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<institution><![CDATA[,Universidad de Ciego de Ávila (UNICA) Laboratorio de Cultivo de Células y Tejidos del Centro Bioplantas ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Moringa has leaves, flowers and fruit with a high level of vitamins, minerals and proteins of interest for the food and medical industries. This species can be propagated by seeds or cuttings, methods that not suitable to introduce new cultivars. The aim of this research was to establish an in vitro propagation protocol of different cultivars of Moringa oleifera Lam. To disinfect seeds three different disinfection times were evaluated five, seven and nine minutes in 10 gL-1 sodium hipoclorite. Two methods for in vitro micropropagation were used: conventional system (semi-solid culture medium) and temporary immersion bioreactor. In the in vitro rooting phase, four concentrations of the naphthalene acetic acid and Indole butyric acid auxins (0; 2,5; 5,0 and 7,5 µmol L­-1) were evaluated and also the kind of explant. The survival rates of the sprout during the acclimatization phase was evaluated in relation to their origin in the rooting phase. Besides the effect of the genotype on in vitro establishment and multiplication was determined. The disinfection of the Supergenius cultivar was better at seven minutes of treatment with sodium hipoclorite, with 54 % of germination. The Temporary Immersion Bioreactor increased the sprouts morphological quality and multiplication coefficient from 6,2 until 16,1 of the Supergenius cultivar. Rooting was successful without auxin and acclimatization survival was around 85 % at 35 days for shoots rooted without growth regulators, regardless of explant origin. It was shown that the genotype influenced the establishment and multiplication of explants]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[protocol]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[plant growth regulators]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Propagaci&oacute;n    <em>in vitro</em> de cultivares de <em>Moringa oleifera</em> Lam. </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><em>In    vitro</em> propagation of <em>Moringa oleifera</em> Lam. cultivars </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Arturo    Matos Ruiz, Iris Capote Betancourt, Aurora P&eacute;rez Mart&iacute;nez, Yarianne    Lezcano M&aacute;s, Carlos E. Arag&oacute;n Abreu, Danilo Pina Morgado, Karel    Vives Hern&aacute;ndez, Marcos Daquinta Gradaille, Maritza Escalona Morgado</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Laboratorio de    Cultivo de C&eacute;lulas y Tejidos del Centro Bioplantas. Universidad de Ciego    de &Aacute;vila (UNICA), carretera a Mor&oacute;n km 9, Cuba, CP 69450.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> La Moringa posee    hojas, flores y frutos con un alto contenido de vitaminas, minerales y prote&iacute;nas    de inter&eacute;s para las industrias alimenticias y m&eacute;dicas. Su reproducci&oacute;n    es por semillas y estacas, m&eacute;todos insuficientes si se desean introducir    nuevos cultivares. El presente trabajo tuvo como objetivo establecer un protocolo    para la propagaci&oacute;n <em>in vitro</em> de <em>Moringa oleifera</em> Lam.    La desinfecci&oacute;n de las estructuras embri&oacute;n-endospermo con hipoclorito    de sodio 1 % (V:V) se realiz&oacute; a los cinco, siete y nueve minutos. La    multiplicaci&oacute;n <em>in vitro</em> se realiz&oacute; por: sistemas convencionales    (medio de cultivo semi-s&oacute;lido) y biorreactores de inmersi&oacute;n temporal.    En el enraizamiento <em>in vitro</em> se evalu&oacute; la concentraci&oacute;n    del &aacute;cido naftalen ac&eacute;tico y el &aacute;cido indol but&iacute;rico    (0; 2,5; 5,0 y 7,5 &micro;mol L&shy;<sup>-1</sup>) y el tipo de explante. Se    evalu&oacute; la supervivencia de los brotes en la aclimatizaci&oacute;n teniendo    en cuenta la procedencia de la fase de enraizamiento. Se determin&oacute; el    efecto del genotipo en el establecimiento y la multiplicaci&oacute;n <em>in    vitro</em>. La desinfecci&oacute;n del cultivar Supergenius fue mejor a los    siete minutos, con un porcentaje de germinaci&oacute;n del 54 %. Los biorreactores    de inmersi&oacute;n temporal incrementaron la calidad morfol&oacute;gica de    los brotes y el coeficiente de multiplicaci&oacute;n aument&oacute; de 6,2 a    16,1 para el cultivar Supergenius. El enraizamiento se logr&oacute; sin auxinas    y la supervivencia en aclimatizaci&oacute;n fue de un 85 % a los 35 d&iacute;as    para los brotes que se enraizaron sin reguladores del crecimiento, independientemente    del explante de procedencia. Se demostr&oacute; que el genotipo influy&oacute;    en el establecimiento y multiplicaci&oacute;n de los mismos.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> cultivares, protocolo, reguladores del crecimiento vegetal.