<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0258-5936</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Cultivos Tropicales]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[cultrop]]></abbrev-journal-title>
<issn>0258-5936</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Ediciones INCA]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0258-59362016000500015</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Citotoxicidad de una aspartil peptidasa de Salpichroa origanifolia frente a la infección causada por Phytophthora capsici en zapallitos verdes (Cucurbita maxima, var. Zapallito)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Citotoxic activity of an aspartic peptidase from Salpichroa origanifolia against the infection caused on green zucchini (Cucurbita maxima, var. Zapallito) by Phytophthora capsici]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rocha]]></surname>
<given-names><![CDATA[Gabriela F]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Díaz]]></surname>
<given-names><![CDATA[María E]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rosso]]></surname>
<given-names><![CDATA[Adriana M]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Parisi]]></surname>
<given-names><![CDATA[Mónica G]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Luján Departamento de Ciencias Básicas Laboratorio de Química Biológica]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
<country>Argentina</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,CONICET  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>00</month>
<year>2016</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>00</month>
<year>2016</year>
</pub-date>
<volume>37</volume>
<fpage>111</fpage>
<lpage>117</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0258-59362016000500015&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0258-59362016000500015&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0258-59362016000500015&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Phytophthora capsici es un oomicete patógeno que causa importantes pérdidas en la producción de cultivos de interés agroeconómico. Los agroquímicos utilizados tradicionalmente para combatir estos fitopatógenos causan efectos adversos sobre la salud y el medio ambiente. Las plantas de la flora autóctona representan una fuente alternativa de metabolitos antifúngicos naturales. En nuestro laboratorio hemos estudiado la especie Salpichroa origanifolia, una hierba perenne autóctona del Norte y Centro de Argentina cuyos frutos, en forma de baya ovoide, son comestibles. A partir del extracto crudo de los frutos maduros de esta especie se purificó por cromatografía de intercambio iónico mediante un proceso en batch, una aspartil peptidasa a la cual denominamos salpichroína. El objetivo de este trabajo fue estudiar el efecto antifúngico de la enzima sobre el patógeno P. capsici. Salpichroína presentó un elevado efecto citotóxico sobre P. capsici en los ensayos in vitro, con un valor de CIM de 1,2 µmol L-1. Para evaluar el efecto de la enzima sobre el desarrollo de P. capsici en vegetales, se realizaron bioensayos de inoculación controlada de zapallitos verdes (Cucurbita máxima var Zapallito), observándose que los zapallitos inoculados con salpichroína junto con el fitopatógeno permanecieron asintomáticos durante siete días]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Phytophthora capsici is a phytopathogenic agent that causes significant losses in crops of economic interest. The chemicals traditionally used to fight these pathogens cause adverse effects on health and the environment. Native plants represent an alternative source of natural antifungal metabolites. In our laboratory we have studied a perennial herb, Salpichroa origanifolia, native to the northern and central Argentina whose ovoid fruits are edible berry. An aspartyl peptidase from the crude extract of the ripe fruit of this species was purified by ion exchange chromatography using a batch process. The enzyme was called salpichroín. In this work the antifungal effect of the aspartyl peptidase on P. capsici was studied. It was obtained that salpichroín had a high cytotoxic effect in vitro on strains of P. capsici (MIC: 1.2 µmol L-1). To evaluate the enzyme effect on the development of P. capsici in vivo, inoculation controlled bioassays on green zucchini (Cucurbita maximum var Zapallito) were performed. The fruit inoculated with the phytopathogen and salpichroín remained asymptomatic for seven days]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[fungicidas]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[organismos patógenos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[peptidasas]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[fungicides]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[pathogens]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[peptidase]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Citotoxicidad    de una aspartil peptidasa de <em>Salpichroa origanifolia</em> frente a la infección    causada por <em>Phytophthora capsici</em> en zapallitos verdes (<em>Cucurbita    maxima</em>, var. Zapallito)</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Citotoxic    activity of an aspartic peptidase from <em>Salpichroa origanifolia</em> against    the infection caused on green zucchini (<em>Cucurbita maxima</em>, var. Zapallito)    by <em>Phytophthora capsici</em></strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Dra.C.    Gabriela F. Rocha,<sup>I</sup> Dra.C. María E. Díaz,<sup>I,II</sup> Dra.C. Adriana    M. Rosso,<sup>I</sup> Dra.C. Mónica G. Parisi<sup>I</sup></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Laboratorio    de Química Biológica, Departamento de Ciencias Básicas, Universidad Nacional    de Luján, Argentina.     <br>   <sup>II</sup>CONICET.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Phytophthora    capsici</em> es un oomicete patógeno que causa importantes pérdidas en la producción    de cultivos de interés agroeconómico. Los agroquímicos utilizados tradicionalmente    para combatir estos fitopatógenos causan efectos adversos sobre la salud y el    medio ambiente. Las plantas de la flora autóctona representan una fuente alternativa    de metabolitos antifúngicos naturales. En nuestro laboratorio hemos estudiado    la especie <em>Salpichroa origanifolia</em>, una hierba perenne autóctona del    Norte y Centro de Argentina cuyos frutos, en forma de baya ovoide, son comestibles.    A partir del extracto crudo de los frutos maduros de esta especie se purificó    por cromatografía de intercambio iónico mediante un proceso en batch, una aspartil    peptidasa a la cual denominamos salpichroína. El objetivo de este trabajo fue    estudiar el efecto antifúngico de la enzima sobre el patógeno <em>P. capsici</em>.    