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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la madurez en la crioconservación de semillas de Nicotiana tabacum L.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The main objective of this investigation was to determine the effect of the ripening in the cryopreservation of the Nicotiana tabacum L seeds. cv Sancti Spíritus 96 (SS-96). This study was done between the years 2012 and 2014, at the Tobacco experimental station located in Cabaiguan, Sancti Spiritus. SS-96 seeds were harvest at the 14, 21, 28, 35, 42, 49 and 56 days after the anthesis (DAA), determining the fresh and dry mass to over 1000 seeds, the humidity percentage (fresh mass) and germinating power (GP), as well as evaluate the tolerance of it to desiccation. At the same time, seeds collected every day, were conserved in 5 ºC or liquid nitrogen, and within 30 days, its GP was evaluated and put under accelerated aging and electrolyte leakage tests. During the research it was determined that the physiological ripeness of SS-96 seeds is reached at 29,6 DAA, with a 30,6 % of water and a dry mass of 1000 seeds of 81,2 mg of weight. 35 DAA were established as the optimum momentum for the harvest. The anticipation of the recollection process will end up in a diminishing the desiccation tolerance levels due to the lack of ripeness of seeds; meanwhile a late recollection ends up in lack of potency due to a larger exposure to the environment]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Efecto    de la madurez en la crioconservación de semillas de <em>Nicotiana tabacum</em>    L.</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Effect    of the ripening in the cryopreservation of the <em>Nicotiana tabacum</em> L.    seeds</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Juan L.    Pérez-Rodríguez,<sup>I</sup> Gilberto Torrecilla Guerra,<sup>I</sup> Otilio    Ruiz Padrón,<sup>I</sup> René C. Rodríguez Escriba,<sup>II</sup> Gustavo Y.    Lorente González,<sup>II</sup> Marcos E. Martínez-Montero,<sup>II</sup> Justo    L. González Olmedo<sup>II</sup></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Estación    Experimental del Tabaco. carretera Santa Lucía, km 2, Cabaiguán, CP: 62410,    Sancti Spíritus, Cuba.    <br>   <sup>II</sup>Centro de Bioplantas, Universidad de Ciego de Ávila, carretera    Morón km 9, Ciego de Ávila, CP 69450, Ciego de Ávila, Cuba. </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La presente investigación    tuvo como objetivo determinar el efecto de la madurez en la crioconservación    de semillas de <em>Nicotiana tabacum</em> L. cv Sancti Spíritus 96 (SS-96).    El estudio se realizó en la Estación experimental del tabaco de Cabaiguán, Sancti    Spíritus, perteneciente al Instituto de Investigaciones del Tabaco, entre los    años 2012 y 2014. Las semillas de SS-96 se colectaron a los 14, 21, 28, 35,    42, 49 y 56 días después de la antesis (DDA) y se les determinó masa fresca    y masa seca de 1000 semillas, porcentaje de humedad (base masa fresca) y potencia    germinativa (PG), además de evaluar su tolerancia a la desecación. Al mismo    tiempo, semillas de cada día de colecta se conservaron a 5 ºC o en nitrógeno    líquido y, transcurridos 30 días, les fue evaluada su PG y se sometieron a las    pruebas de envejecimiento acelerado y pérdida de electrólitos. Durante el desarrollo    de la investigación se determinó que la madurez fisiológica de las semillas    de SS-96 se alcanza a los 29,6 DDA, con un contenido de agua de 30,6 % y masa    seca de 1000 semillas de 81,2 mg. Se estableció 35 DDA como el momento idóneo    para la colecta de semillas en este cultivar. Una colecta antes de esta fecha    provoca una disminución en la tolerancia a la desecación producto de la inmadurez    de las semillas; una recolección posterior conlleva a la pérdida de vigor debido    a la mayor exposición de las semillas a las condiciones ambientales. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> antesis, conservaci&oacute;n, desecaci&oacute;n, vigor.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The main objective    of this investigation was to determine the effect of the ripening in the cryopreservation    of the <em>Nicotiana tabacum</em> L seeds. cv Sancti Spíritus 96 (SS-96). This    study was done between the years 2012 and 2014, at the Tobacco experimental    station located in Cabaiguan, Sancti Spiritus. SS-96 seeds were harvest at the    14, 21, 28, 35, 42, 49 and 56 days after the anthesis (DAA), determining the    fresh and dry mass to over 1000 seeds, the humidity percentage (fresh mass)    and germinating power (GP), as well as evaluate the tolerance of it to desiccation.    At the same time, seeds collected every day, were conserved in 5 ºC or liquid    nitrogen, and within 30 days, its GP was evaluated and put under accelerated    aging and electrolyte leakage tests. During the research it was determined that    the physiological ripeness of SS-96 seeds is reached at 29,6 DAA, with a 30,6    % of water and a dry mass of 1000 seeds of 81,2 mg of weight. 35 DAA were established    as the optimum momentum for the harvest. The anticipation of the recollection    process will end up in a diminishing the desiccation tolerance levels due to    the lack of ripeness of seeds; meanwhile a late recollection ends up in lack    of potency due to a larger exposure to the environment.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    anthesis, conservation, desiccation, vigor.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La colecci&oacute;n    de Nicotiana, presente en el banco de germoplasma del Instituto de Investigaciones    del Tabaco de Cuba, progresa constantemente con nuevas variedades y especies    (1). Conservar a largo plazo la variabilidad gen&eacute;tica del g&eacute;nero    es de vital importancia con el fin de introducir genes de valor en las variedades    comerciales (2) y reconstruir o reforzar las poblaciones <em>in situ</em></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nA">A</a><a name="nA1"></a></sup></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">.        ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Desde la d&eacute;cada de los 80 del pasado siglo, a nivel mundial se han realizado    varias investigaciones en la crioconservaci&oacute;n como alternativa a los    m&eacute;todos tradicionales de almacenamiento de semillas (3, 4). Las t&eacute;cnicas    de crioconservaci&oacute;n utilizan normalmente nitr&oacute;geno l&iacute;quido    (–196 &ordm;C) debido a su costo relativamente bajo. El objetivo es alcanzar    temperaturas inferiores a –130 &ordm;C para lograr condiciones de baja energ&iacute;a    cin&eacute;tica molecular y una difusi&oacute;n extremadamente lenta, de tal    forma que las reacciones qu&iacute;micas se encuentren pr&aacute;cticamente    paralizadas (5); bajo estas condiciones, se postulan longevidades extremadamente    largas (3).    <br>       <br>   Basados en experimentos de almacenamiento llevados durante 10 a&ntilde;os y    a partir de la ecuaci&oacute;n de viabilidad, Walters et al (3). pronosticaron    una viabilidad de 3,400 a&ntilde;os para semillas de lechuga conservadas a -196    &ordm;C. Por consiguiente, la crioconservaci&oacute;n puede ser de gran utilidad    en la conservaci&oacute;n de las colecciones bases y duplicado en los bancos    de germoplasmas de semillas, sin dejar de lado las condiciones cl&aacute;sicas,    &uacute;tiles para el almacenamiento a corto plazo (colecci&oacute;n activa)    (5).    <br>       <br>   Se ha demostrado desde los a&ntilde;os 60 del pasado siglo que la diversidad    gen&eacute;tica puede ser preservada en los bancos de germoplasma. En el nuevo    siglo la pregunta cambia de &uml;si&uml; es viable a &uml;c&oacute;mo&uml; optimizar    el proceso de conservaci&oacute;n (6). La madurez con que se colectan y conservan    las semillas se identifica como determinante en su longevidad (7, 8, 9). El    objetivo de la investigaci&oacute;n estuvo dirigido a determinar el efecto de    la madurez en la germinaci&oacute;n y el vigor de semillas crioconservadas de    <em>Nicotiana tabacum</em> L.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El estudio se    realiz&oacute; en la Estaci&oacute;n Experimental del Tabaco de Cabaigu&aacute;n,    perteneciente al Instituto de Investigaciones del Tabaco de Cuba, durante las    campa&ntilde;as tabacaleras 2012-2013 y 2013-2014. Para la realizaci&oacute;n    de la investigaci&oacute;n se seleccion&oacute; la accesi&oacute;n <em>Nicotiana    tabacum</em> Linnaeus cultivar Sancti Sp&iacute;ritus 96 (SS-96). Este cultivar    presenta alto potencial productivo (2 906 kg ha<sup>-1</sup>), magn&iacute;fica    calidad (444 kg ha<sup>-1</sup>, en clases superiores) y excelente combustibilidad    (&gt;20 s). Es uno de los cultivares m&aacute;s plantados en la regi&oacute;n    central y oriental del pa&iacute;s (10).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Las semillas de SS-96 se sembraron en bandejas de polietileno expandido con    sustrato org&aacute;nico con composici&oacute;n seg&uacute;n investigacines    anteriores (11), basadas en la tecnolog&iacute;a de producci&oacute;n de posturas    en bandejas flotantes descrita por Garc&iacute;a y Andino (12). El trasplante    de las posturas al campo se realiz&oacute; a los 45 d&iacute;as. La distancia    de plantaci&oacute;n fue de 30 cm entre plantas y 180 cm entre hileras, y la    fertilizaci&oacute;n, riego y cuidados fitosanitarios se realizaron seg&uacute;n    lo establecido por el instructivo t&eacute;cnico del cultivo (13). La colecta    se realiz&oacute; a intervalos de siete d&iacute;as, a los 14, 21, 28, 35, 42,    49 y 56 d&iacute;as despu&eacute;s de la antesis (DDA). Para cada d&iacute;a    de colecta se determin&oacute; masa fresca y masa seca de 1000 semillas.    <br>       <br>   Los ensayos de humedad se realizaron empleando el m&eacute;todo de secado al    horno a temperatura baja constante (14), a una temperatura de 103 &deg;C durante    4 h con tres repeticiones de 0,5 g de semillas cada una. El contenido de humedad    se expres&oacute; en porcentaje de masa fresca.    <br>       <br>   En los ensayos de germinaci&oacute;n se realizaron cuatro repeticiones de 100    semillas cada una. Las semillas se colocaron en placas Petri de 9 cm de di&aacute;metro    sobre dos discos de papel de filtro humedecidos con 5 mL de agua destilada.    La incubaci&oacute;n se realiz&oacute; a 27&plusmn;2 &ordm;C con un fotoperiodo    de 12 h y una intensidad de 350 &micro;mol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup>. En    todos los ensayos la emergencia de la rad&iacute;cula fue el criterio para considerar    que la germinaci&oacute;n de la semilla hab&iacute;a tenido lugar. La potencia    germinativa (PG) se determin&oacute; a los 14 d&iacute;as despu&eacute;s de    embebidas las semillas, al contar el n&uacute;mero de semillas germinadas durante    ese intervalo de tiempo entre el total de semillas (14).    <br>       <br>   Para evitar los da&ntilde;os de imbibici&oacute;n, previo a los ensayos de germinaci&oacute;n,    las semillas con m&aacute;s de 35 DDA se humidificaron dispers&aacute;ndolas    de manera uniforme en placas Petri sin tapa. Seguidamente, se introdujeron en    una desecadora de vidrio con H<sub>2</sub>O en su interior, evitando el contacto    directo de las semillas con el agua. Las semillas se incubaron bajo estas condiciones    hasta alcanzar un contenido de humedad superior al 14 %.    <br>       <br>   Con el prop&oacute;sito de ilustrar el papel de la s&iacute;ntesis de determinados    metabolitos en la tolerancia a la desecaci&oacute;n de semillas de SS-96 se    evalu&oacute; para cada d&iacute;a de colecta los valores de PG medidos solo    despu&eacute;s de deshidratar las semillas hasta valores de 10,0; 7,5; 5,0 y    2,5 % de humedad. La deshidrataci&oacute;n se realiz&oacute; mediante la exposici&oacute;n    al agente desecante silicagel autoindicador, en desecadoras de vidrio cerradas    herm&eacute;ticamente a temperatura ambiente, en proporci&oacute;n 1:3 (masa    de semillas: masa silicagel autoindicador). El tiempo de exposici&oacute;n al    agente desecante estuvo determinado por la intensidad de la desecaci&oacute;n    requerida.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Para determinar el efecto del momento de colecta en la germinaci&oacute;n y    el vigor de las semillas crioconservadas de SS-96 muestras de semillas colectadas    a los diferentes DDA se dividieron en dos porciones de igual masa. Una porci&oacute;n    se introdujo directamente en una c&aacute;mara de refrigeraci&oacute;n a 5 &ordm;C    (no crioconservadas) y la otra en tanques con nitr&oacute;geno l&iacute;quido    (crioconservadas). Transcurridos 30 d&iacute;as los crioviales se retiraron    y se dej&oacute; que la temperatura estuviera en equilibrio con la temperatura    ambiente. A cada muestra se les determin&oacute; su PG y se sometieron a las    pruebas de envejecimiento acelerado (EA) y escape de electr&oacute;litos (EE).    <br>       <br>   Para la realizaci&oacute;n de las pruebas de EA y EE las semillas fueron previamente    acondicionadas. Seg&uacute;n el porcentaje de humedad, las semillas se secaron    o hidrataron hasta alcanzar un 14 % de humedad. La prueba de EA se realiz&oacute;    seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por P&eacute;rez-Rodr&iacute;guez</font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nB">B</a><a name="nB1"></a></sup></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">.    El ensayo se realiz&oacute; hasta disminuir la germinaci&oacute;n a un valor    inferior al 50 % de la PG inicial. Entonces, para cada intervalo se calcul&oacute;    el tiempo transcurrido para que cada muestra alcanzara el 50 % de la germinaci&oacute;n    inicial (T50) (15). La prueba de EE se realiz&oacute; con algunas modificaciones    (16). Para cada muestra se colocaron cuatro repeticiones con 0,15 g de semillas    cada una en 35 ml de agua desionizada a 30&plusmn;0,5 &ordm;C. Los lixiviados    se recogieron despu&eacute;s de 24 h de imbibici&oacute;n y la conductividad    se midi&oacute; con un medidor de conductividad.    <br>       <br>   En el procesamiento estad&iacute;stico de los datos se utiliz&oacute; el <em>Statistical    Package for Social Sciences</em> (17). Se comprob&oacute; el ajuste a la distribuci&oacute;n    normal de los datos de cada tratamiento (Kolmogorov-Smirnov) y la homogeneidad    de las varianzas (Levene). Se realiz&oacute; un An&aacute;lisis de Varianza    (ANOVA) para determinar las posibles diferencias significativas entre las medias    y para discriminar entre estas se utiliz&oacute; el procedimiento de diferencia    honestamente significativa (HSD) de Tukey. En algunos casos fue necesaria la    transformaci&oacute;n de los datos para lograr los supuestos de las pruebas    param&eacute;tricas realizadas. Cada tabla y figura de la secci&oacute;n Resultados    y Discusi&oacute;n describe el tratamiento estad&iacute;stico espec&iacute;fico    ejecutado.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Durante la fase    inicial de desarrollo de las semillas de SS-96 la humedad desciende r&aacute;pidamente    (<a href="#f1">Figura 1</a>), desde 61 % a los 14 DDA hasta valores inferiores    al 11 % a los 35 DDA; aunque entre los 28 DDA y 35 DDA este descenso se hace    m&aacute;s acentuado. La masa seca de 1000 semillas (MS-1000) aumenta de forma    aproximadamente lineal. Sin embargo, a partir de los 35 DDA tanto la MS-1000    como la humedad tienden a permanecer constantes; comportamiento que se mantiene    hasta los 56 DDA. Las semillas alcanzan su madurez fisiol&oacute;gica (MF) a    los 30 DDA, determinada seg&uacute;n procedimiento descrito por Sanhew y Ellis    (18), con humedad de 28 % y MS-1000 de 81 mg (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0113s116.gif">Figura    1</a>). A partir de ese momento la masa seca tiende a permanecer pr&aacute;cticamente    constante hasta los 56 DDA.</font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f1"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/f0113s116.gif" width="409" height="486">    </font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Las variables    cuantitativas referidas se correlacionan con el estado de desarrollo de semillas    ortodoxas dicotiledoneas en otras especies (19). Existe relaci&oacute;n entre    la ganancia de masa seca, la humedad y la PG con el estado o etapa de desarrollo    de la semilla<font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup><a href="#nC">C</a><a name="nC1"></a></sup></font></font>.    Por lo tanto, es posible relacionar con cierta aproximaci&oacute;n el desarrollo    morfol&oacute;gico de semillas de SS-96, con los valores obtenidos de estas    variables, analizadas en conjunto.    <br>       <br>   En el estado inicial de desarrollo (hasta los 14 DDA), existe un aumento progresivo    de la masa seca, producto de la formaci&oacute;n del embri&oacute;n. No obstante,    las semillas no poseen las reservas necesarias para germinar (20), raz&oacute;n    por la cual la PG de las semillas de SS-96 frescas, las no crioconservadas y    las crioconservadas, fue cero (<a href="f2">Figura 2</a>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f2"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/f0213s116.gif" width="427" height="483">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Al avanzar el    estudio, la PG de las semillas frescas se incrementa significativamente hacia    los 21 DDA. Resultado similar muestran las semillas no crioconservadas, aunque    en este caso la germinaci&oacute;n alcanza valores significativamente superiores    solo a partir de los 28 DDA (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0213s116.gif">Figura    2</a>).     
