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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento y caracterización de rizobios de Crotalaria sp. En el sur de Ecuador]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Isolation and characterization of rhizobia from Crotalaria sp. in southern Ecuador]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The present investigation was aimed to isolate and characterize native diazotrophic bacteria strains and assess their effect on nodulation and growth of Crotalaria sp. For the isolation, samples were taken from Crotalaria plants with root nodules, under different agro-climatic conditions of Loja province, Ecuador. A morpho-cultural, biochemical and physiological characterization of isolates was performed, also evaluating the effect of each isolate on the nodulation, growth and biomass of Crotalaria under greenhouse conditions. From these isolates, 10 strains with Rhizobial characteristics were obtained. All of them showed the ability to nodulate host plant. Results were remarkable in three isolates, due to a higher nodulation ability and efficiency on plant inoculation. These results are a starting point to obtain inoculants and its possible effect on Crotalaria plants used as N2 fixers under field conditions]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Aislamiento  y caracterizaci&oacute;n de rizobios de <em>Crotalaria</em> sp. En el sur de Ecuador  </strong> </font>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Isolation    and characterization of rhizobia from <em>Crotalaria</em> sp. in southern Ecuador</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Francisco    Guam&aacute;n D&iacute;az,<sup>I</sup> Rold&aacute;n Torres Guti&eacute;rrez,<sup>II</sup>    Kl&eacute;ver Granda Mora,<sup>III</sup> Dra.C. Mar&iacute;a C. N&aacute;poles    Garc&iacute;a<sup>IV</sup></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Universidad    Nacional de Loja, “La Argelia”, PBX: 072546671, Loja-Ecuador.    <br>       <br>   <sup>II</sup>Proyecto Becas Prometeo, SENESCYT, Ecuador.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>III</sup>Centro de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Loja,    Ciudadela Guillermo Falconi, “La Argelia”, PBX: 072547252, Casilla Letra “S”,    Loja-Ecuador.    <br>       <br>   <sup>IV</sup>Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA), gaveta    postal 1, San Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque, Cuba, CP 32700.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> La presente investigaci&oacute;n    tuvo como objetivos aislar y caracterizar cepas nativas de bacterias diazotr&oacute;ficas    y evaluar su efecto en la nodulaci&oacute;n y el crecimiento de <em>Crotalaria</em>    sp. Para el aislamiento se tomaron muestras de plantas de <em>Crotalaria</em>    con presencia de n&oacute;dulos en sus ra&iacute;ces, en diferentes condiciones    agroclim&aacute;ticas de la provincia de Loja, Ecuador. Se realiz&oacute; una    caracterizaci&oacute;n morfo-cultural, bioqu&iacute;mica y fisiol&oacute;gica    de los aislados y se evalu&oacute; el efecto de cada uno de los aislados sobre    las variables de nodulaci&oacute;n, crecimiento y biomasa de <em>Crotalaria</em>    en condiciones de invernadero. De los aislamientos realizados se obtuvieron    10 cepas con caracter&iacute;sticas correspondientes al orden Rhizobiales. Todos    los aislados evidenciaron la capacidad de nodular la planta hospedante. Se destacaron    los resultados en tres de los aislados por su mayor capacidad de nodulaci&oacute;n    y eficiencia en la inoculaci&oacute;n de las plantas. Estos resultados constituyen    un punto de partida en la obtenci&oacute;n de inoculantes y su posible efecto    sobre plantas de <em>Crotalaria</em>, utilizadas como fijadoras de N<sub>2</sub>    en condiciones de campo.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> inoculaci&oacute;n, leguminosas, nodulaci&oacute;n, selecci&oacute;n.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The present investigation    was aimed to isolate and characterize native diazotrophic bacteria strains and    assess their effect on nodulation and growth of <em>Crotalaria</em> sp. For    the isolation, samples were taken from <em>Crotalaria</em> plants with root    nodules, under different agro-climatic conditions of Loja province, Ecuador.    A morpho-cultural, biochemical and physiological characterization of isolates    was performed, also evaluating the effect of each isolate on the nodulation,    growth and biomass of <em>Crotalaria</em> under greenhouse conditions. From    these isolates, 10 strains with Rhizobial characteristics were obtained. All    of them showed the ability to nodulate host plant. Results were remarkable in    three isolates, due to a higher nodulation ability and efficiency on plant inoculation.    These results are a starting point to obtain inoculants and its possible effect    on <em>Crotalaria</em> plants used as N<sub>2</sub> fixers under field conditions.