<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0375-0760</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Medicina Tropical]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev Cubana Med Trop]]></abbrev-journal-title>
<issn>0375-0760</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Centro Nacional de Información de Ciencias Médicas]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0375-07601998000200005</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inmunovaloración de anticuerpos IgM en muestras sospechosas de sarampión clínicamente]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ribas Antúnez]]></surname>
<given-names><![CDATA[María de los Ángeles]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Arocha Rosete]]></surname>
<given-names><![CDATA[Yaima]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Toraño Canto]]></surname>
<given-names><![CDATA[Ileana]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rodríguez Valdés]]></surname>
<given-names><![CDATA[Carina]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Ciudad de La Habana ]]></addr-line>
<country>Cuba</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>08</month>
<year>1998</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>08</month>
<year>1998</year>
</pub-date>
<volume>50</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>105</fpage>
<lpage>109</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0375-07601998000200005&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0375-07601998000200005&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0375-07601998000200005&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se realiza el estudio de 60 sueros pareados sospechosos de Sarampión clínicamente llegados al Laboratorio Diagnóstico del Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kourí" entre enero y mayo de 1996, procedentes de la vigilancia seroepidemiológica de la vacuna triple viral (sarampion, rubéola y parotiditis), a los cuales se les realizó la detección de anticuerpos hemaglutinantes a sarampión y rubéola, así como de IgM, con el estuche diagnóstico Clark Laboratories INC Measles IgM ELISA. Los casos positivos se confirmaron por las técnicas de inmunofluorescencia indirecta-IgM y neutralización. Se obtuvieron por inhibición de la hemaglutinación, 3 casos positivos a sarampión y rubéola, los cuales negativos a IgM de sarampión y a los que se les determinaron anticuerpos a Epstein Barr, Citomegalovirus y al virus herpes simple mediante inmunifluorescencia indirecta (IFI) la capacidad de estos virus de inducir respuesta policlonal. Por medio del ELISA IgM Clark se detectaron 6 casos positivos los cuales resultaron negativos por IFI.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[60 matched sera clinically syspicious of measles that were received at the Diagnostic Laboratory of the "Pedro Kourí" Tropical Medicine Institute between January and May, 1996, coming from the seroepidemiological surveillance of the MPR vaccine were studied. The detection of measles and rubella hemagglutinant antibodies, as well as of IgM, was carried out with the Clark Laboratories INC. Measles IgM ELISA diagnostic kit. The positive cases were confirmed by the IgM-indirect immunofluorescence and neutralization. 3 positive cases to measles and rubella, which were negative to measles IgM, were obtained by hemagglutination inhibition. Antibodies against Epstein Barr, cytomegalovirus and herpes simplex virus were also determined by indirect immunofluorescence (IIF) due to the capacity of these viruses to induces polyclonal responses. 6 positive cases, which were negative by IIF, were detected by means of the above mentioned diagnostic kit.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[VIRUS DEL SARAMPION]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[IGM]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[ANTICUERPOS ANTIIDIOTIPOS]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[TECNICA DEL ANTICUERPO FLUORESCENTE INDIRECTA]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[TESTS DE INHIBICION DE HEMAGLUTINACION]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[TEST DE ELISA]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[MEASLES VIRUS]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[IGM]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[ANTIBODIES, ANTI-IDIOTYPIC]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[FLUORESCENT ANTIBODY TECHNIQUE, INDIRECT]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[HEMAGGLUTINATION INHIBITION TESTS]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[ENZYME-LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Inmunovaloraci&oacute;n de anticuerpos IgM en muestras sospechosas de sarampi&oacute;n cl&iacute;nicamente</H2>     <P><A HREF="#autores"><I>Dra. Mar&iacute;a de los &Aacute;ngeles Ribas Ant&uacute;nez,<SUP>1</SUP> Lic. Yaima Arocha Rosete,<SUP>2</SUP> T&eacute;c. Ileana Tora&ntilde;o Canto<SUP>3</SUP> y T&eacute;c. Carina Rodr&iacute;guez Vald&eacute;s<SUP>3</sup></I></A></P> <H4>Resumen</H4><DIR>      <P>Se realiza el estudio de 60 sueros pareados sospechosos de Sarampi&oacute;n cl&iacute;nicamente llegados al Laboratorio Diagn&oacute;stico del Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" entre enero y mayo de 1996, procedentes de la vigilancia seroepidemiol&oacute;gica de la vacuna triple viral (sarampion, rub&eacute;ola y parotiditis), a los cuales se les realiz&oacute; la detecci&oacute;n de