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Moringa has leaves,    flowers and fruit with a high level of vitamins, minerals and proteins of interest    for the food and medical industries. This species can be propagated by seeds    or cuttings, methods that not suitable to introduce new cultivars. The aim of    this research was to establish an <em>in vitro</em> propagation protocol of    different cultivars of <em>Moringa oleifera</em> Lam. To disinfect seeds three    different disinfection times were evaluated five, seven and nine minutes in    10 gL<sup>-1</sup> sodium hipoclorite. Two methods for <em>in vitro</em> micropropagation    were used: conventional system (semi-solid culture medium) and temporary immersion    bioreactor. In the <em>in vitro</em> rooting phase, four concentrations of the    naphthalene acetic acid and Indole butyric acid auxins (0; 2,5; 5,0 and 7,5    &micro;mol L&shy;<sup>-1</sup>) were evaluated and also the kind of explant.    The survival rates of the sprout during the acclimatization phase was evaluated    in relation to their origin in the rooting phase. Besides the effect of the    genotype on <em>in vitro</em> establishment and multiplication was determined.    The disinfection of the Supergenius cultivar was better at seven minutes of    treatment with sodium hipoclorite, with 54 % of germination. The Temporary Immersion    Bioreactor increased the sprouts morphological quality and multiplication coefficient    from 6,2 until 16,1 of the Supergenius cultivar. Rooting was successful without    auxin and acclimatization survival was around 85 % at 35 days for shoots rooted    without growth regulators, regardless of explant origin. It was shown that the    genotype influenced the establishment and multiplication of explants.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    cultivars, protocol, plant growth regulators.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <em>Moringa oleifera</em>    Lam es un &aacute;rbol de la familia <em>Moringaceae</em> (1). Esta especie    es nativa de la zona de la India, Afganist&aacute;n, Pakist&aacute;n (2). Por    su alta resistencia a condiciones de estr&eacute;s, en la actualidad se encuentra    extendida en gran parte del mundo, incluyendo Am&eacute;rica (3).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Esta planta es un recurso natural que posee gran utilidad como complemento alimenticio    rico en vitaminas, antioxidantes, aceites, microelementos y prote&iacute;nas    (2). Adem&aacute;s del beneficio para la industria alimenticia, en la medicina    tradicional se utiliza para prevenir patolog&iacute;as asociadas a la carencia    de elementos esenciales de la dieta, como la ceguera infantil (4).    <br>       <br>   Igualmente se le atribuyen usos en la purificaci&oacute;n de agua (5) y en la    obtenci&oacute;n de biodiesel (6). Algunos autores le adjudican, tambi&eacute;n,    actividad bio-estimulante para el crecimiento de algunos cultivos</font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nA">A</a><a name="nA1"></a></sup></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">.    Recientemente se ha informado en la literatura la obtenci&oacute;n de compuestos    naturales a partir de esta planta para su uso a nivel agr&iacute;cola y m&eacute;dico    (5, 7).    <br>       <br>   Debido a estas propiedades, el cultivo de esta especie se ha incrementado en    los &uacute;ltimos a&ntilde;os (5). Los m&eacute;todos tradicionales como la    siembra de semillas y estacas han sido los m&aacute;s utilizados para satisfacer    la relaci&oacute;n consumo/demanda (8). Sin embargo, las inversiones de tiempo    y dinero en podas, preparaci&oacute;n de terreno, siembra y cosecha, son grandes    y en ocasiones limitan las potencialidades de uso.    <br>       <br>   En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, las t&eacute;cnicas de cultivo <em>in vitro</em>    se han utilizado en aras de obtener mayor cantidad de plantas de esta especie    y ahorrar recursos materiales</font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nB">B</a><a name="nB1"></a></sup></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">;    sin embargo, son escasos los informes que lo referencian. Esto crea la necesidad    de profundizar en las investigaciones concernientes a este &aacute;rbol de gran    importancia en la seguridad alimentaria, salud y agricultura</font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nB">B</a><a name="nB1"></a></sup></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">.    <br>       <br>   Los Biorreactores de Inmersi&oacute;n Temporal (BIT<sup>&reg;</sup>) se han    utilizado con &eacute;xito para la propagaci&oacute;n <em>in vitro</em> de plantas    (9, 10). Estos sistemas semi-automatizados con el empleo del medio l&iacute;quido    favorecen la nutrici&oacute;n <em>in vitro</em>, as&iacute; como la renovaci&oacute;n    de gases dentro del frasco de cultivo, lo que incrementa el crecimiento y el    desarrollo de los brotes (9, 11). Adem&aacute;s, se obtienen mejoras significativas    en los indicadores morfo-fisiol&oacute;gicos de los brotes que garantizan mayor    supervivencia y crecimiento de los mismos en condiciones <em>ex vitro</em> (12).    El presente trabajo tuvo como objetivo establecer un protocolo para la propagaci&oacute;n    <em>in vitro</em> de <em>Moringa oleifera</em> Lam.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <font size="3"><strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Material    vegetal    <br>       <br>   </strong>Se colectaron frutos de siete cultivares de <em>Moringa oleifera</em>    Lam (Supergenius, Criolla Ciego de &Aacute;vila, PKM-2, Paraguay, Guatemala,    Plain y Criolla Holgu&iacute;n), en diferentes &aacute;reas del territorio nacional.    