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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Cría masiva de Romanomermis culicivorax (Nematoda: Mermithidae) en las condiciones tropicales de Cuba]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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</front><body><![CDATA[ <HTML>  <HEAD>     <META HTTP-EQUIV="Content-Type" CONTENT="text/html; charset=iso-8859-1">     <META NAME="Generator" CONTENT="Microsoft Word 97">     <META NAME="Template" CONTENT="D:\MICROSOFT OFFICE\OFFICE\html.dot">     <META NAME="GENERATOR" CONTENT="Mozilla/4.04 [en] (Win95; I) [Netscape]">     <TITLE>Cr&iacute;a masiva de Romanomermis culicivorax (Nematoda: Mermithidae) en las condiciones tropicales de Cuba</TITLE>  <LINK REL=STYLESHEET HREF=../mtrstyle.css TYPE="text/css">  </HEAD> <H5> Rev Cubana Med Trop 1996;48(1)</H5> Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;  <H2> <font color="#000000">Cr&iacute;a masiva de <I>Romanomermis culicivorax</I>    (Nematoda: Mermithidae) en las condiciones tropicales de Cuba</font></H2>  Lic. ALBERTO SANTAMARINA MIJARES<SUP>1</SUP>      <BR>  <HR>      <BR><SUP>1 </SUP>Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas. Investigador Auxiliar.      <BR>  <HR> <h4> RESUMEN</h4>     <p>Para desarrollar el proceso de producci&oacute;n masiva a gran escala del nematodo    par&aacute;sito <I>Romanomermis culicivorax </I>Ross y Smith, 1976, en las condiciones    tropicales de Cuba, se tuvo en cuenta la estandarizaci&oacute;n de un n&uacute;mero    determinado de variables, tales como: utilizaci&oacute;n de huevos en el proceso    de infectaci&oacute;n, dosis, tipos de agua, tipos de sustrato, temperatura,    m&eacute;todo de siembra de los cultivos y m&eacute;todos de almacenamiento    de los lotes de cultivos. Altos rendimientos en nematodos y aproximadamente    igual n&uacute;mero de hembras y machos fueron obtenidos cuando se expusieron    larvas de mosquitos de la especie <I>Culex quinquefasciatus</I> Say, 1823, a    larvas infectivas del par&aacute;sito. </p>     <p><B>Palabras clave:</B> NEMATODA; <I>CULEX;</I> CONTROL DE INSECTOS; CLIMA TROPICAL;    CUBA.</p> <h4> INTRODUCCION</h4>  El nematodo merm&iacute;tido <I>Romanomermis culicivorax</I> Ross y Smith,  1976, fue estudiado en Cuba como un posible agente de control biol&oacute;gico  de las altas densidades poblacionales de larvas de mosquitos que cr&iacute;an  en diferentes h&aacute;bitats. De acuerdo con las investigaciones desarrolladas  en laboratorio y campo, se determin&oacute; que <I>R. culicivorax</I> representa  un control natural de los estadios larvales de diferentes especies de mosquitos  y se han reportado previamente elevados niveles de susceptibilidad a la  infectaci&oacute;n de este merm&iacute;tido.1        <P>La liberaci&oacute;n experimental de las formas infectivas de este par&aacute;sito  en criaderos naturales demostraron que, una vez que fueron introduci das,  se establecieron, mudaron, maduraron y depositaron huevos en el sustrato.  Los preparas&iacute;ticos emergieron de estos huevos y proporcio naron  un control continuado en las subsiguien tes estaciones de cr&iacute;a del  mosquito.2-4        <P>Para la utilizaci&oacute;n de <I>R. culicivorax</I> como un biolarvicida  para el control de larvas de mosquitos, el par&aacute;sito tiene que ser  multiplicado masivamente y deben ser obtenidas altas producciones. Con  este objetivo se llev&oacute; a cabo la estandarizaci&oacute;n de las variables  m&aacute;s importantes.  <H3>  MATERIAL Y METODO</H3>  <B>EVALUACION DE DISTINTAS DOSIS</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Los experimentos se desarrollaron con larvas de mosquito de la especie  <I>Culex quinquefascia tus</I>, para evaluar los niveles de infectaci&oacute;n  y los tantos por cientos de mortalidad a diferentes dosis. Con este objetivo  fueron colocados 3 grupos de 800 larvas (200/estadio) de I-II-II y IV estadio  en agua destilada, con pH 6,3; conductividad de 1,5 ms/cm y expuestas a  una dosis de 3:1; 5:1 y 10:1 por cada grupo de larvas, respectivamente.      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <BR><B>TIPOS DE AGUA</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Fueron analizados diferentes tipos de agua.        <P><I>Experimento I</I>. Doscientas larvas de mosquitos de la especie <I>C.  quinquefasciatus</I> en II estadio de desarrollo fueron colocadas en agua  destila da, con pH 6,4 y conductividad de 1,4 ms/cm. Posteriormente las  larvas fueron expuestas a los preparas&iacute;ticos infectivos en dosis  de 5:1.        <P><I>Experimento II</I>. Otras doscientas larvas de mosquito de la misma  especie en II estadio de desarrollo se expusieron a los preparas&iacute;ticos  en dosis de 5:1, en agua libre de cloro, con pH 6,5 y conductividad 1,8  ms/cm; purificada a trav&eacute;s de un sistema de resinas por intercambio  i&oacute;nico.        <P><I>Experimento III</I>. Doscientas larvas de mosquito de <I>C. quinquefasciatus</I>  en II estadio de desarrollo se colocaron en agua de lluvia, con pH 7,0  y conductividad, 1,12 ms/cm y se expusieron a los juveniles infectivos  del nematodo en dosis de 5:1.        <P><I>Experimento IV.</I> Otro grupo de 200 larvas de mosquito de la misma  especie y en II estadio de desarrollo se expusieron a los juveniles del  par&aacute;sito en igual dosis que la anterior, en agua obtenida de presas  o embalses, con pH 7,1 y conductividad de 1,2 ms/cm.      <BR>&nbsp;      <BR><B>UTILIZACION DE HUEVOS EN LOS PROCESOS DE INFECTACION</B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <BR>Fueron realizadas distintas pruebas de laboratorio para evaluar si  en el proceso de infectaci&oacute;n resultaba posible la utilizaci&oacute;n  de balsas (que contiene los huevos) en lugar del uso directo de larvas  de mosquito en II estadio de desarrollo. Con este objetivo, 3 grupos de  8 balsas con 120 huevos cada una, obtenidas de hembras adultas de mosquitos  de la especie <I>C. quinquefasciatus</I> fueron colocadas en agua destilada,  con pH 6,1 y conductividad de 1,1 ms/cm. Tres d&iacute;as despu&eacute;s  las larvas en II estadio de desarrollo se expusieron a los preparas&iacute;ticos  en dosis de 5:1.      <BR>&nbsp;      <BR><B>TEMPERATURA</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Fueron conducidas pruebas de laboratorio para determinar la influencia  de distintas temperaturas con valores de 23, 26, 29 y 32 oC en el tiempo  del proceso de la infectaci&oacute;n, as&iacute; como en la talla de los  nematodos pospar&aacute;sitos. Para ello, se expusieron 4 grupos de 200  larvas de mosquito de la especie <I>C. quinquefasciatus</I> en II estadio  a los preparas&iacute;ticos infectivos en agua destilada, con un pH 5,6  y conductividad de 11,4 ms/cm; a una dosis de 5:1. Para cada grupo de larvas  se aplic&oacute; un valor distinto de temperatura.      <BR>&nbsp;      <BR><B>TIPOS DE ARENA</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Fueron evaluados diferentes tipos de arena de r&iacute;o como medio  de cultivo para la siembra de los nematodos pospar&aacute;sitos. Con este  objetivo, el primer tipo de arena fue colectado en un r&iacute;o localizado  en el Valle de Vi&ntilde;ales (en el kil&oacute;metro 102 de la carretera  hacia la ciudad de Pinar del R&iacute;o), &eacute;sta era de color amarillo-carmelita,  con una composici&oacute;n qu&iacute;mica a base de carbo nato de calcio  y un di&aacute;metro del grano entre 1,87 y 6,25 mm. El segundo tipo de  arena fue obtenido del r&iacute;o El Mac&iacute;o, en Pil&oacute;n, Sierra  Maestra, en la provincia Gramma, era de color gris-oscuro, composici&oacute;n  qu&iacute;mica a base de carbonato de calcio y un promedio en el tama&ntilde;o  del grano entre 11,78 y 0,88 mm. El tercer tipo de arena fue colectada  en un arroyo pr&oacute;ximo al Presidio Modelo, en el Municipio Especial  Isla de la Juventud, su color era blanco-carmelita, a base de carbonato  de calcio y un tama&ntilde;o del grano entre 1,52 y 7,05 mm. El &uacute;ltimo  tipo de arena fue obtenido en el r&iacute;o Guajaib&oacute;n ubicado en  El Mariel, provincia La Habana, con un color oscuro, a base de carbonato  de calcio y un tama&ntilde;o del grano entre 1,61 y 7,01 mm. El rendimiento  en n&uacute;mero de preparas&iacute;ticos en los lotes de cultivos con  las distintas variantes de arena fue determinado por el m&eacute;todo de  diluci&oacute;n volum&eacute;trica.5      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <BR><B>ALMACENAMIENTO DE CULTIVOS</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Se realizaron otros estudios de laboratorio para evaluar el m&eacute;todo  de almacenamiento de los cultivos del par&aacute;sito. Con este objetivo  se tomaron 30 cultivos de nematodos, cada uno de los cuales conten&iacute;a  40 hembras y 40 machos, a los que se les adicion&oacute; una ligera capa  de agua destilada de 1 cm para facilitar el desplazamiento de los par&aacute;sitos  al fondo del cultivo. Un grupo de 15 cultivos fue almacenado en un local  a temperatura ambiente de 27 oC durante 3 semanas, al t&eacute;rmino de  las cuales fue extra&iacute;da el agua y almacenados nuevamente por 15  semanas adicionales. Al lote restante de 15 cultivos, una vez observado  el descenso de los nematodos (tiempo promedio de 30 minutos), le fue extra&iacute;da  el agua por decantaci&oacute;n, cubiertos herm&eacute;ticamente y finalmente  almacenados durante 8 semanas en iguales condiciones. Una vez transcurrido  el tiempo de almacenaje, ambos lotes de cultivos fueron inundados con agua  destilada para inducir la eclosi&oacute;n de los huevos y evaluar el rendimiento  en n&uacute;mero de prepara s&iacute;ticos y su viabilidad.        <P>Los diferentes grupos de balsas y larvas de mosquito utilizados en los  experimentos fueron obtenidos de las colonias, mantenidas en altas densidades  en el insectario, con una humedad relativa de 82,3 % y un rango de temperatura  entre 26 y 28 oC. Todos los experimentos con larvas de mosquito expuestas  a los preparas&iacute;ticos en el laboratorio se desarrollaron en bandejas  esmaltadas de 44 x 34 x 4 cm, colocadas en una incubadora, a una temperatura  de 29 oC. Para la alimentaci&oacute;n de las larvas hospederas se utiliz&oacute;  harina de pescado. Para determinar el n&uacute;mero de huevos por balsa  y la talla de los nematodos hembras y machos, se utiliz&oacute; un microscopio  estereosc&oacute;pico marca WILL HEERBRUGG M38, con un micr&oacute;metro  ocular (10x).        <P>Para el proceso de siembra de los nematodos pospar&aacute;sitos se utilizaron  dep&oacute;sitos pl&aacute;sticos de 20 x 10 x 6 cm, cubiertos herm&eacute;ticamente  y almacenados a temperatura ambiente. Para todas las pruebas de laboratorio  se utiliz&oacute; un testigo y se realizaron 3 r&eacute;plicas por cada  experimento. Los cultivos de laboratorio fueron inundados con agua destilada  y el n&uacute;mero de preparas&iacute;ticos necesario para la infectaci&oacute;n  de las larvas hospederas fue calculado mediante el m&eacute;todo de diluci&oacute;n  volum&eacute;trica.5 Para calcular la media de infectaci&oacute;n y el  tanto por ciento de mortalidad se tom&oacute; de forma aleatoria una muestra  de 50 larvas, las cuales fueron disecadas mediante agujas entomol&oacute;gicas  y a trav&eacute;s de un microscopio estereosc&oacute;pico.6 En todos los  resultados se da el valor medio de infectaci&oacute;n y el tanto por ciento  de mortalidad, pero s&oacute;lo se analiza estad&iacute;sticamente el primero,  pues el porcentaje de mortalidad mostr&oacute; una correla ci&oacute;n  cercana a 1 (r = 0,92; p &lt; 0,001) con el valor medio de infectaci&oacute;n.        <P>Todos los datos obtenidos fueron analizados estad&iacute;sticamente.  Previamente se comprob&oacute; si &eacute;stos presentaban distribuci&oacute;n  normal y homo geneidad de varianza. El <I>test</I> de Kolmogorov- -Smirnov  indic&oacute; que la variable mencionada no presentaba distribuci&oacute;n  normal, por lo que todos los valores de la variable fueron transformados  a log (x + 1). Se utiliz&oacute; un ANOVA bifactorial para los efectos  estadios larvales y dosis de aplicaci&oacute;n sobre el valor medio de  infectaci&oacute;n y 3 ANOVA de clasificaci&oacute;n simple: para el efecto  de los tipos de agua sobre el valor medio de infectaci&oacute;n, para el  efecto de la temperatura sobre el valor medio de infectaci&oacute;n y para  el efecto de la temperatura sobre la talla de los nematodos. Para establecer  las diferencias entre medias se utiliz&oacute; una prueba Duncan. Se consider&oacute;  un nivel de significaci&oacute;n de p = 0,05.  <H3>  RESULTADOS</H3>  <B>EVALUACION DE DIFERENTES DOSIS</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Los resultados mostraron un incremento en los niveles de parasitismo  en relaci&oacute;n con el aumento de la dosis de aplicaci&oacute;n desde  3:1 hasta 10:1. Los m&aacute;s altos niveles de infectaci&oacute;n correspondieron  a la dosis de 10:1, en larvas de II estadio, con valores medios de infectaci&oacute;n  de 4,3 y 100 % de mortalidad. Mediante la aplicaci&oacute;n de un ANOVA  se observ&oacute; que tanto el efecto de la dosis como el estadio larval  afectaron los valores medios de infectaci&oacute;n (F = 899,5; p &lt; 0,001)  para el efecto dosis y (F = 230,1; p &lt; 0,001) para el efecto estadio  larval, mientras la interacci&oacute;n dosis x estadio larval no fue estad&iacute;sticamente  significativa. Mediante una prueba Duncan se observ&oacute; que las 3 dosis  fueron significativamente diferentes (p &lt; 0,005), al igual que las medias  halladas en los 4 estadios larvales (figura 1).      <BR>&nbsp;&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR><B>TIPOS DE AGUA</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Para los 4 tipos de agua ensayados se encontraron los siguientes valores  medios de infectaci&oacute;n: 1,98 y 87 % de mortalidad para el agua destilada;  1,92 y 84 % de parasitismo para el agua obtenida a trav&eacute;s del sistema  de resinas; 1,89 con 84 % de mortalidad para el agua de lluvia y 1,97 con  86 % de mortalidad para el agua de presa (figura 2).      <BR>&nbsp;      <BR><B>UTILIZACION DE HUEVOS EN EL PROCESO DE INFECTACION</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Los estudios de laboratorio determinaron que una vez que los huevos  eclosionaron y las larvas alcanzaron el segundo estadio de desarrollo,  su exposici&oacute;n a las larvas infectivas arrojaron elevados niveles  de parasitismo, muy similar cuando fueron expuestas directamente larvas  de mosquito en II estadio de desarrollo a los nematodos infectivos. Los  resultados obtenidos evidenciaron el uso pr&aacute;ctico de huevos, con  lo cual se evita la mortalidad prematura en las larvas como consecuencia  del exceso de manipulaci&oacute;n (tabla 1).        <P><B>TABLA 1. </B>Niveles de infectaci&oacute;n y tantos por ciento de  mortalidad en larvas de mosquito por <I>R. culicivorax </I>a partir de  huevos de <I>C. quinquefasciatus</I> en dosis de 5:1  <TABLE BORDER WIDTH="100%" BORDERCOLOR="#000000" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">No. de Experimento&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>No. de balsas</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Total de larvas</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Infectaci&oacute;n preparas&iacute;ticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Mortalidad</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>(?)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>(%)</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">1&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>960</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>4</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>800</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>1,9</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>90</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">2</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>960</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>4</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>800</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>2,1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>89</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">3</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>960</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>4</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>800</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>2,0</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>92</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE>          <P><B>TEMPERATURA</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Las pruebas de laboratorio llevadas a cabo con diferentes valores de  temperatura no mostraron diferencias significativas entre los 4 valores  medios de infectaci&oacute;n obtenidos. El desarrollo del par&aacute;sito  tuvo un comportamiento normal en los 4 procesos de infectaci&oacute;n a  diferentes temperaturas con valores de: 23, 26, 29 y 32 oC. La temperatura  de 29 oC result&oacute; la m&aacute;s adecuada, tomando el proceso de infectaci&oacute;n  un tiempo de 6 d&iacute;as, no afect&aacute;ndose as&iacute; la talla de  los nematodos pospar&aacute;sitos (17 mm). Con valores de temperatura por  debajo de 29 oC, el tiempo del proceso de infectaci&oacute;n se increment&oacute;.  Contrario a esto, con una temperatura de 32 oC, el tiempo para este proceso  se redujo a 5 d&iacute;as y por consiguiente se afect&oacute; la talla  de los nematodos pospar&aacute;sitos (13 mm) (tabla 2, figura 3). Se encontr&oacute;  diferencia significativa (F = 15,7; p &lt; 0,001) entre las muestras de  nematodos obtenidas a distintas temperaturas. Mediante una prueba Duncan  se observ&oacute; que los pospar&aacute;sitos obtenidos con temperatura  de 32 oC difieren (p &lt; 0,05) de aqu&eacute;llos obtenidos con temperaturas  de 23, 26 y 29 oC.        <P><B>TABLA 2. </B>Niveles de infectaci&oacute;n y tantos por ciento de  mortalidad en larvas de mosquito de <I>C. quinquefasciatus</I> por <I>R.  iyengari </I>a diferentes temperaturas  <TABLE BORDER WIDTH="100%" BORDERCOLOR="#000000" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>No. de Experimento</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>Total de larvas</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>Infectaci&oacute;n preparas&iacute;ticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>Mortalidad</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Tiempo de infectaci&oacute;n</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>Talla</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>(?)