anticuerpos hemaglutinantes a sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola, as&iacute; como de IgM, con el estuche diagn&oacute;stico Clark Laboratories INC Measles IgM ELISA. Los casos positivos se confirmaron por las t&eacute;cnicas de inmunofluorescencia indirecta-IgM y neutralizaci&oacute;n. Se obtuvieron por inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n, 3 casos positivos a sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola, los cuales negativos a IgM de sarampi&oacute;n y a los que se les determinaron anticuerpos a Epstein Barr, Citomegalovirus y al virus herpes simple mediante inmunifluorescencia indirecta (IFI) la capacidad de estos virus de inducir respuesta policlonal. Por medio del ELISA IgM Clark se detectaron 6 casos positivos los cuales resultaron negativos por IFI. </P>     <P>Descriptores DeCS: VIRUS DEL SARAMPION/immunolog&iacute;a; IGM/sangre; ANTICUERPOS ANTIIDIOtipos; TECNICA DEL ANTICUERPO FLUORESCENTE INDIRECTA/m&eacute;todos; TESTS DE INHIBICION DE HEMAGLUTINACION/m&eacute;todos; TEST DE ELISA/m&eacute;todos.</P></DIR>      <P>El sarampi&oacute;n es una enfermedad viral muy contagiosa caracterizada por fiebre, tos, coriza, conjuntivitis y un exantema espec&iacute;fico o manchas de Koplik en la cavidad bucal, seguido de una erupci&oacute;n maculopapular generalizada. Su v&iacute;a principal de diseminaci&oacute;n es la respiratoria y afecta, fundamentalmente, a la poblaci&oacute;n infantil con un rango de edades entre 2 y 6 a&ntilde;os, la mayor incidencia es en los pa&iacute;ses menos desarrollados, en los cuales m&aacute;s de 1 000 000 de ni&ntilde;os mueren cada a&ntilde;o como resultado de esta enfermedad.1 Esta afecci&oacute;n es prevenida por la administraci&oacute;n de una vacuna viva atenuada, la cual puede ser combinada con la de la rub&eacute;ola y la de la parotiditis. </P>     <P>La respuesta inmune del hu&eacute;sped a la infecci&oacute;n es r&aacute;pida y caracter&iacute;stica, los anticuerpos se detectan primero en forma coincidente con la aparici&oacute;n del <I>rash</I>. La primera clase de anticuerpos en aparecer son los de tipo IgM, seguidos de IgG1 e IgG4, los que corresponden a sitios espec&iacute;ficos del virus y pueden ser detectados por inmunoensayos con el empleo de prote&iacute;nas virales purificadas. La presencia de anticuerpos IgM es relativamente corta, dura entre 1 y 3 meses y son los de mayor importancia por su significado en la infecci&oacute;n reciente, alcanzan su valor m&aacute;ximo a los 10 d de iniciado el <I>rash</I>; los anticuerpos de tipo IgG duran de por vida, determinan la inmunidad por tiempo prolongado despu&eacute;s de una infecci&oacute;n natural o de una inmunizaci&oacute;n activa.1-4 </P>     <P>Los anticuerpos circulantes pueden ser demostrados por una gran variedad de sistemas diagn&oacute;sticos, como son la inmunofluorescencia indirecta (IFI), los ensayos inmunoenzim&aacute;ticos (ELISA), inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n (IH), la neutralizaci&oacute;n (Nt) y la fijaci&oacute;n del complemento (FC), etc&eacute;tera.5 </P>     <P>Para el estudio de la presencia de anticuerpos de tipo IgM son muy usados los ensayos indirectos y los de captura con la aplicaci&oacute;n de los anticuerpos monoclonales biotinilados y como ant&iacute;genos las prote&iacute;nas N y P expresadas en baculovirus, lo que le da una mayor sensibilidad y especificidad al ensayo.3 </P>     <P>En Cuba, desde 1988, se estableci&oacute; un s&oacute;lido sistema de vigilancia seroepidemiol&oacute;gica, se estudian todos los casos sospechosos de sarampi&oacute;n, rub&eacute;ola y parotiditis por la t&eacute;cnica de inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n6 a partir de la implantaci&oacute;n del Programa de Vacunaci&oacute;n con la Triple Viral a la poblaci&oacute;n infantil. </P>     <P>Desde 1995, la Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud (OPS) y los pa&iacute;ses de la regi&oacute;n adoptaron la medida de eliminar el sarampi&oacute;n para el a&ntilde;o 2000 en las Am&eacute;ricas, para lo cual estableci&oacute; que se deb&iacute;a mantener una vigilancia minuciosa de todas las enfermedades febriles exantem&aacute;ticas y realizar la detecci&oacute;n de anticuerpos IgM a todos los sueros de los pacientes que se ci&ntilde;an a la definici&oacute;n de caso cl&iacute;nico de sarampi&oacute;n.7 </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En este estudio se introduce la inmunovaloraci&oacute;n de IgM al virus del sarampi&oacute;n como parte de la vigilancia seroepidemiol&oacute;gica nacional de sarampi&oacute;n, rub&eacute;ola y parotiditis que se lleva a cabo en el Laboratorio Diagn&oacute;stico del Departamento de Virolog&iacute;a del Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" (IPK). </P> <H4>M&eacute;todos</H4>     <P>El universo de trabajo estuvo constituido por 60 sueros pareados pertenecientes a casos cl&iacute;nicamente sospechosos de sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola, recibidos en el Laboratorio Diagn&oacute;stico del Departamento de Virolog&iacute;a del IPK a trav&eacute;s del Sistema Nacional de Vigilancia Seroepidemiol&oacute;gica de la vacuna Triple Viral (sarampi&oacute;n, rub&eacute;ola y parotiditis),procedentes de diferentes provincias del pa&iacute;s en el per&iacute;odo comprendido entre enero y mayo de 1996. Las muestras fueron almacenadas a -20 <SUP>o</SUP>C hasta su uso. </P>     <P><I>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno de sarampi&oacute;n para la IH </i>e<I> IFI.