystals of aquaporin CHIP. J .Biol. Chem., 1994, vol.    269, pp. 1583-1586.    <br>       <br>   10. Tamargo, J. Los poros y los canales i&oacute;nicos regulan la actividad    celular. An. R. Acad. Nac. Farm., 2004, vol. 70, p. 9-31.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Schaffner, A. R. Aquaporin function, structure, and expression: are there    more surprises to surface in water relations? Planta, 1998, vol. 204, pp. 131-139.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   12. Tyerman, S. D.; Bohnert, H. J.; Maurel, C.; Steudle, E. y Smith, J. A. Plant    aquaporins: their molecular biology, biophysics and significance for plant water    relations. J. Exp. Bot., 1999, vol. 50, pp. 1055-1071.    <br>       <!-- ref --><br>   13. Tyerman, S. D.; Niemietz, C. M. Plant aquaporins: multifunctional water    and solute channels with expanding roles. Plant Cell Environ., 2002, vol. 25,    pp. 173-194.    <br>       <!-- ref --><br>   14. Biela, A.; Grote, K.; Otto, B.; Hoth, S.; Hedrich, R. y Kaldenhoff, R. The    Nicotiana tabacum plasma membrane aquaporin NtAQP1 is mercury-insensitive and    permeable for glycerol. Plant J., 1999, vol. 18, pp. 565-570.    <br>       <br>   15. Gerbeau, P.; Guclu, J.; Ripoche, P. y Maurel, C. Aquaporin Nt-TIPa can account    for the high permeability of tobacco cell vacuolar membrane to small neutral    solutes. Plant J., 1999, vol. 18, p. 577-587.    <br>       <!-- ref --><br>   16. Rivers, R. L.; Dean, R. M.; Chandy, G.; Hall, J. E.; Roberts, D. M. y Zeidel,    M. L. Functional analysis of Nodulin 26, an aquaporin in soybean root symbiosomes.    J. Biol. Chem., 1997, vol. 272, pp. 16256-16261.    <br>       ]]></body>
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<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   22. Vera-Estrella, R.; Barkla, B. J. y Pantoja, O. La biolog&iacute;a y la fisiolog&iacute;a    de las acuaporinas en plantas. Biojournal.net, 2005, vol. 1, pp. 1-15. On line:    <a href="http://www.biojournal.net/pdf/05.pdf" target="_blank">http://www.biojournal.net/pdf/05.pdf</a>.    <br>       <!-- ref --><br>   23. Johanson, U.; Karlsson, M.; Gustavsson, S.; Sjovall, S.; Fraysse, L.; Weig,    A. R. y Kjellbom, P. The complete set of genes encoding Major Intrinsic Proteins    in Arabidopsis provides a framework for a new nomenclature for major intrinsic    proteins in plants. Plant Physiol., 2001, vol. 126, pp. 1358-1369.    <br>       <!-- ref --><br>   24. Quigley, F.; Rosenberg, J. M.; Shachar-Hill, Y. y Bohnert, H. J. From genome    to function: the Arabidopsis aquaporins. Genome Biol., 2001, vol. 3, pp. 1-17.    <br>       <!-- ref --><br>   25. Sakurai, J.; Ishikawa, F.; Yamaguchi, T.; Uemura, M. y Maeshima, M. Identification    of 33 rice aquaporin genes and analysis of their expression and function. Plant    Cell Physiol., 2005, vol. 46, pp. 1568-1577.    <br>       <!-- ref --><br>   26. Chaumont, F.; Barrieu, F.; Wojcik, E.; Chrispeels, M. J. y Jung, R. Aquaporins    constitute a large and highly divergent protein family in maize. Plant Physiol.,    2001, vol. 125, pp. 1206-1215.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   27. Sade, N.; Vinocur, B. J.; Diber, A.; Shatil, A.; Ronen, G.; Nissan, H.;    Wallach, R.; Karchi, H. y Moshelion, M. Improving plant stress tolerance and    yield production: is the tonoplast aquaporin SlTIP2;2 a key to isohydric to    anisohydric conversion? New Phytol., 2009, vol. 181, pp. 651-661.    <br>       <!-- ref --><br>   28. Maurel, C. Plant aquaporins: novel functions and regulation properties.    