<br>   Sin embargo, la semilla crioconservada presenta un comportamiento diferente    en la primera parte del estudio al compararla con los dem&aacute;s tratamientos    analizados (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0213s116.gif">Figura 2</a>).    Mientras que para las semillas frescas y las no crioconservadas se incrementa    r&aacute;pidamente la PG a     
<br>   partir de los 14 DDA, la germinaci&oacute;n de las crioconservadas apenas alcanza    un 10,5 % a los 28 DDA y solo toma valores semejantes a los restantes tratamientos    a partir de los 35 DDA.    <br>       <br>   Las semillas inmaduras carecen de metabolitos indispensables en su longevidad    durante la conservaci&oacute;n (Ej: prote&iacute;nas LEA ) (21, 22), &aacute;cidos    ribonucleicos mensajeros (ARN<sub>m</sub>), requeridos para la s&iacute;ntesis    de prote&iacute;nas durante el proceso de germinaci&oacute;n y az&uacute;cares    (9)). La baja concentraci&oacute;n de estos metabolitos en estad&iacute;os tempranos    de desarrollo de las semillas de SS-96 pudiera ser el origen del descenso en    la PG durante los 30 d&iacute;as de almacenamiento de la semilla no crioconservada    al compararla con la semilla fresca, ambas colectadas a los 21 DDA.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Asimismo, la causa principal de la menor PG de las semillas crioconservadas    pudiera estar relacionada con el alto porcentaje de humedad todav&iacute;a presente    en ellas al alcanzar los 28 DDA. Los cristales de hielo, formados principalmente    durante el descongelamiento despu&eacute;s de la exposici&oacute;n al NL (9),    por su conformaci&oacute;n espacial, causan da&ntilde;os en las membranas celulares.    Adem&aacute;s, al ocurrir el desplazamiento del agua para la formaci&oacute;n    de hielo extracelular, la concentraci&oacute;n intracelular de soluto se eleva    paulatinamente y pone en peligro el funcionamiento a nivel celular (7, 23).    <br>       <br>   Las semillas de SS-96 poco despu&eacute;s de alcanzar la madurez fisiol&oacute;gica    (30 DDA), sufren una acelerada p&eacute;rdida de agua. En esta etapa la conexi&oacute;n    vascular con la planta madre disminuye (24), con lo cual el porcentaje de humedad    en la semilla desciende r&aacute;pidamente hasta alcanzar el equilibrio con    la humedad del ambiente (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0113s116.gif">Figura    1</a>). Esta tolerancia a la desecaci&oacute;n se correlaciona en otras especies    con la presencia de prote&iacute;nas LEA (21, 22) y de az&uacute;cares (9, 16).    Las LEA, son un grupo de prote&iacute;nas altamente hidrof&iacute;licas que    se acumulan en semillas durante los estados finales de la formaci&oacute;n del    embri&oacute;n (9, 25, 26) y que junto a az&uacute;cares como la rafinosa y    trealosa juegan un papel importante en la formaci&oacute;n intracelular del    estado v&iacute;treo y en la protecci&oacute;n de las membranas celulares (9,    21, 22).     
