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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de la concentración mínima letal de Glufosinato de amonio para seleccionar embriones somáticos transformados de soya cultivar INCASoy-27]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The establishment of a genetic transformation program requires a selection in vitro system of transformed tissues. In the Glycine genus exists few references that employ the Glufosinate-ammoniun that selective agent in transformed somatic embryos. For this reason this work had as objective to determine the minimum lethalconcentration of the herbicide Glufosinate-ammoniun in somatic embryos of Cuban soybean cultivar INCASoy-27, to use as selective agent in genetic transformation programs. The soybean somatic embryos were placed on multiplication medium that contained 2,4-dichlorophenoxyacetic acid 20 mg L-1 with different concentrations of Glufosinate-ammonium (1,0; 2,0; 3,0; 4,0; 5,0; 6,0 mg L-1). All concentrations of selective agent caused necrosis in not transformed soybean somatic embryos. The increments of selective agent concentration and culture time increased the necrosis of somatic embryos. Finally was determined the minimum lethal concentration of 6,0 mg L-1 Glufosinate-ammoniun in semisolid medium, that selective agent in the genetic transformation of somatic embryos of soybean cultivar INCASoy-27]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Determinaci&oacute;n    de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima letal de Glufosinato de amonio para    seleccionar embriones som&aacute;ticos transformados de soya cultivar INCASoy-27</strong></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Determination    of minimum lethal concentration of Glufosinate-ammonium for selection of transformed    somatic embryos of soybean cultivar INCASoy-27</strong></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Ms.C.    Jorge L. P&eacute;rez-P&eacute;rez,<sup>I,II</sup> Dra.C. Lourdes Garc&iacute;a    Rodr&iacute;guez,<sup>I</sup> Dra.C. Novisel Veit&iacute;a,<sup>I</sup> Dra.C.    Idalmis Berm&uacute;dez-Caraballoso,<sup>I</sup> Dr.C. Ra&uacute;l Collado L&oacute;pez,    Damaris Torres Rodr&iacute;guez<sup>I</sup></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Instituto    de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas. Universidad Central “Marta Abreu” de    Las Villas, Carretera a Camajuan&iacute; km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba.    <br>   <sup>I</sup><sup>I</sup>Centro de Estudios de Biotecnolog&iacute;a Vegetal.    Universidad de Granma. Carretera a Manzanillo, km 17.5, Peralejo, Bayamo, Granma,    Cuba. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El establecimiento    de un programa de transformaci&oacute;n gen&eacute;tica de plantas requiere    de un sistema de selecci&oacute;n <em>in vitro</em> de los tejidos transformados.    En el g&eacute;nero <em>Glycine</em> existen pocas referencias que emplean el    Glufosinato de amonio como agente selectivo de embriones som&aacute;ticos transformados.    Por ello, este trabajo tuvo como objetivo determinar la concentraci&oacute;n    m&iacute;nima letal del herbicida Glufosinato de amonio en embriones som&aacute;ticos    de soya cultivar cubano INCASoy-27, para usarlo como agente selectivo en programas    de transformaci&oacute;n gen&eacute;tica. Los embriones som&aacute;ticos fueron    colocados en medio de cultivo de multiplicaci&oacute;n con 20 mg L<sup>-1</sup>    de &aacute;cido 2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico y diferentes concentraciones    de Glufosinato de amonio (1,0; 2,0; 3,0; 4,0; 5,0; 6,0 mg L<sup>-1</sup>). Todas    las concentraciones del agente selectivo causaron necrosis en embriones som&aacute;ticos    no transformados de soya. El incremento de la concentraci&oacute;n del agente    selectivo y el tiempo de cultivo, aument&oacute; la necrosis de los embriones    som&aacute;ticos. Finalmente se determin&oacute; la concentraci&oacute;n m&iacute;nima    letal de Glufosinato de amonio 6,0 mg L<sup>-1</sup>, en medio de cultivo semis&oacute;lido,    requerida para su empleo como agente selectivo en la transformaci&oacute;n gen&eacute;tica    de embriones som&aacute;ticos de soya cultivar INCASoy-27. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> agentes, embriog&eacute;nesis som&aacute;tica, fosfinotricina,    <em>Glycine max</em>, transformaci&oacute;n gen&eacute;tica.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> The establishment    of a genetic transformation program requires a selection <em>in vitro</em> system    of transformed tissues. In the <em>Glycine</em> genus exists few references    that employ the Glufosinate-ammoniun that selective agent in transformed somatic    embryos. For this reason this work had as objective to determine the minimum    lethalconcentration of the herbicide Glufosinate-ammoniun in somatic embryos    of Cuban soybean cultivar INCASoy-27, to use as selective agent in genetic transformation    programs. The soybean somatic embryos were placed on multiplication medium that    contained 2,4-dichlorophenoxyacetic acid 20 mg L<sup>-1</sup> with different    concentrations of Glufosinate-ammonium (1,0; 2,0; 3,0; 4,0; 5,0; 6,0 mg L<sup>-1</sup>).    All concentrations of selective agent caused necrosis in not transformed soybean    somatic embryos. The increments of selective agent concentration and culture    time increased the necrosis of somatic embryos. Finally was determined the minimum    lethal concentration of 6,0 mg L<sup>-1</sup> Glufosinate-ammoniun in semisolid    medium, that selective agent in the genetic transformation of somatic embryos    of soybean cultivar INCASoy-27.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    agents, somatic embryogenesis, phosphinothricin, <em>Glycine max</em>, genetic    transformation.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> La soya [<em>Glycine    max</em> (L.) Merrill], es uno de los cultivos de mayor importancia econ&oacute;mica    en la agricultura mundial, debido al alto contenido de aceite y prote&iacute;nas    de sus semillas, por lo que es &uacute;til para fines alimenticios e industriales    (1).     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Debido a su importancia econ&oacute;mica se han desarrollado programas de mejora    gen&eacute;tica a trav&eacute;s de m&eacute;todos tradicionales, los cuales    presentan limitaciones por el bajo potencial de variabilidad gen&eacute;tica    entre cultivares. En este sentido, la transformaci&oacute;n gen&eacute;tica    ofrece la posibilidad de obtener nuevos cultivares rompiendo las barreras sexuales.    Sin embargo, la transferencia de genes no siempre es estable, debido a la baja    eficiencia y aleatoriedad en la integraci&oacute;n del &aacute;cido desoxirribonucleico    (ADN) for&aacute;neo en el genoma de la c&eacute;lula hospedera, siendo necesario    un sistema de selecci&oacute;n de los tejidos transformados (2).     <br>       <br>   En soya, la mayor&iacute;a de los trabajos de transformaci&oacute;n gen&eacute;tica    emplean como agente selectivo el antibi&oacute;tico higromicina (3, 4, 5). Sin    embargo, a nivel internacional existe un rechazo al empleo de antibi&oacute;ticos    como agentes selectivos, debido al potencial de incorporaci&oacute;n de los    genes marcadores de selecci&oacute;n en pat&oacute;genos humanos (6). Cabe resaltar    que pocos trabajos publicados utilizan el herbicida Glufosinato de amonio en    la selecci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos transformados de esta especie    (6, 7).     <br>       <br>   El Glufosinato de amonio es un compuesto sintetizado qu&iacute;micamente, conocido    comercialmente como Basta<sup>&reg;</sup> y Finale<sup>&reg;</sup>. Este compuesto contiene como ingrediente    activo fosfinotricina, que es un trip&eacute;ptido natural producido por la    bacteria <em>Streptomyces hygroscopicus </em>y el componente herbicida de bialafos.    El Glufosinato de amonio es un herbicida inhibidor de la glutamina sintetasa,    enzima que interviene en la asimilaci&oacute;n de amonio y en la regulaci&oacute;n    del nitr&oacute;geno en las plantas (2).     <br>       <br>   Por lo antes expuesto, para realizar un proceso de selecci&oacute;n eficiente    se requiere conocer la m&iacute;nima concentraci&oacute;n letal del agente selectivo    que elimine las c&eacute;lulas y tejidos no transformados. Por el contrario,    el uso de altas concentraciones puede causar la muerte de aquellas c&eacute;lulas    donde la resistencia adquirida puede ser inferior a la concentraci&oacute;n    empleada.     <br>       <br>   Este trabajo tuvo como objetivo determinar la concentraci&oacute;n m&iacute;nima    letal del herbicida Glufosinato de amonio en embriones som&aacute;ticos de soya    cultivar cubano INCASoy-27, para utilizarlo como agente selectivo en programas    de transformaci&oacute;n gen&eacute;tica.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El trabajo se    realiz&oacute; en el Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas en Santa    Clara, Cuba. Se emple&oacute; el cultivar de soya INCASoy-27, obtenido en el    Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas mediante hibridaci&oacute;n    natural en el genotipo brasile&ntilde;o BR-32.     <br>       <br>   Para los ensayos en condiciones de cultivo <em>in vitro</em>, se parti&oacute;    de cotiledones cig&oacute;ticos inmaduros provenientes de vainas de plantas    donantes. Las vainas fueron desinfectadas con agua corriente y detergente. Luego    fueron sumergidas en etanol al 70 % (v/v) durante 20 segundos y posteriormente    se lavaron tres veces con agua destilada est&eacute;ril. Al finalizar, en cabina    de flujo laminar, se realiz&oacute; una inmersi&oacute;n en hipoclorito de sodio    (2,0 %) (v/v) durante diez minutos seguido de cuatro enjuagues con agua destilada    est&eacute;ril.    <br>       <br>   Los cotiledones cig&oacute;ticos inmaduros fueron extra&iacute;dos y colocados    en frascos de cultivo de 250 mL que conten&iacute;an medio de cultivo de formaci&oacute;n    de embriones som&aacute;ticos, compuesto por las sales MS (8), vitamina B5,    &aacute;cido 2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico (2,4-D) 40 mg L<sup>-1</sup>, sacarosa    3,0 %, Gelrite<sup>&reg;</sup> 0,3 % y pH 7, durante cuatro semanas de cultivo.    Los embriones som&aacute;ticos fueron transferidos a medio de cultivo de multiplicaci&oacute;n,    compuesto por las sales MS, vitamina B5, 2,4-D 20 mg L<sup>-1</sup>, sacarosa    3,0 %, Gelrite<sup>&reg;</sup> 0,3 % y pH 5,8 durante tres semanas de cultivo.        <br>       <br>   Luego los embriones som&aacute;ticos fueron transferidos a medio de cultivo    de multiplicaci&oacute;n enriquecido con diferentes concentraciones de Glufosinato    de amonio. Para ello, se evaluaron seis concentraciones del herbicida (1,0;    2,0; 3,0; 4,0; 5,0; 6,0 mg L<sup>-1</sup>) y un tratamiento control para un    total de siete tratamientos.     <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   El Glufosinato de amonio se prepar&oacute; a una concentraci&oacute;n de 20    mg mL-1 y se esteriliz&oacute; por filtraci&oacute;n con ayuda de un filtro    de membrana est&eacute;ril con un tama&ntilde;o del poro de 0,22 &micro;m. Las    soluciones del agente selectivo fueron adicionadas cuando el medio de cultivo    alcanz&oacute; una temperatura aproximada de 40 <sup>o</sup>C previo a la solidificaci&oacute;n.        <br>       <br>   Para determinar la concentraci&oacute;n m&iacute;nima letal del Glufosinato    de amonio, se realizaron cinco ciclos de selecci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos    sin transformar en medio de cultivo de multiplicaci&oacute;n que conten&iacute;a    el agente selectivo. Cada 10 d&iacute;as se realiz&oacute; el subcultivo durante    siete semanas correspondiendo con los ciclos de selecci&oacute;n. En cada subcultivo,    se tom&oacute; una muestra de embriones som&aacute;ticos y fue transferida a    medio de cultivo de multiplicaci&oacute;n sin el agente selectivo, para comprobar    la inhibici&oacute;n de la capacidad regenerativa de los embriones som&aacute;ticos.        <br>       <br>   Para cada tratamiento se tomaron diez placas de Petri de 5,0 cm de di&aacute;metro    que conten&iacute;an cinco grupos con aproximadamente 30 embriones som&aacute;ticos    en etapa globular. Para los subcultivos los embriones som&aacute;ticos fueron    tomados con una esp&aacute;tula y disgregados sobre el medio de cultivo para    facilitar un mayor contacto con el herbicida presente.     <br>       <br>   En cada subcultivo se describieron los da&ntilde;os causados por el Glufosinato    de amonio y se evalu&oacute; el grado de mortalidad de los embriones som&aacute;ticos    de cada tratamiento.     <br>       <br>   Para ello, se emple&oacute; un microscopio &oacute;ptico OPTON (Axioskop) y    la escala de evaluaci&oacute;n del grado de mortalidad (9): sin afectaci&oacute;n    (grado 1), necrosis 25 % (grado 2), necrosis 50 % (grado 3), necrosis 75 % (grado    4) y necrosis total (grado 5).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Las placas Petri fueron selladas con <em>Parafilm</em>&reg; y colocadas en c&aacute;mara    de crecimiento con luz artificial, intensidad luminosa 68-73 &micro;E m<sup>-2</sup>    s<sup>-1</sup>, fotoper&iacute;odo de 16/8 horas (luz/oscuridad) a 24&plusmn;2    <sup>o</sup>C. La intensidad luminosa dentro de la c&aacute;mara de crecimiento    se midi&oacute; con un lux&oacute;metro EXTECH 401025.    <br>       <br>   El an&aacute;lisis de los datos se realiz&oacute; con ayuda del paquete estad&iacute;stico    <em>Statistic Packaged for Social Science</em> (SPSS) versi&oacute;n 18. Los    datos referentes al grado de mortalidad de los embriones som&aacute;ticos se    procesaron mediante la prueba de <em>Kruskal-Wallis/Mann-Whitney</em> (p=0,05).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>RESULTADOS    Y DISCUCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> En este trabajo    se logr&oacute; definir la concentraci&oacute;n m&iacute;nima letal del herbicida    Glufosinato de amonio usado como agente selectivo en embriones som&aacute;ticos    sin transformar de soya cultivar INCASoy-27, nunca antes descrito en genotipos    cubanos de soya.     <br>       <br>   Todas las concentraciones evaluadas de Glufosinato de amonio causaron afectaciones    sobre los embriones som&aacute;ticos no transformados de soya cultivar INCASoy-27.    A partir de los 15 d&iacute;as de cultivo se observ&oacute; que los embriones    som&aacute;ticos adquirieron un color pardo, que se intensific&oacute; con el    tiempo de cultivo.     <br>       <br>   Despu&eacute;s de 30 d&iacute;as, los embriones som&aacute;ticos ten&iacute;an    un aspecto necr&oacute;tico, debido al incremento de la concentraci&oacute;n    del agente selectivo y el tiempo de cultivo. Sin embargo, en el tratamiento    control sin el agente selectivo, los embriones som&aacute;ticos mantuvieron    su color amarillo y su capacidad de multiplicaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ctr/v36n3/f0109315.gif">Figura    1</a>).     
]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Al analizar el grado de mortalidad a las seis semanas en medio de cultivo con    el agente selectivo, se observ&oacute; que en la medida que aumentaron las concentraciones    del Glufosinato de amonio se increment&oacute; el grado de afectaci&oacute;n    de los embriones som&aacute;ticos. Tambi&eacute;n se observ&oacute; que las    concentraciones de 5,0 mg L<sup>-1</sup> y 6,0 mg L<sup>-1</sup> del agente    selectivo produjeron los mayores valores en el grado de mortalidad, con diferencias    significativas con el resto de los tratamientos (<a href="/img/revistas/ctr/v36n3/t0109315.gif">Tabla    I</a>).     