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    inoculation, legumes, nodulation, selection.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El establecimiento    de leguminosas eficientes en el uso de nitr&oacute;geno (N) en sistemas de producci&oacute;n    agropecuaria, es uno de los principales objetivos, en los que se han centrado    muchos investigadores para lograr la sostenibilidad y estabilidad de las producciones    agr&iacute;colas (1). Estas plantas desempe&ntilde;an un papel fundamental en    los ecosistemas naturales, ya que son responsables de una parte sustancial del    flujo global de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico (N<sub>2</sub>) a formas    asimilables (2).    <br>       <br>   Debido a su capacidad de fijar N<sub>2</sub> en simbiosis con los rizobios,    las leguminosas son excelentes colonizadoras de ambientes pobres en este elemento<sup>A</sup>.    Dentro de las leguminosas, el g&eacute;nero <em>Crotalaria</em> reviste vital    importancia, por su utilizaci&oacute;n como abono verde en sistemas agr&iacute;colas    sostenibles en regiones tropicales y subtropicales (3, 4). Su aporte no solo    se evidencia por las altas cantidades de N fijado (300-350 kg N ha<sup>-1</sup>    a&ntilde;o<sup>-1</sup>) y el consecuente efecto sobre el crecimiento de las    plantas que se benefician por la incorporaci&oacute;n de este abono verde, sino    a la vez por la eliminaci&oacute;n de nematodos, su alta tolerancia a la sequ&iacute;a,    ser hospederas de varios g&eacute;neros de insectos ben&eacute;ficos y sus propiedades    antioxidantes demostradas recientemente (5, 6).    <br>       <br>   El grado en que un cultivo se puede beneficiar del aporte de N por las leguminosas    depende de la cantidad de N biol&oacute;gicamente fijado, el cual se incorpora    en el sistema por la asociaci&oacute;n simbi&oacute;tica que establecen con    los rizobios. Se calcula que esta simbiosis alcanza el 20 % de la cantidad total    del N, fijada anualmente sobre el planeta (7). Esta asociaci&oacute;n determina    la proporci&oacute;n de N residual que queda para el cultivo siguiente y su    eficiencia de utilizaci&oacute;n (8). Las evidencias ponen de manifiesto la    importancia de lograr relaciones simbi&oacute;ticas eficientes entre las especies    vegetales y los microsimbiontes afines.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Para lograr un aislamiento efectivo de cepas nativas de rizobios, se recomienda    realizar la extracci&oacute;n directa de n&oacute;dulos de las plantas en estudio,    ya que se puede obtener un aislado de altas proporciones y claramente compatible    con esa planta (9). En Ecuador son muy escasos los estudios dedicados a las    poblaciones microbianas diazotr&oacute;ficas asociadas a la leguminosa <em>Crotalaria</em>.    Las zonas estacionalmente secas de la provincia de Loja, al sur del pa&iacute;s,    se caracterizan por la baja fertilidad de los suelos<sup>B</sup>, lo cual incide    en la disminuci&oacute;n de los rendimientos agr&iacute;colas de varios cultivos    de importancia econ&oacute;mica.    <br>       <br>   Resulta interesante estudiar y utilizar el beneficio de la interacci&oacute;n    rizobio-<em>Crotalaria</em>, por lo que se hace imprescindible el estudio de    la microbiota diazotr&oacute;fica simbi&oacute;tica asociada a este cultivo    y su efecto sobre la planta hospedera. De esta forma, los objetivos de esta    investigaci&oacute;n estuvieron encaminados a aislar y caracterizar cepas nativas    de rizobios a partir de plantas de <em>Crotalaria</em> sp., as&iacute; como    evaluar su efecto en la nodulaci&oacute;n y el crecimiento de esta leguminosa.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <font size="3"><strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Toma de    muestras y aislamiento de bacterias diazotr&oacute;ficas simbi&oacute;ticas</strong>    <br>       <br>   La toma de muestras se realiz&oacute; en el Cant&oacute;n Paltas de la provincia    de Loja, Ecuador. Se muestrearon seis comunidades, seg&uacute;n sus pisos de    altitud, las cuales fueron geoposicionadas con la utilizaci&oacute;n del Sistema    de Posicionamiento Global (GPS) por sus siglas en ingl&eacute;s. La <a href="#t1">Tabla    I</a> muestra el geoposicionamiento de los sitios de colecta, donde se observa    que de las &aacute;reas muestreadas el 66,7 % pertenece al piso altitudinal    de 1200 a 1700 m s. n. m. (piso 1) y el 33,3 % pertenece al piso altitudinal    de 2000 a 2200 m s. n. m. (piso 2).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t1"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37n1/t0106116.gif" width="406" height="246">    </font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se    colectaron plantas de <em>Crotalaria</em> sp. que crec&iacute;an silvestres    con presencia de n&oacute;dulos en sus ra&iacute;ces. Con el uso de un pico    se extrajeron las plantas sin dejar ra&iacute;ces y se depositaron en bolsas    <em>Ziplog</em> con adecuada humedad. Las muestras se trasladaron al Laboratorio    de Microbiolog&iacute;a del Centro de Biotecnolog&iacute;a en la Universidad    Nacional de Loja, para la realizaci&oacute;n de los aislamientos.    <br>       <br>   Para el aislamiento de los microsimbiontes se tomaron de 15 a 20 n&oacute;dulos,    ubicados en la ra&iacute;z principal, por cada zona de muestreo, los cuales    se separaron cuidadosamente de las ra&iacute;ces y se lavaron con agua com&uacute;n,    para eliminar los restos de suelo. Posteriormente, los n&oacute;dulos se desinfectaron    superficialmente mediante la inmersi&oacute;n en etanol (70 %, v/v) durante    un minuto y se enjuagaron otras tres veces con agua destilada est&eacute;ril,    para eliminar la residualidad del alcohol. Se a&ntilde;adi&oacute; entonces    hipoclorito de sodio (NaOCl, 3 %, v/v) durante tres minutos y estos se lavaron    con abundante agua destilada est&eacute;ril. Luego del lavado, se realiz&oacute;    la maceraci&oacute;n de los n&oacute;dulos en microtubos de 2 mL conteniendo    300 &micro;L de agua destilada est&eacute;ril.    <br>       <br>   Se procedi&oacute; a realizar la siembra del contenido de los n&oacute;dulos    mediante el m&eacute;todo de agotamiento por estr&iacute;as en placas Petri    con medio Levadura Manitol Agar (LMA) (10). Las placas se incubaron a 30 &deg;C    durante siete d&iacute;as. Los aislados crecidos se purificaron en medio de    cultivo LMA m&aacute;s Rojo Congo mediante estriado. La conservaci&oacute;n    se realiz&oacute; en tubos de cultivos conteniendo medio LMA en plano inclinado,    a la temperatura de 4 &deg;C y en glicerol (50 % v/v) a -80 &deg;C.    <br>   <strong>    <br>   Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica, bioqu&iacute;mica y fisiol&oacute;gica    de los aislados</strong>    <br>       <br>   Se estudi&oacute; la morfolog&iacute;a de las colonias obtenidas mediante microscop&iacute;a    estereosc&oacute;pica, evalu&aacute;ndose las principales caracter&iacute;sticas:    forma, color, mucosidad, bordes y elevaci&oacute;n de las colonias. Adem&aacute;s,    se evalu&oacute; la tasa de crecimiento en este medio, mediante el monitoreo    a partir de las 24 horas de incubaci&oacute;n y la morfolog&iacute;a de las    c&eacute;lulas, as&iacute; como la respuesta a la tinci&oacute;n de Gram con    la utilizaci&oacute;n de microscop&iacute;a &oacute;ptica (Olympus ID 81617,    Alemania).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Los ensayos bioqu&iacute;micos se realizaron para evaluar la capacidad de los    aislados de fermentar los az&uacute;cares glucosa y lactosa, mediante el crecimiento    en medio Agar Kligler y Agar Mac Conkey y Peptona Glucosa Agar (PGA), incubados    durante 48 horas a 28 &deg;C (11), as&iacute; como la presencia de catalasa,    empleando per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 3 % (12). La producci&oacute;n    de &aacute;cido o base se determin&oacute; mediante la siembra por agotamiento    en medio YEM a pH 6,8, con adici&oacute;n del indicador azul de bromotimol (0,5    % en NaOH 0,016N) y a pH 5,5 con p&uacute;rpura de bromocresol, en igual concentraci&oacute;n.    Los cultivos se incubaron a 30 &deg;C durante siete d&iacute;as. A partir de    esta fecha se observ&oacute; el cambio de coloraci&oacute;n en el medio (12).    Finalmente, se determin&oacute; el crecimiento de las cepas a diferentes concentraciones    de NaCl (0,1; 1 y 2 %), niveles de pH (4,0; 5,0; 6,8 y 9,0) y temperaturas (10,    35 y 40 &deg;C).    <br>   <strong>    <br>   Efecto de la inoculaci&oacute;n sobre plantas de <em>Crotalaria</em></strong>    <br>       <br>   Se realiz&oacute; un ensayo en condiciones de invernadero, para comprobar que    los aislados en estudio eran capaces de formar n&oacute;dulos en plantas de    <em>Crotalaria</em> y analizar la efectividad de cada uno de ellos sobre esta    variable, as&iacute; como otras de crecimiento y biomasa. Las semillas de <em>Crotalaria</em>    se sumergieron en agua hirviendo durante 10 segundos para su escarificaci&oacute;n    y eliminaci&oacute;n de agentes contaminantes (13). Posteriormente, fueron germinadas    en placas Petri, conteniendo agar-agua (1,5 %) e incubadas a 28 &deg;C durante    siete d&iacute;as.    <br>       <br>   El in&oacute;culo bacteriano se obtuvo mediante el crecimiento de todos los    aislados en medio Levadura Manitol (LM) durante 24 horas a 30 &deg;C en zaranda    orbital (Techine TS1500, USA) a 250 rpm. Se midi&oacute; la densidad &oacute;ptica    de cada cultivo por espectrofotometr&iacute;a UV/VIS a 595 nm (JenWay 6505 UV/VIS,    UK), para estandarizar la concentraci&oacute;n celular a 10<sup>8</sup> UFC    (Unidades Formadoras de Colonias) mL<sup>-1</sup>.    <br>       <br>   La mezcla de sustrato (tierra, arena y turba, 2:1:1) fue previamente sometida    a esterilizaci&oacute;n mediante tindalizaci&oacute;n por dos horas durante    tres d&iacute;as consecutivos. Luego se coloc&oacute; 1 kg de este sustrato    est&eacute;ril en macetas de pl&aacute;stico. Se reg&oacute; cada maceta con    agua destilada, hasta alcanzar una humedad correspondiente a la capacidad de    campo. Con el uso de una pinza se realizaron los hoyos, en los cuales se depositaron    cuidadosamente dos semillas pregerminadas, que se ralearon posteriormente para    dejar una planta por maceta. Las semillas se inocularon con 1 mL de cada aislado,    seg&uacute;n cada tratamiento.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   El experimento const&oacute; de 12 tratamientos: 10 aislados inoculados, un    tratamiento no inoculado pero fertilizado con N a raz&oacute;n de 60 kg ha<sup>-1</sup>    y un tratamiento sin ninguna aplicaci&oacute;n (control). </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las plantas fueron    regadas con agua destilada cada dos d&iacute;as al inicio y luego tres veces    por semana, durante todo el ensayo.    <br>       <br>   <strong>Evaluaciones y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</strong>    <br>       <br>   Para el estudio morfol&oacute;gico, bioqu&iacute;mico y fisiol&oacute;gico,    se realizaron ensayos por duplicado de cada uno de los aislados.    <br>       <br>   En el ensayo de inoculaci&oacute;n se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental    completamente aleatorizado, con 10 r&eacute;plicas por cada tratamiento. A los    75 d&iacute;as posteriores a la siembra, se evaluaron el n&uacute;mero de n&oacute;dulos    totales; la altura de las plantas (cm); el n&uacute;mero de hojas; el peso fresco    y seco del follaje y de la ra&iacute;z (mg). Para la determinaci&oacute;n del    peso seco, las plantas se secaron en estufa a 70 &deg;C durante 72 h.    <br>       <br>   Los datos obtenidos se analizaron mediante el paquete estad&iacute;stico STATGRAPHICS    v. 15 (14). Se analiz&oacute; la normalidad de los datos para la utilizaci&oacute;n    del estad&iacute;stico An&aacute;lisis de Varianza Simple (<em>One-Way</em>    ANOVA) y la prueba de Tuckey HSD con nivel de significaci&oacute;n P&lt;0,05.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Muestreos    de <em>Crotalaria</em> y obtenci&oacute;n de bacterias diazotr&oacute;ficas    simbi&oacute;ticas</strong>    <br>       <br>   De los muestreos realizados se logr&oacute; obtener plantas de <em>Crotalaria</em>    noduladas en las localidades de San Fernando, Palomont&oacute;n, Chapango, Guinuma,    Copasombrero y Puritaca.    <br>       <br>   Del aislamiento de los microsimbiontes, a partir de los n&oacute;dulos extra&iacute;dos,    se obtuvieron 19 colonias bacterianas diferentes. Luego del proceso de purificaci&oacute;n    en medio LMA con la adici&oacute;n de Rojo Congo (LMA-RC), el n&uacute;mero    de aislados se redujo a 10, que cumplieron con los criterios elegibles para    clasificarlos dentro del grupo de los rizobios, los cuales fueron nombrados    como se muestra en la <a href="#t2">Tabla II</a>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t2"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37n1/t0206116.gif" width="409" height="270">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Caracterizaci&oacute;n    morfol&oacute;gica, bioqu&iacute;mica y fisiol&oacute;gica de los aislados</strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   En la <a href="/img/revistas/ctr/v37n1/t0306116.gif">Tabla III</a> se observan    las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de los 10 aislados obtenidos    posterior a la purificaci&oacute;n. Se aprecia que no existe una alta variabilidad    entre estos, seg&uacute;n los par&aacute;metros evaluados; sin embargo, respecto    al crecimiento, la producci&oacute;n de mucus (polisac&aacute;ridos extracelulares)    y elevaci&oacute;n de las colonias, se evidencian las diferencias entre aislados    de la misma localidad. Los aislados obtenidos en las localidades Copasombrero,    San Fernando y Palomont&oacute;n son un ejemplo de lo antes descrito, donde    se destaca el crecimiento del aislado C4.2a como abundante, mientras que C4.2b    es moderado y C4.1 es ligero. Similares resultados se obtienen en la producci&oacute;n    de mucus y elevaci&oacute;n de las colonias. Estos resultados ponen de manifiesto    que no todos los aislados microbianos de la misma localidad y el mismo hospedero    presentan iguales caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas. En este sentido,    otros autores reportan la variabilidad de caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas    de aislados de <em>Rhizobium</em> del cultivo de frijol com&uacute;n (<em>Phaseolus    vulgaris</em>) en las provincias centrales de Cuba<sup>C</sup>.    