Salpichroína presentó un elevado efecto citotóxico sobre <em>P. capsici</em>    en los ensayos<em> in vitro</em>, con un valor de CIM de 1,2 µmol L<sup>-1</sup>.    Para evaluar el efecto de la enzima sobre el desarrollo de <em>P. capsici</em>    en vegetales, se realizaron bioensayos de inoculación controlada de zapallitos    verdes (<em>Cucurbita máxima</em> var Zapallito), observándose que los zapallitos    inoculados con salpichroína junto con el fitopatógeno permanecieron asintomáticos    durante siete días. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> fungicidas, organismos pat&oacute;genos, peptidasas.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Phytophthora    capsici</em> is a phytopathogenic agent that causes significant losses in crops    of economic interest. The chemicals traditionally used to fight these pathogens    cause adverse effects on health and the environment. Native plants represent    an alternative source of natural antifungal metabolites. In our laboratory we    have studied a perennial herb, <em>Salpichroa origanifolia</em>, native to the    northern and central Argentina whose ovoid fruits are edible berry. An aspartyl    peptidase from the crude extract of the ripe fruit of this species was purified    by ion exchange chromatography using a batch process. The enzyme was called    salpichroín. In this work the antifungal effect of the aspartyl peptidase on    <em>P. capsici</em> was studied. It was obtained that salpichroín had a high    cytotoxic effect <em>in vitro</em> on strains of <em>P. capsici</em> (MIC: 1.2    µmol L<sup>-1</sup>). To evaluate the enzyme effect on the development of <em>P.    capsici</em> in vivo, inoculation controlled bioassays on green zucchini (<em>Cucurbita    maximum</em> var Zapallito) were performed. The fruit inoculated with the phytopathogen    and salpichroín remained asymptomatic for seven days. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    fungicides, pathogens, peptidase.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los hongos fitopat&oacute;genos    son la principal causa de enfermedades infecciosas en las plantas. El control    de estos hongos con fungicidas sint&eacute;ticos es a&uacute;n la medida fitot&eacute;cnica    m&aacute;s importante para aumentar los rendimientos de los cultivos. Sin embargo,    la utilizaci&oacute;n masiva y a veces indiscriminada de estos productos ha    incrementado la resistencia de los organismos fitopat&oacute;genos adem&aacute;s    de provocar efectos adversos en la salud humana y el medio ambiente (1). En    este marco se plantea como esencial la b&uacute;squeda de agentes antimicrobianos    m&aacute;s seguros que puedan sustituir o disminuir el actual uso de agroqu&iacute;micos.    El desarrollo de una agricultura sostenible ha llevado a investigadores de todo    el mundo a buscar nuevos compuestos para el control de enfermedades cuya actividad    y seguridad ambiental sea adecuada (2). En este sentido, se est&aacute;n evaluando    alternativas naturales, entre las cuales se encuentra el uso de extractos vegetales.    Con estos extractos se han obtenido resultados prometedores ya que se ha demostrado    la actividad antimicrobiana de diferentes extractos de plantas <em>in vitro</em>    e <em>in vivo</em> (3, 4, 5).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Las plantas han desarrollado un sofisticado sistema inmune innato en respuesta    a los pat&oacute;genos invasores. Es as&iacute; como la defensa de las plantas    implica una variedad de mecanismos celulares entre los que podemos mencionar    la generaci&oacute;n r&aacute;pida de especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS),    la inducci&oacute;n de la respuesta hipersensible (HR) y la producci&oacute;n    de mol&eacute;culas peque&ntilde;as (fitoalexinas) y prote&iacute;nas con actividad    antimicrobiana. Tambi&eacute;n se ha descripto la inducci&oacute;n de genes    que codifican endopeptidasas con distintos mecanismos catal&iacute;ticos (6,    7). Las peptidasas ciste&iacute;nicas est&aacute;n involucradas en muchos aspectos    del desarrollo y fisiolog&iacute;a de las plantas incluyendo senescencia, embriog&eacute;nesis,    desarrollo de flores y respuesta a distintos tipos de estr&eacute;s ambiental    (8). Adem&aacute;s, la acci&oacute;n farmacol&oacute;gica de las peptidasas    ciste&iacute;nicas de plantas ha sido reconocida en investigaciones como potenciales    drogas para combatir enfermedades bacterianas y f&uacute;ngicas (9, 10). Por    otro lado, las peptidasas asp&aacute;rticas (APs) de origen vegetal han sido    descriptas como una parte fundamental del mecanismo de defensa de las plantas    frente a la infecci&oacute;n por microorganismos pat&oacute;genos (11).    <br>       <br>   En nuestro laboratorio hemos estudiado la especie <em>Salpichroa origanifolia</em>,    una hierba perenne aut&oacute;ctona del Norte y Centro de Argentina, Uruguay    y Brasil. Los frutos de esta especie tienen forma de baya ovoide, son comestibles    y com&uacute;nmente llamados huevitos de gallo. En extractos crudos de los frutos    maduros se encontr&oacute; una peptidasa. A partir de dicho extracto se purific&oacute;    por cromatograf&iacute;a de intercambio ani&oacute;nico y caracteriz&oacute;    esta AP a la cual denominamos salpichro&iacute;na (12).    <br>       <br>   Por otra parte, se ha descrito que el oomicete <em>P. capsici</em> causa la    putrefacci&oacute;n y tiz&oacute;n tard&iacute;o de una gran variedad de hu&eacute;spedes,    incluidos muchos de los miembros de la familia Solanaceae y Cucurbitaceae as&iacute;    como Fabaceae. Entre los cultivos de inter&eacute;s agroecon&oacute;mico afectados    se encuentran los cultivos de papa, de batata, de tomate, de pimiento, de berenjena    y de zapallitos. Es por ello, que el presente trabajo tuvo como objetivo determinar    la actividad citot&oacute;xica de la AP purificada a partir de frutos maduros    de S. origanifolia frente a la infecci&oacute;n causada por     <br>   <em>P. capsici</em> en zapallitos verdes (<em>Cucurbita maxima</em>, var. Zapallito).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Material    vegetal:</strong> Como fuente de enzimas proteol&iacute;ticas se emplearon los    frutos maduros de la especie <em>Salpichroa origanifolia</em> (Lam.) Baill.    recolectados en la localidad de Luj&aacute;n, provincia de Buenos Aires, Rep&uacute;blica    de Argentina. El fruto maduro es una baya ovoide, blanda, de color blanquecino    y sabor dulce.