Para la obtenci&oacute;n de las semillas, se secaron los frutos a temperatura    ambiente durante una semana. A las semillas se les quit&oacute; el tegumento,    se trabaj&oacute; con las estructuras embri&oacute;n-endospermo y se seleccionaron    las que pose&iacute;an entre 0,8 mm y 1 cm de di&aacute;metro; se lavaron con    detergente comercial durante cinco minutos y se enjuagaron tres veces con abundante    agua corriente.    <br>       <br>   <strong>Efecto del tiempo de desinfecci&oacute;n de las semillas de <em>Moringa    oleifera</em> Lam cv Supergenius</strong>    <br>       <br>   La desinfecci&oacute;n de los explantes (estructuras embri&oacute;n-endospermo)    se realiz&oacute; con hipoclorito de sodio 1 % (V:V) en agitaci&oacute;n durante    cinco, siete y nueve minutos. Posteriormente se colocaron individualmente en    un tubo de ensayo con 10 mL de medio de cultivo que estuvo compuesto por el    100 % de las sales MS (14), suplementado con 20 g L<sup>-1</sup> de sacarosa,        <br>   1 mg L<sup>-1</sup> de tiamina, 100 mg L<sup>-1</sup> de mio-inositol y sin    reguladores del crecimiento. El pH se ajust&oacute; a 5,7. Las condiciones de    cultivo fueron de un fotoper&iacute;odo de 16 horas luz y ocho&nbsp;horas de    oscuridad` y un flujo de fotones fotosint&eacute;ticamente activos de 37&nbsp;&micro;mol    m<sup>-2</sup>s<sup>-1</sup> (Lux&oacute;metro digital FAITHFUL modelo FT-710)    a temperatura de 26&plusmn;1 &deg;C.     <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Se utilizaron 48 explantes por tratamiento. Despu&eacute;s de siete d&iacute;as    de cultivo se determin&oacute; el n&uacute;mero de explantes contaminados. A    los 21 d&iacute;as se evalu&oacute; el n&uacute;mero de estructuras embri&oacute;n-endospermo    germinado y no germinado. Los resultados se expresaron en porcentaje.    <br>       <br>   <strong>Multiplicaci&oacute;n <em>in vitro</em> de brotes de <em>Moringa oleifera</em>    Lam cv Supergenius</strong>    <br>       <br>   A partir de las estructuras embri&oacute;n-endospermo germinadas se obtuvieron    dos tipos de explantes: &aacute;pices (segmento de tallo de 3 cm aproximadamente    con un par de hojas) y segmentos nodales (segmento de tallo de 3 cm aproximadamente    con dos nudos y dos hojas). Todos los explantes se colocaron en un medio de    cultivo semi-s&oacute;lido que conten&iacute;a el 100 % de las sales MS (13),    suplementado con 30&nbsp;g L<sup>-1</sup> de sacarosa, 1 mg L<sup>-1</sup> de    tiamina, 100 mg L<sup>-1</sup> de mio-inositol y sin reguladores del crecimiento.    El pH se ajust&oacute; a 5,7. La densidad de in&oacute;culo fue de siete explantes    por frasco y el volumen de medio de cultivo fue de 25 mL. Las condiciones de    cultivo se mantuvieron igual que en el experimento anterior. Los explantes se    subcultivaron tres veces cada 21 d&iacute;as, manteniendo la misma composici&oacute;n    del medio de cultivo.    <br>       <br>   Posteriormente se tomaron diez segmentos de tallos de aproximadamente 3 cm de    longitud con dos nudos y dos hojas provenientes de la multiplicaci&oacute;n    convencional y se colocaron en Biorreactores de Inmersi&oacute;n Temporal (BIT<sup>&reg;</sup>)    (14) que conten&iacute;an 800 mL de medio de cultivo l&iacute;quido con igual    composici&oacute;n que el anterior. Se realizaron tres inmersiones por d&iacute;a    y el tiempo de inmersi&oacute;n fue de cuatro&nbsp;minutos. Se utilizaron tres    BIT y cada explante constituy&oacute; una unidad experimental. Las condiciones    de cultivo se mantuvieron igual que en el experimento anterior. Despu&eacute;s    de 21 d&iacute;as de cultivo se evaluaron los indicadores n&uacute;mero de brotes    por explante, longitud del brote, n&uacute;mero de entrenudos, n&uacute;mero    de ra&iacute;ces, grosor del tallo, presencia de brotes hiperh&iacute;dricos    y adem&aacute;s se calcul&oacute; el coeficiente de multiplicaci&oacute;n como    el cociente entre el n&uacute;mero de brotes finales y el n&uacute;mero de explantes    inicial.     <br>   Enraizamiento <em>in vitro</em> de brotes de <em>Moringa oleifera</em> Lam cv    Supergenius Para el enraizamiento <em>in vitro</em>, se utiliz&oacute; un medio    de cultivo semi-s&oacute;lido que estuvo compuesto por las sales MS (13), suplementado    con 40 g L<sup>-1</sup> de sacarosa, 1 mg L<sup>-1</sup> de tiamina, 100 mg    L<sup>-1</sup> de mio-inositol y los reguladores del crecimiento &aacute;cido    naftalen ac&eacute;tico (ANA) y &aacute;cido indol but&iacute;rico (AIB) en    varias concentraciones (0; 2,5; 5,0; y 7,5 &micro;mol L<sup>-1</sup>). El pH    se ajust&oacute; a 5,7. Se utilizaron dos tipos de explantes, el de las bases    de tallos de 3 cm de longitud aproximadamente con dos nudos y dos hojas y el    segmento de tallo de 3 cm de longitud aproximadamente, con dos nudos y dos hojas.    La densidad de in&oacute;culo fue de siete explantes por frasco y el volumen    de medio de cultivo fue de 25 mL. Se mantuvieron las condiciones de cultivo    descritas anteriormente. Se utilizaron 30 explantes por tratamiento. Cada explante    constituy&oacute; una unidad experimental.    <br>       <br>   A los 21 d&iacute;as de cultivo, se evaluaron los indicadores altura de los    brotes, n&uacute;mero de entrenudos, n&uacute;mero de ra&iacute;ces, longitud    y grosor de la ra&iacute;z m&aacute;s extensa.