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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Normalización de la técnica de reducción de placas para diferenciar una infección por dengue de una infección por fiebre amarilla]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The plaque reduction neutralization assay was standardized to differentiate an infection caused by dengue from another infection produced by yellow fever. Serum samples from Cuban donors were used to this end. Information on previous vaccination against yellow fever was available. Samples from Costa Rican patients with a clinical picture of dengue and with no antecedents of vaccination against yellow fever were also utilized. The optimal plaque staining day was the fifth day and the smallest serum dilution capable of differentiating an infection resulting from dengue from another infection caused by yellow fever was of 1/5. According to the high specificity of the standardized technique, risk factor studies of dengue hemorrhagic fever could be made among individuals vaccinated against yellow fever, which is a present and important topic.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[TESTS DE NEUTRALIZACIÓN]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[YELLOW FEVER]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <H3>Art&iacute;culos originales</H3>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Normalizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de reducci&oacute;n de placas para diferenciar una infecci&oacute;n por dengue de una infecci&oacute;n por fiebre amarilla</H2>     <P><A HREF="#autores"><I>Lic. Mayling &Aacute;lvarez Vera,<SUP>1</SUP> T&eacute;c. Danay Vald&eacute;s Palacios,<SUP>2</SUP> Lic. Susana V&aacute;zquez Ramudo,<SUP>3</SUP> Lic. Iselys Delgado Hern&aacute;ndez,<SUP>4</SUP> T&eacute;c. Serafina Garc&iacute;a Infante,<SUP>5 </SUP>Lic. Luis Morier D&iacute;az<SUP>6 </SUP>y Dra. Mar&iacute;a Guadalupe Guzm&aacute;n Tirado<SUP>7</sup></I></A><A HREF="#autores">autores</A> </P> <H4>Resumen</H4>     <P>Se normaliz&oacute; la t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n de placas para diferenciar una infecci&oacute;n por dengue de una infecci&oacute;n por fiebre amarilla. Para ello se utilizaron muestras de suero de donantes cubanos en los que el antecedente previo de vacunaci&oacute;n o no con fiebre amarilla era conocido y de pacientes costarricenses con un cuadro cl&iacute;nico de dengue sin antecedentes de vacunaci&oacute;n con fiebre amarilla. El d&iacute;a &oacute;ptimo de coloraci&oacute;n de las placas fue el 5 y la menor diluci&oacute;n de suero capaz de diferenciar entre una infecci&oacute;n por dengue de una por fiebre amarilla fue de 1/5. Dada la elevada especificidad de la t&eacute;cnica normalizada, se podr&aacute;n realizar estudios de factores de riesgo de dengue hemorr&aacute;gico en individuos vacunados por fiebre amarilla, tema de gran actualidad e importancia. </P>     <P>Descriptores DeCS: TESTS DE NEUTRALIZACI&Oacute;N/normas; DENGUE/diagn&oacute;stico; FIEBRE AMARILLA/diagn&oacute;stico. </P>     <P>La fiebre amarilla (FA) se ha mantenido como un problema importante de salud en las &aacute;reas selv&aacute;ticas y rurales de las Am&eacute;ricas y en &Aacute;frica. Las epidemias han involucrado a cientos de miles de casos en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas a pesar de existir una campa&ntilde;a masiva de inmunizaci&oacute;n en la que se emplea la vacuna de virus vivo-atenuado de la cepa 17D.<SUP>1,2</SUP> </P>     <P>Se conocen 2 formas epidemiol&oacute;gicas principales, la FA urbana que se transmite de persona a persona a trav&eacute;s de la picadura del mosquito <I>Aedes aegypti,</I> y la FA selv&aacute;tica que se encuentra generalmente en los monos y se transmite de mono a mono a trav&eacute;s de la picadura de mosquitos del g&eacute;nero <I>Haemagogus</I> en Am&eacute;rica y de la especie <I>Aedes africanus</I> en &Aacute;frica. </P>     <P>El diagn&oacute;stico espec&iacute;fico de esta entidad depende de estudios histopatol&oacute;gicos, del aislamiento del virus, de la demostraci&oacute;n del ant&iacute;geno viral y de la respuesta espec&iacute;fica de anticuerpos. </P>     <P>No se conoce si la vacunaci&oacute;n por fiebre amarilla (FA) ser&iacute;a capaz de proteger frente a una infecci&oacute;n por dengue o de lo contrario actuar sensibilizando frente a una infecci&oacute;n por este agente. Adem&aacute;s, existen pocos estudios al respecto, principalmente porque las &aacute;reas end&eacute;micas de ambas enfermedades no coincid&iacute;an. Con el aumento de los casos de dengue y de fiebre hemorr&aacute;gica del dengue (FHD) en nuestra regi&oacute;n esta situaci&oacute;n ha cambiado y existen &aacute;reas end&eacute;micas de dengue donde la vacunaci&oacute;n por FA es frecuente debido a la existencia de FA selv&aacute;tica. </P>     <P>Teniendo en cuenta lo anterior se hace necesario desarrollar estudios que permitan determinar las consecuencias positivas (protecci&oacute;n) o negativas (inmunoamplificaci&oacute;n) de la vacunaci&oacute;n con FA en relaci&oacute;n con el dengue.