<br>       <br>   Al analizar el crecimiento de las colonias se observa que tres aislados (27    %) tuvieron un crecimiento abundante, seis un crecimiento moderado (55 %) y    dos un crecimiento ligero (18 %), obteni&eacute;ndose un 82 % de estos entre    las categor&iacute;as de abundante y moderado; sin embargo, todos tuvieron un    crecimiento r&aacute;pido, entre las 24 y 48 horas, coincidiendo con los resultados    de otros trabajos, los cuales aislaron rizobios de crecimiento r&aacute;pido    a partir de <em>Crotalaria juncea</em>, <em>Crotalaria labumifolia</em>, <em>Crotalaria    retusa</em> y <em>Crotalaria verrucosa</em> (15).    <br>       <br>   La presencia de colonias con bordes regulares y un color opaco, as&iacute; como    la observaci&oacute;n al microscopio &oacute;ptico que mostr&oacute; en todos    los casos bacilos cortos Gram negativos, muestran caracter&iacute;sticas similares    a las obtenidas por otros autores para bacterias pertenecientes al grupo de    los rizobios (16).    <br>       <br>   En la <a href="/img/revistas/ctr/v37n1/t0406116.gif">Tabla IV</a> se muestran    los resultados de las pruebas bioqu&iacute;micas, donde se observa que los aislados    cambiaron la coloraci&oacute;n verde del medio LMA + bromotimol azul y el color    azul del medio LMA + p&uacute;rpura de bromocresol a amarillo, lo que indica    que son productores de &aacute;cido y, por tanto, posibles miembros de la familia    <em>Rhizobiaceae</em>. Estos resultados coinciden con otras investigaciones    realizadas en cultivos similares, donde se determin&oacute; la capacidad de    producci&oacute;n de &aacute;cidos o bases por cepas pertenecientes a los g&eacute;neros    <em>Rhizobium</em> y <em>Bradyrhizobium</em>, respectivamente (17, 18).    
<br>       <br>   Ninguno de los aislados ferment&oacute; la lactosa; no obstante, C4.1, P2.2a    y P2.2b si la fermentaron. Resultados de otros estudios demuestran que varios    aislados obtenidos de <em>Pueraria phaseoloides</em> (kudz&uacute; tropical)    lograron fermentar estos dos az&uacute;cares (19). Sin embargo, se conoce que    ni la glucosa ni la lactosa son fuentes de carbono preferidas por los rizobios    (9). Todos los aislados fueron positivos a la catalasa, liberando ox&iacute;geno    en forma de burbujas al reaccionar con el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno.    Este comportamiento es t&iacute;pico de este grupo de bacterias (17, 20).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Dilucidar los par&aacute;metros fisiol&oacute;gicos evaluados en los aislados    obtenidos es de vital importancia, ya que estos se encuentran en estrecha relaci&oacute;n    con indicadores que pueden tener los suelos, donde pudieran aplicarse como biofertilizantes.    La <a href="/img/revistas/ctr/v37n1/t0506116.gif">Tabla V</a> muestra las    caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas relacionadas con la tolerancia de    los aislados a tres concentraciones de NaCl, tres niveles de pH y tres temperaturas.    
<br>       <br>   Los 10 aislados crecieron adecuadamente en las tres concentraciones de NaCl    y todos estuvieron enmarcados en las categor&iacute;as de crecimiento moderado    y abundante. La tolerancia a la salinidad es uno de los aspectos en discusi&oacute;n    respecto al crecimiento de los rizobios.    <br>       <br>   Resultados de otros autores en habichuela roja no muestran crecimiento de ning&uacute;n    aislado al 2 % de esta sal<sup>D</sup>, mientras que algunos encontraron que    del total de aislamientos realizados en frijol caup&iacute;, el 21 % no lograron    crecer a ninguna concentraci&oacute;n de NaCl, el 15 % solo toleraron el 1 %    y el 38 % tuvieron la capacidad de crecer en un 3 % (17).    <br>       <br>   A valores de pH &aacute;cido (4 y 5) no crecieron G5.1 ni C4.2a. Estos aislados    solo toleraron el pH alcalino. Se destaca que la cepa G5.1 se aisl&oacute; de    un suelo con pH 5,97 (datos no mostrados); que aunque es &aacute;cido, es algo    superior al valor probado en placas de 5. Por su parte, P2.2a, Pu6.2 y SF3.2    no crecieron en el valor 4, pero s&iacute; en pH 5. Los 10 aislados crecieron    abundantemente a pH 9, lo que significa que toleran bien la alcalinidad y es    l&oacute;gico, teniendo en cuenta que son productores de &aacute;cido (20).    De forma general, los aislados C4.1, S.F3.1, P2.2b y C4.2b toleraron los tres    niveles de pH estudiados. Est&aacute; bien documentado que el pH &oacute;ptimo    para el crecimiento de los rizobios est&aacute; en torno a la neutralidad (6),    aunque algunas cepas pueden crecer entre 6 y 8 (19). Otros trabajos refieren    tolerancia a valores de pH m&aacute;s &aacute;cidos<sup>D</sup>. Algunas veces    se ha encontrado correlaci&oacute;n entre el pH del suelo del que se a&iacute;slan    las cepas y la tolerancia al pH en medio de cultivo, como es el caso de aislados    de <em>P. vulgaris</em><sup>D</sup> o de <em>P. phaseoloides</em><sup>E</sup>.    <br>       <br>   Al analizar el crecimiento a diferentes temperaturas, se pudo apreciar que a    10 &deg;C no creci&oacute; ninguno de los aislados. Tampoco a 40 &deg;C crecieron    P2.2a, C4.2a, ni SF 3.2, lo que quiere decir que estos aislados no toleraron    las temperaturas extremas. Se plantea que en climas templados, temperaturas    por encima de 37 &deg;C permiten establecer diferencias entre algunas especies    del g&eacute;nero <em>Rhizobium</em> (21).