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Aclimatizaci&oacute;n de las plantas de <em>Moringa oleifera</em> Lam cv Supergenius    Los brotes de aproximadamente 5 cm de longitud, con cuatro hojas y presencia    de ra&iacute;ces provenientes de los diferentes tratamientos de enraizamiento    <em>in vitro</em>, se colocaron en comprimidos de turba (jiffys). Las condiciones    de cultivo fueron de 80&plusmn;3 % de humedad relativa y 25&plusmn;2 &deg;C    de temperatura (Termo Higr&oacute;metro digital TECPEL<sup>&reg;</sup> modelo    DTM- 303), fotoper&iacute;odo correspondiente al ciclo del d&iacute;a (16 horas    luz/8 horas oscuridad) con un flujo de fotones fotosint&eacute;ticamente activos    de 608 &micro;mol m<sup>-2</sup>s<sup>-1</sup> y condiciones atmosf&eacute;ricas    de concentraci&oacute;n de CO<sub>2</sub> entre 375 y 400 &micro;mol mol<sup>-1</sup>    a las 12:00 pm. El riego se realiz&oacute; con regadera una vez por d&iacute;a    en el horario comprendido entre las 9?30 am y 11?00 am. Se utilizaron 30 plantas    por tratamiento. Cada planta constituy&oacute; una unidad experimental.    <br>       <br>   A los 7, 14, 21, 28 y 35 d&iacute;as de cultivo se calcul&oacute; el porcentaje    de supervivencia de acuerdo con la f&oacute;rmula:    <br>       <br>   % de supervivencia= (n&uacute;mero de plantas vivas/total de plantas) x100    <br>       <br>   <strong>Efecto del genotipo en la germinaci&oacute;n de semillas de <em>Moringa    oleifera</em> Lam</strong>    <br>       <br>   A las semillas de los siete cultivares de <em>Moringa oleifera</em> Lam (Supergenius,    Criolla Ciego &Aacute;vila, PKM-2, Paraguay, Guatemala, Plain y Criolla Holgu&iacute;n)    se les realiz&oacute; la desinfecci&oacute;n de las estructuras embri&oacute;n-endospermo    con hipoclorito de sodio 1 % (V:V) en agitaci&oacute;n durante siete minutos.    Se mantuvieron las condiciones de cultivo descritas para la germinaci&oacute;n    del cultivar Supergenius.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Se utilizaron 48 estructuras embri&oacute;n-endospermo por cultivar. Despu&eacute;s    de siete d&iacute;as de cultivo se determin&oacute; el n&uacute;mero de explantes    contaminados. A los 21 d&iacute;as se evalu&oacute; el n&uacute;mero de estructuras    embri&oacute;n-endospermo germinado y no germinado. Los resultados se expresaron    en porcentaje.    <br>       <br>   <strong>Efecto del genotipo en la multiplicaci&oacute;n de <em>Moringa oleifera</em>    Lam</strong>    <br>       <br>   Para evaluar el efecto del genotipo en la multiplicaci&oacute;n se procedi&oacute;    de igual manera que con el cultivar Supergenius descrito previamente. Despu&eacute;s    de 21 d&iacute;as de cultivo en BIT se evaluaron los indicadores n&uacute;mero    de brotes por explante, longitud del brote, n&uacute;mero de entrenudos, presencia    ra&iacute;ces, grosor del tallo y presencia de brotes hiperh&iacute;dricos.    Adem&aacute;s, se calcul&oacute; el coeficiente de multiplicaci&oacute;n como    el cociente entre n&uacute;mero de brotes final y n&uacute;mero de explantes    inicial.    <br>       <br>   <strong>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</strong>    <br>       <br>   En el procesamiento estad&iacute;stico de los datos se utiliz&oacute; el utilitario    SPSS (15), el an&aacute;lisis de varianza simple, bifactorial y trifactorial    (ANOVA) con diferentes niveles. Las medias de los tratamientos se compararon    utilizando la prueba de rangos m&uacute;ltiple de Tukey (p&lt;0,05). En algunos    casos fue necesaria la transformaci&oacute;n de los datos para lograr los supuestos    de las pruebas param&eacute;tricas realizadas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Efecto    del tiempo de desinfecci&oacute;n de las semillas de <em>Moringa oleifera</em>    Lam cv Supergenius</strong>    <br>       <br>   En la <a href="#t1">Tabla I</a> se muestra el efecto del tiempo de desinfecci&oacute;n    con hipoclorito de sodio 1 % (V:V) sobre el porcentaje de estructuras embri&oacute;n-endospermo    contaminadas, germinadas y no germinadas durante el establecimiento <em>in vitro</em>.    El menor porcentaje de contaminaci&oacute;n se obtuvo cuando la desinfecci&oacute;n    se realiz&oacute; durante nueve minutos, con diferencias significativas del    resto de los tratamientos. Por su parte, el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n    le correspondi&oacute; al tratamiento donde se utiliz&oacute; el hipoclorito    de sodio 1 % (V:V) durante siete minutos, el cual difiri&oacute; significativamente    de los tratamientos de cinco y nueve minutos. Tambi&eacute;n se pudo observar    que con el aumento del tiempo de desinfecci&oacute;n aument&oacute; el porcentaje    de semillas no germinadas a pesar de que el porcentaje de contaminaci&oacute;n    fue menor. Este comportamiento pudiera estar relacionado con un efecto fitot&oacute;xico    del hipoclorito de sodio (16). A partir de estos resultados se seleccion&oacute;    el tiempo de siete minutos como el adecuado para la desinfecci&oacute;n de las    semillas de moringa.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t1"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/t0107s116.gif" width="823" height="171">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Multiplicaci&oacute;n    <em>in vitro</em> de brotes de <em>Moringa oleifera</em> Lam cv Supergenius</strong>    <br>       <br>   En la multiplicaci&oacute;n de <em>M. oleifera</em> Lam. cv Supergenius en el    sistema convencional se obtuvo un elevado coeficiente de multiplicaci&oacute;n    (6,2) a pesar de no utilizar reguladores del crecimiento en el medio de cultivo.    