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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la morfología de los embriones somáticos en la regeneración de plantas de soya (Glycine max L. Merrill)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The established protocols for plant regeneration via somatic embryogenesis in soybean (Glycine max L. Merrill) are specific to a small number of cultivar, requiring new studies to provide more efficient and reproducible protocols in a large number of genotypes. This work had as objective to determine the effect of the morphology type of somatic embryos on the germination and plant conversion in soybean cultivar &#699;Incasoy-27&#700;. Mature somatic embryos were used with different morphologies types that were placed in germination medium. At 30 days the somatic embryos number with complete or partial germination by morphology type was quantified. In the conversion phase it was determined to the 10 days of cultivation the survival percentage of the regenerated plants and it was carried out a morphological characterization of the regenerated plants in comparison with the obtained plants of seeds. It was achieved at 74,38 % of somatic embryos germinated with normal and abnormal morphology. The percentage of survival of regenerated plants reached 70,0 % efficiency. The progeny obtained from the regenerated plants of somatic embryos were morphologically similar to the control plants. The results from this research show that it is possible to allow regeneration of whole plants through somatic embryogenesis in soybean Cuban cultivar &#699;Incasoy-27&#700;]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">Efecto  de la morfolog&iacute;a de los embriones som&aacute;ticos en la regeneraci&oacute;n de plantas de  soya (<em>Glycine max</em> L. Merrill)</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">Effect of the somatic embryos  morphology on plant</span></strong><strong><span style="line-height:107%; font-size:13.0pt; "> </span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">regeneration  of soybean (<em>Glycine max</em> L. Merrill)</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Jorge  L.</span></strong> <span style="line-height:107%; font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> </span><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">P&eacute;rez-P&eacute;rez</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,<sup>I, II</sup> Lourdes Garc&iacute;a-Rodr&iacute;guez,<sup>II</sup> Novisel Veit&iacute;a-Rodr&iacute;guez,<sup>II</sup> Idalmis Berm&uacute;des-Caraballoso,<sup>II</sup> Ra&uacute;l Collado-L&oacute;pez,<sup>II</sup> Damaris Torres-Rodr&iacute;guez<sup>II</sup></span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">I</span></sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Centro  de Estudios de Biotecnolog&iacute;a Vegetal. Universidad de Granma. Carretera a</span><span style="line-height:107%; "> </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Manzanillo,  km 17.5, Peralejo, Bayamo, Granma, Cuba.<br />   <br />   <sup>II</sup>Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas. Universidad Central  &ldquo;Marta Abreu&rdquo; de Las Villas, Carretera a Camajuan&iacute; km 5.5, Santa Clara, Villa  Clara, Cuba.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p> <hr />     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">RESUMEN</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los  protocolos establecidos para la regeneraci&oacute;n de plantas v&iacute;a embriog&eacute;nesis  som&aacute;tica en soya (</span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Glycine max </span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">L.  Merrill), son espec&iacute;ficos para un n&uacute;mero  reducido de cultivares, lo que requiere de nuevos estudios que permitan  disponer de protocolos m&aacute;s eficientes y reproducibles en un mayor n&uacute;mero de  genotipos. Este trabajo tuvo como objetivo determinar el efecto  del tipo de morfolog&iacute;a    de los embriones som&aacute;ticos en la germinaci&oacute;n y conversi&oacute;n a planta en soya  cultivar </span><span style="line-height:107%; font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.  Se emplearon embriones som</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&aacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ticos  maduros con diferentes tipos de morfolog</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&iacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">as,  que se colocaron en medio de cultivo de germinaci&oacute;n. A los 30 d&iacute;as, se  cuantific&oacute; el n&uacute;mero de embriones som&aacute;ticos con germinaci&oacute;n completa o parcial  por tipo de morfolog&iacute;a. En la fase de conversi&oacute;n se determin&oacute; a los diez d&iacute;as  de cultivo, el porcentaje de supervivencia de las plantas regeneradas y se  realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de las plantas regeneradas en  comparaci&oacute;n con las plantas obtenidas de semilla bot&aacute;nica. Se logr&oacute; un 74,38 %  de embriones som&aacute;ticos germinados con morfolog&iacute;a normal y anormal. El  porcentaje de supervivencia de las plantas regeneradas alcanz&oacute; el 70,0 % de  eficiencia. La descendencia obtenida      a partir de las plantas regeneradas de embriones som&aacute;ticos, fueron  morfol&oacute;gicamente similares a las plantas control. Los resultados derivados de  esta investigaci&oacute;n permitieron demostrar que es posible la regeneraci&oacute;n de  plantas completas v&iacute;a embriog&eacute;nesis som&aacute;tica en soya cultivar cubano </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.15pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Palabras clave</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> cultivo de tejidos, embriog&eacute;nesis som&aacute;tica<em>,&nbsp;&nbsp; </em>medio de cultivo.