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<body><![CDATA[<P>Las reacciones cruzadas entre los virus son muy conocidas, por ejemplo,  aquellas que ocurren entre el virus de la Parotiditis y los virus del grupo  Parainfluenza2 y entre los miembros de la familia Herpesviridae.3,4 Adem&aacute;s,  se conoce que algunos virus pueden ser modulado res no espec&iacute;ficos  de la respuesta inmune y causar incremento o depresi&oacute;n en la formaci&oacute;n  de anticuerpos para ant&iacute;genos no relacionados, por lo que el serodiagn&oacute;stico  comienza a complicarse cuando ocurre un aumento o una ca&iacute;da en el  t&iacute;tulo de anticuerpos a m&aacute;s de un agente.1        <P>Durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os, mediante el estudio de los sueros  pares que son recibidos en nuestro laboratorio a trav&eacute;s del Sistema  de Vigilancia Seroepidemiol&oacute;gica de la vacuna triple viral (parotiditis,  rubeola y sarampi&oacute;n. PRS), hemos detectado una ca&iacute;da del  t&iacute;tulo de anticuerpos en el segundo suero con respecto al primero,  de m&aacute;s de 4 veces a rub&eacute;ola y/o sarampi&oacute;n, en un grupo  de pacientes con el diagn&oacute;stico de <I>rash</I> febril.        <P>Por ello decidimos estudiar la respuesta de anticuerpos en 20 pares  de sueros, procedentes de pacientes comprendidos entre los 4 meses y los  5 a&ntilde;os de edad, frente a algunos virus que integran la familia Herpesviridae,  para los cuales se ha reportado con mayor frecuencia respuesta de anticuerpos  a virus heter&oacute;logos.1,3,4        <P>Los pares de sueros fueron procesados mediante la t&eacute;cnica de  inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n para detectar t&iacute;tulos  de anticuerpos a rub&eacute;ola5 y sarampi&oacute;n6 mientras que para  determinar la presencia de anticuerpos contra los virus Herpes simple (HCS  tipo 1 y 2) y citomegalovirus (CMV) se utiliz&oacute; el sistema ultramicroanalitico  (SUMA)7,8 El diagn&oacute;stico del virus de Epstein-Barr (EBV) se realiz&oacute;  determinando la presencia de anticuerpos contra el ant&iacute;geno de la  c&aacute;pside (VCA) y el ant&iacute;geno temprano (EA) mediante inmunofluorescencia  indirecta.9 Esta misma t&eacute;cnica se aplic&oacute; para detectar los  anticuerpos contra el ant&iacute;geno de membrana del virus varicela-zoster  (VZV).10        <P>Como resultado de nuestro estudio encontramos que de los 20 pares de  suero estudiados, 3 de ellos tuvieron ca&iacute;da del t&iacute;tulo de  anticuerpos tanto a rub&eacute;ola como a sarampi&oacute;n, 8 s&oacute;lo  a rub&eacute;ola y 9 s&oacute;lo a sarampi&oacute;n.        <P>Como se muestra en la tabla, el 80 % de los casos (16 pares de sueros)  present&oacute; incremento en el t&iacute;tulo de anticuerpos en el segundo  suero a alg&uacute;n miembro de la familia Herpesviridae y, como se puede  apreciar, se encontraron algunas combinaciones de EBV con otros miembros  de la misma familia.        <P><B>TABLA . </B>Positividad a la familia Herpesviridae en 20 pares de  sueros con ca&iacute;da de t&iacute;tulos de anticuerpos a rub&eacute;ola  y/o sarampi&oacute;n      <BR>&nbsp;      <CENTER><TABLE BORDER WIDTH="390" BORDERCOLOR="#000000" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>Virus</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Pares de sueros</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>%</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=CENTER>      <CENTER>EBV</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=CENTER>      <CENTER>3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=CENTER>      <CENTER>15</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>HSV</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>5</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>VZV</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>2</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>10</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>EBV +otro</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>9</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>45</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>Total</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>16</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>80</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE></CENTER>  &nbsp;      <CENTER>Combinaciones m&aacute;s frecuentes:EBV + VZV = 3</CENTER>        <CENTER>EBV + HSV + CMV = 3</CENTER>          <P>Para interpretar estos resultados hay que tener en cuenta que algunos  virus son modula dores de la respuesta inmune11,12 y causan aumento o depresi&oacute;n  en la formaci&oacute;n de anticuerpos para ant&iacute;geno no relacionados.  