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   <strong>Preparaci&oacute;n del extracto crudo:</strong> Los frutos se trituraron    con etanol a -8&ordm;C. El precipitado se resuspendi&oacute; en buffer fosfato    de potasio 50 mM de pH 7,0 (4&deg;C) y se obtuvo un extracto al 15% (p/V). Esta    preparaci&oacute;n enzim&aacute;tica se denomin&oacute; extracto crudo (EC).    <br>       <br>   <strong>Determinaci&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica:</strong> La    determinaci&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica fue realizada utilizando    case&iacute;na como sustrato (13). La reacci&oacute;n se inici&oacute; con el    agregado de 100 &micro;L de la soluci&oacute;n enzim&aacute;tica a 900 &micro;L    de soluci&oacute;n de case&iacute;na al 0,5 % (p/V) en buffer fosfato de potasio    50 mM de pH 6,0 y luego de 15 minutos de incubaci&oacute;n a 40 &deg;C, la reacci&oacute;n    se detuvo con el agregado de 1 mL de TCA al 5 % (p/V). La suspensi&oacute;n    se dej&oacute; en reposo durante 20 minutos en ba&ntilde;o de hielo y luego    fue centrifugada durante 10 min a 14000 rpm. Se midi&oacute; la absorbancia    del sobrenadante a 280 nm para determinar los p&eacute;ptidos solubles obtenidos    por digesti&oacute;n proteol&iacute;tica. La Unidad de actividad caseinol&iacute;tica    (Ucas) fue definida como la cantidad de enzima necesaria para producir un incremento    de una unidad de absorbancia por minuto a 280 nm en las condiciones del ensayo.    <br>       <br>   <strong>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas:</strong>    La concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas fue estimada por el m&eacute;todo    de Bradford (14) empleando alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina como est&aacute;ndar    para la construcci&oacute;n de la curva de calibraci&oacute;n.    <br>       <br>   P<strong>urificaci&oacute;n de la AP:</strong> La purificaci&oacute;n se llev&oacute;    a cabo mediante cromatograf&iacute;a de intercambio ani&oacute;nico con una    resina de DEAE-Sepharose Fast Flow (Sigma) equilibrada en buffer fosfato de    potasio 50 mM de pH 7,0. Las prote&iacute;nas fueron eluidas con un gradiente    lineal de NaCl (0,0-0,6 M) con un flujo constante de 1 mL min<sup>-1</sup>.    La fracci&oacute;n activa fue desalada por cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n    molecular con resinas de Sephadex G-10 y almacenada a -20 &deg;C para posteriores    ensayos. La fracci&oacute;n activa elu&iacute;da de la columna cromatogr&aacute;ficas    fue analizada por SDS-PAGE en geles de poliacrilamida (15 %), en condiciones    reductoras y no reductoras y a temperatura ambiente (15). Los geles fueron te&ntilde;idos    con Coomassie Brilliant Blue R-250 (CBB R-250) y con plata (16). En la electroforesis    SDS-PAGE se emplearon patrones de bajo peso molecular (Low Molecular Weight    Range Sigma Marker producto N&deg; 3913M). Para los zimogramas se aplic&oacute;    la t&eacute;cnica de Kleiner y Stetler-Stevenson (17). Despu&eacute;s de la    corrida electrofor&eacute;tica, el gel se incub&oacute; durante la noche en    buffer de citrato de sodio (pH 4,0) con CaCl2 20 mM a 40 &deg;C. Luego del lavado,    el gel se ti&ntilde;&oacute; con CBB R-250 para el an&aacute;lisis de zimograf&iacute;a.    El desarrollo de una banda clara en el fondo azul del gel indic&oacute; la presencia    de actividad de la peptidasa.    <br>       <br>   <strong>Actividad antif&uacute;ngica<em> in vitro</em>:</strong> El fitopat&oacute;geno    empleado en este estudio (<em>P. capsici</em>) fue aislado y caracterizado por    el grupo de investigaci&oacute;n de Fitopatolog&iacute;a de la Universidad Nacional    de Luj&aacute;n, a partir de vegetales de producci&oacute;n local, de la zona    Noreste de la provincia de Buenos Aires. Para determinar la actividad antif&uacute;ngica    de salpichro&iacute;na, discos de agar de 0,5 cm de di&aacute;metro con crecimiento    de micelio de la cepa f&uacute;ngica estudiada fueron incubados con salpichro&iacute;na    (2,4 &micro;mol L<sup>-1</sup>), buffer fosfato de sodio 50 mM de pH 7,0 o agua    durante 24 horas. Los discos de agar fueron luego colocaron en placas de Petri    que conten&iacute;an medio V8 (34 % de jugo de ocho vegetales V8<sup>&reg;</sup>    y 3 % de agar) espec&iacute;fico para el crecimiento de <em>P. capsici</em>.    Se coloc&oacute; un disco de agar por placa y los ensayos se realizaron por    duplicado. Las placas fueron incubadas a temperatura ambiente durante diez d&iacute;as.    Al cabo de tres y diez d&iacute;as se control&oacute; el efecto inhibitorio    de la enzima sobre el crecimiento del micelio de la especie f&uacute;ngica.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   La concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) se defini&oacute; como    la concentraci&oacute;n m&iacute;nima de salpichro&iacute;na que produjo total    inhibici&oacute;n en el crecimiento de P. capsici. Para ello, se incub&oacute;    un disco de agar de 0,5 cm de di&aacute;metro con crecimiento de micelio de    la cepa f&uacute;ngica con distintas concentraciones de la enzima (0,0- 0,6-    1,2- 2,4 &micro;mol L-1) en medio l&iacute;quido V8 (10 %) a 25&deg;C durante    48 horas. La CIM se determin&oacute; visualmente y correspondi&oacute; a la    menor concentraci&oacute;n de salpichro&iacute;na en la que no hubo desarrollo    miceliar del oomicete.    <br>       <br>   <strong>Inoculaci&oacute;n controlada del fitopat&oacute;geno <em>P. capsici</em>    sobre zapallitos verdes: </strong>Para evaluar el efecto de salpichro&iacute;na    sobre el desarrollo de P.capsici en vegetales se realizaron bioensayos de inoculaci&oacute;n    controlada. Se emplearon zapallitos verdes (<em>Curcubita m&aacute;xima</em>    var Zapallito), adquiridos en comercios de la ciudad de Luj&aacute;n, Bs As.    En primer lugar se lav&oacute; cuidadosamente la superficie del vegetal con    agua, para no producir lesiones. Se hicieron heridas de 3 mm de profundidad    en la regi&oacute;n ecuatorial del vegetal con una aguja de disecci&oacute;n    est&eacute;ril para favorecer la infecci&oacute;n. El bioensayo consisti&oacute;    en colocar un disco de agar del medio de cultivo V8 con micelio de <em>P. capsici</em>    en activo crecimiento sobre la herida realizada en la piel de los zapallitos    limpios. Sobre el cultivo se coloc&oacute; 50 &micro;L de una soluci&oacute;n    est&eacute;ril de salpichro&iacute;na (2,4 &micro;mol L<sup>-1</sup>) o el mismo    volumen de agua est&eacute;ril para el caso del control positivo. Para los controles    negativos se usaron discos de agar est&eacute;ril, sin enzima ni el pat&oacute;geno.    