</span></p> <hr />     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ABSTRACT</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">The established protocols for plant regeneration via  somatic embryogenesis in soybean (</span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Glycine max</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> L. Merrill) are specific to a small number of  cultivar, requiring new studies to provide more efficient and reproducible  protocols in a large number of genotypes</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. This work had as objective to determine</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">the effect of the  morphology type of somatic embryos on the germination and plant conversion in  soybean cultivar </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. Mature somatic  embryos were used with different morphologies types that were placed in  germination medium. At 30 days the somatic embryos number with complete or  partial germination by morphology type was quantified. In the conversion phase it  was determined to the 10 days of cultivation the survival percentage of the  regenerated plants and it was carried</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">out a morphological characterization of the  regenerated plants in comparison with the obtained plants of seeds. It was  achieved at 74,38 % of somatic embryos germinated with normal and abnormal  morphology. The percentage of survival of regenerated plants reached 70,0 %  efficiency. The progeny obtained from the regenerated plants of somatic embryos  were morphologically similar to the control plants. The results from this  research show that it is possible to allow regeneration of whole plants through  somatic embryogenesis in soybean Cuban cultivar </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Key  words</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> tissue culture, somatic embryogenesis, culture medium.</span></p> <hr />     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:.4pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La  embriog&eacute;nesis som&aacute;tica es un proceso inductivo que permite que c&eacute;lulas  vegetales no cig&oacute;ticas, formen embriones som&aacute;ticos con una estructura bipolar y  sin conexi&oacute;n vascular con el tejido original (1, 2). Adem&aacute;s, debido a la no  fusi&oacute;n de los gametos es posible lograr una alta homogeneidad gen&eacute;tica en las  plantas regeneradas (3).<br />   <br />   </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Esta  v&iacute;a de regeneraci&oacute;n de plantas ha sido implementada de manera eficiente en  diferentes especies; sin embargo, en soya se ha descrito en un n&uacute;mero limitado  de genotipos (4), entre los que destacan los de origen norteamericano, Jack,  Williams y Fayette as&iacute; como los brasile&ntilde;os Bragg y IAS5 (5). Para ello, se  requiere del empleo de reguladores del crecimiento como las auxinas, que  estimulan las c&eacute;lulas con capacidad embriog&eacute;nica e inducen la formaci&oacute;n de los  embriones som&aacute;ticos (1). No obstante, existen evidencias que demuestran que  dentro de las auxinas, el papel protag&oacute;nico le corresponde al &aacute;cido  2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico (2,4-D). Este regulador del crecimiento, permite  inducir una embriog&eacute;nesis som&aacute;tica repetitiva, donde la formaci&oacute;n de los  embriones som&aacute;ticos secundarios tiene un origen unicelular y ocurre a partir de  embriones som&aacute;ticos primarios (6).<br />   <br />     Algunas referencias asocian la formaci&oacute;n de una c&eacute;lula embriog&eacute;nica, con el  2,4-D y los cambios que ocurren en la estructura de la cromatina por metilaci&oacute;n  del </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&aacute;cido desoxirribonucleico</span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> (</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ADN), que conducen a una reprogramaci&oacute;n  gen&oacute;mica en las c&eacute;lulas som&aacute;ticas y se expresan los genes requeridos para la  expresi&oacute;n embriog&eacute;nica (7). Sin embargo, el uso prolongado de altas  concentraciones de 2,4-D en los medios de cultivo de inducci&oacute;n y multiplicaci&oacute;n  de embriones som&aacute;ticos en soya, puede conllevar a la aparici&oacute;n de diversos  tipos de morfolog&iacute;as anormales durante la fase de maduraci&oacute;n, que afecta la  eficiencia de la germinaci&oacute;n y conversi&oacute;n a planta (8). <br />   <br />       Algunos autores han encontrado aberraciones e inestabilidad cromos&oacute;mica en  embriones som&aacute;ticos de soya, atribuido a los reguladores de crecimiento durante  el cultivo <em>in vitro </em>(9)<em>. </em>Debido a esto la mayor&iacute;a de los  investigadores desechan los embriones som&aacute;ticos de soya que muestran  morfolog&iacute;as anormales, por lo que son escasas las referencias que abordan la  eficiencia de germinaci&oacute;n por tipo de morfolog&iacute;a. Otros no emplean reguladores  del crecimiento en la maduraci&oacute;n y germinaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos; o  mediante la manipulaci&oacute;n de las condiciones de cultivo, como es el caso de la  desecaci&oacute;n parcial, se logra prevenir la germinaci&oacute;n precoz (10).