De igual forma, estudios recientes reportan una estimulaci&oacute;n de  anticuerpos contra el virus de la rub&eacute;ola durante una infecci&oacute;n  con EBV,13 as&iacute; como estimulaci&oacute;n de anticuerpos contra HSV  1 y 2, y CMV durante la vacunaci&oacute;n de ni&ntilde;os con VZV.14        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En particular para el EBV, los mayores niveles de anticuerpos contra  un virus heter&oacute;logo encontrados durante la infecci&oacute;n primaria  probablemente son el resultado de una activa ci&oacute;n policlonal de  c&eacute;lulas B. Esta estimulaci&oacute;n no es necesariamente un efecto  de EBV por s&iacute; mismo. la producci&oacute;n de linfoquinas inducidas  por la infecci&oacute;n puede mediar tambi&eacute;n la estimulaci&oacute;n  de las c&eacute;lulas B para incrementar la producci&oacute;n de IgG.1  Estudios <I>in vitro </I>sugieren que otros agentes como sarampi&oacute;n,  rub&eacute;ola, VZV y prote&iacute;nas derivadas purificadas, pueden causar  aumentos de anticuerpos para virus heter&oacute;logos.15        <P>Los altos flujos de anticuerpos a rubeola y/o sarampi&oacute;n encontrados  en los primeros sueros de aquellos pares donde tambi&eacute;n se determinaron  altos t&iacute;tulos a EBV y VZV (14 de 20 para el 70 %) pudieran interpretarse  como una respuesta policlonal a virus heter&oacute;logos como la rub&eacute;ola  y el sarampi&oacute;n. Esto puede verse reafirmado por la presencia del  incremento del t&iacute;tulo de anticuerpos a EBV y VZV en el segundo suero  de estos pares.        <P>Otro virus de la familia Herpesviridae para el cual se ha descrito una  disminuci&oacute;n de la respuesta de anticuerpos a otros virus cuando  se produce coinfecci&oacute;n es el Herpesvirus 6 (HV-6), el agente causal  de exantema <I>subitum.</I>16 En nuestro estudio, la presencia de anticuerpos  contra este virus no fue testada por no contar con un sistema para su diagn&oacute;stico,  pero teniendo en cuenta estudios anteriores,17,18 donde tambi&eacute;n  se ha reportado la alteraci&oacute;n de la respuesta inmune adquirida transplacentaria  mente, podemos plantear una posible coinfecci&oacute;n entre el HV-6 y  sarampi&oacute;n o rub&eacute;ola en el 20 % de los sueros estudiados donde  se encontr&oacute; la misma respuesta an&oacute;mala a estos 2 &uacute;ltimos  virus, pero sin positividad a ninguno de los miembros de la familia Herpesviridae  aqu&iacute; testados.        <P>Aunque este efecto del HV-6 de suprimir la respuesta inmune se ha descrito  s&oacute;lo para el virus del sarampi&oacute;n, planteamos la posibilidad  del mismo efecto sobre la respuesta inmune al virus de la rub&eacute;ola,  porque el mecanismo propuesto para ello ha sido que el HV-6 tiene un tropismo  por los linfocitos T maduros CD4+,17 y que la alteraci&oacute;n funcional  de estas c&eacute;lulas es la responsable de la disfunci&oacute;n del sistema  inmune y, como se conoce, estas c&eacute;lulas son tambi&eacute;n las responsables  inmediatas de la respuesta inmune contra el virus de la rub&eacute;ola.        <P>Para esclarecer los resultados y confirmar un diagn&oacute;stico se  hace necesario el estudio de los sueros de la fase aguda por m&eacute;todos  como la inmunofluorescencia, la microscopia electr&oacute;nica, la reacci&oacute;n  en cadena de la polimerasa y la hibridizaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos,  entre otras, que permiten poner en evidencia, de forma espec&iacute;fica  la presencia de los virus del sarampi&oacute;n y la rub&eacute;ola. Est&aacute;n  en curso estudios orientados en esta direcci&oacute;n.  <H3>  REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H3>    <OL>      <LI>  Feinstone SM, Kapikian AZ, Purcell RH. Hepatitis A: detection by immune  electron microscopy of a virus-like antigen associated with acute illness.  Science 1973;182:1026-8.</LI>        <LI>  Lemon SM, Robertson BH. Current perspective in the virology and molecular  biology of hepatitis A virus. Virology 1993;4:285-95.</LI>        <LI>  Gust ID, Coulepis AG, Feinstone SM, Locarnini SA, Moritsugu Y, Najera R,  et al. Taxonomic classification of hepatitis A virus. Intervirology 1983;20:1-7.</LI>        <LI>  Borovec SV, Anderson DA. Synthesis and assembly of hepatitis A virus-specific  proteins in BS-C-1 cells. 1993;67:3- -095-102.</LI>        <LI>  Chastonay J de, Sielgl G. Replicative events in hepatitis A virus-infected  MRC-5 cells. Virology 1987;157:268-75.</LI>        ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>  Bishop NE, Anderson DA. RNA-dependent cleavage of VP0 capsid protein in  provirions of hepatitis A virus. Virology 1993;197:616-23.</LI>        <LI>  Bishop NE, Hugo DL, Borovec SV, Anderson DA. Rapid and efficient purification  of hepatitis A virus from cell culture. J Virol Methods 1994:47:203-16.</LI>        <LI>  Elkana Y, Thornton A, Zuckerman AJ. Purification of hepatitis A virus by  affinity chromatography. J Immunol Methods 1979;25:185-7.</LI>        <LI>  Pellegrini V, Fineschi N, Matteucci G, Marsili I, Nencioni L, Puddu M,  et al. Preparation and immunogenicity of an inactivated hepatitis A vaccine.  Vaccine 1993;11(3):383-7.</LI>        <LI>  Flehmig B, Heinriy U, Pfisterer M. Prospects for a hepatitis A virus vaccine.  Prog Med Virol 1990;37:56-71.</LI>        <LI>  Andr&eacute; FE, Hepburn A, D'Hondt E. Inactivated candidate vaccines for  hepatitis A. Prog Med Virol 1990;37:72-95.</LI>        <LI>  Gauss-M&uuml;ller V, Lottspeich F, Deinhardt F. Characterization of hepatitis  A virus structural proteins. Virology 1986;155:732- 6.</LI>        <LI>  Ross BC, Anderson DA. Characterization of hepatitis A virus capsid protein  with antisera raised to recombinant antigens. J Virol Methods 1991;32:213-20.</LI>        <LI>  M&aacute;s P, Balmaseda A, Delgado G, Castillo A, Comellas MM, Palomera  R. Aislamiento del virus de la hepatitis A en cultivo de tejido: informe  preliminar. Rev Cubana Med Trop 1991;43(3):206-7.</LI>        <LI>  Lowry O, Roselrough NJ, Farr LA, Randal RI. Protein measurement with the  folin phenol reagent. J Biol Chem 1951;193:265-75.</LI>        ]]></body>
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