</I> Se inocul&oacute; la cepa Edsmonton del virus del sarampi&oacute;n en c&eacute;lulas de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano (VERO), despu&eacute;s de 30 min en contacto a 37 <SUP>o</SUP>C con movimientos ocasionales, se a&ntilde;adi&oacute; medio 199 con 2 % de suero de ternera fetal (STF), 0,1 % de antibi&oacute;tico (penicilina y estreptomicina) y se incub&oacute; a 37 <SUP>o</SUP>C. A las 72 h se realiz&oacute; cambio de medio y se a&ntilde;adi&oacute; medio 199 sin STF. Las c&eacute;lulas se observaron a diario hasta la aparici&oacute;n de m&aacute;s de 75 % de efecto citop&aacute;tico (ECP). &Eacute;stas se desprendieron con perlas de cristal. Se congelaron y descongelaron 8 veces y se sonicaron a raz&oacute;n de 6 ciclos de 30 s y se centrifugaron luego a1 500 r.p.m. durante 10 min. </P>     <P><I>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno de rub&eacute;ola para la IH e IFI.</i> Se prepar&oacute; seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por Vejtop en 1986.La cepa utilizada fue donada por el Instituto "Carlos III" de Majadahonda, Espa&ntilde;a, y cultivada en c&eacute;lulas VERO con medio 199, suplementado con 2 % de STF m&aacute;s antibi&oacute;tico (100 m/mL de penicilina y 100 m/mL estreptomicina) hasta observar m&aacute;s del 75 % de ECP en las c&eacute;lulas infectadas.8 </P>     <P><I>Inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n</i>. Para la detecci&oacute;n de los anticuerpos inhibidores de la hemaglutinaci&oacute;n se realiz&oacute; la t&eacute;cnica de IH seg&uacute;n el m&eacute;todo adaptado para microm&eacute;todo con algunas modificaciones.9 </P>     <P><I>Inmunofluorescencia indirecta para la detecci&oacute;n de anticuerpos de tipo IgM de sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola.</i> Se prepararon l&aacute;minas para la detecci&oacute;n de anticuerpos de tipo IgM de sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola seg&uacute;n el m&eacute;todo empleado por Knapp.10 Las c&eacute;lulas VERO infectadas y sin infectar con el ant&iacute;geno de sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola fueron fijadas con acetona a las l&aacute;minas de inmunofluorescencia, a las cuales se les a&ntilde;adieron 10 mL de muestras previamente tratadas con absorbente del factor reumatoideo (Beringher) y se incubaron 3 h a 37 <SUP>o</SUP>C. Pasado este tiempo se lavaron con PBS y se les adicion&oacute; el conjugado anti-IgM humano marcado con azul de Evans (Biocen) y se incubaron 30 min a 37 <SUP>o</SUP>C. Se volvieron a realizar lavados sucesivos con PBS y despu&eacute;s se a&ntilde;adi&oacute; glicerina al 1 %, se coloc&oacute; el cubreobjeto y se observ&oacute; en el microscopio de fluorescencia. Se consider&oacute; una muestra positiva aqu&eacute;lla que presentara fluorescencia en las c&eacute;lulas infectadas y ausencia de &eacute;sta en las c&eacute;lulas no infectadas. </P>     <P><I>Estuche diagn&oacute;stico "Clark Laboratories INC. Measles IgM ELISA" (EE.UU.). </i>Para la detecci&oacute;n de anticuerpos de tipo IgM por ELISA, se emple&oacute; el estuche diagn&oacute;stico antes citado y se sigui&oacute; la metodolog&iacute;a recomendada por el fabricante. </P>     <P><I>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno de Citomegalovirus para la IFI. </i>La cepa de referencia AD169 se inocul&oacute; en la l&iacute;nea de fibroblastos humanos diploides (PH), las c&eacute;lulas se mantuvieron en medio Eagle (MEM) al cual se le adicionaron 1 % de glutamina; 0,5 % de penicilina y estreptomicina; y STF al 10 % para su multiplicaci&oacute;n. Para el mantenimiento de la c&eacute;lula se utiliz&oacute; STF al 2 %. </P>     <P><I>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno del virus del herpes simple (HSV) para la IFI</i>. Se prepar&oacute; a partir de cultivo de c&eacute;lulas VERO infectadas con la cepa 107 de HSV tipo 1 obtenida de un aislamiento en el laboratorio y caracterizada por anticuerpos monoclonales <I>(Monoclonal Kit Herpes Simplex Biomeriux).</I> El procedimiento de fijaci&oacute;n de las c&eacute;lulas infectadas se realiz&oacute; de acuerdo con lo descrito previamente en otros estudios.11 </P>     <P><I>IFI para la detecci&oacute;n de anticuerpos IgG de Citomegalovirus (CMV) y HSV. </i>Se utilizaron c&eacute;lulas diploides de pulm&oacute;n humano (PH) infectadas con CMV y c&eacute;lulas VERO infectadas con HSV, fijadas a las l&aacute;minas de fluorescencia. Se a&ntilde;adieron los sueros diluidos desde 1:20 a 1:1 280, se tom&oacute; como criterio de positividad la diluci&oacute;n 1:20. Se a&ntilde;adi&oacute; el conjugado anti-IgG humano marcado con fluorescencia (Biocen, Cuba). Se consider&oacute; como t&iacute;tulo de anticuerpos a la &uacute;ltima diluci&oacute;n del suero en la cual la prueba fue positiva. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>IFI para la detecci&oacute;n de anticuerpos de tipo IgG contra la prote&iacute;na de la c&aacute;pside viral (VCA) del virus Epstein Barr (EBV)</i>. Se usaron l&aacute;minas fijadas con c&eacute;lulas P3HR1 como fuente de ant&iacute;geno y un conjugado anti-IgG humano marcado con isotiocianato de fluoresce&iacute;na (Biocen, Cuba). Se emplearon diluciones cu&aacute;druples del suero, desde 1:5 hasta 1:1 280. </P>     <P><I>IFI para la detecci&oacute;n de ant&iacute;geno temprano (EA) al EBV</i>. Se emple&oacute; igual metodolog&iacute;a que para la detecci&oacute;n de anticuerpos de la c&aacute;pside viral, pero se fijaron a las l&aacute;minas de fluorescencia c&eacute;lulas Raji tratadas previamente para que se expresara el ant&iacute;geno temprano y se us&oacute; una sola diluci&oacute;n del suero (1:5). El criterio de positividad estuvo dado por la aparici&oacute;n de fluorescencia, indicativo de la presencia de ant&iacute;geno temprano. </P>     <P><I>T&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n al virus del sarampi&oacute;n. </i>Se realiz&oacute; por microneutralizaci&oacute;n seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito para la determinaci&oacute;n de anticuerpos neutralizantes al sarampi&oacute;n.9 </P> <H4>RESULTADOS</H4>     <P>De los 60 pares de suero estudiados, 3 (5 %) presentaron seroconversi&oacute;n o aumento del t&iacute;tulo del segundo suero 4 veces o m&aacute;s con respecto al primero, cuando se les hizo la IH simult&aacute;neamente a sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola. A &eacute;stos se les realiz&oacute; IFI-IgM y fueron negativos a ambos virus de igual forma que al ser estudiados por la t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n al virus del sarampi&oacute;n. </P>     <P>Debido a la positividad de estos sueros tanto al virus del sarampi&oacute;n como al de la rub&eacute;ola por IH, se les determinaron anticuerpos a otros agentes virales como EBV, CMV, HSV, mediante la t&eacute;cnica de la IFI; se encontr&oacute; en uno de ellos positividad al ant&iacute;geno temprano de EBV y aumento del t&iacute;tulo al ant&iacute;geno de la c&aacute;pside viral. En el segundo par de sueros se encontr&oacute; alto t&iacute;tulo a CMV y el tercer par fue negativo a los virus anteriores. Los 57 pares de sueros restantes fueron negativos por la t&eacute;cnica de la inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n (tabla 1). </P>     <P ALIGN="CENTER">Tabla 1. Detecci&oacute;n de anticuerpos a EBV, CMV y HSV por IFI en los 3 sueros positivos a sarampi&oacute;n y la rub&eacute;ola por IH</P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=0 BORDER=0 CELLPADDING=4 WIDTH=611> <TR><TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Casos</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Rub&eacute;ola</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">Sarampi&oacute;n</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">EA</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">VCA</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">CMV</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">HSV</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">-10/160</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">-4/16</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">20/80</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">80/80</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">80/80</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10/160</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">-4/16</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">-</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">80/80</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">320/320</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">80/80</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">3</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">10/80</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">8/32</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">-</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">80/80</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">80/80</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">80/80</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    <p></P>      <P ALIGN="CENTER">EA: Ant&iacute;geno temprano. VCA: Ant&iacute;geno de la capside viral. CMV[ Citomegado virus. HSV: Virus del herpes simple.</P>     <P>En la tabla 2 se muestran los resultados de la detecci&oacute;n de IgM al virus del sarampi&oacute;n con el estuche diagn&oacute;stico ELISA IgM Clark, se encontraron 6 casos positivos (10 %) por esta t&eacute;cnica, los cuales no coinciden con los que seroconvirtieron por IH. A los 6 casos anteriores se les realiz&oacute; la IFI-IgM al virus del sarampi&oacute;n para confirmar su positividad, todos fueron negativos. </P>     <P ALIGN="CENTER">TABLA 2. Resultados del estudio por ELISA IgM Clark e IH de los casos estudiados</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=0 BORDER=0 CELLPADDING=4 WIDTH=624> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>T&eacute;cnica&nbsp;</TD> <TD WIDTH="40%" VALIGN="TOP" COLSPAN=2>     <P ALIGN="CENTER">Positivos</TD> <TD WIDTH="40%" VALIGN="TOP" COLSPAN=2>     <P ALIGN="CENTER">Negativos</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>empleada&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">No</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">%</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">No</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">%</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>IH</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">3*</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">5</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">57</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">95</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>IgM Clark</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">6</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">54</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">90</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p></P>      <P ALIGN="CENTER">* Los 3 sueros fueron negativos a IgM.