<br />   <br />       Teniendo en cuenta que el empleo de altas concentraciones de 2,4-D puede causar  diferentes morfolog&iacute;as anormales, se realiz&oacute; este <span style="letter-spacing:-.1pt; ">trabajo con el objetivo de determinar el efecto del tipo de morfolog&iacute;a  de los embriones som&aacute;ticos en la eficiencia de germinaci&oacute;n y conversi&oacute;n a  planta </span>en soya cultivar </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El trabajo se realiz&oacute; en  el Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas en Santa Clara, Cuba. Se emple&oacute;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">el  cultivar cubano de soya </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,  obtenido en el Instituto Nacional de Ciencias Agr</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&iacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">colas (INCA) de Cuba, mediante hibridaci</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&oacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">n natural, que ocurri</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&oacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> en el genotipo brasile</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&ntilde;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">o </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&lsquo;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">BR-32</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&rsquo;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.<br />       <br />       <strong>Condiciones de cultivo</strong><br />       <br />       <span style="letter-spacing:-.15pt; ">El experimento se desarroll&oacute; en c&aacute;mara de  crecimiento con luz solar, con una duraci&oacute;n del</span> per&iacute;odo luminoso de 12 a  13 horas de luz; temperatura de 26&plusmn;1 &deg;C; intensidad  del flujo de fotones fotosint&eacute;ticos entre  68,0 a 72,0 </span><em><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.15pt; font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">mol m<sup>-2</sup>s<sup>-1</sup>, medido con</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> un lux&oacute;metro (Extech 401025, EUA).<br />         <br />         Se tomaron embriones som&aacute;ticos con dos meses en medio de cultivo de maduraci&oacute;n  (10), que conten&iacute;a maltosa (6,0 %) como fuente de carbono. Para la desecaci&oacute;n  parcial de los embriones som&aacute;ticos, estos se colocaron durante cuatro d&iacute;as en  placas de Petri (100 </span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> &times;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> 10 mm) est&eacute;riles. Cada placa conten&iacute;a  alrededor de 48 embriones som&aacute;ticos que se colocaron hacia un extremo de la  misma y en el lado opuesto un fragmento de medio de cultivo semis&oacute;lido (1,0 cm<sup>3</sup>),  seg&uacute;n la metodolog&iacute;a de Bailey (11).<br />       <br />       <strong>Germinaci&oacute;n de los embriones som&aacute;ticos</strong><br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />           Se colocaron de 11 a 12 embriones som&aacute;ticos maduros (repeticiones) con  desecaci&oacute;n parcial por frasco de vidrio de 250 mL de capacidad, <span style="letter-spacing:-.2pt; ">distribuidos en 21 frascos para un total de 242  embriones </span>som&aacute;ticos. Cada frasco de cultivo conten&iacute;a 30 mL de medio de  cultivo de germinaci&oacute;n, con las sales MS (12), vitaminas B5 (13), sacarosa 1,5  %, Gelrite</span> <sup><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> &reg;</span></sup> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> 0,3 % y pH 5,8. A los 30 d&iacute;as de cultivo se  cuantific&oacute; el total de embriones som&aacute;ticos germinados y en base a este valor se  determin&oacute; el n&uacute;mero de embriones som&aacute;ticos con germinaci&oacute;n completa o parcial  (%) por tipo de morfolog&iacute;a.<br />       <br />       <strong>Conversi&oacute;n a planta</strong><br />       <br />             Posteriormente, fueron seleccionadas 100 plantas <em>in vitro</em> procedentes  del medio de cultivo de germinaci&oacute;n. Para lograr homogeneidad entre las plantas  se tomaron aquellas que ten&iacute;an</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">entre 5,0-6,0 cm longitud y subcultivadas a  medio de cultivo de germinaci&oacute;n durante cinco d&iacute;as. Los frascos se taparon con  papel de aluminio y para propiciar una mayor ventilaci&oacute;n, se realiz&oacute; un  orificio en la tapa con ayuda de un l&aacute;piz, en el primer y tercer d&iacute;a de  cultivo. Al finalizar las ra&iacute;ces se lavaron con agua destilada est&eacute;ril, antes  de transferir las plantas a condiciones de invernadero. La esterilizaci&oacute;n del  agua se realiz&oacute; en autoclave a 121 </span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> &deg;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">C</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> y  1,1 kg cm<sup>-2</sup> de presi&oacute;n durante 40 minutos.