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   La temperatura &oacute;ptima de crecimiento de los rizobios es a 28-30 &deg;C    (22), de ah&iacute; que casi todos los aislados de <em>Crotalaria</em> presentaron    un crecimiento abundante a temperatura de 35 &deg;C. Seg&uacute;n otros informes,    existe tolerancia de algunas cepas de Rhizobium, tal como R. tropici, para crecer    a diferentes rangos de temperaturas, pero ninguno de ellos soportan condiciones    de psicrofilia o termofilia (23).    <br>       <br>   <strong>Efecto de la inoculaci&oacute;n sobre plantas de <em>Crotalaria</em></strong>    <br>       <br>   La prueba definitiva para demostrar que los aislamientos realizados corresponden    a simbiontes de <em>Crotalaria</em>, consiste en poner en contacto ambos organismos    y observar la aparici&oacute;n de n&oacute;dulos, siempre que existan las condiciones    m&iacute;nimas para la interacci&oacute;n. En la <a href="#f1">figura</a> se    presenta la nodulaci&oacute;n de los 10 aislados sobre plantas de <em>Crotalaria</em>    en condiciones de invernadero. Todos los aislados fueron capaces de formar n&oacute;dulos    efectivos sobre las ra&iacute;ces, lo que indica su autenticidad como microsimbionte    de esta especie vegetal.</font></p>     <p align="center"><a name="f1"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37n1/f0106116.gif" width="409" height="390"></p>     
<p> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se detect&oacute;    la presencia de n&oacute;dulos en los tratamientos fertilizados y sin inocular,    que aunque inferiores a cinco de los tratamientos inoculados, no mostraron diferencias    con las cepas P2.2b, C4.1, C4.2a ni G5.2.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Aunque se esteriliz&oacute; el soporte empleado en este ensayo, el m&eacute;todo    de tindalizaci&oacute;n no garantiza una esterilidad tan efectiva como la autoclave,    pues este m&eacute;todo no combina cambios de temperatura y presi&oacute;n,    sino solo cambios en la temperatura, por lo que es posible que no haya sido    suficiente y a&uacute;n permanecieran rizobios residentes en el soporte, capaces    de nodular dichas plantas. No obstante, se aprecia el marcado efecto de los    aislados S.F3.1, con 9,4 n&oacute;dulos por planta; C4.2b con 7,1 n&oacute;dulos    y G5.1, con 6,6 n&oacute;dulos por planta.    <br>       <br>   La <em>Crotalaria</em> se ha clasificado en el grupo de leguminosas que nodulan    efectivamente con un rango amplio de cepas, seg&uacute;n estudios que caracterizan    su nodulaci&oacute;n de mediana, con n&oacute;dulos grandes, color interno rojo    y con una presencia mayoritaria de estas estructuras en la ra&iacute;z principal<sup>F</sup>.    <br>       <br>   El efecto de los diferentes tratamientos sobre las variables de crecimiento:    peso fresco y seco del follaje, peso fresco y seco de la ra&iacute;z, la altura    y el n&uacute;mero de hojas, se presenta en la <a href="/img/revistas/ctr/v37n1/t0606116.gif">Tabla    VI</a>. Existieron diferencias estad&iacute;sticas entre los aislados, a favor    de S.F3.1 y entre este aislado y C4.2b con el tratamiento fertilizado, a favor    de las bacterias. A pesar de que no hubo diferencias con el tratamiento control    para las variables peso fresco y seco radical, altura y n&uacute;mero de hojas,    los mejores resultados correspondieron al tratamiento inoculado con el aislado    S.F3.1, seguido por el aislado C4.2b, lo que coincide con los resultados de    la nodulaci&oacute;n.    
<br>       <br>   Es l&oacute;gico pensar que una mayor nodulaci&oacute;n sobre estas plantas    se haya traducido en resultados superiores de su biomasa, lo que puede indirectamente    relacionarse con un mayor aporte de N a trav&eacute;s de la fijaci&oacute;n    simbi&oacute;tica con estos aislados. Resulta interesante que estos aislados    superaron incluso al testigo fertilizado, en las condiciones del ensayo.    <br>       <br>   Resultados similares se obtuvieron al evaluar la eficiencia de las necesidades    de nitr&oacute;geno frente a la inoculaci&oacute;n con <em>Rhizobium</em> en    chiplin (<em>Crotalaria longirostrata</em>), determinando que la inoculaci&oacute;n    con las rizobacterias promov&iacute;a significativamente la biomasa de las plantas    en comparaci&oacute;n con la fertilizaci&oacute;n mineral y el tratamiento control<sup>A</sup>.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Las plantas de    <em>Crotalaria</em>, que crecen de forma silvestre en las comunidades de Loja,    se asocian naturalmente con cepas eficientes de rizobios, que pueden contribuir    en su crecimiento y desarrollo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Notas al    pie</strong></font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>A</sup>Camarillo,    F. del R. <em>Evaluation of the nitrogen needs and efficiency of Rhizobia strains    to provide nitrogen to Chiplin (Crotalaria longirosrata Hook and ARN)</em>.    [Master thesis], University of Massachusetts, U.S., 2014.    <br>       <br>   <sup>B</sup>Valdivieso, E. <em>Estrategias de Desarrollo en base a la agrobiodiversidad    y los sistemas productivos para la soberan&iacute;a alimentaria en la Comuna    Collana Catacocha</em>. [Tesis de Maestr&iacute;a], UNLoja, Ecuador, 2013, 87    p.    <br>       <br>   <sup>C</sup>Col&aacute;s, S. A.; Torres, G. R.; Eichler, L. B.; Granda, M. K.    I.; Guti&eacute;rrez, S. Y.; Willems, A.; Michiels, J. y Vanderleyden, J. <em>Genetic    identification of Rhizobia isolates. Behavior on bean (Phaseolus vulgaris L.)    genotypes</em>. Inst. International Research on Food Security, Natural Resources    Management and Rural Development, 2011.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>D</sup>D&iacute;az-Alc&aacute;ntara, C. A. <em>Aislamiento, caracterizaci&oacute;n    y selecci&oacute;n de Rizobia aut&oacute;ctonos que nodulan habichuela roja    (Phaseolus vulgaris L.), en la Rep&uacute;blica Dominicana</em>. [Tesis de Doctorado],    Universidad de Le&oacute;n, Departamento de Ingenier&iacute;a y Ciencias Agrarias,    Rep&uacute;blica Dominicana, 2010.    <br>       <br>   <sup>E</sup>P&eacute;rez, G. <em>Selecci&oacute;n de aislados de rizobios provenientes    de la leguminosa forrajera Pueraria phaseoloides (Kudz&uacute; Tropical), cultivada    en condiciones de acidez</em>. [Tesis de Maestr&iacute;a], Universidad de La    Habana, Ciudad de La Habana, Cuba, 2010.    <br>       <br>   <sup>F</sup>F Bisson, A. y Mason, T. <em>Identification of rhizobia species    that can establish nitrogen-fixing nodules in Crotalaria longirostrata</em>.    Bachelor of Science, University of Massachusetts, U.S., 2010, 106 p. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">BIBLIOGRAF&Iuml;A</font></strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 1. Daimon, H.    ‘‘Traits of the <em>Genus Crotalaria</em> Used as a Green Manure Legume on Sustainable    Cropping Systems’’. <em>Japan Agricultural Research Quarterly: JARQ</em>, vol.    40, no. 4, 2006, pp. 299-305, ISSN 0021-3551, DOI 10.6090/jarq.40.299.    <br>       <br>   2. Marschner, H. <em>Mineral Nutrition of Higher Plants</em>. edit. Academic    Press, 8 de agosto de 2011, 668 p., ISBN 978-0-12-384906-9.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   3. Miyazawa, K.; Murakami, T.; Takeda, M. y Murayama, T. ‘‘Intercropping green    manure crops-effects on rooting patterns’’. <em>Plant and Soil</em>, vol. 331,    no. 1-2, 18 de diciembre de 2009, pp. 231-239, ISSN 0032-079X, 1573-5036, DOI    10.1007/s11104-009-0248-y.    <br>       <!-- ref --><br>   4. Prager, M. M.; Sanclemente, R. O. E.; S&aacute;nchez, de P. M.; Miller, G.    J.; S&aacute;nchez, &Aacute;. y Iv&aacute;n, D. ‘‘Abonos verdes: Tecnolog&iacute;a    para el manejo agroecol&oacute;gico de los cultivos’’. <em>Agroecolog&iacute;a</em>,    vol. 7, no. 1, 2012, pp. 53-62, ISSN 1989-4686.    <br>       <br>   5. Kimenju, J. W.; Kagundu, A. M.; Nderitu, J. H.; Mambala, F.; Mutua, G. K.    y Kariuki, G. M. ‘‘Incorporation of green manure plants into bean cropping systems    contribute to root-knot nematode suppression’’. <em>Asian Journal of Plant Sciences</em>,    vol. 7, no. 4, 2008, pp. 404–408,     <br>   ISSN 1682-3974.    <br>       <br>   6. Deepha, V.; Praveena, R.; Sivakumar, R. y Sadasivam, K. ‘‘Experimental and    theoretical investigations on the antioxidant activity of isoorientin from <em>Crotalaria    globosa’’. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy</em>,    vol. 121, 5 de marzo de 2014, pp. 737-745, ISSN 1386-1425, DOI 10.1016/j.saa.2013.12.025.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   7. Mart&iacute;nez, V. R. y Dibut, A. B. <em>Biofertilizantes bacterianos</em>.    edit. Editorial Cient&iacute;fico T&eacute;cnica, La Habana, Cuba, 2012, 279    p., ISBN 978-959-05-0659-8.    <br>       <br>   8. Giller, K. E. <em>Nitrogen Fixation in Tropical Cropping Systems</em>. Second    edition ed., edit. CABI, Wallingford, Oxon, UK?; New York, NY, USA, 6 de julio    de 2001, 352 p., ISBN 978-0-85199-417-8.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Hern&aacute;ndez, J. L.; Cubillos-Hinojosa, J. G. y Milian, P. E. ‘‘Aislamiento    de cepas de <em>Rhizobium</em> sp., asociados a dos leguminosas forrajeras en    el Centro Biotecnol&oacute;gico del Caribe’’. <em>Revista Colombiana de Microbiolog&iacute;a    Tropical,</em> vol. 2, 2012, pp. 51–62, ISSN 2215-8375.    <br>       <br>   10. Vincent, J. M. <em>A Manual for the Practical Study of Root-nodule Bacteria</em>.    vol. 15, edit. International Biological Programme, Blackwell Scientific, London,    1 de enero de 1970, 202 p., ISBN 978-0-632-06410-6.    <br>       <!-- ref --><br>   11. B&eacute;cquer, C. J.; Pr&eacute;vost, D. y Prieto, A. ‘‘Caracterizaci&oacute;n    fisiol&oacute;gica-bioqu&iacute;mica de cepas de rizobios, aislados en leguminosas    forrajeras’’. <em>Revista Biolog&iacute;a</em>, vol. 14, no. 1, 2000, pp. 57-65,    ISSN 0864-3490.