</P> <H4>Discusi&oacute;n</H4>     <P>La detecci&oacute;n de anticuerpos de tipo IgM en casos cl&iacute;nicamente probables de sarampi&oacute;n, es la t&eacute;cnica fundamental de diagn&oacute;stico que se ha puesto en pr&aacute;ctica en el prop&oacute;sito de la OPS de eliminar esta enfermedad en la regi&oacute;n de las Am&eacute;ricas para el a&ntilde;o 2000, con el objetivo de sustituir las muestras pareadas por monosueros que permitan realizar el diagn&oacute;stico de esta entidad en la fase aguda de la enfermedad lo m&aacute;s r&aacute;pido posible.6 </P>     <P>En este trabajo estudiamos 60 pares de sueros por IH, t&eacute;cnica muy usada en diferentes laboratorios, con la que encontramos 3 sueros positivos a sarampi&oacute;n. &Eacute;stos al ser estudiados para el virus de la rub&eacute;ola por igual t&eacute;cnica, metodolog&iacute;a aplicada en nuestro laboratorio debido a la posibilidad de errores de diagn&oacute;stico cl&iacute;nico, fueron positivos tambi&eacute;n. </P>     <P>De todos los casos estudiados con el diagn&oacute;stico de sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola, ninguno se ce&ntilde;&iacute;a a la definici&oacute;n de caso probable de sarampi&oacute;n adoptada por la OPS/OMS, donde se expresa que un caso t&iacute;pico de esta enfermedad debe presentar: erupci&oacute;n maculopapular generalizada de 3 d o m&aacute;s de duraci&oacute;n, acompa&ntilde;ada por fiebre casi siempre elevada y 1 de los siguientes s&iacute;ntomas: tos, coriza o conjuntivitis.12 En nuestros pacientes predomin&oacute; el cuadro cl&iacute;nico dado por fiebre y <I>rash</I>, sin ninguna de las otras manifestaciones, por lo que debemos clasificarlos como casos sospechosos de sarampi&oacute;n, &eacute;stas no son muestras cl&iacute;nicamente adecuadas para el diagn&oacute;stico de esta enfermedad. </P>     <P>Como las reacciones cruzadas entre los virus son muy conocidas, por ejemplo, aqu&eacute;llas que ocurren entre parotidis y parainfluenza, as&iacute; como entre los miembros de la familia Herpesviridae como son los virus Epstein Barr, Citomegalovirus y herpesvirus, decidimos realizar la detecci&oacute;n de los anticuerpos a &eacute;stos en los 3 pares de sueros, por ser los que mayor n&uacute;mero de reacciones cruzadas dan; nuestros resultados coinciden con las investigaciones realizadas por <I>Resik </I>y otros en 1996, donde se estudi&oacute; un grupo de 20 muestras positivas a sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola de forma simult&aacute;nea y a las que se les realiz&oacute; detecci&oacute;n de anticuerpos a HSV, CMV y EBV, y se encontr&oacute; un mayor n&uacute;mero de muestras positivas a este &uacute;ltimo.13 </P>     <P>Desde el punto de vista epidemiol&oacute;gico no se encontraron casos de sarampi&oacute;n y rub&eacute;ola en zonas geogr&aacute;ficas cercanas a las que viven estos pacientes (Pinar del R&iacute;o, Holgu&iacute;n y Santiago de Cuba), ni se conoce del arribo de &eacute;stos de un pa&iacute;s donde a&uacute;n se reporten estas enfermedades, todo lo que nos lleva a concluir que desde el punto de vista cl&iacute;nico, microbiol&oacute;gico y epidemiol&oacute;gico no nos encontramos en presencia de casos con estas enfermedades. </P>     <P>En estudios realizados por diferentes autores, se plantea que la positividad de los sueros a diferentes agentes a la vez puede deberse a varias causas, entre las que tenemos el proceso de reactivaci&oacute;n de virus heter&oacute;logos, la estimulaci&oacute;n selectiva de c&eacute;lulas B de memoria por ant&iacute;genos relacionados o estimulaci&oacute;n policlonal de c&eacute;lulas B durante infecci&oacute;n viral. El EBV, el CMV y el sarampi&oacute;n se caracterizan por su capacidad de dar respuesta policlonal. Se ha llegado a conocer que algunos virus pueden ser moduladores no espec&iacute;ficos de la respuesta inmune y que causan incremento o depresi&oacute;n en la formaci&oacute;n de anticuerpos para ant&iacute;genos no relacionados.13 </P>     <P>Para la detecci&oacute;n de IgM la fecha de la toma de la muestra en las fases agudas y convaleciente es muy importante. En nuestros casos el intervalo del segundo suero fue de 15 d de iniciado el <I>rash</I>, a partir del d&eacute;cimo d&iacute;a es el tiempo ideal para la realizaci&oacute;n de la investigaci&oacute;n debido a que es el momento en que la IgM alcanza su valor m&aacute;ximo. En el estudio efectuado por <I>Mayo </I>y otros, el 98,4 % de los casos positivos a IgM se encontr&oacute; en muestras tomadas despu&eacute;s de 15 d de iniciado el <I>rash</I>.2 </P>     <P>Estos casos fueron estudiados por IFI, ya que dentro de las recomendaciones del estuche Clark est&aacute; la confirmaci&oacute;n de los casos dudosos y positivos por esta t&eacute;cnica, adem&aacute;s, por ser de gran sensibilidad y especificidad y por contar en nuestro laboratorio con la experiencia para el trabajo con esta t&eacute;cnica. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En numerosos estudios se ha utilizado la IFI para la detecci&oacute;n de IgM en pacientes sospechosos de sarampi&oacute;n y otras enfermedades teniendo en cuenta siempre la experiencia del observador.14,15 </P>     <P>Las 6 muestras positivas a IgM ELISA y negativas por IFI-IgM, nos hacen pensar en un resultado falso positivo por ELISA, lo que es caracter&iacute;stico de los sistemas de ELISA indirectos debido a la interferencia del factor reumatoideo (FR) presente en la muestra. Este factor puede ser eliminado por el tratamiento de las muestras con soluci&oacute;n absorbente del FR, pero en diferentes estudios relacionados con la eficacia de &eacute;ste, se han vertido diferentes opiniones con respecto a esto, ya que en investigaciones realizadas por <I>Olli Meurman</I>, se considera la necesidad de volver a tratar las muestras con soluci&oacute;n absorbente del FR, una vez tratadas.16,17 Este autor plantea que no se ha reportado una v&iacute;a ideal para remover el FR y que este factor es el principal problema t&eacute;cnico con respecto a la detecci&oacute;n de IgM en ensayos indirectos. </P>     <P>Nuestro estudio coincide con el realizado por <I>Mayo </I>y otros, donde se encontraron 3 resultados falsos positivos por ELISA IgM indirecto en 93 sueros pareados estudiados al comparar con el ELISA IgG y la fijaci&oacute;n del complemento.18 </P>     <P>Consideramos que el ELISA IgM indirecto es indicador de positividad en el sarampi&oacute;n agudo, sobre todo en aquellos lugares donde existen muchas muestras positivas a esta enfermedad y en brotes epid&eacute;micos. En presencia de casos espor&aacute;dicos cl&iacute;nicamente sospechosos como los que recibimos en nuestro laboratorio, se debe mantener la detecci&oacute;n de anticuerpos en muestras pareadas por la t&eacute;cnica de IH, adem&aacute;s de la detecci&oacute;n de IgM para la confirmaci&oacute;n de los casos. </P> <H4>SUMMARY</H4>     <P>60 matched sera clinically syspicious of measles that were received at the Diagnostic Laboratory of the "Pedro Kour&iacute;" Tropical Medicine Institute between January and May, 1996, coming from the seroepidemiological surveillance of the MPR vaccine were studied. The detection of measles and rubella hemagglutinant antibodies, as well as of IgM, was carried out with the Clark Laboratories INC. Measles IgM ELISA diagnostic kit. The positive cases were confirmed by the IgM-indirect immunofluorescence and neutralization. 3 positive cases to measles and rubella, which were negative to measles IgM, were obtained by hemagglutination inhibition. Antibodies against Epstein Barr, cytomegalovirus and herpes simplex virus were also determined by indirect immunofluorescence (IIF) due to the capacity of these viruses to induces polyclonal responses. 6 positive cases, which were negative by IIF, were detected by means of the above mentioned diagnostic kit. </P>     <P>Subject headings: MEASLES VIRUS/immunology; IGM/blood; ANTIBODIES, ANTI-IDIOTYPIC; FLUORESCENT ANTIBODY TECHNIQUE, INDIRECT/methods; HEMAGGLUTINATION INHIBITION TESTS/methods; ENZYME-LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY/methods. </P> <H4>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>Norrby E, Oxman M.. Measles virus. En: Fields BN, Knipe DM, eds. Virology. 2 ed. New York: Raven,1990;vol 1: 1013-37.</LI>    <!-- ref --><LI>Erdman D, Health J, Watson J, Markowitz L, Bellini W. Immunoglobulin M antibody response to measles virus following primary and secondary vaccination and natural virus infection. J Med Virol 1993;41(1):44-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Erdman D, Anderson L, Adams D, Stewart J, Markowitz L, Bellini W. Evaluation of monoclonal antibodies-based capture enzyme immunoassays for detection of specific antibodies to measles virus. J Clin Microbiol 1991;29(7):1466-71.</LI>    <!-- ref --><LI>Griffin D, Ward B, Esolen L. Pathogenesis of measles virus infection: an hypothesis for altered immune response. J Infet Dis 1994;170(Suppl 1):S24-31.</LI>    <!-- ref --><LI>Withers G, Sweimber I, Kleger B. Comparison of the MEASLESTAT M test with the Sucrose Gradient Centrifugation-Hemagglutination inhibition method for detection of measles virus-specific IgM. J Clin Microbiol 1992;30(8):2204-6.</LI>    <!-- ref --><LI>Galindo M. Sarampi&oacute;n. En: Programa de Eliminaci&oacute;n del Sarampi&oacute;n en la Rep&uacute;blica de Cuba. La Habana: Ministerio de Salud P&uacute;blica, 1995:1-5.</LI>    <!-- ref --><LI>Herts B. Sarampi&oacute;n. En: OPS. Programa Especial para Vacunas e Inmunizaciones (SVI). Informe final. Atlanta: Pan American Health Organization 1995:10-20.</LI>    <!-- ref --><LI>Herman KL, Rubella Virus. En: Lennette EH, Schmidt N. Diagnostic procedure for viral, rickettsial and chlamydial infection. 5ed. Washington, D.C.: American Public Health Association 1979:725-66.</LI>    <!-- ref --><LI>Gershony A, Krugman S. Measles virus. En: Lennette E, Schmidt N. Diagnostic procedure for viral, ricketsial and chlamidial infections. 5ed. Washington, D.C.: American Public Health Association;1979:665-93.</LI>    <!-- ref --><LI>Knapp W, Holabar K, Wick G, eds. Immunofluorescence and related staining techniques. Workshop report on microbiology and parasitology. Amsterdam:Elsevier,1978:299-308.</LI>    <!-- ref --><LI>Ribas MA, &Aacute;lvarez M, V&aacute;zquez S. Normalizaci&oacute;n y aplicaci&oacute;n de un ultramicroELISA para la detecci&oacute;n de anticuerpos al virus herpes simple. Rev Cubana Med Trop 1992;44(2):104-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Galindo M. Sarampi&oacute;n, rub&eacute;ola y parotiditis. En: Direcci&oacute;n Nacional de Epidemiolog&iacute;a. Programa de eliminaci&oacute;n del sarampi&oacute;n, rub&eacute;ola y parotiditis. La Habana: Ministerio de Salud P&uacute;blica, 1995:1-19.</LI>    <!