Para cada tratamiento se hicieron tres r&eacute;plicas y el ensayo completo    se repiti&oacute; dos veces. Todos los vegetales fueron incubados a 25 &ordm;C    en c&aacute;mara h&uacute;meda y con luz alternada.    <br>       <br>   El desarrollo de la infecci&oacute;n se evalu&oacute; diariamente desde los    dos d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n y durante siete d&iacute;as,    registr&aacute;ndose como el porcentaje de heridas infectadas por r&eacute;plica    y calculando la media y la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar para cada tratamiento.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Aislamiento    y caracterizaci&oacute;n de la enzima pura</strong>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Se prepar&oacute; un EC de frutos maduros de <em>Salpichroa origanifolia</em>    cuya concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas fue de 0,5 mg mL<sup>-1</sup>    y con una actividad proteol&iacute;tica de 145 Ucas mL<sup>-1</sup>. Si bien    en trabajos previos se realiz&oacute; la purificaci&oacute;n de la enzima mediante    un sistema FPLC (12), en este trabajo la purificaci&oacute;n a partir del EC    se realiz&oacute; en batch utilizando una cromatograf&iacute;a de intercambio    ani&oacute;nico con una resina DEAE-Sepharose. Esta t&eacute;cnica permiti&oacute;    obtener una mayor biomasa de enzima pura necesaria para ser utilizada en los    ensayos de inhibici&oacute;n microbiana. En el perfil cromatogr&aacute;fico    se observaron cinco picos de absorbancia a 280 nm de los cuales s&oacute;lo    uno present&oacute; actividad caseinol&iacute;tica (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0115s116.gif">Figura    1A</a>). La fracci&oacute;n activa obtenida fue analizada por electroforesis    SDS-PAGE en condiciones reductoras y no reductoras. Se observ&oacute; una &uacute;nica    banda con peso molecular aparente de 32 kDa cuando la muestra se prepar&oacute;    en condiciones no reductoras (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0115s116.gif">Figura    1B</a>, calle 2). No se observaron diferencias en el perfil electrofor&eacute;tico    cuando la muestra se prepar&oacute; en condiciones reductoras y calentadas a    90&deg;C (dato no mostrado). La pureza de la enzima fue evaluada tambi&eacute;n    por electroforesis nativa y se observ&oacute; la presencia de una &uacute;nica    banda proteica (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0115s116.gif">Figura    1B</a>, calle 4). De la misma manera, en el zimograma correspondiente se observ&oacute;    una &uacute;nica banda con movilidad relativa similar a la obtenida en el gel,    indicando la homogeneidad de la enzima purificada.     
<br>       <br>   De acuerdo con los resultados obtenidos en los ensayos electrofor&eacute;ticos,    se estim&oacute; el peso molecular de la enzima salpichro&iacute;na en 32 kDa,    valor que es del mismo orden que el obtenido para otras APs de origen vegetal    como las APs de tomate (37 kDa) (18) y tabaco (36-40 kDa) (19), la AP de papa    (38 kDa) (20) y la AP de Ficus racemosa (44 kDa) (21).    <br>       <br>   <strong>Actividad antif&uacute;ngica de salpichro&iacute;na    <br>   </strong>     <br>   Se ha informado en la bibliograf&iacute;a la presencia de m&uacute;ltiples actividades    biol&oacute;gicas asociadas a las peptidasas, entre ellas la actividad antif&uacute;ngica.    Se encontr&oacute; que la bromelina purificada a partir de los tallos de pi&ntilde;a    era un potente inhibidor de pat&oacute;genos f&uacute;ngicos de plantas y que    esa actividad estaba asociada a su actividad proteol&iacute;tica (7). Por otra    parte se inform&oacute; que la actividad antif&uacute;ngica de las APs de papa    estaba relacionada con la presencia del PSI en la enzima madura (22). Por este    motivo se inici&oacute; el estudio de la actividad antif&uacute;ngica de salpichro&iacute;na.        <br>   En primer lugar se evalu&oacute; el efecto inhibidor de la enzima sobre el desarrollo    miceliar de <em>P. capsici</em> (secci&oacute;n Materiales y M&eacute;todos).    En los ensayos microbiol&oacute;gicos, se encontr&oacute; que la enzima ejerc&iacute;a    un fuerte efecto citot&oacute;xico sobre cepas de <em>P. capsici</em> ya que    no se observ&oacute; desarrollo del micelio luego de la incubaci&oacute;n en    la soluci&oacute;n enzim&aacute;tica durante los diez d&iacute;as del ensayo    (<a href="#f2">Figura 2</a>). Como era de esperar, se observ&oacute; desarrollo    del micelio de las cepas en las placas que conten&iacute;an los discos sumergidos    en agua y en buffer.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f2"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/f0215s116.gif" width="421" height="504">    </font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Estos resultados    son coincidentes con los informados por otros autores (22) para las APs de hoja    y tub&eacute;rculos de papa, StAP1 y StAP3, las cuales mostraban acci&oacute;n    fungicida frente a <em>Phytophthora infestans</em> y <em>Fusarium solani</em>,    plagas que infectan los cultivos de papa. Adem&aacute;s, comprobaron que la    actividad antif&uacute;ngica de StAp1 y StAP3 estaba relacionada con la presencia    del PSI, dominio espec&iacute;fico de las APs, que presenta alta homolog&iacute;a    estructural con las prote&iacute;nas del tipo saposinas (SAPLIPs) y que act&uacute;a    desestabilizando la membrana fosfolip&iacute;dica del oomicete, provocando la    formaci&oacute;n de poros y la p&eacute;rdida de viabilidad celular del pat&oacute;geno    (22).    <br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   De esta forma, la actividad fungicida de salpichro&iacute;na podr&iacute;a deberse    a la potencial presencia del dominio PSI en su forma activa.    <br>   Comprobada la actividad citot&oacute;xica de la enzima sobre <em>P. capsici</em>,    se determin&oacute; la CIM de salpichro&iacute;na sobre el crecimiento <em>in    vitro</em> del microorganismo (<a href="#f3">Figura 3</a>). El valor de la CIM    fue de 1,2 &micro;mol L<sup>-1</sup>, el cual es del mismo orden que los valores    de CIM informados para StAP1 y StAP3 sobre <em>P. infestans</em> (22).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f3"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v37s1/f0315s116.gif" width="400" height="375">    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> En base a estos    resultados podemos inferir que salpichro&iacute;na presenta interesantes propiedades    antimicrobianas sobre el crecimiento<em> in vitro</em> del fitopat&oacute;geno    <em>P. capsici</em>, oomicete que genera grandes p&eacute;rdidas en la producci&oacute;n    de vegetales como zapallitos, pimientos y berenjenas entre otros.    <br>       <br>   Con el fin de comprobar la actividad citot&oacute;xica<em> in vivo</em> de la    enzima, se llevaron a cabo experimentos de inoculaci&oacute;n controlada de    salpichro&iacute;na sobre zapallitos verdes infectados por <em>P. capsici</em>.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   El bioensayo consisti&oacute; en colocar un disco de agar con micelio de <em>P.    capsici</em> en activo crecimiento en la piel de zapallitos limpios. Sobre el    cultivo se coloc&oacute; una soluci&oacute;n est&eacute;ril de salpichroina    (2,4 &micro;mol L<sup>-1</sup>) o el mismo volumen de agua est&eacute;ril para    el caso del control positivo. Para los controles negativos se us&oacute; solo    un disco de agar sin ning&uacute;n tratamiento previo. Se incub&oacute; a 25    &deg;C en c&aacute;mara h&uacute;meda durante siete d&iacute;as y se registr&oacute;    la severidad de la lesi&oacute;n. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n se    observaron signos de patogenicidad sobre todos los controles positivos.     <br>   Las muestras tomadas de la superficie de dichos frutos confirmaron que se trataba    de <em>P. capsici</em> debido a la presencia de esporangios con pedicelos t&iacute;picamente    largos (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0415s116.gif">Figura 4 A</a>).    
<br>       <br>   Los zapallitos sobre cuyos in&oacute;culos fue colocada la soluci&oacute;n de    enzima no presentaron signos de infecci&oacute;n y al igual que los controles    negativos permanecieron asintom&aacute;ticos (<a href="/img/revistas/ctr/v37s1/f0415s116.gif">Figura    4 B</a>). Este comportamiento se repiti&oacute; en todas las r&eacute;plicas    del ensayo.    
<br>       <br>   De acuerdo a estos resultados, la aspartil peptidasa salpichro&iacute;na aislada    de frutos maduros de <em>S. origanifolia</em>, podr&iacute;a controlar la infecci&oacute;n    de <em>P. capsici</em> sobre zapallitos verdes, en la etapa de poscosecha.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>CONCLUSIONES</strong></font></p> <ul>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Debido a que      el control de hongos fitopat&oacute;genos con fungicidas sint&eacute;ticos      ha incrementado la resistencia de estos organismos, se est&aacute;n evaluando      alternativas naturales como extractos vegetales. Se han obtenido resultados      prometedores ya que se ha demostrado la actividad antimicrobiana de diferentes      extractos de plantas<em> in vitro</em> e<em> in vivo</em>. En particular,      se ha demostrado que las peptidasas de origen vegetal poseen actividad antimicrobiana.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> En este trabajo      hemos purificado una AP de frutos maduros de <em>S. origanifolia</em> por      cromatograf&iacute;a de intercambio i&oacute;nico mediante un proceso en batch.      Adem&aacute;s, hemos demostrado que la enzima purificada (salpichro&iacute;na)      presenta un efecto citot&oacute;xico sobre el fitopat&oacute;geno <em>Phytophthora      capsici</em> ya que inhibe su crecimiento. Esto se pudo demostrar tanto <em>in      vitro</em> como <em>in vivo</em>, realizando ensayos de inoculaci&oacute;n      controlada sobre zapallitos verdes.</font></li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> A partir de      estos resultados podemos afirmar que salpichro&iacute;na puede controlar la      infecci&oacute;n de <em>P. capsici</em> sobre zapallitos verdes, probablemente      por la actividad antif&uacute;ngica del PSI de las APs que puede interaccionar      con la membrana celular del oomicete provocando la p&eacute;rdida de viabilidad      celular. </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Estos resultados      son muy promisorios ya que la b&uacute;squeda de compuestos naturales de origen      vegetal para el control de plagas que afectan cultivos de importancia agroalimentaria      es un tema de inter&eacute;s social y econ&oacute;mico.</font></li>     </ul>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>AGRADECIMIENTOS</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Los resultados    de este trabajo son parte de la tesis doctoral de la Ing. Gabriela Rocha. Agradecemos    el financiamiento recibido del Departamento de Ciencias B&aacute;sicas de la    Universidad Nacional de Luj&aacute;n, del Programa de Subsidios para Investigaci&oacute;n    de la Comisi&oacute;n de Investigaciones Cient&iacute;ficas de la Provincia    de Buenos Aires (CIC 2013) y del Programa de Redes Internacionales de la Secretar&iacute;a    de Pol&iacute;ticas Universitarias del Ministerio de Educaci&oacute;n de la    Rep&uacute;blica Argentina.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <font size="3"><strong>BIBLIOGRAF&Iacute;A</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Hahn, M. ‘‘The    rising threat of fungicide resistance in plant pathogenic fungi: <em>Botrytis</em>    as a case study’’. <em>Journal of Chemical Biology</em>, vol. 7, no. 4, 28 de    mayo de 2014, pp. 133-141, ISSN 1864-6158, 1864-6166, DOI 10.1007/s12154-014-0113-1.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   2. Villa, M. A.; P&eacute;rez, L. R.; Morales, M. H. A.; Basurto, S. M.; Soto,    P. J. M. y Mart&iacute;nez, E. E. ‘‘Situaci&oacute;n actual en el control de    <em>Fusarium</em> spp. y evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica    de extractos vegetales’’. <em>Acta Agron&oacute;mica</em>, vol. 64, no. 2, 2014,    pp. 194–205, ISSN 2323-0118.    <br>       <!-- ref --><br>   3. Valenzuela, N. L.; Nieto &Aacute;ngel, D.; T&eacute;liz Ortiz, D.; Alatorre    Rosas, R.; Orozco Santos, M. y Ortiz Garc&iacute;a, C. F. ‘‘Antifungal potential    of extracts from four vegetables species on the growth of <em>Colletotrichum    gloeosporioides</em> in postharvest papaya (<em>Carica papaya</em>)’’. <em>Revista    Venezolana de Ciencia y Tecnolog&iacute;a de Alimentos</em>, vol. 4, no. 1,    2013, pp. 47-62, ISSN 2218-4384, CABDirect2.    <br>       <!-- ref --><br>   4. B&aacute;lint, J.; Tur&oacute;czi, B.; M&aacute;th&eacute;, I.; Benedek,    K.; Szab&oacute;, K.-A. y Balog, A. ‘‘<em>In vitro</em> and <em>in vivo</em>    effect of poplar bud (<em>Populi gemma</em>) Extracts on late blight (<em>Phytophthora    infestans</em>)’’. <em>Acta Universitatis Sapientiae, Agriculture and Environment</em>,    vol. 6, no. 1, 2014, pp. 5–12, ISSN 2068-2964, DOI 10.2478/ausae-2014-0007.    <br>       <!-- ref --><br>   5. Ramaiah, A. K. y Garampalli, R. K. H. ‘‘In vitro antifungal activity of some    plant extracts against <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>Lycopersici</em>’’.    <em>Asian Journal of Plant Science and Research</em>, vol. 5, no. 1, 2015, pp.    22–27, ISSN 2249-7412.    <br>       <br>   6. Kervinen, J. ‘‘Phytepsin’’. En: Barrett A. J., Woessner J. F., y Rawlings    N. D., <em>Handbook of Proteolytic Enzymes</em>, edit. Elsevier, 2 de diciembre    de 2012, pp. 118-124, ISBN 978-0-08-098415-5.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   7. L&oacute;pez-Garc&iacute;a, B.; Hern&aacute;ndez, M. y Segundo, B. S. ‘‘Bromelain,    a cysteine protease from pineapple (<em>Ananas comosus</em>) stem, is an inhibitor    of fungal plant pathogens’’. <em>Letters in Applied Microbiology</em>, vol.    55, no. 1, 1 de julio de 2012, pp. 62-67, ISSN 1472-765X, DOI 10.1111/j.1472-765X.2012.03258.x.    <br>       <br>   8. Barrett, A. J.; Woessner, J. F. y Rawlings, N. D. <em>Handbook of Proteolytic    Enzymes</em>. edit. Elsevier, 2 de diciembre de 2012, 1182 p., ISBN 978-0-08-098415-5.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Seenivasan, R.; Roopa, L. y Geetha, S. ‘‘Investigations on purification,    characterization and antimicrobial activity of enzyme papain from <em>Carica    papaya</em> Linn’’. <em>Journal of Pharmacy Research</em>, vol. 3, no. 5, 2010,    pp. 1092-1095, ISSN 0974-6943, CABDirect2.    <br>       <br>   10. Ramos, M. V.; Souza, D. P.; Gomes, M. T. R.; Freitas, C. D. T.; Carvalho,    C. P. S.; J&uacute;nior, P. a. V. R. y Salas, C. E. ‘‘A Phytopathogenic Cysteine    Peptidase from Latex of Wild Rubber Vine <em>Cryptostegia grandiflora</em>’’.    <em>The Protein Journal</em>, vol. 33, no. 2, 5 de marzo de 2014, pp. 199-209,    ISSN 1572-3887, 1573-4943, DOI 10.1007/s10930-014-9551-4.    <br>       <br>   11. Breitenbach, H. H.; Wenig, M.; Wittek, F.; Jord&aacute;, L.; Maldonado-Alconada,    A. M.; Sarioglu, H.; Colby, T.; Knappe, C.; Bichlmeier, M.; Pabst, E.; Mackey,    D.; Parker, J. E. y Vlot, A. C. ‘‘Contrasting Roles of the Apoplastic Aspartyl    Protease <em>APOPLASTIC, ENHANCED DISEASE SUSCEPTIBILITY1</em>-DEPENDENT1 and    LEGUME LECTIN-LIKE PROTEIN1 in Arabidopsis Systemic Acquired Resistance,’’.    <em>Plant Physiology</em>, vol. 165, no. 2, 1 de junio de 2014, pp. 791-809,    ISSN, 1532-2548, DOI 10.1104/pp.114.239665, PMID: 24755512.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   12. Rocha, G. F.; Obregon, W. D.; Munoz, F.; Guevara, M. G.; Fernandez, G.;    Rosso, A. M. y Parisi, M. G. ‘‘Isolation and characterization of an Aspartic    Protease from <em>Salpichroa origanifolia</em> Fruits’’. <em>Protein and peptide    letters</em>, vol. 22, no. 4, 2015, pp. 379–390,     <br>   ISSN 0929-8665.    <br>       <br>   13. Parisi, M. G.; Moreno, S. y Fern&aacute;ndez, G. ‘‘Isolation and characterization    of a dual function protein from <em>Allium sativum</em> bulbs which exhibits    proteolytic and hemagglutinating activities’’. <em>Plant Physiology and Biochemistry</em>,    vol. 46, no. 4, abril de 2008, pp. 403-413, ISSN 0981-9428, DOI 10.1016/j.plaphy.2007.11.003.    <br>       <br>   14. Bradford, M. M. ‘‘A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram    quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding’’. <em>Analytical    Biochemistry</em>, vol. 72, no. 1, 7 de mayo de 1976, pp. 248-254, ISSN 0003-2697,    DOI 10.1016/0003-2697(76)90527-3.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Laemmli, U. K. ‘‘Cleavage of structural proteins during the assembly of    the head of bacteriophage T4’’.<em> Nature</em>, vol. 227, no. 5259, 1970, pp.    680–685, ISSN 0028-0836.    <br>       <br>   16. Blum, H.; Beier, H. y Gross, H. J. ‘‘Improved silver staining of plant proteins,    RNA and DNA in polyacrylamide gels’’. <em>Electrophoresis</em>, vol. 8, no.    2, 1 de enero de 1987, pp. 93-99, ISSN 1522-2683, DOI 10.1002/elps.1150080203.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   17. Kleiner, D. E. y Stetlerstevenson, W. G. ‘‘Quantitative Zymography: Detection    of Picogram Quantities of Gelatinases’’. Analytical Biochemistry, vol. 218,    no. 2, 1 de mayo de 1994, pp. 325-329, ISSN 0003-2697, DOI 10.1006/abio.1994.1186.    <br>       <!-- ref --><br>   18. Rodrigo, I.; Vera, P. y Conejero, V. ‘‘Degradation of tomato pathogenesis-related    proteins by an endogenous 37-kDa aspartyl endoproteinase’’. <em>European Journal    of Biochemistry</em>, vol. 184, no. 3, 1989, pp. 663–669, ISSN 0014-2956.    <br>       <br>   19. Rodrigo, I.; Vera, P.; Loon, L. C. V. y Conejero, V. ‘‘Degradation of Tobacco    Pathogenesis-Related Proteins Evidence for Conserved Mechanisms of Degradation    of Pathogenesis-Related Proteins in Plants’’. <em>Plant Physiology</em>, vol.    95, no. 2, 2 de enero de 1991, pp. 616-622, ISSN 1532-2548, DOI 10.1104/pp.95.2.616,    PMID: 16668027.    <br>       <br>   20. Guevara, M. G.; Oliva, C. R.; Machinandiarena, M. y Daleo, G. R. ‘‘Purification    and properties of an aspartic protease from potato tuber that is inhibited by    a basic chitinase’’. <em>Physiologia Plantarum</em>, vol. 106, no. 2, 1 de junio    de 1999, pp. 164-169, ISSN 1399-3054, DOI 10.1034/j.1399-3054.1999.106203.x.    <br>       <br>   21. Devaraj, K. B.; Gowda, L. R. y Prakash, V. ‘‘An unusual thermostable aspartic    protease from the latex of <em>Ficus racemosa</em> (L.)’’. <em>Phytochemistry</em>,    vol. 69, no. 3, febrero de 2008, pp. 647-655, ISSN 0031-9422, DOI 10.1016/j.phytochem.2007.09.003.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   22. Mu&ntilde;oz, F.; Palomares-Jerez, M. F.; Daleo, G.; Villala&iacute;n, J.    y Guevara, M. G. ‘‘Possible mechanism of structural transformations induced    by StAsp-PSI in lipid membranes’’. <em>Biochimica et Biophysica Acta (BBA) -    Biomembranes</em>, vol. 1838, no. 1, Part B, enero de 2014, pp. 339-347, ISSN    0005-2736, DOI 10.1016/j.bbamem.2013.08.004.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Recibido: 15 de    mayo de 2015    <br>   Aceptado: 15 de septiembre de 2015</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Dra.C. Gabriela    F. Rocha,</em><strong> </strong>Laboratorio de Química Biológica, Departamento    de Ciencias Básicas, Universidad Nacional de Luján, Argentina. </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Email:    <a href="mailto:grocha@unlu.edu.ar">grocha@unlu.edu.ar</a></font></p>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hahn]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘The rising threat of fungicide resistance in plant pathogenic fungi: Botrytis as a case study‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Chemical Biology]]></source>
<year>2014</year>