<br />       <br />               La aclimatizaci&oacute;n de las plantas en condiciones de cultivo <em>ex vitro </em>se  realiz&oacute; en el per&iacute;odo de invierno (marzo&ndash;abril)<em>. </em>Las plantas se  colocaron en frascos de policarbamato (500 mL) que conten&iacute;an de forma  homog&eacute;nea, un sustrato est&eacute;ril con 75 % de materia org&aacute;nica descompuesta de  origen vacuno y un 25 % del mineral zeolita. Este &uacute;ltimo es un alumino-silicato  natural cristalino microporoso, con excelentes propiedades de intercambio  i&oacute;nico, alto poder de absorci&oacute;n y granulaci&oacute;n 1,0-3,0 mm (14). La  esterilizaci&oacute;n del sustrato se realiz&oacute; previamente en estufa a 180 &deg;C durante  dos horas.<br />       <br />               Las plantas control se obtuvieron a partir de semillas bot&aacute;nicas en iguales  condiciones de cultivo, con dos riegos diarios por microaspersi&oacute;n de tres  minutos de duraci&oacute;n; temperatura media de 27</span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> &plusmn;2 &deg;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">C</span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">y humedad relativa  84</span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> &plusmn;5</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> %. La luz solar se regul&oacute; con una malla  sombreadora de color negro, a una intensidad del flujo de fotones  fotosint&eacute;ticos de 280 a 400 </span><em><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">mol  m<sup>-2</sup>s<sup>-1</sup>.<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />                 A los diez d&iacute;as se determin&oacute; la eficiencia de conversi&oacute;n, a partir del n&uacute;mero  de plantas vivas (%), y a los 30 d&iacute;as se evaluaron los caracteres morfol&oacute;gicos  de las plantas regeneradas procedentes del cultivo</span> <em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">in  vitro</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. De igual forma fueron evaluadas a los 75 d&iacute;as de  cultivo, las plantas controles y la descendencia de plantas regeneradas <em>in  vitro,</em> que fueron obtenidas a partir de semillas maduras.<br />       <br />                   Para la evaluaci&oacute;n morfol&oacute;gica se seleccionaron 50 plantas al azar, de cada uno  de los tres tratamientos (plantas obtenidas de semilla bot&aacute;nica, plantas  regeneradas a partir de embriones som&aacute;ticos,</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">y descendencia de las plantas  procedentes del cultivo de tejidos) y para su comparaci&oacute;n se utiliz&oacute; el  descriptor de este cultivar. Los criterios de evaluaci&oacute;n fueron: color de las  hojas; n&uacute;mero de foliolos en las hojas; color de la flor; altura media de la  planta (cm); altura a la primera vaina (cm); n&uacute;mero de hojas por planta;  legumbres por planta; granos por legumbre y color de la semilla. Para la  evaluaci&oacute;n visual de estos caracteres, se tuvo en cuenta el descriptor  morfol&oacute;gico de este genotipo. La altura de las plantas se determin&oacute; con una  regla milimetrada y se midi&oacute; desde la base del tallo hasta el meristemo apical  de la planta.<br />       <br />                     <strong>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</strong><br />       <br />                     Para el desarrollo de la investigaci&oacute;n se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al  azar con cinco repeticiones en el tiempo. Los datos se analizaron mediante la  prueba de <em>Kruskal-Wallis </em>(15)y las diferencias entre  tratamientos con la prueba de <em>Mann Whitney</em>. Se emple&oacute; el programa  estad&iacute;stico SPSS (del ingl&eacute;s: <em>Statistic Package for Social Science</em>)  versi&oacute;n PASW Statistics 18, con un valor de p&lt;0,05 (16). </span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N</span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La evaluaci&oacute;n de la  morfolog&iacute;a de los embriones som&aacute;ticos demostr&oacute; que esta influy&oacute; en su capacidad  para germinar y regenerar plantas de soya cultivar </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.  Los embriones som</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&aacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ticos  que ten</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&iacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">an una morfolog</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&iacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">a de tipo dicotiledonal, desarrollaron  una germinaci</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&oacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">n  completa donde eran visibles los primordios foliares simples de color verde;  con alargamiento en las ra&iacute;ces, hipoc&oacute;tilo y epic&oacute;tilo (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0104217.gif">Figura 1A, B</a>). Por el  contrario, los embriones som&aacute;ticos con morfolog&iacute;as de tipo hipoc&oacute;tilo largo y  fusionados ten&iacute;an germinaci&oacute;n parcial, los cuales solo desarrollaron la ra&iacute;z  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0104217.gif">Figura 1C, D</a>). No obstante, se encontraron embriones som&aacute;ticos principalmente  de tipo fusionados, que no lograron germinar al no desarrollar ning&uacute;n meristemo  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0104217.gif">Figura 1E</a>).<br />     