<br>       <br>   El estado vitreo posee caracter&iacute;sticas similares a las de un s&oacute;lido,    como son la disminuci&oacute;n del movimiento molecular, pero con las propiedades    de un l&iacute;quido (9). Debido a que la viscosidad del citoplasma al vitrificar    es extremadamente alta, se evita la fusi&oacute;n entre sistemas de membranas    y cambios conformacionales en las prote&iacute;nas. Adem&aacute;s, se reduce    considerablemente la velocidad de las reacciones de envejecimiento y la formaci&oacute;n    de cristales de hielo (23, 25). Esta es la causa fundamental por la cual la    PG alcanza valores significativamente superiores para todos los tratamientos    a partir de los 35 DDA.    <br>       <br>   Por otro lado, al ser desecada la semilla colectada a los 21 DDA hasta un 10    % de humedad disminuye significativamente su PG, la cual desciende abruptamente    al continuar el secado hasta valores de 7,5 y 5 % y se hace nula al ser desecada    de forma extrema a 2,5 % (<a href="#f3">Figura 3</a>). Sin embargo, para la    semilla colectada a los 28 DDA el descenso de la PG solo se hace significativa    al desecar hasta un 5 % y para la colectada a los 35 DDA no hubo diferencias    significativas en su PG, incluso a valores de humedad de 2,5 %. Resultados similares    a los 35 DDA se obtienen al desecar mediante el mismo procedimiento ilustrado    en la <a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0313s116.gif">Figura 3</a> a las    semillas colectadas a los 42, 49 y 56 DDA.</font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f3"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/f0313s116.gif" width="403" height="480">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Este resultado    est&aacute; en estrecha relaci&oacute;n con los valores de MS-1000 y humedad    mostrados en la <a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0113s116.gif">Figura    1</a>. Varios de los compuestos sintetizados en la semilla durante esta etapa    (entre los 30 DDA y 35 DDA para semillas de SS-96), adem&aacute;s de su correspondencia    con la adquisici&oacute;n de la tolerancia a la desecaci&oacute;n, se vinculan    con una mayor longevidad de las semillas durante su almacenamiento (15, 20).    As&iacute;, considerando los tratamientos evaluados, no es posible una colecta    adecuada de la semilla antes de los 35 DDA, sin tomar una semilla inmadura,    que durante el almacenamiento a largo plazo pierda de forma temprana su viabilidad.    
]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   A pesar de lo antes expuesto, no es posible seleccionar el mejor momento de    colecta posterior a los 35 DDA tomando como base los resultados de MS-1000,    humedad, PG y tolerancia a la desecaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0113s116.gif">Figuras    1</a>, <a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0213s116.gif">2</a> y <a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0313s116.gif">3</a>).    Se utilizaron indicadores de vigor como discriminantes al predecir la influencia    de las condiciones de conservaci&oacute;n en la longevidad de las semillas (16,    18). En el presente estudio el vigor fue evaluado mediante las pruebas EE y    EA (16, 18).    
<br>       <br>   Las pruebas de envejecimiento acelerado pueden brindar, en intervalos cortos    de tiempo, informaci&oacute;n valiosa sobre las condiciones de conservaci&oacute;n    m&aacute;s adecuadas para lograr mayor longevidad en las semillas de una especie    dada (27). En la <a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0413s116.gif">Figura    4</a> se observa un m&iacute;nimo en la conductividad de los lixiviados y un    aumento del tiempo para alcanzar el 50 % de la germinaci&oacute;n inicial (T50)    de semillas de SS-96 hacia los 35 DDA. Los 35 DDA constituyen la primera medici&oacute;n    realizada en el estudio a las semillas de SS-96 despu&eacute;s de adquirir estas    la MF. Adem&aacute;s, al alcanzar este estado de desarrollo la humedad de las    semillas se reduce hasta valores inferiores al 11 %. Ambos hechos est&aacute;n    en concordancia con una mayor integridad de las membranas celulares y, por lo    tanto, con el vigor mostrado (23).    