FEBS Lett., 2007, vol. 581, pp. 2227-2236.    <br>       <!-- ref --><br>   29. Cohen, D.; Bogeat, M. B; Vialet, S.; Merret, R.; Courty, P. E. /et al./.    Developmental and environmental regulation of aquaporine gene expression across    Populus species: divergency or redundancy? PloS ONE, vol. 8, no. 2, p. E55506.    doi:10.1371/journal.pone.0055506.    <br>       <!-- ref --><br>   30. Wallace, I. S.; Choi, W. G. y Roberts, D. M. The structure, function and    regulation of the nodulin 26-like intrinsic protein family of plant aquaglyceroporins.    Biochim. Biophys. Acta., 2006, vol. 1758, pp. 1165-1175.    <br>       <!-- ref --><br>   31. Mizutani, M.; Watanabe, S.; Nakagawa, T. y Maeshima, M. Aquaporin NIP2;1    is mainly localized to the ER membrane and shows root-specific accumulation    in Arabidopsis thaliana. Plant Cell Physiol., 2006, vol. 47, pp. 1420-1426.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   32. Johanson, U. y Gustavsson, S. A new subfamily of major intrinsic proteins    in plants. Mol. Biol. Evol., 2002, vol. 19, pp. 456-461.    <br>       <!-- ref --><br>   33. Ishikawa, F.; Suga, S.; Uemura, T.; Sato, M. H. y Maeshima, M. Novel type    aquaporin SIPs are mainly localized to the ER membrane and show cell-specific    expression in Arabidopsis thaliana. FEBS Lett., 2005, vol. 579, pp. 5814-5820.    <br>       <!-- ref --><br>   34. Gustavsson, S.; Lebrun, A.; Norden, K.; Chaumont, F. y Johanson, U. A novel    plant major intrinsic protein in Physcomitrella patens most similar to bacterial    glycerol channels. Plant Physiol., 2005, vol. 139, pp. 287-295.    <br>       <!-- ref --><br>   35. Siefritz, F.; Tyree, M. T.; Lovisolo, C.; Schubert, A. y Kaldenhoff, R.    PIP1 plasma membrane aquaporins in tobacco: from cellular effects to function    in plants. Plant Cell., 2002, vol. 14, pp. 869-876.    <br>       <!-- ref --><br>   36. Cochard, H.; Venisse, J. S.; Barigah, T. S.; Brunel, N.; Herbette, S.; Guilliot,    A.; Tyree, M. T. y Sakr, S. New insights into the understanding of variable    hydraulic conductances in leaves. Evidence for a possible implication of plasma    membrane aquaporins. Plant Physiol., 2007, vol. 143, pp. 122-133.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   37. Azad, A. K.; Sawa, Y.; Ishikawa, T. y Shibata, H. Phosphorylation of plasma    membrane aquaporin regulates temperature-dependent opening of tulip petals.    Plant Cell Physiol., 2004, vol. 45, pp. 608-617.    <br>       <!-- ref --><br>   38. Bots, M.; Vergeldt, F.; Wolters-Arts, M.; Weterings, K.; van As, H. y Mariani,    C. Aquaporins of the PIP2 class are required for efficient anther dehiscence    in tobacco. Plant Physiol., 2005, vol. 137, pp. 1049-1056.    <br>       <!-- ref --><br>   39. Hukin, D.; Doering-Saad, C.; Thomas, C. R. y Pritchard, J. Sensitivity of    cell hydraulic conductivity to mercury is coincident with symplasmic isolation    and expression of plasmalemma aquaporin genes in growing maize roots. Planta,    2002, vol. 215, pp. 1047-1056.    <br>       <!-- ref --><br>   40. Vander, C.; Postaire, O.; Tournaire-Roux, C.; Boursiac, Y. y Maurel, C.    Expression and inhibition of aquaporins in germinating Arabidopsis seeds. Plant    Cell Physiol., 2006, vol. 47, pp. 1241-1250.    <br>       <!-- ref --><br>   41. Khaled, K.; Karim, K.; Mourad, O.; Abdekarim, K. y Nouredine, K. PIP Aquaporin    protein of in durum wheat, homology modelling and 3D structure analysis. Biomirror,    2011, vol. 2, no. 6, pp. 1-7.    <br>       ]]></body>
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