  <br />       Aunque se logr&oacute; la germinaci&oacute;n en los  embriones som&aacute;ticos maduros, se encontr&oacute; que los que ten&iacute;an morfolog&iacute;as de tipo  anormal representaban el mayor n&uacute;mero, con un valor equivalente al 49,59 %  distribuidos de la siguiente manera: monocotiledonal (18,60 %),policotiledonal (6,61 %), cotiled&oacute;n rudimentario  (7,85 %), hipoc&oacute;tilo largo (4,13 %), fasciado (2,89 %) &nbsp;y fusionados (9,51 %). Sin embargo, el n&uacute;mero  de embriones som&aacute;ticos con </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">morfolog&iacute;as anormales, duplic&oacute; el valor  obtenido en los embriones som&aacute;ticos</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">normales, con diferencias significativas  entre ellos (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/t0104217.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n2/t0104217.gif"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">I</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">).<br />     
    <br />         Aunque fue posible la germinaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos con morfolog&iacute;as  anormales, existen algunos tipos como trompeta, que tienen un limitado  desarrollo de meristemo caulinar y otros del tipo fasciados</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">que  logran formar el meristemo radical, pero nunca el meristemo caulinar, lo que  afecta su capacidad</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">para  germinar (17). <br />       <br />           Estos cambios en la<span style="color:red; "> </span>simetr&iacute;a bilateral de los  embriones som&aacute;ticos, puede deberse a factores end&oacute;genos como los inhibidores  del transporte polar &nbsp;de las auxinas  durante el desarrollo del embri&oacute;n som&aacute;tico; as&iacute; como, por la continua  exposici&oacute;n del tejido a las altas concentraciones de 2,4-D, que interfiere con  el gradiente de auxina polar que se establece en la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica (18,  19).<br />       <br />           No obstante, del total de embriones som&aacute;ticos germinados los de tipo  dicotiledonal presentaron en su totalidad  germinaci&oacute;n completa (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0204217.gif">Figura 2</a>). Los embriones som&aacute;ticos con otros tipos  de morfolog&iacute;as clasificadas como anormales, presentaron germinaci&oacute;n completa y  parcial. Del total de embriones som&aacute;ticos con germinaci&oacute;n completa (67,21 %),  los que ten&iacute;an morfolog&iacute;a dicotiledonal tuvieron el mayor porcentaje (33,33 %),  seguido de los monocotiledonal, policotiledonal y cotiled&oacute;n rudimentario, con  diferencias significativas entre ellos (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0204217.gif">Figura 2</a>). En los embriones som&aacute;ticos anormales con germinaci&oacute;n parcial (32,79  %), los de morfolog&iacute;as del tipo fusionados presentaron los mayores  valores de germinaci&oacute;n (12,78 %), seguido de monocotiledonal e hipoc&oacute;tilo largo  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0204217.gif">Figura 2</a>).<br />     
  <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[      Esta reducci&oacute;n en la capacidad de germinaci&oacute;n de los embriones som&aacute;ticos,  tambi&eacute;n pudiera ser debido a una ineficiente acumulaci&oacute;n de sustancias de  reservas durante la fase de maduraci&oacute;n, que limita su capacidad para recuperarse  despu&eacute;s del estr&eacute;s provocado por el proceso de desecaci&oacute;n. <br />       <br />           Existen referencias que demuestran que la  incorporaci&oacute;n de </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.1pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&aacute;cido</span> <span style="line-height:107%; letter-spacing:-.1pt; font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">absc&iacute;sico  (ABA) durante las primeras etapas de desarrollo de la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica,  favorece la s&iacute;ntesis de compuestos de reserva en los embriones som&aacute;ticos (20).  Este efecto del ABA se le atribuye a que regula diferentes procesos  fisiol&oacute;gicos y activa genes vinculados con la respuesta al estr&eacute;s (21);  mientras que, un bajo contenido end&oacute;geno puede reducir la capacidad de germinaci&oacute;n  y afectar su recuperaci&oacute;n posterior al proceso de desecaci&oacute;n. <br />       <br />       </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En  otros estudios se ha encontrado mayor acumulaci&oacute;n de sustancias de reserva en  los embriones som&aacute;ticos, en las primeras tres semanas, en medio de cultivo de  maduraci&oacute;n, pero al finalizar este per&iacute;odo el contenido de los </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&aacute;cidos</span> <span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">linol&eacute;ico y linol&eacute;nico  declinaron, mientras que los &aacute;cidos palm&iacute;tico y este&aacute;rico aumentaron. Esto pudo  estar relacionado con el proceso de germinaci&oacute;n de los embriones som&aacute;ticos,  atribuido a una removilizaci&oacute;n o degradaci&oacute;n de algunas sustancias de reserva  durante la senescencia, similar a lo que ocurre en otros tejidos vegetales  (22).