Esto pudiera asociarse fundamentalmente a la juvenilidad del material vegetal    y a la ruptura de la dominancia apical que favoreci&oacute; la activaci&oacute;n    de la brotaci&oacute;n axilar as&iacute; como, a un elevado contenido end&oacute;geno    de fitohormonas como la zeatina</font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nA">A</a><a name="nA1"></a></sup></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    (17), lo que pudo favorecer la formaci&oacute;n de brotes axilares.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   El uso de los BIT increment&oacute; el coeficiente de multiplicaci&oacute;n    hasta 16,1 (<a href="#t2">Tabla II</a>), demostrando el efecto positivo de este    sistema de cultivo en la multiplicaci&oacute;n de la <em>M. oleifera</em> Lam.    cv Supergenius. Adem&aacute;s, los indicadores morfol&oacute;gicos evaluados    mostraron resultados favorables. El uso del medio de cultivo l&iacute;quido    y la renovaci&oacute;n de la atmosfera gaseosa interna del recipiente de cultivo    favorecieron la incorporaci&oacute;n y asimilaci&oacute;n de los nutrientes,    incrementando el crecimiento y la acumulaci&oacute;n de biomasa (14, 18).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t2"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/t0207s116.gif" width="817" height="105"></font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong> Enraizamiento    <em>in vitro</em> de brotes de <em>Moringa oleifera</em> Lam cv Supergenius</strong>    <br>       <br>   El efecto de la concentraci&oacute;n de dos auxinas (ANA y AIB) y el tipo de    explante sobre indicadores morfol&oacute;gicos en la fase de enraizamiento <em>in    vitro</em> de brotes de <em>Moringa oleifera</em> Lam. cv. Supergenius se muestran    en la <a href="#t3">Tabla III</a>. El n&uacute;mero de ra&iacute;ces fue mayor    cuando se utiliz&oacute; como explante segmentos de tallos con 5,0 &micro;molL&shy;<sup>-1</sup>    de ANA y 7,5 &micro;molL&shy;<sup>-1</sup> de AIB, sin diferencias significativas    entre s&iacute;.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t3"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/t0307s116.gif" width="820" height="387">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> La longitud de    la ra&iacute;z m&aacute;s extensa fue mayor en el control, independientemente    del tipo de explante, sin diferencias significativas con el tratamiento en que    se utilizaron bases de tallo con 2,5 &micro;mol L&shy;<sup>-1</sup> de ANA.    Este tratamiento tambi&eacute;n mostr&oacute; el mejor resultado en cuanto al    grosor de la ra&iacute;z m&aacute;s extensa y la altura del brote, con diferencias    significativas del resto de los tratamientos. El n&uacute;mero de entrenudos    fue superior para los segmentos de tallos del tratamiento control, con diferencias    significativas con el resto de los tratamientos.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   En los explantes proveniente de la base del tallo se favoreci&oacute; la formaci&oacute;n    de callo en la regi&oacute;n basal, lo que afect&oacute; la formaci&oacute;n    de ra&iacute;ces. Esto pudiera estar relacionado con el incremento end&oacute;geno    de la concentraci&oacute;n de auxina, ya que se reconoce que la Moringa posee    un elevado contenido de AIA y la adici&oacute;n ex&oacute;gena de ANA y AIB    pudo provocar la divisi&oacute;n celular descontrolada dando lugar a la masa    callosa (19). Esta condici&oacute;n en los explantes es no deseada ya que las    ra&iacute;ces que se forman a partir de esta estructura son de baja calidad    (20).    <br>       <br>   <strong>Aclimatizaci&oacute;n de brotes de <em>Moringa oleifera</em> Lam cv    Supergenius</strong>    <br>       <br>   La <a href="#t4">Tabla IV</a> muestra el efecto de la aplicaci&oacute;n de auxinas    (ANA y AIB) durante el enraizamiento <em>in vitro</em> sobre en el porcentaje    de supervivencia de los brotes en la fase de aclimatizaci&oacute;n. El uso de    auxinas en la fase de enraizamiento <em>in vitro</em>, independientemente del    tipo y concentraci&oacute;n, afect&oacute; notablemente la supervivencia de    los brotes durante el transcurso del tiempo. El tratamiento control, donde no    se utilizaron auxinas para el enraizamiento, mostr&oacute; los mejores valores    de supervivencia en todos los momentos evaluados, independientemente del tipo    de explante utilizado. Luego de 35 d&iacute;as de cultivo la supervivencia fue    de superior al 85 % para el tratamiento control. Para los tratamientos donde    se utilizaron auxinas los valores de supervivencia al final de esta fase fueron    muy bajos oscilando entre 0 y 6,6 %.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t4"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/t0407s116.gif" width="817" height="369">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El comportamiento    observado pudiera estar asociado a que las ra&iacute;ces formadas <em>in vitro</em>    son poco funcionales y con escasos pelos adsorbentes, lo que no garantiza la    nutrici&oacute;n de los brotes en la etapa inicial de la aclimatizaci&oacute;n    (21). Adem&aacute;s, en algunas plantas, las ra&iacute;ces <em>in vitro</em>    se pierden durante el trasplante al sustrato, por lo que durante este proceso    donde las plantas tienen que adaptarse a las nuevas condiciones de cultivo y    enfrentar las condiciones de estr&eacute;s a las que son expuestas durante el    tr&aacute;nsito <em>in vitro</em>-<em>ex vitro</em> podr&iacute;a afectar el    porcentaje de supervivencia.