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>(%)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>T oC</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>(d&iacute;as)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>(mm)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>200</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>1 000</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>2,1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>87</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>23</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>10</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>17</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>200</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>1 000</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>2,3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>89</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>23</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>17</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>200</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>1 000</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>2,2</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>88</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>29</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>6</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>17</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>200</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>1 000</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>2,1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>88</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>32</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>5</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">      <CENTER>13</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE>  &nbsp;      <BR><B>TIPOS DE ARENA</B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <BR>En las 4 variantes de arena de r&iacute;o utilizadas como medio de  cultivo, el descenso de los nematodos al fondo de los cultivos ocurri&oacute;  en un tiempo promedio de 30 minutos y las distintas tallas de los granos  de arena permitieron el desplazamiento de los pospar&aacute;sitos a trav&eacute;s  de los espacios intergranos. Se encontr&oacute; adem&aacute;s que las variantes  en color y la composici&oacute;n qu&iacute;mica de los granos de la arena  no tuvieron una influencia negativa en la capacidad de reproducci&oacute;n  de los nematodos adultos (tabla 3).      <CENTER><B>TABLA 3. </B>Tipos de arena de r&iacute;o</CENTER>    <TABLE BORDER WIDTH="100%" BORDERCOLOR="#000000" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Localidad</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Composici&oacute;n</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Di&aacute;metro del grano (mm)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Color</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Valle de Vi&ntilde;ales (Pinar del R&iacute;o)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Carbonato de calcio</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>1,87 - 6,25</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Pardo-amarillo</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>El Mac&iacute;o (Granma)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Carbonato de calcio</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>11,78 - 6,88</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Gris-oscuro</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Isla de Juventud</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Carbonato de calcio</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>1,52 - 7,05</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Blanco-carmelita</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Guajaib&oacute;n&nbsp;</CENTER>        ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>(La Habana)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Carbonato de calcio</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>1,61 - 7,01</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <CENTER>Negro</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE>  &nbsp;      <BR><B>ALMACENAMIENTO DE LOS CULTIVOS</B>      <BR>&nbsp;      <BR>En el lote de 15 cultivos almacenados durante 18 semanas se obtuvo  un rendimiento de 45 000 preparas&iacute;ticos, de los cuales 18 000 (40  %) presentaron una inactividad total y el resto, 27 000 (60 %), mostraron  una buena actividad. Sin embargo, en el lote de 15 cultivos que fueron  almacenados durante 6 semanas, el rendimiento en n&uacute;mero de preparas&iacute;ticos  fue de 75 000, de los cuales 67 500 (90 %) presentaron una elevada actividad  y los restantes 7 500 (10 %) se encontraban inactivos (tabla 4).      <CENTER><B>TABLA 4. </B>Almacenamiento de los cultivos de <I>R. culicivorax</I></CENTER>    <TABLE BORDER WIDTH="100%" BORDERCOLOR="#000000" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>No. de cultivos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>M&eacute;todo</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Tiempo de almacenaje</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>No. de preparas&iacute;ticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>Activos</CENTER>        <CENTER>(%)</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>Inactivos</CENTER>        <CENTER>(?)</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>15</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>Con agua</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>18 semanas</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>45 000</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>60</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>40</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>15</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>Sin agua</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>6 semanas</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>75 000</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>90</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>10</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE>    <H3>  DISCUSION</H3>  <B>EVALUACION DE DIFERENTES DOSIS</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Se observ&oacute; un aumento en los valores medios de infectaci&oacute;n  y en los tantos por ciento de mortalidad con el incremento de la dosis  desde 3:1 hasta 10:1. Algunas investigaciones desarrolladas por otros autores7  reportaron altos porcentajes de infectaci&oacute;n en larvas de <I>C. quinquefasciatus  </I>por <I>R. culicivorax</I> con distintas dosis de aplicaci&oacute;n,  con valores desde 3:1 hasta 10:1. Los resultados hallados mostraron que  los m&aacute;s altos &iacute;ndices de infectaci&oacute;n en los 4 estadios  larvales (I-IV) ocurrieron con la dosis de 10:1. Se observ&oacute; adem&aacute;s  un superparasitismo como consecuencia de la dosis tan elevada, con la consiguiente  muerte prematura (24 horas despu&eacute;s de la infectaci&oacute;n) del  50 % de las larvas infectadas. El an&aacute;lisis de los datos indic&oacute;  que la dosis de 10:1 no result&oacute; favorable, lo que implic&oacute;  que el par&aacute;sito no pudo desarrollarse por la muerte temprana de  las larvas hospederas. Aunque con la dosis de 5:1 se encontr&oacute; un  decremento en los niveles de infectaci&oacute;n, con un valor promedio  de 2,0 en el II estadio, no se observ&oacute; ninguna mortalidad 24 horas  despu&eacute;s de la infectaci&oacute;n realizada. Esto evidenci&oacute;  que dicha dosis result&oacute; m&aacute;s efectiva para el proceso de infectaci&oacute;n  en comparaci&oacute;n con otras dosis ensayadas. Reportes de otros autores5-8  han indicado que larvas hospederas en I estadio de desarrollo han resultado  expuestas directamente a los preparas&iacute;ticos infectivos de <I>R.  culicivorax</I> en una relaci&oacute;n par&aacute;sito-hospedero de 14:1,  lo que presupone una elevada mortalidad prematu ra en las larvas hospederas  a consecuencia del superparasitismo.      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <BR><B>TIPOS DE AGUA</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Los estudios realizados con los distintos tipos de agua demostraron  sus posibilidades de utilizaci&oacute;n para la cr&iacute;a masiva del  nematodo par&aacute;sito <I>R. culicivorax.</I> Estos tipos de agua pueden  ser obtenidos f&aacute;cilmente y resulta econ&oacute;mica su aplicaci&oacute;n  para el proceso de multiplicaci&oacute;n del par&aacute;sito. Adem&aacute;s,  el empleo de estas aguas arroja elevados rendimientos de nematodos pospar&aacute;sitos.  Estos resultados no coinciden con lo reportado por otros autores,9-11 quienes  informaron que en los procesos de infectaci&oacute;n se utilizan grandes  vol&uacute;menes de agua, las que son decloradas con tiosulfato de sodio  y purificadas por un sistema de filtraci&oacute;n reverso de &oacute;smosis,  con un valor de conductividad de 180 ms/cm, lo cual resulta mucho m&aacute;s  costoso.      <BR>&nbsp;      <BR><B>UTILIZACION DE HUEVOS EN EL PROCESO DE INFECTACION</B>      <BR>&nbsp;      <BR>La utilizaci&oacute;n de huevos en el proceso de infectaci&oacute;n  en lugar del empleo directo de larvas de mosquitos en II estadio de desarrollo  result&oacute; ser mucho m&aacute;s pr&aacute;ctico. Ello permite una reducci&oacute;n  marcada del tiempo y se evita la mortalidad temprana en dichas larvas hospederas  a consecuencia del exceso de manipulaci&oacute;n. Los resultados encontrados  en las pruebas comparativas con huevos y larvas de mosquito no coinciden  con lo planteado por otros autores,8 quienes indicaron que fueron expuestas  directamente larvas de mosquito en primer estadio de desarrollo a los preparas&iacute;ticos  infectivos de <I>R. culicivorax</I>, a una dosis de infectaci&oacute;n  de 14:1, lo que provoca una alta mortalidad en las larvas como resultado  de un superparasitismo.      <BR>&nbsp;      <BR><B>TEMPERATURA</B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <BR>Con un valor de temperatura de 23 oC, el proceso de infectaci&oacute;n  tom&oacute; un tiempo de 10 d&iacute;as y los nematodos pospar&aacute;sitos  emergieron con una talla adecuada: 17 mm la hembra y 10 mm el macho. Con  una temperatura de 26 oC el proceso de infectaci&oacute;n se redujo a 8  d&iacute;as y no se afect&oacute; la talla de los nematodos pospar&aacute;sitos.  Un incremento de la temparatura a 32 oC afect&oacute; el desarrollo del  sistema hospedero-par&aacute;sito y la emersi&oacute;n de los pospar&aacute;sitos  ocurri&oacute; en el quinto d&iacute;a. Adem&aacute;s, fue observada una  reducci&oacute;n en la talla normal de las larvas hospederas y de los pospar&aacute;sitos,  lo que se atribuye a un incremento en la actividad metab&oacute;lica y  de la velocidad de desarrollo del ciclo de vida, como resultado del aumento  de temperatura. Seg&uacute;n otros autores11 una temperatura de 26 oC result&oacute;  adecuada para el proceso de multiplicaci&oacute;n del par&aacute;sito.  Aunque este valor no afect&oacute; la talla de los pospar&aacute;sitos,  el proceso de infectaci&oacute;n se prolong&oacute; hasta los 8-9 d&iacute;as,  a partir de los cuales ocurri&oacute; la emersi&oacute;n de los nematodos  pospar&aacute;sitos. A diferencia de esto, una temperatura de 29 oC represent&oacute;  el valor &oacute;ptimo, se encontr&oacute; que el proceso de infectaci&oacute;n  tom&oacute; un tiempo de 6 d&iacute;as y no se observaron cambios, tanto  en la talla como en la apariencia morfol&oacute;gica de los pospar&aacute;sitos  obtenidos.      <BR>&nbsp;      <BR><B>TIPOS DE ARENA DE RIO</B>      <BR><B>&nbsp;</B>      <BR>Los tipos de sustratos utilizados como medio de cultivo permitieron  el descenso de los nematodos en un tiempo promedio de 30 minutos, lo que  se atribuy&oacute; al tama&ntilde;o de las part&iacute;culas de arena y  a los espacios intergranos que fueron suficientemente amplios para permitir  el desplazamiento de los pospar&aacute;sitos desde la superficie al fondo  de los cultivos. Aunque este aspecto no aparece en la literatura, en nuestra  experiencia otros tipos de arena de grano m&aacute;s fino originaban una  mayor compactaci&oacute;n del sustrato, lo cual dificultaba el movimiento  de los par&aacute;sitos y por lo tanto su desplazamiento.      <BR>&nbsp;      <BR><B>ALMACENAMIENTO</B>      <BR>&nbsp;      <BR>Los cultivos de nematodos almacenados con arena ligeramente h&uacute;meda  por 6 semanas mostraron un alto rendimiento en n&uacute;mero de preparas&iacute;ticos.  Algunos autores12,13 reportaron que en el proceso de cr&iacute;a masiva  una vez concluido el proceso de siembra de los nematodos, los cultivos  fueron almacenados con agua durante un per&iacute;odo de 3 semanas. Posteriormente  el agua fue decantada y los cultivos se almacenaron por 15 semanas adicionales  hasta completar 18 semanas. El bajo rendimiento en cuanto al n&uacute;mero  de larvas infectivas en los cultivos se atribuye al largo per&iacute;odo  de almacenamiento y a la p&eacute;rdida de un n&uacute;mero considerable  de preparas&iacute;ticos en el agua decantada al t&eacute;rmino de las  3 primeras semanas de almacenaje. Esto se explica por el hecho de que una  hembra de <I>R. culicivorax</I> oviposita un promedio de 832 huevos en  los primeros 15 d&iacute;as, despu&eacute;s de concluido el proceso de  siembra y muchos de estos huevos completan su desarrollo embrionario a  los 18 d&iacute;as,14 los cuales eclosionan en contacto con el agua contenida  en los cultivos. Los preparas&iacute;ticos emergidos de los huevos son  extra&iacute;dos conjuntamente con el agua decantada, lo cual incide finalmente  en el bajo rendimiento de los cultivos a las 18 semanas de almacenamiento.  <H3>  AGRADECIMIENTOS</H3>  Esta investigaci&oacute;n recibi&oacute; el apoyo financiero del UNDP/  /WORLD BANK/WHO del Programa Especial para Investigaciones y Entrenamiento  en Enfermedades Tropicales.  <H3>  REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H3>    <OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>  Greenberg B. Flies and diseases. Princeton, NJ: Princeton University 1973;vols  1-2.</LI>        <LI>  Keiding J. The house-fly. Biology and control. Vector Control Series. 1986;  WHO/VBC/86.937.</LI>        <LI>  OMS. Resistencia de los vectores y reservorios de enfermeda des a los plaguicidas.  Ginebra, 1986:20-2. (Serie de informes t&eacute;cnicos; n&uacute;m 737).</LI>        <LI>  Saxonov AP, Karetnikova N. Reguladores del crecimiento y desarrollo de  los insectos en la lucha contra los insectos de la agricultura. Rev Ciencia,  1984;40:54-8.</LI>        <!-- ref --><LI>  Keiding J. Pesticide sequence and resistence avoidance. 1985;VBC6ECV/EC/85.32.</LI>    <LI>  Raymond M. Presentation d'un programme d'analyse logprobit pour micro-ordinnateur.  Cah ORSTOM Ser Ento Med Parasitol 1985;22:117-21.</LI>        <LI>  Hatakoshi M, Kawada H, Nishida S, Kisida H, Nakayama I. Laboratory evaluation  of 2-[methyl-2-(4-phenoxyphenoxy) ethoxy] pyridine against larvae of mosquitoes  and housefly. Jpn J Sanit Zool 1987;38:271-4.</LI>        <LI>  Kawada H, Dohara K, Shinjo G. Evaluation of larvicidal potency of insect  growth regulator, 2[methyl 1-2-(4-phenoxy- phenoxy)ethoxy] pyridine, against  the housefly, <I>Musca domestica.</I> Jpn J Sanit Zool 1987;38:317-22.</LI>        <LI>  Bouchard BL, Wilson TG. Effects of sublethal doses of Methoprene on reproduction  and longevity of <I>Drosophila melanosgaster</I> (Diptera: Drosophilidae).  J Econ Entomol 1987;80:431-4.</LI>        <LI>  Kostina MN, Melnikova NG. Actividad biol&oacute;gica del Dimilin con relaci&oacute;n  a los diferentes estadios de desarrollo de la<I> Musca domestica</I>. Cuestiones  Desinfecci&oacute;n Esterilizaci&oacute;n 1986;1:73-6.</LI>        ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>  Wright JE, Spates GE. Reproductive inhibition activity of the insect growth  regulator TH 6040 against the stable fly and the housefly: effects on hatchability.  J Econ Entomol 1976;69:879- -84.</LI>        <LI>  Kotze AC. Effects of cyromazine on reproduction and offspring development  in <I>Lucila cuprina</I> (Diptera: Muscidae) J Econ Entomol 1992;85:1614-7.</LI>        <LI>  Tang RC, Ruiz NG, Montada DD, Navarro AO. M&eacute;todos de cr&iacute;a  de <I>Musca domestica</I> Linneaus 1758. Rev Cubana Med Trop 1988;40:51-9.</LI>        <LI>  Robert LL, Olson JK. Effects of sublethal dosages of insecticides on <I>Culex  quinquefasciatus</I>. J Am Mosq Control Assoc 1989;5:239-46.</LI>        <LI>  Kelada NL, Gaaboud IA, Rawash IA. The effect on reproduc tion and morphometries  of females of <I>Culex pipiens </I>of treatment of larvae with sex insect  growth regulators. J Agric Sci 1981;96:611-8.</LI>        <LI>  Firstenberg DE, Sutherlad DJ. Reproductive effects in <I>Aedes aegypti  </I>following sub-lethal treatment with methoprene or Abate. N J Mosq Control  Assoc Meet 1981;41:111-7.</LI>        <LI>  Arias JR, Mulla MS. Morphogenetic aberrations induced by a juvenile hormone  analogue in the mosquito <I>Culex tarsalis</I> (Diptera: Culicidae). J  Med Entomol 1985;22:309-16.</LI>        <LI>  Mulla MS, Axelrod H. Evaluation of the IGR Larvadex as a feed-trough treatment  for the control of pertiferous flies on poultry ranches. J Econ Entomol  1983;76:515-9.</LI>        <LI>  Weaver JE, Begley JW. Laboratory evaluation of BAY SIR 8514 against the  housefly (Diptera: Muscidae): effects on immature stages and adult sterility.  J Econ Entomol 1982;7 5:1149-55.</LI>      </OL>  Recibido: 17 de abril de 1995. Aprobado: 24 de abril de 1995.        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lic. <I>Carmen Ambr&oacute;s Ginarte</I>. Instituto de Medicina Tropical "Pedro    Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba.     <DIV ALIGN=right></DIV>        </body>  </HTML>       ]]></body><back>
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<collab>OMS</collab>
<source><![CDATA[Resistencia de los vectores y reservorios de enfermeda des a los plaguicidas.]]></source>
<year>1986</year>
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<year>1985</year>
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