-- ref --><LI>Resik S, Sariol C, &Aacute;lvarez M, Marrero M. Respuesta an&oacute;mala de anticuerpos en infecciones virales productoras de rash. Rev Cubana Med Trop 1996;48(1):56-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Mennich L, Goodanough F, Ray G. Use of immunofluorescence identifies measles virus infection. J Clin Microbiol; 1991;29(6):1148-50.</LI>    <!-- ref --><LI>Rossier E, Miller H, Mc Culloch B, Sullivan L, Ward K. Comparison of immunofluorescence and enzyme immunoassay for detection of measles-specific IgM antibody. J Clin Microbiol 1991;29(5):1069-71.</LI>    <!-- ref --><LI>Meurman O, Teuho P, Salmi A. Activation of rheumatoid factor during pregnancy. Lancet 1978;2:685-6.</LI>    <!-- ref --><LI>Tuokko H. Comparison of nonspecific reactivity in indirect and reverse immunoassays for measles and mumps immunoglobulin M antibodies. J Clin Microbiol 1984;20(5):972-6.</LI>    <!-- ref --><LI>Mayo D, Brennan T, Cornier D, Hadler J, Lamb P. Evaluation of a commercial measles virus Immunoglobulin M Enzyme Immunoassay. J Clin Microbiol 1991;29(12):2865-7.</LI>    </OL>      <P>Recibido: 28 de febrero de 1997. Aprobado: 14 de noviembre de 1997. </P>     <P>Dra. <I>Mar&iacute;a de los &Aacute;ngeles Ribas Ant&uacute;nez</I>. Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. </P> <OL>      <LI><A NAME="autores"></A>Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a. Investigadora Agregada.</LI>     <LI>Licenciada en Microbiolog&iacute;a.</LI>     <LI>T&eacute;cnica en Procesos Biol&oacute;gicos.</LI>    ]]></body>
<body><![CDATA[</OL>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Norrby]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Oxman]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Measles virus]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Fields]]></surname>
<given-names><![CDATA[BN]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Knipe]]></surname>
<given-names><![CDATA[DM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Virology]]></source>
<year>1990</year>
<edition>2 ed.</edition>
<page-range>1013-37</page-range><publisher-loc><![CDATA[New York: ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Raven]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Erdman]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Health]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Watson]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Markowitz]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bellini]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Immunoglobulin M antibody response to measles virus following primary and secondary vaccination and natural virus infection]]></article-title>
<source><![CDATA[J Med Virol]]></source>
<year>1993</year>
<volume>41</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>44-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Erdman]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Anderson]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Adams]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Stewart]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Markowitz]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bellini]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of monoclonal antibodies-based capture enzyme immunoassays for detection of specific antibodies to measles virus]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>1991</year>
<volume>29</volume>
<numero>7</numero>
<issue>7</issue>
<page-range>1466-71</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Griffin]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ward]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Esolen]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Pathogenesis of measles virus infection: an hypothesis for altered immune]]></article-title>
<source><![CDATA[J Infet Dis]]></source>
<year>1994</year>
<volume>170</volume>
<numero>^s(Suppl 1)</numero>
<issue>^s(Suppl 1)</issue>
<supplement>(Suppl 1)</supplement>
<page-range>S24-31</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Withers]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sweimber]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kleger]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of the MEASLESTAT M test with the Sucrose Gradient Centrifugation-Hemagglutination inhibition method for detection of measles virus-specific IgM]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>1992</year>
<volume>30</volume>
<numero>8</numero>
<issue>8</issue>
<page-range>2204-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Galindo]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Sarampión]]></article-title>
<source><![CDATA[Programa de Eliminación del Sarampión en la República de Cuba]]></source>
<year>1995</year>
<page-range>1-5</page-range><publisher-loc><![CDATA[La Habana ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Ministerio de Salud Pública]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Herts]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<collab>OPS</collab>
<source><![CDATA[Programa Especial para Vacunas e Inmunizaciones (SVI): Informe final]]></source>
<year>1995</year>
<page-range>10-20.</page-range><publisher-loc><![CDATA[Atlanta ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Pan American Health Organization]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Herman]]></surname>
<given-names><![CDATA[KL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Rubella Virus]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Lennette]]></surname>