<br />       <br />       <span style="letter-spacing:.1pt; ">La baja capacidad de germinaci&oacute;n de los  embriones som&aacute;ticos, tambi&eacute;n se ha descrito en la literatura cient&iacute;fica.</span> En cultivares hind&uacute;es de soya despu&eacute;s de un per&iacute;odo de cinco d&iacute;as de  desecaci&oacute;n, el 40,9 % de los embriones som&aacute;ticos lograron germinar (6). Los  autores se&ntilde;alaron que las fases de maduraci&oacute;n y germinaci&oacute;n de embriones  som&aacute;ticos en soya, son poco eficiente en muchos estudios, debido al alto n&uacute;mero  de embriones som&aacute;ticos con morfolog&iacute;as anormales que no logran formar plantas  completas.<br />       <br />         Seg&uacute;n estudios realizados (4), despu&eacute;s de siete d&iacute;as de desecaci&oacute;n los  embriones som&aacute;ticos fueron colocados en dos concentraciones de sacarosa (1,5 y  3,0 %) y encontraron el mayor porcentaje de plantas con un crecimiento normal  (53,0 %) en el genotipo ind&uacute; </span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">PS1477</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> con 1,5 % de sacarosa.Este resultado es inferior al 67,21 % obtenido en el  presente trabajo con igual concentraci&oacute;n de sacarosa pero con cuatro d&iacute;as de  desecaci&oacute;n. Es posible que el empleo de siete d&iacute;as haya provocado una mayor  deshidrataci&oacute;n en los embriones som&aacute;ticos y afect&oacute; su potencial de germinaci&oacute;n.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[      A partir de los embriones som&aacute;ticos con germinaci&oacute;n completa en el cultivar </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Incasoy-27</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> ,  se obtuvieron plantas que lograron adaptarse a las condiciones de cultivo <em>ex  vitro</em>. El porcentaje de supervivencia de las plantas regeneradas fue del  76,0 % de eficiencia de conversi&oacute;n a los 15 d&iacute;as de cultivo; mientras que un  100 % se logr&oacute; en las plantas control obtenidas de semilla bot&aacute;nica.<br />       <br />             Las plantas del tratamiento control (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0304217.gif">Figura 3A</a>) y las regeneradas a partir de  embriones som&aacute;ticos, ten&iacute;an caracter&iacute;sticas comunes como hojas trifoliadas de  color verde y flores blancas (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0304217.gif">Figura 3B, C</a>). Sin embargo, las plantas obtenidas  mediante cultivo <em>in vitro</em> desarrollaron un tallo delgado y, en algunos  casos, un limitado crecimiento y desarrollo foliar, atribuido a una habituaci&oacute;n  del tejido a las condiciones del cultivo <em>in vitro </em>(<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0304217.gif">Figura 3C</a>).<br />     
  <br />             Las plantas regeneradas <em>in vitro</em> comenzaron a florecer y fructificar  prematuramente alrededor de los 15 d&iacute;as (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0304217.gif">Figura 3D</a>) a diferencia de las plantas  controles, donde la floraci&oacute;n ocurri&oacute; alrededor  de los 35 a 40 d&iacute;as. Esto podr&iacute;a deberse a que las plantas <em>in vitro</em> proven&iacute;an de un per&iacute;odo de 45 d&iacute;as en fase de germinaci&oacute;n que permiti&oacute;  desarrollar el sistema radical y apical. Por el contrario, las plantas  de semillas bot&aacute;nicas necesitaron  entre cinco y siete d&iacute;as para iniciar la germinaci&oacute;n. Las semillas obtenidas de  las plantas regeneradas <em>in vitro</em>, dieron origen a la descendencia con un  crecimiento normal y las caracter&iacute;sticas propias de este genotipo (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/f0304217.gif">Figura 3E,  F</a>); en ning&uacute;n caso, fueron detectadas plantas fuera de tipo.<br />     
  <br />             Las plantas procedentes de embriones som&aacute;ticos tuvieron un menor desarrollo que  las plantas</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">del  tratamiento control. De igual forma no se encontr&oacute; diferencias visibles en el  color de las semillas, las que mostraron el color amarillo verdoso propio de  este cultivar. En cuanto a los resultados obtenidos en la descendencia, estas  plantas no tuvieron diferencias significativas con respecto a los valores  obtenidos en los controles en iguales condiciones de cultivo (<a href="/img/revistas/ctr/v38n2/t0204217.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n2/t0204217.gif"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">II</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">).<br />     
  <br />               La eficiencia de conversi&oacute;n obtenida fue superior a los valores alcanzados en  los cultivares </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">IAS5</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.2pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">y </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.2pt; font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">BRSMG68</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> (5). Estos  autores obtuvieron un 45,0 %</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> de conversi&oacute;n en el cultivar </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">BRSMG68</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> y  42,0 %</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">en </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">IAS5</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> ,  atribuido a una germinaci&oacute;n precoz de los embriones som&aacute;ticos sin haber  alcanzado la suficiente madurez, lo que provoca un pobre desarrollo en las  plantas <em>in vitro</em> y reduce la eficiencia de regeneraci&oacute;n. Esto tambi&eacute;n  indica que la eficiencia de conversi&oacute;n a planta, pudiera estar influenciado                  por el genotipo.