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La aplicaci&oacute;n de auxinas promovi&oacute; el enraizamiento de los brotes;    sin embargo, en el tratamiento control las ra&iacute;ces que se formaron son    m&aacute;s funcionales, lo que garantiz&oacute; la supervivencia durante la    aclimatizaci&oacute;n. Esto pudiera estar asociado a que el suplemento de auxinas    favorece la formaci&oacute;n de callos en la base de los brotes que impide la    funcionabilidad de las ra&iacute;ces en condiciones <em>ex vitro</em> afectando    la supervivencia de las plantas.    <br>       <br>   <strong>Efecto del genotipo en la germinaci&oacute;n de semillas de <em>Moringa    oleifera</em> Lam</strong>    <br>       <br>   En la <a href="#t5">Tabla V</a> se muestra el efecto de la desinfecci&oacute;n    durante siete minutos con hipoclorito de sodio 1 % (V:V) sobre el porcentaje    de estructuras embri&oacute;n-endospermo contaminadas, germinadas y no germinadas    durante el establecimiento <em>in vitro</em> de <em>M. oleifera</em> Lam cv    Paraguay, Plain, PKM-2, Guatemala, Criolla Ciego &Aacute;vila, Criolla Holgu&iacute;n.    Para los cultivares evaluados el porcentaje de contaminaci&oacute;n fue inferior    al del cultivar Supergenius, con excepci&oacute;n del cultivar Criolla Holgu&iacute;n    que mostr&oacute; un porcentaje de contaminaci&oacute;n de 95,80 %. El mayor    porcentaje de germinaci&oacute;n se logr&oacute; en los cultivares Criolla Ciego    &Aacute;vila y Plain, sin diferencias significativas entre s&iacute;. Estos    valores de germinaci&oacute;n fueron superiores al obtenido con el cultivar    Supergenius. La germinaci&oacute;n del resto de los cultivares fue baja. El    cultivar Criolla Holgu&iacute;n se vio severamente afectado por la contaminaci&oacute;n    y la no germinaci&oacute;n de las estructura embri&oacute;n-endospermo, por    lo que no se pudo continuar con la experimentaci&oacute;n con este cultivar.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t5"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/t0507s116.gif" width="811" height="234">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Efecto    del genotipo en la multiplicaci&oacute;n de <em>Moringa oleifera</em> Lam</strong>    <br>       <br>   Los valores de coeficiente de multiplicaci&oacute;n en sistema convencional    de los cultivares de <em>M. oleifera</em> Lam (Paraguay, Plain, PKM-2, Guatemala    y Criolla Ciego &Aacute;vila), se muestra en la <a href="#t6">Tabla VI</a>.    Los mejores resultados se obtuvieron con los cultivares Supergenius, Plain y    Paraguay, sin diferencias estad&iacute;sticas significativas entre s&iacute;.    Los resultados m&aacute;s bajos se obtuvieron con el cultivar Criolla Ciego    &Aacute;vila a pesar de ser la que mejores resultados mostr&oacute; en cuanto    a germinaci&oacute;n de las estructuras embri&oacute;n-endospermo con el 91,60    %.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Los valores de los indicadores morfol&oacute;gicos evaluados luego de la multiplicaci&oacute;n    en BIT de <em>M. oleifera</em> Lam se muestran en la Tabla VII. Para el indicador    longitud del brote, los mejores resultados se obtuvieron para los cultivares    Supergenius, Paraguay y Plain, sin diferencias estad&iacute;sticas entre s&iacute;.    Por su parte, el n&uacute;mero de entrenudos fue superior en los cultivares    Supergenius, Paraguay y PKM-2, sin diferencias estad&iacute;sticas entre s&iacute;.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t6"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/t0607s116.gif" width="397" height="237">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    La formaci&oacute;n de ra&iacute;ces se evidenci&oacute; en todos los cultivares,    excepto en Paraguay y Criolla Ciego &Aacute;vila, present&aacute;ndose el mayor    n&uacute;mero de ra&iacute;ces en los cultivares Supergenius y PKM-2, sin diferencias    significativas entre s&iacute;. El indicador grosor del tallo no mostr&oacute;    diferencias significativas entre los cultivares evaluados. Tampoco, se presentaron    brotes hiperh&iacute;dricos en ninguno de los cultivares. En cuanto al coeficiente    de multiplicaci&oacute;n, el mejor resultado le correspondi&oacute; al cultivar    Supergenius, seguido por el cultivar Paraguay. Para estos cultivares, el BIT    increment&oacute; en m&aacute;s de dos veces el coeficiente de multiplicaci&oacute;n,    mientras que para el resto de los cultivares este indicador no tuvo un incremento    significativo con respecto al sistema convencional.    <br>       <br>   Los resultados demostraron el efecto del genotipo sobre la germinaci&oacute;n    de las estructuras embri&oacute;n-endospermo y la multiplicaci&oacute;n <em>in    vitro</em>. Las diferencias observadas entre los cultivares pudieran estar relacionadas    con el estado fisiol&oacute;gico y sanitario de la planta madre y de las semillas,    as&iacute; como el tama&ntilde;o, edad y momento de toma de los explantes. Adem&aacute;s,    se conoce que la respuesta genot&iacute;pica depende de la expresi&oacute;n    g&eacute;nica de cada individuo, la cual depende del medio ambiente donde se    desarrolla el individuo (22).