<given-names><![CDATA[EH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schmidt]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Diagnostic procedure for viral, rickettsial and chlamydial infection]]></source>
<year>1979</year>
<edition>5ed</edition>
<page-range>725-66</page-range><publisher-loc><![CDATA[Washington, D.C ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[American Public Health Association]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gershony]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Krugman]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Measles virus]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Lennette]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schmidt]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Diagnostic procedure for viral, ricketsial and chlamidial infections]]></source>
<year>1979</year>
<edition>5ed</edition>
<page-range>665-93</page-range><publisher-loc><![CDATA[Washington, D.C ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[American Public Health Association]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Knapp]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Holabar]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wick]]></surname>
<given-names><![CDATA[G,]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Immunofluorescence and related staining techniques: Workshop report on microbiology and parasitology]]></source>
<year>1978</year>
<page-range>299-308</page-range><publisher-loc><![CDATA[Amsterdam ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Elsevier]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ribas]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Álvarez]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vázquez]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Normalización y aplicación de un ultramicroELISA para la detección de anticuerpos al virus herpes simple]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Med Trop]]></source>
<year>1992</year>
<volume>44</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>104-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Galindo]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Sarampión, rubéola y parotiditis]]></article-title>
<collab>Dirección Nacional de Epidemiología</collab>
<source><![CDATA[Programa de eliminación del sarampión, rubéola y parotiditis]]></source>
<year>1995</year>
<page-range>1-19</page-range><publisher-loc><![CDATA[La Habana ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Ministerio de Salud Pública]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Resik]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sariol]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Álvarez]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Marrero]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta anómala de anticuerpos en infecciones virales productoras de rash]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Med Trop]]></source>
<year>1996</year>
<volume>48</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>56-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mennich]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Goodanough]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ray]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Use of immunofluorescence identifies measles virus infection]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol;]]></source>
<year>1991</year>
<volume>29</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>1148-50</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rossier]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Miller]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mc Culloch]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sullivan]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ward]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of immunofluorescence and enzyme immunoassay for detection of measles-specific IgM antibody]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>1991</year>
<volume>29</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>1069-71</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Meurman]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Teuho]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Salmi]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Activation of rheumatoid factor during pregnancy]]></article-title>
<source><![CDATA[Lancet]]></source>
<year>1978</year>
<volume>2</volume>
<page-range>685-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tuokko]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of nonspecific reactivity in indirect and reverse immunoassays for measles and mumps immunoglobulin M antibodies]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>1984</year>
<volume>20</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>972-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mayo]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Brennan]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cornier]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hadler]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lamb]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of a commercial measles virus Immunoglobulin M Enzyme Immunoassay]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>1991</year>
<volume>29</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>2865-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