</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Al respecto, en el  cultivar brasile&ntilde;o de soya </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">CD</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> 201</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,  se logr</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&oacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> un 82,0 % de conversi</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&oacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">n a planta (23). Sin embargo, esta  eficiencia disminuy</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&oacute;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> <span style="letter-spacing:-.3pt; ">en los cultivares </span></span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.3pt; font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.3pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">CD 220</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> (58,0 %) y </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">CD 216</span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> (51,0 %),</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> atribuido a la presencia de embriones som&aacute;ticos con morfolog&iacute;as anormales, que  lograron germinar pero no convirtieron a planta. Otros autores al concluir los  28 d&iacute;as de germinaci&oacute;n (4), pasaron las plantas  <em>in vitro</em> a frascos de cultivo que conten&iacute;an una mezcla de los sustratos  turba-perlita-vermiculita (2:1:1), que fue hidratada con las sales MS (25,0 %)  y cultivadas 28 d&iacute;as a una temperatura de 26&plusmn;1 &deg;C y un fotoper&iacute;odo de 16 horas  de luz (150 </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">mol</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> m<sup>-2</sup>s<sup>-1</sup>).  Durante ese per&iacute;odo las plantas fueron endurecidas en condiciones controladas  antes de pasar al invernadero, y permiti&oacute; que despu&eacute;s de 21 d&iacute;as de cultivo <em>ex  vitro</em> lograran un 80,0 % de supervivencia en el cultivar </span><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; ">&#699;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">DS</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> 2706</span><span style="font-family:'Arial','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&#700;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.<br />     <br />     En cuanto a las caracter&iacute;sticas de las plantas regeneradas, una de las causas  que pudo haber provocado que las procedentes de embriones som&aacute;ticos fueran m&aacute;s  peque&ntilde;as que las obtenidas de semillas, es que las reservas de prote&iacute;nas y  l&iacute;pidos en el embri&oacute;n som&aacute;tico pueden declinar antes de ocurrir la elongaci&oacute;n  de la ra&iacute;z, debido a la falta del tejido nutritivo que rodea la semilla (24).  Esto difiere de las plantas que se obtienen a partir de semillas, donde las  sustancias nutritivas se movilizan desde diferentes partes de la planta, hacia  las semillas que est&aacute;n en desarrollo y luego estas sustancias contenidas en las  semillas favorecen la germinaci&oacute;n y desarrollo del brote.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">CONCLUSIONES</span></strong></p> <ul>       <li>    <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La  eficiencia de germinaci&oacute;n de los embriones som&aacute;ticos y su capacidad para  convertir a planta, est&aacute; relacionada con el tipo de morfolog&iacute;a que estos  desarrollen. </span></p></li>      <li>    <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los  embriones som&aacute;ticos con morfolog&iacute;a de  tipo dicotiledonal o normal presentaron en su totalidad germinaci&oacute;n completa.</span></p></li>     <li>    <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los  embriones som&aacute;ticos con morfolog&iacute;as anormales como monocotiledonal, policotiledonal  y cotiled&oacute;n rudimentario, tienen germinaci&oacute;n completa y parcial. </span></p></li>     <li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El  porcentaje de supervivencia de las plantas regeneradas a partir de embriones  som&aacute;ticos, est&aacute; influenciado por el tipo de morfolog&iacute;a y la eficacia en la  maduraci&oacute;n de los embriones som&aacute;ticos.</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></p></li>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     </ul>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">BIBLIOGRAF&Iacute;A</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">1. Joshi, R. y Kumar, P. &ldquo;Regulation of somatic  embryogenesis in crops: a review&rdquo;. <em>Agricultural Reviews</em>, vol. 34, no. 1,  2013, pp. 1-20, ISSN 0253-1496.<br />   <br />   2. Feh&eacute;r, A. &ldquo;Somatic embryogenesis - Stress-induced remodeling of plant cell  fate&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Biochimica Et Biophysica Acta</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,  vol. 1849, no. 4, 2015, pp. 385-402, ISSN 0006-3002, DOI  10.1016/j.bbagrm.2014.07.005.