<br>       <br>   Los mayores valores de mortalidad de embriones som&aacute;ticos se alcanzaron    con las concentraciones de 5,0 y 6,0 mg L<sup>-1</sup> de Glufosinato de amonio    con diferencias significativas con el resto de las concentraciones evaluadas.    En estas concentraciones se manifest&oacute; entre el 80-100 % de necrosis total    de los embriones som&aacute;ticos (<a href="/img/revistas/ctr/v36n3/f0209315.gif">Figura    2</a>).     
<br>       <br>   Sin embargo, en las concentraciones con 3,0 y 4,0 mg L<sup>-1</sup> del agente    selectivo, se observ&oacute; necrosis en el 50-100 % de la superficie del tejido    y en la totalidad de los embriones som&aacute;ticos evaluados (Figura 2).</font>    <br>       <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A partir de estos    resultados se seleccion&oacute; 6,0 mg L<sup>-1</sup> como la m&iacute;nima    concentraci&oacute;n de Glufosinato de amonio a emplear como agente selectivo    en embriones som&aacute;ticos transformados de soya cultivar INCASoy-27 en medio    de cultivo semis&oacute;lido.     <br>       <br>   Para ello, se tuvo en cuenta que a partir de esta concentraci&oacute;n el 100    % de los embriones som&aacute;ticos evaluados ten&iacute;an necrosis total.        ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   El necrosamiento observado en los embriones som&aacute;ticos es un reflejo del    efecto fitot&oacute;xico del Glufosinato de amonio, dada la inhibici&oacute;n    de la glutamina sintetasa, una enzima esencial para la asimilaci&oacute;n de    amonio y la regulaci&oacute;n del nitr&oacute;geno en los tejidos (10).    <br>       <br>   La Sociedad Americana de Ciencias de las Malezas (por sus siglas en ingl&eacute;s:    WSSA, <em>Weed Science Society of America</em>), define la resistencia como    la capacidad heredada de una planta para sobrevivir y reproducirse despu&eacute;s    de exponerse a una concentraci&oacute;n de herbicida letal en la especie salvaje.    Esta puede ser natural o inducida por Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica, selecci&oacute;n    de variantes producidas por cultivo de c&eacute;lulas y tejidos o mediante mutag&eacute;nesis    (11).    <br>       <br>   Por otro lado, la eficiencia de la transformaci&oacute;n gen&eacute;tica puede    ser mejorada variando la concentraci&oacute;n y duraci&oacute;n del r&eacute;gimen    de selecci&oacute;n o el empleo de diferentes marcadores y agentes de selecci&oacute;n.        <br>       <br>   La literatura consultada (7) refiere el empleo de higromicina 30 mg L<sup>-1</sup>    o fosfinotricina 80 mg L<sup>-1</sup> en medio de cultivo l&iacute;quido durante    la selecci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos transformados de soya. Como    resultado obtuvieron 12 l&iacute;neas transg&eacute;nicas con resistencia a    higromicina. Sin embargo, solo dos l&iacute;neas mostraron resistencia a fosfinotricina,    y en una de ellas se confirm&oacute; la presencia del gen <em>bar</em>. Todas    las plantas resultaron est&eacute;riles, atribuido a la edad de los tejidos    embriog&eacute;nicos y al m&eacute;todo de transformaci&oacute;n empleado.    <br>       <br>   El Glufosinato de amonio se ha probado en un amplio rango de concentraciones,    acorde con el empleo de medio de cultivo l&iacute;quido o semis&oacute;lido.    