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   12. Sosa, A.; El&iacute;as, A.; Garc&iacute;a, O. A. y Sarmiento, M. ‘‘Aislamiento    y caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica parcial de cepas de rizobios que    nodulan leguminosas rastreras’’. <em>Revista Cubana de Ciencia Agr&iacute;cola</em>,    vol. 38, no. 2, 2004, pp. 197-201, ISSN 2079-3472.    <br>       <!-- ref --><br>   13. Sanabria, V. D.; Silva, A. R.; Alfaro, C. y Oliveros, M. ‘‘Escarificaci&oacute;n    t&eacute;rmica de semillas de tres accesiones de <em>Leucaena leucocephala</em>’’.    <em>Zootecnia Tropical</em>, vol. 15, no. 2, 1997, pp. 67–80, ISSN 0798-7269.    <br>       <br>   14. StatPoint Technologies. <em>Statgraphics Centurion</em> [en l&iacute;nea].    (ser. Centurion), versi&oacute;n 16.1 (XV), [Windows], 21 de mayo de 2010, Disponible    en: &lt;<a href="http://statgraphics-centurion.software.informer.com/download/" target="_blank">http://statgraphics-centurion.software.informer.com/download/</a>&gt;.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Wang, E. T. y Mart&iacute;nez-Romero, J. ‘‘Taxonom&iacute;a del Rhizobium’’.    En: eds. Mart&iacute;nez-Romero E. y Mart&iacute;nez-Romero J. C., <em>Microbios</em>,    edit. Centro de Investigaciones sobre Fijaci&oacute;n de Nitr&oacute;geno. Universidad    Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, M&eacute;xico, 2001, p. 264, ISBN    968-36-8879-9.    <br>       <!-- ref --><br>   16. Granda-Mora, K. I.; Ochoa, M. A.; Ruviela, V.; Guam&aacute;n-D&iacute;az,    J. F. y Torres-Guti&eacute;rrez, R. ‘‘Evaluaci&oacute;n de cepas nativas de    <em>Rhizobium</em> sobre par&aacute;metros fenot&iacute;picos en fr&eacute;jol    com&uacute;n (<em>Phaseolus vulgaris</em> L.)’’. <em>Centro de Biotecnolog&iacute;a</em>,    vol. 3, no. 1, 2013, pp. 25-37, ISSN 1390-7573.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   17. Cuadrado, B.; Rubio, G. y Santos, W. ‘‘Caracterizaci&oacute;n de cepas de    <em>Rhizobium</em> y <em>Bradyrhizobium</em> (con habilidad de nodulaci&oacute;n)    seleccionados de los cultivos de fr&iacute;jol caupi (<em>Vigna unguiculata</em>)    como potenciales bioin&oacute;culos’’ <em>Revista Colombiana de Ciencias Qu&iacute;mico-Farmac&eacute;uticas</em>,    vol. 38, no. 1, enero de 2009, pp. 78-104, ISSN 0034-7418.    <br>       <br>   18. Lei, Z.; Jian, P. G.; Shi, Q. W.; Ze, Y. Z.; Chao, Z. y Yongxiong, Y. ‘‘Mechanism    of acid tolerance in a rhizobium strain isolated from <em>Pueraria lobata</em>    (Willd.) Ohwi’’. <em>Canadian Journal of Microbiology</em>, vol. 57, no. 6,    1 de junio de 2011, pp. 514-524, ISSN 0008-4166, DOI 10.1139/w11-036.    <br>       <br>   19. Boboye, B. E. y Ajayi, G. O. ‘‘Biodegradation of Selected Nigerian Fruit    Peels by the use of a Non-pathogenic <em>Rhizobium</em> species CWP 34B’’. <em>The    Open Microbiology Journal</em>, vol. 6, 2 de noviembre de 2012, pp. 88-93, ISSN    1874-2858, DOI 10.2174/1874285801206010088.    <br>       <br>   20. Moscatiello, R.; Baldan, B.; Squartini, A.; Mariani, P. y Navazio, L. ‘‘Oligogalacturonides:    Novel Signaling Molecules in <em>Rhizobium</em>-Legume Communications’’. <em>Molecular    Plant-Microbe Interactions</em>, vol. 25, no. 11, 26 de julio de 2012, pp. 1387-1395,    ISSN 0894-0282, DOI 10.1094/MPMI-03-12-0066-R.    <br>       <br>   21. L&oacute;pez, L. G.; Tabche, M. L.; Castillo, R. S.; Mendoza, V. A.; Ram&iacute;rez,    R. M. A. y D&aacute;vila, G. ‘‘RNA-Seq analysis of the multipartite genome of    <em>Rhizobium etli</em> CE3 shows different replicon contributions under heat    and saline shock’’. <em>BMC Genomics</em>, vol. 15, no. 1, 8 de septiembre de    2014, p. 770, ISSN 1471-2164, DOI 10.1186/1471-2164-15-770.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   22. Reina, B. M.; Argando&ntilde;a, M.; Nieto, J. J.; Hidalgo, G. A.; Iglesias,    G. F.; Delgado, M. J. y Vargas, C. ‘‘Role of trehalose in heat and desiccation    tolerance in the soil bacterium <em>Rhizobium etli</em>’’. <em>BMC Microbiology</em>,    vol. 12, no. 1, 17 de septiembre de 2012, p. 207, ISSN 1471-2180, DOI 10.1186/1471-2180-12-207.    <br>       <br>   23. Orme&ntilde;o, O. E.; Menna, P.; Almeida, L. G. P.; Ollero, F. J.; Nicol&aacute;s,    M. F.; Rodrigues, E. P.; Nakatani, A. S.; Batista, J. S. S.; Chueire, L. M.    O.; Souza, R. C.; Vasconcelos, A. T. R.; Meg&iacute;as, M.; Hungria, M. y Mart&iacute;nez,    R. E. ‘‘Genomic basis of broad host range and environmental adaptability of    <em>Rhizobium tropici</em> CIAT 899 and <em>Rhizobium</em> sp. PRF 81 which    are used in inoculants for common bean (<em>Phaseolus vulgaris</em> L.)’’. <em>BMC    Genomics</em>, vol. 13, no. 1, 27 de diciembre de 2012, p. 735, ISSN 1471-2164,    DOI 10.1186/1471-2164-13-735.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: 19 de    noviembre de 2014    <br>   Aceptado: 27 de enero de 2015</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Francisco Guam&aacute;n    D&iacute;az</em>, Universidad Nacional de Loja, “La Argelia”, PBX: 072546671,    Loja-Ecuador. Email: <a href="mailto:fguaman100@gmail.com">fguaman100@gmail.com</a></font>  </p>     ]]></body>
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