<br />   <br /> </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">3. Smertenko, A. y Bozhkov, P.  &ldquo;The Life and Death Signalling Underlying Cell Fate Determination During  Somatic Embryogenesis&rdquo; [en l&iacute;nea]. En: eds. Nick P. y Opatrny Z., <em>Applied  Plant Cell Biology</em>, Ed. Springer Berlin Heidelberg, Berlin, Heidelberg,  2014, pp. 131-178, ISBN 978-3-642-41786-3,  DOI 10.1007/978-3-642-41787-0_5, [Consultado:&nbsp;12 de febrero de 2017],  Disponible&nbsp;en:  &lt;<a href="http://link.springer.com/10.1007/978-3-642-41787-0_5" target="_blank">http://link.springer.com/10.1007/978-3-642-41787-0_5</a>&gt;.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">4. Huynh, H. N.; Lal, S. K.; Singh, S. K.; Prabhu, K.  V. y Talukdar, A. &ldquo;High frequency regeneration in soybean (<em>Glycine max</em> (L.) Merrill.) through direct somatic embryogenesis from immature cotyledons&rdquo;. <em>Indian  Journal of Plant Physiology</em>, vol. 20, no. 3, 2015, pp. 232-239, ISSN  0019-5502, 0974-0252,        DOI 10.1007/s40502-015-0166-3.<br />       <br />       5. Droste, A.; da Silva, A. M.; de Souza, I. F.; Wiebke-Strohm, B.;  B&uuml;cker-Neto, L.; Bencke, M.; Sauner, M. V. y Bodanese-Zanettini, M. H.  &ldquo;Screening of Brazilian soybean genotypes with high potential for somatic  embryogenesis and plant regeneration&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Pesquisa Agropecu&aacute;ria <span style="letter-spacing:-.25pt; ">Brasileira</span></span></em><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.25pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 45, no. 7, 2010, pp. 715-720, ISSN 0100-204X,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> DOI 10.1590/S0100-204X2010000700012.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">6. Mariashibu, T. S.;  Subramanyam, K.; Arun, M.; Theboral, J.; Rajesh, M.; Rengan, S. K.;  Chakravarthy, R.; Manickavasagam, M. y Ganapathi, A. &ldquo;Assessment of somatic  embryogenesis potency in Indian soybean (<em>Glycine max</em> (L.) Merr.)  cultivars&rdquo;. <em>Indian Journal of Experimental Biology</em>, vol. 51, no. 10, 2013, pp. 849-859, ISSN  0975-1009, 0019-5189.<br />       <br />         7. Us-Camas, R.; Rivera-Sol&iacute;s, G.; Duarte-Ak&eacute;, F. y De-la-Pe&ntilde;a, C. &ldquo;<em>In  vitro</em> culture: an epigenetic challenge for plants&rdquo;. <em>Plant Cell, Tissue  and Organ Culture (PCTOC)</em>, <span style="letter-spacing:-.45pt; ">vol. 118,  no. 2, 2014, pp. 187-201, ISSN 0167-6857, 1573-5044,</span> DOI  10.1007/s11240-014-0482-8.<br />       <br />         8. Verma, K.; Saini, R. y Rani, A. &ldquo;Recent advances in the regeneration and  genetic transformation of soybean&rdquo;. <em>Journal of Innovative Biology March</em>,  vol. 1, no. 1, 2014, pp. 015&ndash;026, ISSN 2348-6473.<br />       <br />         9. Homrich, M. S.; Wiebke-Strohm, B.; Weber, R. L. M. y Bodanese-Zanettini, M.  H. &ldquo;Soybean genetic transformation: a valuable tool for the functional study of  genes and the production of agronomically improved plants&rdquo;. <em>Genetics and  Molecular Biology</em>, vol. 35, no. 4, 2012, pp. 998-1010, ISSN 1415-4757,          DOI 10.1590/S1415-47572012000600015.<br />       <br />         10. Wiebke-Strohm, B.; Shenkel, M.; Mayer, R. L.; Droste, A. y  Bodanese-Zanettini, M. H. &ldquo;Strategies for improvement of soybean regeneration  via somatic embryogenesis and genetic transformation&rdquo;. En: ed. Barrera-Salda&ntilde;a  H. A., <em>Genetic engineering: basics, new applications and responsibilities</em>,  Ed. InTech, Rijeka, 2011, pp. 145-172, ISBN 978-953-307-790-1.<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />         11. Bailey, M. A.; Boerma, H. R. y Parrott, W. A. &ldquo;Genotype-specific  optimization of plant regeneration from somatic embryos of soybean&rdquo;. <em>Plant  Science</em>, vol. 93, no. 1-2, 1993, pp. 117&ndash;120, ISSN 0168-9452, DOI  10.1016/0168-9452(93)90040-7.<br />       <br />         12. Murashige, T. y Skoog, F. &ldquo;A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays  with Tobacco Tissue Cultures&rdquo;. <em>Physiologia  Plantarum</em>, vol. 15, no. 3, 1962,  pp. 473-497, ISSN 1399-3054, DOI  10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.<br />       <br />         13. Gamborg, O. L.; Miller, R. A. y Ojima, K. &ldquo;Nutrient requirements of  suspension cultures of soybean root cells&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Experimental Cell  Research</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 50, no. 1, 1968, pp. 151-158, ISSN 0014-4827,            DOI 10.1016/0014-4827(68)90403-5.<br />       <br />           14. Posada, L.; Padr&oacute;n, Y.; Gonz&aacute;lez, J.; Rodr&iacute;guez, R.; Barb&oacute;n, R.; Norman,  O.; Rodr&iacute;guez, R. C. y G&oacute;mez-Kosky, R. &ldquo;Efecto del Pectimorf</span> <sup><span style="font-family:'Times New Roman','serif'; font-size:10.0pt; "> &reg;</span></sup> <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> en el enraizamiento y la aclimatizaci&oacute;n <em>in  vitro</em> de brotes de papaya (<em>Carica papaya</em> L.) cultivar Maradol Roja&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Cultivos Tropicales</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 37, no. 3, 2016, pp. 50-59, ISSN 0258-5936, DOI  10.13140/RG.2.1.1642.2642.<br />       <br />     ]]></body>
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