En un estudio, embriones som&aacute;ticos transformados de soya cultivar Jack,    fueron colocados en medio de cultivo l&iacute;quido FN-Lite (del ingl&eacute;s:    <em>Finer &amp; Nagasawa Lite</em>) con y sin asparagina, y 5,0 a 35,0 mg L<sup>-1</sup>    de Glufosinato de amonio. Como resultado, con el empleo de 5,0 mg L<sup>-1</sup>    de Glufosinato de amonio se inhibi&oacute; el crecimiento en m&aacute;s del    95 % de los embriones som&aacute;ticos a las tres semanas de cultivo, con inhibici&oacute;n    total a las cinco semanas (6).     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   En un segundo estudio, estos autores evaluaron de 0,16 a 0,5 mg L<sup>-1</sup>    de Glufosinato de amonio en medio de cultivo FN-Lite 50 % sin aparagina. Sin    embargo, la &uacute;nica diferencia encontrada fue que la inhibici&oacute;n    del crecimiento de los embriones som&aacute;ticos comenz&oacute; en la primera    semana de selecci&oacute;n con empleo de medio de cultivo FN-Lite 50 %, mientras    que en medio de cultivo FN-Lite normal la inhibici&oacute;n fue notable a partir    de la segunda semana (6).    <br>       <br>   Los resultados de este trabajo difieren de los descritos previamente (6), atribuidos    al tipo y composici&oacute;n del medio de cultivo. El empleo de medio de cultivo    l&iacute;quido permite una mayor exposici&oacute;n de los tejidos al contacto    con el agente selectivo y disminuye el tiempo de selecci&oacute;n.     <br>       <br>   Por el contrario, en medio de cultivo semis&oacute;lido solo las zonas del tejido    en contacto con el medio de cultivo est&aacute;n expuestas al efecto del agente    selectivo, y pueden aparecer embriones som&aacute;ticos conocidos como falsos    positivos en zonas que no est&aacute;n en contacto con el herbicida presente    en el medio de cultivo.    <br>       <br>   La literatura consultada (12) refiere el empleo de 5,0 mg L<sup>-1</sup> de    Glufosinato de amonio en la selecci&oacute;n de nudos cotiledonales de soya    durante cuatro semanas. Despu&eacute;s de este periodo observaron necrosis en    los tejidos no transformados, mientras los tejidos transformados formaron brotes    en los cultivares Jack (82,8 %) y Williams (67,7 %).    <br>       <br>   Otros autores tambi&eacute;n han observado que de 3,0 a 5,0 mg L<sup>-1</sup>    de Glufosinato de amonio es suficiente para prevenir la formaci&oacute;n de    brotes en nudos cotiledonales de soya (13). Estas concentraciones son similares    a las requeridas para inhibir la multiplicaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos    de soya seg&uacute;n indica este estudio.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   El Bialafos o trip&eacute;ptido fosfinotricina que es producido por <em>Streptomyces    hygroscopicus</em>, tambi&eacute;n ha sido empleado como agente selectivo. En    un estudio, los autores encontraron que ning&uacute;n brote se form&oacute;    a partir de nudos cotiledonales de soya al emplear bialafos a 5,0 mg L<sup>-1</sup>,    y solo el 5,0 % lograron regenerar brotes al emplear 4,0 mg L<sup>-1</sup>,    tomando esta &uacute;ltima concentraci&oacute;n para la selecci&oacute;n de    los transformantes (14).     <br>       <br>   En otras especies de leguminosas como Phaseolus vulgaris se demostr&oacute;    que 0,50 mg L<sup>-1</sup> de Glufosinato de amonio fue suficiente para que    m&aacute;s del 87 % de los callos mostraran necrosis total a las ocho semanas    de cultivo (9).     <br>       <br>   Las diferencias encontradas en las concentraciones de Glufosinato de amonio    requeridas para inhibir la multiplicaci&oacute;n de los embriones som&aacute;ticos    pudieron estar dadas por la composici&oacute;n celular de este tejido, al estar    constituidos por c&eacute;lulas diferenciadas en activo proceso de divisi&oacute;n    celular que difieren de las c&eacute;lulas totalmente indiferenciadas que conforman    al callo.     <br>       <br>   Tambi&eacute;n existen estudios que han empleado otros tipos de herbicidas y    confirmado la inhibici&oacute;n de la multiplicaci&oacute;n de los embriones    som&aacute;ticos de soya en medio de cultivo l&iacute;quido. Tal es el caso    del herbicida Bispyribac-sodio, un inhibidor de la enzima acetolactato sintetasa.    