<br>       <br>   Igualmente, es de destacar el aumento en el EE y en la sensibilidad de las semillas    a la prueba de EA posterior a los 35 DDA, tanto las crioconservadas como las    no crioconservadas. Este comportamiento sugiere una p&eacute;rdida de vigor    si las semillas no son colectadas inmediatamente despu&eacute;s de la acelerada    p&eacute;rdida en el contenido de agua, posterior a la MF. Este comportamiento    pudiera ser consecuencia del efecto de una mayor exposici&oacute;n de las semillas    a las condiciones ambientales (elevada temperatura y humedad), las que pudieran    acelerar las reacciones de envejecimiento (16).    <br>       <br>   De forma general, las semillas de SS-96 no crioconservadas tuvieron un mayor    vigor que las crioconservadas. Sin duda, el elevado contenido de humedad presente    en las semillas, muy por encima de lo normado (entre 5 y 7 %) (14), provoca    un aumento en el EE y en la sensibilidad de las semillas a la prueba de EA (24).    Se hace necesario comprobar en futuras investigaciones el efecto del porcentaje    de humedad en la longevidad de las semillas crioconservadas, como un factor    determinante (7, 16, 28).    <br>       <br>   No se tiene conocimiento en la literatura consultada de un estudio de la influencia    de la madurez en la crioconservaci&oacute;n de semillas. Tampoco se encontraron    evidencias de una investigaci&oacute;n semejante, al menos dirigida a la semilla    fresca, en el g&eacute;nero Nicotiana. Sin embargo, comportamiento similar al    mostrado por las semillas frescas de SS-96 durante su desarrollo se report&oacute;    en semillas de frijol (16, 18), arabidopsis (29) y tomate (30). En todos los    casos existe coincidencia que el momento donde la humedad de la semilla alcanza    el equilibrio con la humedad ambiental, posterior a la MF y la p&eacute;rdida    acelerada en el contenido de agua (en la vecindad de los 35 DDA en este estudio),    es el mejor momento para colecta. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p> <ul>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La colecta de      semillas de SS-96 antes de los 35 DDA provoca una disminuci&oacute;n en su      tolerancia a la desecaci&oacute;n y, como consecuencia, un descenso en la      longevidad durante la crioconservaci&oacute;n.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Una recolecci&oacute;n      posterior a los 35 DDA incide de forma negativa en el vigor de la semilla      crioconservada, debido a la mayor exposici&oacute;n a las condiciones ambientales.      </font></li>     </ul>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Nota al    Pie</strong></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="#nA1"><SUP><font size="2">A</font></sup></a><font size="2"><a name="nA"></a></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Bacchetta,    G.; Bueno, A.; Fenu, G.; Jim&eacute;nez-Alfaro, B.; Mattana, E.; Piotto, B.    y Virevaire, M. <em>Conservaci&oacute;n ex situ de plantas silvestres</em>.    edit. Principado de Asturias, La Caixa, 2008, 375 p.    <br>       <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="#nB1"><SUP><font size="2">B</font></sup></a><font size="2"><a name="nB"></a></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">P&eacute;rez,    R. J. L. <em>Crioconservaci&oacute;n de semillas de Nicotiana tabacum cv Sancti    Sp&iacute;ritus 96.</em> [Tesis de Maestr&iacute;a], Universidad de Ciego de    &Aacute;vila M&aacute;ximo G&oacute;mez B&aacute;ez, Ciego de &Aacute;vila,    Cuba, 2014, 70 p.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="#nC1"><SUP><font size="2">C</font></sup></a><font size="2"><a name="nC"></a></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Zhu,    H. <em>The Effect of Drying on Desiccation Tolerance and Late Embryogenesis    Abundant Protein Gene Expression in Immature Seeds of Phalaenopsis amabilis</em>    [en l&iacute;nea]. [Master These], Grand Valley State University, Michigan,    USA, 2014, 714 p., [Consultado:&nbsp;1 de febrero de 2016], Disponible&nbsp;en:    &lt;<a href="http://scholarworks.gvsu.edu/theses/714" target="_blank">http://scholarworks.gvsu.edu/theses/714</a>&gt;.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>BIBLIOGRAF&Iacute;A</strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Torrecilla,    G.; Cabrera, M. y P&eacute;rez-Rodr&iacute;guez, J. L. ‘‘Principales descriptores    para la caracterizaci&oacute;n morfo-agron&oacute;mica del g&eacute;nero <em>Nicotiana</em>’’.    <em>Cuba Tabaco</em>, vol. 13, no. 2, 2012, pp. 44-50, ISSN 0138-7456.    <br>       <!-- ref --><br>   2. Tesfaw, A. y Feyissa, T. ‘‘Current trends in genetic manipulations to enhance    abiotic and biotic stresses in tobacco’’. <em>African Journal of Biotechnology</em>,    vol. 13, no. 21, 2015, pp. 2095-20102, ISSN 1684-5315, DOI 10.4314/ajb.v13i21.    <br>       <br>   3. Walters, C.; Wheeler, L. y Stanwood, P. C. ‘‘Longevity of cryogenically stored    seeds’’. <em>Cryobiology</em>, vol. 48, no. 3, junio de 2004, pp. 229-244, ISSN    0011-2240, DOI 10.1016/j.cryobiol.2004.01.007.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   4. Veiga-Barbosa, L.; Mira, S.; Gonz&aacute;lez-Benito, M. E.; Souza, M. M.;    Meletti, L. M. M. y P&eacute;rez-Garc&iacute;a, F. ‘‘Seed germination, desiccation    tolerance and cryopreservation of<em> Passiflora species</em>’’. <em>Seed Science    and Technology</em>, vol. 41, no. 1, 1 de abril de 2013, pp. 89-97, ISSN 0251-0952,    1819-5717, DOI 10.15258/sst.2013.41.1.08.    <br>       <br>   5. Cejas, I.; Vives, K.; Laudat, T.; Gonz&aacute;lez-Olmedo, J.; Engelmann,    F.; Mart&iacute;nez-Montero, M. E. y Lorenzo, J. C. ‘‘Effects of cryopreservation    of<em> Phaseolus vulgaris</em> L. seeds on early stages of germination’’.<em>    Plant Cell Reports</em>, vol. 31, no. 11, 28 de julio de 2012, pp. 2065-2073,    ISSN 0721-7714, 1432-203X, DOI 10.1007/s00299-012-1317-x.    <br>       <!-- ref --><br>   6. Walters, C. ‘‘Optimising seed banking procedures’’. En: Smith R. D., <em>Seed    Conservation: Turning Science Into Practice</em>, edit. Royal Botanic Gardens,    Kew, 2003, pp. 725-743, ISBN 978-1-84246-052-8.    <br>       <br>   7. Walters, C.; Ballesteros, D. y Vertucci, V. A. ‘‘Structural mechanics of    seed deterioration: Standing the test of time’’. <em>Plant Science</em>, vol.    179, no. 6, diciembre de 2010, (ser. Translational Seed Biology: From Model    Systems to Crop Improvement), pp. 565-573, ISSN 0168-9452, DOI 10.1016/j.plantsci.2010.06.016.    <br>       <!-- ref --><br>   8. Rajjou, L.; Duval, M.; Gallardo, K.; Catusse, J.; Bally, J.; Job, C. y Job,    D. ‘‘Seed Germination and Vigor’’. <em>Annual Review of Plant Biology</em>,    vol. 63, no. 1, 2012, pp. 507-533, ISSN 1545-2123, 1543-5008, DOI 10.1146/annurev-arplant-042811-105550,    PMID: 22136565.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   9. Verdier, J.; Lalanne, D.; Pelletier, S.; Torres-Jerez, I.; Righetti, K.;    Bandyopadhyay, K.; Leprince, O.; Chatelain, E.; Vu, B. L.; Gouzy, J.; Gamas,    P.; Udvardi, M. K. y Buitink, J. ‘‘A Regulatory Network-Based Approach Dissects    Late Maturation Processes Related to the Acquisition of Desiccation Tolerance    and Longevity of <em>Medicago truncatula</em> Seeds’’. <em>Plant Physiology</em>,    vol. 163, no. 2, 1 de octubre de 2013, pp. 757-774, ISSN 1532-2548, DOI 10.1104/pp.113.222380,    PMID: 23929721.    <br>       <!-- ref --><br>   10. Pino, A. L. ‘‘Sancti Spiritus 96 &laquo;Variedad de tabaco negro resistente    al moho azul (<em>Peronospora hyoscyami</em> de bary f. sp. tabacina), a la    pata prieta (<em>Phytophthora nicotianae</em> breda de hann), al virus del mosaico    del tabaco (tmv) y su hom&oacute;logo androest&eacute;ril Sancti Spiritus 96&raquo;’’.    <em>Cuba Tabaco</em>, vol. 8, no. 2, 2007, pp. 58-59, ISSN 0138-7456.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Hern&aacute;ndez, Y.; Le&oacute;n, Y.; Hern&aacute;ndez, J. M. y Monroy,    A. L. ‘‘Nuevos sustratos para la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas de tabaco    en semilleros flotantes’’. <em>Cuba Tabaco</em>, vol. 5, no. 2, 2004, pp. 15-19,    ISSN 0138-7456.    <br>       <!-- ref --><br>   12. Garc&iacute;a, M. y Andino, V. ‘‘Tecnolog&iacute;a de bandejas flotantes    en la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas de tabaco en Cuba’’. <em>Cuba Tabaco</em>,    vol. 3, no. 1, 2002, pp. 30-33, ISSN 0138-7456.    <br>       <br>   13. Espino, E. M.; Uriarte, B. E.; Cordero, P. L.; Rodr&iacute;guez, N.; Izquierdo,    A.; Blanco, L. E.; Hern&aacute;ndez, J. M.; Quintana, G.; Ben&iacute;tez, O.;    Ibizate, J. y D&iacute;az, M. <em>Instructivo t&eacute;cnico para el cultivo    del tabaco en Cuba.</em> edit. Instituto de Investigaciones del Tabaco, Artemisa,    Cuba, 2012, 147 p., ISBN 978-959-7212-07-2.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   14. Engels, J. M. M. y Visser, L. <em>Gu&iacute;a para el manejo eficaz de un    banco de germoplasma</em>. (ser. Manuales de Bioversity para Bancos de Germoplasma,    no. ser. 6), edit. Bioversity International, 2007, 209 p., ISBN 978-92-9043-767-3.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Pu, X.; Huang, Y. F.; Pan, C. L.; Yao, L.; Ai, X. R. y Deng, Z. J. ‘‘Effects    of temperature, light, desiccation and cold storage on germination of Sophora    tonkinensis (Leguminosae) seeds’’. <em>African Journal of Biotechnology</em>,    vol. 14, no. 12, 2015, pp. 1015-1019, ISSN 1684-5315, DOI 10.4314/ajb.v14i12.    <br>       <br>   16. Bailly, C.; Audigier, C.; Ladonne, F.; Wagner, M. H.; Coste, F.; Corbineau,    F. y C&ocirc;me, D. ‘‘Changes in oligosaccharide content and antioxidant enzyme    activities in developing bean seeds as related to acquisition of drying tolerance    and seed quality’’. <em>Journal of Experimental Botany</em>, vol. 52, no. 357,    15 de abril de 2001, pp. 701-708, ISSN 0022-0957, 1460-2431, DOI 10.1093/jexbot/52.357.701,    PMID: 11413206.    <br>       <br>   17. <em>IBM SPSS Statistics</em> [en l&iacute;nea]. versi&oacute;n 20, [Windows],    edit. IBM Corporation, U.S, 2011, Disponible&nbsp;en: &lt;<a href="http://www.ibm.com" target="_blank">http://www.ibm.com</a>&gt;.    <br>       <br>   18. Sanhewe, A. J. y Ellis, R. H. ‘‘Seed development and maturation in <em>Phaseolus    vulgaris</em> I. Ability to germinate and to tolerate desiccation’’. <em>Journal    of Experimental Botany</em>, vol. 47, no. 7, 7 de enero de 1996, pp. 949-958,    ISSN 0022-0957, 1460-2431, DOI 10.1093/jxb/47.7.949.