<volume>7</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>133-141</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Villa]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pérez]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Morales]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. H. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Basurto]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Soto]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. J. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Situación actual en el control de Fusarium spp. y evaluación de la actividad antifúngica de extractos vegetales‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Acta Agronómica]]></source>
<year>2014</year>
<volume>64</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>194-205</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Valenzuela]]></surname>
<given-names><![CDATA[N. L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nieto Ángel]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Téliz Ortiz]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Alatorre Rosas]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Orozco Santos]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ortiz García]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. F.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Antifungal potential of extracts from four vegetables species on the growth of Colletotrichum gloeosporioides in postharvest papaya (Carica papaya)‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Venezolana de Ciencia y Tecnología de Alimentos]]></source>
<year>2013</year>
<volume>4</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>47-62</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bálint]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Turóczi]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Máthé]]></surname>
<given-names><![CDATA[I.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Benedek]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Szabó]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.-A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Balog]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘In vitro and in vivo effect of poplar bud (Populi gemma) Extracts on late blight (Phytophthora infestans)‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Acta Universitatis Sapientiae, Agriculture and Environment]]></source>
<year>2014</year>
<volume>6</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>5-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ramaiah]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Garampalli]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. K. H.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘In vitro antifungal activity of some plant extracts against Fusarium oxysporum f. sp. Lycopersici‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Asian Journal of Plant Science and Research]]></source>
<year>2015</year>
<volume>5</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>22-27</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kervinen]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Phytepsin‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Handbook of Proteolytic Enzymes]]></source>
<year>2012</year>
<page-range>118-124</page-range><publisher-name><![CDATA[Elsevier]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[López-García]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Segundo]]></surname>
<given-names><![CDATA[B. S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Bromelain, a cysteine protease from pineapple (Ananas comosus) stem, is an inhibitor of fungal plant pathogens‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Letters in Applied Microbiology]]></source>
<year>2012</year>
<volume>55</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>62-67</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Barrett]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Woessner]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rawlings]]></surname>
<given-names><![CDATA[N. D.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Handbook of Proteolytic Enzymes]]></source>
<year>2012</year>
<page-range>1182</page-range><publisher-name><![CDATA[Elsevier]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Seenivasan]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Roopa]]></surname>
<given-names><![CDATA[L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Geetha]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Investigations on purification, characterization and antimicrobial activity of enzyme papain from Carica papaya Linn‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Pharmacy Research]]></source>
<year>2010</year>
<volume>3</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>1092-1095</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ramos]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Souza]]></surname>
<given-names><![CDATA[D. P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gomes]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. T. R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Freitas]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. D. T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Carvalho]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. P. S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Júnior]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. a. V. R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Salas]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘A Phytopathogenic Cysteine Peptidase from Latex of Wild Rubber Vine Cryptostegia grandiflora‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[The Protein Journal]]></source>
<year>2014</year>
<volume>33</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>199-209</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Breitenbach]]></surname>
<given-names><![CDATA[H. H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wenig]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wittek]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jordá]]></surname>
<given-names><![CDATA[L.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Maldonado-Alconada]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sarioglu]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Colby]]></surname>
<given-names><![CDATA[T.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Knappe]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bichlmeier]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pabst]]></surname>