Cuando se emple&oacute; 1,0 &micro;M de este herbicida, aparecieron embriones    som&aacute;ticos del cultivar Jack que no conten&iacute;an el transgen Os-mALS,    y con 2,0 &micro;M no lograron sobrevivir (15).    <br>       <br>   Los resultados que se muestran, constituyen la primera referencia de la determinaci&oacute;n    de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de Glufosinato de amonio,    para su empleo en la selecci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos transformados    de soya en medio de cultivo semis&oacute;lido.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Se determin&oacute;    la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de Glufosinato de amonio 4,0    mg L<sup>-1</sup>, en medio de cultivo semis&oacute;lido, requerida para su    empleo como agente selectivo en la transformaci&oacute;n gen&eacute;tica de    embriones som&aacute;ticos de soya cultivar INCASoy-27.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>BIBLIOGRAF&Iacute;A</strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Taski-Ajdukovic,    K.; Djordjevic, V.; Vidic, M. y Vujakovic, M. ‘‘Subunit composition of seed    storage proteins in high-protein soybean genotypes’’, <em>Pesquisa Agropecu&aacute;ria    Brasileira</em>, vol. 45, no. 7, julio de 2010, pp. 721-729, ISSN 0100-204X,    DOI 10.1590/S0100-204X2010000700013.    <br>       <!-- ref --><br>   2. Sundar, I.K. y Sakthivel, N. ‘‘Advances in selectable marker genes for plant    transformation’’, <em>Journal of Plant Physiology</em>, vol. 165, no. 16, 1    de noviembre de 2008, pp. 1698-1716, ISSN 0176-1617, DOI 10.1016/j.jplph.2008.08.002.    <br>       <!-- ref --><br>   3. Wiebke-Strohm, B.; Droste, A.; Pasquali, G.; Osorio, M.B.; B&uuml;cker-Neto,    L.; Passaglia, L.M.P.; Bencke, M.; Homrich, M.S.; Margis-Pinheiro, M. y Bodanese-Zanettini,    M.H. ‘‘Transgenic fertile soybean plants derived from somatic embryos transformed    via the combined DNA-free particle bombardment and Agrobacterium system’’, <em>Euphytica</em>,    vol. 177, no. 3, 9 de septiembre de 2010, pp. 343-354, ISSN 0014-2336, 1573-5060,    DOI 10.1007/s10681-010-0249-1.    <br>       <!-- ref --><br>   4. Mariashibu, T.S.; Subramanyam, K.; Arun, M.; Mayavan, S.; Rajesh, M.; Theboral,    J.; Manickavasagam, M. y Ganapathi, A. ‘‘Vacuum infiltration enhances the Agrobacterium-mediated    genetic transformation in Indian soybean cultivars’’, <em>Acta Physiologiae    Plantarum</em>, vol. 35, no. 1, 11 de julio de 2012, pp. 41-54, ISSN 0137-5881,    1861-1664, DOI 10.1007/s11738-012-1046-3.    <br>       <!-- ref --><br>   5. Wiebke-Strohm, B.; Pasquali, G.; Margis-Pinheiro, M.; Bencke, M.; B&uuml;cker-Neto,    L.; Becker-Ritt, A.B.; Martinelli, A.H.S.; Rechenmacher, C.; Polacco, J.C.;    Stolf, R.; Marcelino, F.C.; Abdelnoor, R.V.; Homrich, M.S.; Ponte, E.M.D.; Carlini,    C.R.; Carvalho, M.C.C.G.D. y Bodanese-Zanettini, M.H. ‘‘Ubiquitous urease affects    soybean susceptibility to fungi’’, <em>Plant Molecular Biology</em>, vol. 79,    no. 1-2, 1 de marzo de 2012, pp. 75-87, ISSN 0167-4412, 1573-5028, DOI 10.1007/s11103-012-9894-1.    <br>       <!-- ref --><br>   6. Rao, S.S.; Mamadou, L.; McConnell, M.; Polisetty, R.; Kwanyuen, P. y Hildebrand,    D. ‘‘Non-antibiotic selection systems for soybean somatic embryos: the lysine    analog aminoethyl-cysteine as a selection agent’’, <em>BMC Biotechnology,</em>    vol. 9, no. 1, 18 de noviembre de 2009, p. 94, ISSN 1472-6750, DOI 10.1186/1472-6750-9-94,    [PMID: 19922622].    <br>       <!-- ref --><br>   7. Simmonds, D.H. y Donaldson, P.A. ‘‘Genotype screening for proliferative embryogenesis    and biolistic transformation of short-season soybean genotypes’’, <em>Plant    Cell Reports</em>, vol. 19, no. 5, 1 de abril de 2000, pp. 485-490, ISSN 0721-7714,    1432-203X, DOI 10.1007/s002990050760.    <br>       <!-- ref --><br>   8. Murashige, T. y Skoog, F. ‘‘A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays    with Tobacco Tissue Cultures’’, <em>Physiologia Plantarum</em>, vol. 15, no.    3, 1 de julio de 1962, pp. 473-497, ISSN 1399-3054, DOI 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Berm&uacute;dez-Caraballoso, I.; Collado, R.; Garc&iacute;a, L.R.; Veit&iacute;a,    N.; Martirena, A.; Torres, D.; Romero, C.; Angenon, G. y others ‘‘Determinaci&oacute;n    de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de Glufosinato de amonio    en callos organog&eacute;nicos de Phaseolus vulgaris L cv.CIAP7247F’’, <em>Biotecnolog&iacute;a    Vegetal</em>, vol. 12, no. 4, 2012, pp. 203-210, ISSN 1609-1841.    <br>       <!-- ref --><br>   10. Vencill, W.K.; Nichols, R.L.; Webster, T.M.; Soteres, J.K.; Mallory-Smith,    C.; Burgos, N.R.; Johnson, W.G. y McClelland, M.R. ‘‘Herbicide Resistance: Toward    an Understanding of Resistance Development and the Impact of Herbicide-Resistant    Crops’’, <em>Weed Science</em>, vol. 60, no. Special Issue, 4 de abril de 2012,    pp. 2-30, ISSN 0043-1745, DOI 10.1614/WS-D-11-00206.1.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Lea, P.J. y Miflin, B.J. ‘‘Nitrogen Assimilation and its Relevance to Crop    Improvement’’ [en l&iacute;nea], eds. Foyer, C.H. y Zhang, H., <em>Annual Plant    Reviews</em>, vol. 42, edit. Wiley-Blackwell, 2010, pp. 1-40, ISBN 978-1-4443-2860-8,    [Consultado: 21 de marzo de 2015], Disponible en: &lt;<a href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/9781444328608.ch1/summary" target="_blank">http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/9781444328608.ch1/summary</a>&gt;    .    <br>       <!-- ref --><br>   12. Song, Z.; Tian, J.; Fu, W.; Li, L.; Lu, L.; Zhou, L.; Shan, Z.; Tang, G.    y Shou, H. ‘‘Screening Chinese soybean genotypes for Agrobacterium-mediated    genetic transformation suitability’’, <em>Journal of Zhejiang University SCIENCE    B</em>, vol. 14, no. 4, 7 de abril de 2013, pp. 289-298, ISSN 1673-1581, 1862-1783,    DOI 10.1631/jzus.B1200278.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   13. Zhang, Z.; Xing, A.; Staswick, P. y Clemente, T.E. ‘‘The use of glufosinate    as a selective agent in Agrobacterium-mediated transformation of soybean’’,    <em>Plant Cell</em>, <em>Tissue and Organ Culture</em>, vol. 56, no. 1, 1 de    enero de 1999, pp. 37-46, ISSN 0167-6857, 1573-5044, DOI 10.1023/A:1006298622969.    <br>       <!-- ref --><br>   14. Liu, S.C.; Zhang, G.C.; Yang, L.F.; Mii, M.; Gai, J.Y. y Zhu, Y.L. ‘‘Bialaphos-resistant    Transgenic Soybeans Produced by the Agrobacterium-mediated Cotyledonary-node    Method’’, <em>Journal of Agricultural Science and Technology</em>, vol. 16,    no. 1, 1 de enero de 2014, pp. 175-190, ISSN 2345-3737.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Tougou, M.; Yamagishi, N.; Furutani, N.; Kaku, K.; Shimizu, T.; Takahata,    Y.; Sakai, J.; Kanematsu, S. y Hidaka, S. ‘‘The application of the mutated acetolactate    synthase gene from rice as the selectable marker gene in the production of transgenic    soybeans’’, <em>Plant Cell Reports</em>, vol. 28, no. 5, 15 de febrero de 2009,    pp. 769-776, ISSN 0721-7714, 1432-203X, DOI 10.1007/s00299-009-0679-1.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: 18 de    marzo de 2014    <br>   Aceptado: 23 de septiembre de 2014</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Ms.C. Jorge    L. P&eacute;rez-P&eacute;rez</em>, Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las    Plantas. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas, Carretera a Camajuan&iacute;    km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba. Email: <a href="mailto:jperez@udg.co.cu">jperez@udg.co.cu</a></font></p>      ]]></body><back>
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