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <font size="3"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Se logr&oacute;    un protocolo para la propagaci&oacute;n <em>in vitro</em> de cultivares de <em>Moringa    oleifera</em> Lam, el cual se caracteriz&oacute; por su efectividad en el n&uacute;mero    y calidad de los brotes. El mismo se caracteriz&oacute; por la ausencia de reguladores    del crecimiento durante el establecimiento, la multiplicaci&oacute;n y el enraizamiento    de los brotes lo cual incidi&oacute; positivamente en los altos porcentajes    de supervivencia logrados durante la aclimatizaci&oacute;n.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Con el empleo de la t&eacute;cnica de inmersi&oacute;n temporal se alcanz&oacute;    duplicar la tasa de multiplicaci&oacute;n en algunos cultivares demostrando    la efectividad de este m&eacute;todo en la propagaci&oacute;n de esta planta.    Es evidente que los contenidos end&oacute;genos de auxinas y citoquininas en    esta planta favorecieron la propagaci&oacute;n <em>in vitro</em>, por lo que    la obtenci&oacute;n de extractos naturales y su evaluaci&oacute;n en la morfog&eacute;nesis    <em>in vitro</em> de otras plantas son de gran inter&eacute;s y constituyen    aspectos a abordar en futuras investigaciones.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Nota al    pie</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="#nA1"><SUP>A</sup></a><a name="nA"></a>Yasmeen,    A.<em> Exploring the potential of moringa (Moringa oleifera) leaf extract as    natural plant growth enhancer</em> [en l&iacute;nea]. Ph. D. thesis, Department    of Agronomy, University of Agriculture, Faisalabad, Pakistan, 2011, [Consultado:&nbsp;10    de febrero de 2016], Disponible&nbsp;en: &lt;<a href="http://moringatrees.org/moringa-doc/moringa-natural-plant-growth-enhancer.pdf" target="_blank">http://moringatrees.org/moringa-doc/moringa-natural-plant-growth-enhancer.pdf</a>&gt;.    <br>       <br>   <a href="#nB1"><SUP>B</sup></a><a name="nB"></a>Artiga, S. M. E. <em>Efecto    del BAP y 2,4-D en la inducci&oacute;n in vitro de tejido callog&eacute;nico    a partir de l&aacute;minas foliares, segmentos peciolares y vitro-explantes    hipocotiledores y radiculares de Moringa ole&iacute;fera</em> [en l&iacute;nea].    Tesis de Grado, Escuela Agr&iacute;cola Panamericana, Zamorano, Honduras, 2012,    25 p., [Consultado:&nbsp;1 de febrero de 2016], Disponible&nbsp;en: &lt;<a href="http://bdigital.zamorano.edu/handle/11036/1057" target="_blank">http://bdigital.zamorano.edu/handle/11036/1057</a>&gt;.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>BIBLIOGRAF&Iacute;A</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 1. Bonal, R. R.;    Rivera, O. R. M. y Bol&iacute;var, C. M. E. ‘‘<em>Moringa oleifera</em>: una    opci&oacute;n saludable para el bienestar’’. <em>MEDISAN</em>, vol. 16, no.    10, octubre de 2012, pp. 1596-1599, ISSN 1029-3019.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   2. Villarreal, G. A.; Angulo, O. y Johana, K. ‘‘Review of characteristics and    uses of the plant <em>Moringa oleifera</em>’’. <em>Investigaci&oacute;n y Desarrollo</em>,    vol. 22, no. 2, julio de 2014, pp. 309-330, ISSN 0121-3261.    <br>       <br>   3. del Toro, M. J. J.; Carballo, H. A. y Rocha, R. L. ‘‘Valoraci&oacute;n de    las Propiedades Nutricionales de Moringa Ole&iacute;fera en el Departamento    de Bol&iacute;var’’. <em>Revista de Ciencias</em>, vol. 15, 13 de febrero de    2012, pp. 23-30, ISSN 0121-1935.    <br>       <!-- ref --><br>   4. Posmontier, B. ‘‘The Medicinal Qualities of <em>Moringa oleifera</em>’’.<em>    Holistic Nursing Practice</em>, vol. 25, no. 2, 2011, pp. 80-87, ISSN 0887-9311,    DOI 10.1097/HNP.0b013e31820dbb27.    <br>       <br>   5. Mart&iacute;n, C.; Mart&iacute;n, G.; Garc&iacute;a, A.; Fern&aacute;ndez,    T.; Hern&aacute;ndez, E. y Puls, J. ‘‘Potenciales aplicaciones de <em>Moringa    oleifera</em>. Una revisi&oacute;n cr&iacute;tica’’. <em>Pastos y Forrajes</em>,    vol. 36, no. 2, junio de 2013, pp. 137-149, ISSN 0864-0394.    <br>       <br>   6. Olson, M. E. y Fahey, J. W. ‘‘<em>Moringa oleifera</em>: un &aacute;rbol    multiusos para las zonas tropicales secas’’.<em> Revista mexicana de biodiversidad</em>,    vol. 82, no. 4, diciembre de 2011, pp. 1071-1082, ISSN 1870-3453.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   7. Yasmeen, A.; Basra, S. M. A.; Wahid, A.; Nouman, W. y Rehman, H. U. ‘‘Exploring    the potential of <em>Moringa oleifera</em> leaf extract (MLE) as a seed priming    agent in improving wheat performance’’. <em>TURKISH JOURNAL OF BOTANY</em>,    vol. 37, no. 3, 3 de junio de 2013, pp. 512-520, ISSN 1300-008X.    <br>       <!-- ref --><br>   8. Phiri, C. y Mbewe, D. N. ‘‘Influence of <em>Moringa oleifera</em> leaf extracts    on germination and seedling survival of three common legumes’’. <em>International    Journal of Agriculture and Biology</em>, vol. 12, no. 2, 2010, pp. 315-317,    ISSN 1560-8530, CABDirect2.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Escalona, M. ‘‘Temporary immersion beats traditional techniques on all fronts’’.    <em>Prophyta Annual</em>, 2006, pp. 48–50, ISSN 0921-5506, 0921-5506.    <br>       <br>   10. Watt, M. P. ‘‘The status of temporary immersion system (TIS) technology    for plant micropropagation’’. <em>African Journal of Biotechnology</em>, vol.    11, no. 76, 20 de septiembre de 2012, pp. 14025-14035, ISSN 1684-5315, DOI 10.5897/AJB12.1693.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Pe&ntilde;ate, L.; Concepci&oacute;n, O.; Arag&oacute;n, C.; Rodr&iacute;guez,    R.; Gonz&aacute;lez Olmedo, J. L.; Escalona, M.; Cid, M. y Pina, D. ‘‘Evaluaci&oacute;n    del efecto de tres condiciones de cultivo <em>in vitro</em> en la calidad de    pl&aacute;ntulas de ca&ntilde;a de az&uacute;car propagadas en Biorreactores    de Inmersi&oacute;n Temporal’’. <em>Biotecnolog&iacute;a vegetal</em>, vol.    7, no. 3, 2007, pp. 161-169, ISSN 1609-1841.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   12. Arag&oacute;n, C.; Carvalho, L.; Gonz&aacute;lez, J.; Escalona, M. y Amancio,    S. ‘‘The physiology of <em>ex vitro</em> pineapple (Ananas comosus L. Merr.    var MD-2) as CAM or C3 is regulated by the environmental conditions’’. <em>Plant    Cell Reports</em>, vol. 31, no. 4, 2 de diciembre de 2011, pp. 757-769, ISSN    0721-7714, 1432-203X, DOI 10.1007/s00299-011-1195-7.    <br>       <br>   13. Murashige, T. y Skoog, F. ‘‘A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays    with Tobacco Tissue Cultures’’. <em>Physiologia Plantarum</em>, vol. 15, no.    3, 1 de julio de 1962, pp. 473-497, ISSN 1399-3054, DOI 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.    <br>       <br>   14. Escalona, M.; Lorenzo, J. C.; Gonz&aacute;lez, B.; Daquinta, M.; Gonz&aacute;lez,    J. L.; Desjardins, Y. y Borroto, C. G. ‘‘Pineapple (<em>Ananas comosus</em>    L. Merr) micropropagation in temporary immersion systems’’. Plant Cell Reports,    vol. 18, no. 9, mayo de 1999, pp. 743-748, ISSN 0721-7714, 1432-203X, DOI 10.1007/s002990050653.    <br>       <!-- ref --><br>   15. P&eacute;rez, L. C. <em>T&eacute;cnicas estad&iacute;sticas con SPSS 12:    aplicaciones al an&aacute;lisis de datos</em>. edit. Pearson Prentice Hall,    2005, 824 p., ISBN 978-84-205-4410-6.    <br>       <br>   16. Garc&iacute;a, M. B.; Abeal, E. E.; Rodr&iacute;guez, I. P. y Rodr&iacute;guez,    S. M. ‘‘Uso de distintos tratamientos de desinfecci&oacute;n en el cultivo <em>in    vitro</em> de <em>Dioscorea alata</em> L. clon caraque&ntilde;o’’. <em>Revista    Colombiana de Biotecnolog&iacute;a</em>, vol. 11, no. 2, 15 de octubre de 2009,    pp. 127-135, ISSN 1909-8758.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   17. de Feria, M.; Ch&aacute;vez, M.; Barb&oacute;n, R.; La O, M.; P&eacute;rez,    M.; Jim&eacute;nez-Terry, F.; Quiala, E. y Agramonte, D. ‘‘Multiplicaci&oacute;n    <em>in vitro</em> de plantas de <em>Pinus caribaea</em> var. caribaea’’. <em>Biotecnolog&iacute;a    Vegetal</em>, vol. 9, no. 4, 2009, pp. 217-224, ISSN 1609-1841.    <br>       <!-- ref --><br>   18. Jim&eacute;nez, E.; Reyes, C.; Machado, P.; P&eacute;rez Alonso, N.; Capote,    A.; P&eacute;rez, A. y Eichler Loebermann, B. ‘‘Multiplicaci&oacute;n <em>in    vitro</em> de <em>Morinda royoc</em> L. en Sistemas de Inmersi&oacute;n Temporal’’.    <em>Biotecnolog&iacute;a vegetal</em>, vol. 11, no. 2, 2011, pp. 115-118, ISSN    1609-1841.    <br>       <!-- ref --><br>   19. Guill&eacute;n, S.; Mart&iacute;nez-Palacios, A.; Mart&iacute;nez, H. y    Mart&iacute;nez-&Aacute;valos, J. G. ‘‘Organog&eacute;nesis y embriog&eacute;nesis    som&aacute;tica de <em>Beaucarnea inermis</em> (Asparagaceae), una especie amenazada    del noreste de M&eacute;xico’’. <em>Botanical Sciences</em>, vol. 93, no. 2,    2015, pp. 221-230, ISSN 2007-4298, DOI 10.17129/botsci.129.    <br>       <br>   20. Rodr&iacute;guez, B. M.; Carrillo, L. R.; Chac&oacute;n, F. M.; Hormaz&aacute;bal,    V. N.; Tampe, P. J. y Tighe, N. R. ‘‘Enraizamiento <em>in vitro</em> y <em>ex    vitro</em> de microtallos de Ugni molinae Turcz., una especie nativa de Chile’’.    Gayana. Bot&aacute;nica, vol. 72, no. 1, junio de 2015, pp. 14-20, ISSN 0717-6643,    DOI 10.4067 S0717-66432015000100002.    <br>       <br>   21. Garc&iacute;a, A. V.; Sandrea, Y.; Gonzalez, O.; Diaz, A.; Albarran, J.    G.; Schmidt, A.; Salazar, E.; Mujica, Y.; Casado, R.; Fernandez, J. y R, C.    M. ‘‘Micropropagaci&oacute;n de plantas de lechosa en recipientes de inmersi&oacute;n    temporal a partir de brotes axilares’’. <em>Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a</em>,    vol. 17, no. 1, 22 de mayo de 2015, pp. 70-78, ISSN 1909-8758, DOI 10.15446/rev.colomb.biote.v17n1.50718.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   22. Orellana, P. P.; Garc&iacute;a, L.; Berm&uacute;dez, I.; Veit&iacute;a,    N. y Romero, C. ‘‘Manejo de hijos y &aacute;pices de cultivares de <em>Musa</em>    spp. para iniciar la micropropagaci&oacute;n y comportamiento durante seis subcultivos    <em>in vitro</em>’’. <em>Biotecnolog&iacute;a vegetal</em>, vol. 2, no. 2, 2002,    pp. 77-81, ISSN 1609-1841.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Recibido: 15 de    mayo de 2015    <br>   Aceptado: 29 de enero de 2016</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Arturo Matos    Ruiz,</em> Laboratorio de Cultivo de C&eacute;lulas y Tejidos del Centro Bioplantas.    Universidad de Ciego de &Aacute;vila (UNICA), carretera a Mor&oacute;n km 9,    Cuba, CP 69450. Email: <a href="mailto:aruiz@bioplantas.cu">aruiz@bioplantas.cu</a></font></p>      ]]></body><back>
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