<given-names><![CDATA[E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mackey]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Parker]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vlot]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Contrasting Roles of the Apoplastic Aspartyl Protease APOPLASTIC, ENHANCED DISEASE SUSCEPTIBILITY1-DEPENDENT1 and LEGUME LECTIN-LIKE PROTEIN1 in Arabidopsis Systemic Acquired Resistance,‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiology]]></source>
<year>2014</year>
<volume>165</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>791-809</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rocha]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Obregon]]></surname>
<given-names><![CDATA[W. D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Munoz]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Guevara]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernandez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rosso]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Parisi]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Isolation and characterization of an Aspartic Protease from Salpichroa origanifolia Fruits‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Protein and peptide letters]]></source>
<year>2015</year>
<volume>22</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>379-390</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Parisi]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Moreno]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Isolation and characterization of a dual function protein from Allium sativum bulbs which exhibits proteolytic and hemagglutinating activities‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiology and Biochemistry]]></source>
<year>2008</year>
<volume>46</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>403-413</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bradford]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Analytical Biochemistry]]></source>
<year>1976</year>
<volume>72</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>248-254</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Laemmli]]></surname>
<given-names><![CDATA[U. K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Nature]]></source>
<year>1970</year>
<volume>227</volume>
<numero>5259</numero>
<issue>5259</issue>
<page-range>680-685</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Blum]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Beier]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gross]]></surname>
<given-names><![CDATA[H. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Improved silver staining of plant proteins, RNA and DNA in polyacrylamide gels‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Electrophoresis]]></source>
<year>1987</year>
<volume>8</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>93-99</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kleiner]]></surname>
<given-names><![CDATA[D. E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Stetlerstevenson]]></surname>
<given-names><![CDATA[W. G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Quantitative Zymography: Detection of Picogram Quantities of Gelatinases‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Analytical Biochemistry]]></source>
<year>1994</year>
<volume>218</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>325-329</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rodrigo]]></surname>
<given-names><![CDATA[I.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vera]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Conejero]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Degradation of tomato pathogenesis-related proteins by an endogenous 37-kDa aspartyl endoproteinase‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[European Journal of Biochemistry]]></source>
<year>1989</year>
<volume>184</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>663-669</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rodrigo]]></surname>
<given-names><![CDATA[I.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vera]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Loon]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. C. V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Conejero]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Degradation of Tobacco Pathogenesis-Related Proteins Evidence for Conserved Mechanisms of Degradation of Pathogenesis-Related Proteins in Plants‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Physiology]]></source>
<year>1991</year>
<volume>95</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>616-622</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Guevara]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Oliva]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Machinandiarena]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Daleo]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. R.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Purification and properties of an aspartic protease from potato tuber that is inhibited by a basic chitinase‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Physiologia Plantarum]]></source>
<year>1999</year>
<volume>106</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>164-169</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Devaraj]]></surname>
<given-names><![CDATA[K. B.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gowda]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. R.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Prakash]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘An unusual thermostable aspartic protease from the latex of Ficus racemosa (L.)‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytochemistry]]></source>
<year>2008</year>
<volume>69</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>647-655</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Muñoz]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Palomares-Jerez]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. F.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Daleo]]></surname>
<given-names><![CDATA[G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Villalaín]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Guevara]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. G.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="nd"><![CDATA[‘‘Possible mechanism of structural transformations induced by StAsp-PSI in lipid membranes‘‘]]></article-title>
<source><![CDATA[Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes]]></source>
<year>2014</year>
<volume>1838</volume>
<numero>1, Part B</numero>
<issue>1, Part B</issue>
<page-range>339-347</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