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   19. Jolivet, P.; Boulard, C.; Bellamy, A.; Valot, B.; d’Andr&eacute;a, S.; Zivy,    M.; Nesi, N. y Chardot, T. ‘‘Oil body proteins sequentially accumulate throughout    seed development in <em>Brassica napus</em>’’. <em>Journal of Plant Physiology</em>,    vol. 168, no. 17, 15 de noviembre de 2011, pp. 2015-2020,     <br>   ISSN 0176-1617, DOI 10.1016/j.jplph.2011.06.007.    <br>       <br>   20. Sumathi, S. y Srimathi, P. ‘‘Seed development and maturation studies in    Chinese medicinal plant babchi (<em>Psoralea corylifolia</em>)’’. <em>Seed Science    and Technology</em>, vol. 43, no. 1, 1 de abril de 2015, pp. 80-89, ISSN 0251-0952,    1819-5717, DOI 10.15258/sst.2015.43.1.09.    <br>       <br>   21. Delahaie, J.; Hundertmark, M.; Bove, J.; Leprince, O.; Rogniaux, H. y Buitink,    J. ‘‘LEA polypeptide profiling of recalcitrant and orthodox legume seeds reveals    ABI3-regulated LEA protein abundance linked to desiccation tolerance’’. <em>Journal    of Experimental Botany</em>, vol. 64, no. 14, 11 de enero de 2013, pp. 4559-4573,    ISSN 0022-0957, 1460-2431, DOI 10.1093/jxb/ert274, PMID: 24043848.    <br>       <br>   22. Liu, Y.; Wang, L.; Jiang, S.; Pan, J.; Cai, G. y Li, D. ‘‘Group 5 LEA protein,    <em>ZmLEA5C</em>, enhance tolerance to osmotic and low temperature stresses    in transgenic tobacco and yeast’’. <em>Plant Physiology and Biochemistry</em>,    vol. 84, noviembre de 2014, pp. 22-31, ISSN 0981-9428, DOI 10.1016/j.plaphy.2014.08.016.    <br>       <!-- ref --><br>   23. Kaviani, B. ‘‘Conservation of plant genetic resources by cryopreservation’’.    <em>Australian Journal of Crop Science</em>, vol. 5, no. 6, 2011, p. 778, ISSN    1835-2707.    <br>       <br>   24. Sreenivasulu, N. y Wobus, U. ‘‘Seed-Development Programs: A Systems Biology–Based    Comparison Between Dicots and Monocots’’. <em>Annual Review of Plant Biology</em>,    vol. 64, no. 1, 29 de abril de 2013, pp. 189-217, ISSN 1543-5008, 1545-2123,    DOI 10.1146/annurev-arplant-050312-120215.    <br>       <!-- ref --><br>   25. Battaglia, M.; Olvera-Carrillo, Y.; Garciarrubio, A.; Campos, F. y Covarrubias,    A. A. ‘‘The enigmatic LEA proteins and other hydrophilins’’. <em>Plant Physiology</em>,    vol. 148, no. 1, 2008, pp. 6–24, ISSN 0032-0889.    <br>       <br>   26. Chatelain, E.; Hundertmark, M.; Leprince, O.; Gall, S. L.; Satour, P.; Deligny-Penninck,    S.; Rogniaux, H. y Buitink, J. ‘‘Temporal profiling of the heat-stable proteome    during late maturation of Medicago truncatula seeds identifies a restricted    subset of late embryogenesis abundant proteins associated with longevity’’.    <em>Plant, Cell &amp;amp; Environment</em>, vol. 35, no. 8, 1 de agosto de 2012,    pp. 1440-1455, ISSN 1365-3040, DOI 10.1111/j.1365-3040.2012.02501.x.    <br>       <!-- ref --><br>   27. Milosevic, M.; Vujakovic, M. y Karagic, D. ‘‘Vigour tests as indicators    of seed viability’’. <em>Genetika</em>, vol. 42, no. 1, 2010, pp. 103-118, ISSN    0534-0012, DOI 10.2298/GENSR1001103M.    <br>       <br>   28. Treuren, R. van; Groot, E. C. de y Hintum, T. J. L. van. ‘‘Preservation    of seed viability during 25 years of storage under standard genebank conditions’’.    <em>Genetic Resources and Crop Evolution</em>, vol. 60, no. 4, 17 de noviembre    de 2012, pp. 1407-1421, ISSN 0925-9864, 1573-5109, DOI 10.1007/s10722-012-9929-0.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <!-- ref --><br>   29. Locascio, A.; Roig-Villanova, I.; Bernardi, J. y Varotto, S. ‘‘Current perspectives    on the hormonal control of seed development in Arabidopsis and maize: a focus    on auxin’’. <em>Frontiers in Plant Science</em>, vol. 5, 2014, p. 412, ISSN    1664-462X, DOI 10.3389/fpls.2014.00412, PMID: 25202316PMCID: PMC4142864.    <br>       <br>   30. Berry, T. y Bewley, J. D. ‘‘Comparisons between the roles of the fruit tissues,    osmoticum and abscisic acid in maintaining tomato seed development and storage    protein synthesis’’. <em>Seed Science Research</em>, vol. 3, no. 01, marzo de    1993, pp. 25–34, ISSN 1475-2735,    DOI 10.1017/S0960258500001537.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: 15 de    mayo de 2015    <br>   Aceptado: 27 de enero de 2016</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><em><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Juan L. P&eacute;rez-Rodr&iacute;guez,</font></em><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    Estaci&oacute;n Experimental del Tabaco. carretera Santa Luc&iacute;a, km 2,    Cabaigu&aacute;n, CP: 62410, Sancti Sp&iacute;ritus, Cuba. Email: <a href="mailto:espec.banco@eetcab.co.cuAfiliación">espec.banco@eetcab.co.cuAfiliaci&oacute;n</a></font></p>      ]]></body><back>
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