<SUP>3-5</SUP> Para esto es indispensable contar con ensayos suficientemente espec&iacute;ficos que permitan determinar la presencia de anticuerpos neutralizantes al virus de la FA. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En este trabajo se presenta la normalizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n de placas para la FA y se determina, frente a un grupo de sueros humanos de reactividad diferente para dengue y FA, la menor diluci&oacute;n del suero capaz de diferenciar entre una infecci&oacute;n por dengue y una infecci&oacute;n por FA. </P> <H4>M&eacute;todos</H4> <H4>Cultivos celulares</H4>     <P><I>C&eacute;lulas de l&iacute;nea de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano, Vero, utilizadas para el crecimiento del virus.</i> Las c&eacute;lulas Vero (ATCC) fueron crecidas en medio 199 con 10 % de suero fetal bovino inactivado (SFBI) a 56 <sup>o</sup>C durante 30 min a una raz&oacute;n de pase semanal de 1/8 e incubadas a 37 <sup>o</sup>C. El medio de mantenimiento de dichas c&eacute;lulas consisti&oacute; en el medio de crecimiento pero suplementado con SFBI al 2 %. </P>     <P><I>C&eacute;lulas de l&iacute;nea BHK-21 clono 15 (ri&ntilde;&oacute;n de h&aacute;mster)utilizadas en la titulaci&oacute;n viral</i>. Las c&eacute;lulas BHK-21 clono 15, gentilmente donadas por el profesor <I>S.B.Halstead</I>, de la Fundaci&oacute;n Rockefeller, fueron mantenidas a 37 <sup>o</sup>C en frascos pl&aacute;sticos de 75 cm<SUP>2</SUP> con medio MEM con amino&aacute;cidos no esenciales y 10 % de SFBI a una raz&oacute;n de pase semanal de 1/8. El medio de mantenimiento de dichas c&eacute;lulas consisti&oacute; en el medio de crecimiento pero suplementado con SFBI al 2 %. </P> <H4>Virus</H4>     <P>La cepa vacunal 17D de FA, gentilmente donada por la doctora <I>Evelia Quiroz</I> del Centro Conmemorativo Gorgas de Panam&aacute;, y con 2 pases en c&eacute;lulas Vero fue pasada en el mismo sustrato celular. En c&eacute;lulas Vero crecidas en frascos pl&aacute;sticos de 25 cm<SUP>2</SUP> con monocapa confluente fueron inoculados 500 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L del virus. Despu&eacute;s de 1 h de incubaci&oacute;n a 37 <sup>o</sup>C se a&ntilde;adi&oacute; el medio de mantenimiento (199 con 2 % de SFBI) y se incub&oacute; durante 4 a 6 d a 37 <sup>o</sup>C. La cosecha viral se realiz&oacute; cuando el efecto citop&aacute;tico (ECP) fue m&aacute;ximo. Una vez realizada la cosecha viral, el virus se alicuot&oacute; y conserv&oacute; a -85 <sup>o</sup>C para su titulaci&oacute;n posterior y utilizaci&oacute;n en las pruebas de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n de placas. </P> <H4>Muestras de suero</H4>     <P>Se estudi&oacute; un total de 20 sueros, 8 procedentes de donantes cubanos sanos, en los que el antecedente previo de vacunaci&oacute;n o no con la vacuna 17D era conocido, y 12 procedentes de pacientes costarricenses cl&iacute;nicamente sospechosos de dengue sin antecedentes de vacunaci&oacute;n por FA. </P> <H4>Titulaci&oacute;n viral</H4>     <P>Para la titulaci&oacute;n viral se sigui&oacute; el m&eacute;todo descrito por Morens y otros.6 De forma breve, a partir de cultivos de c&eacute;lulas BHK-21 clono 15 con 7 d de siembra se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n de 2x105 c&eacute;lulas/<FONT FACE=Symbol>m</FONT>L en el medio de crecimiento de &eacute;stas. Para la titulaci&oacute;n viral se sembraron 500 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L de la suspensi&oacute;n celular por pocillo, en placas pl&aacute;sticas de poliestireno de 24 pocillos. Despu&eacute;s de 1h de incubaci&oacute;n a temperatura ambiente, se inocularon 50 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L (por triplicado) de las diluciones en base 10 del virus. El medio de mantenimiento de las c&eacute;lulas, consistente en 3 % de carboximetilcelulosa viscosidad media en medio MEM con 10 % SFBI, se a&ntilde;adi&oacute; a raz&oacute;n de 500 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L/pocillo despu&eacute;s de 4h de incubaci&oacute;n a 37 <sup>o</sup>C en incubadora de CO2 al 5 %. Las placas pl&aacute;sticas fueron incubadas en las mismas condiciones durante 5 d. La coloraci&oacute;n de las c&eacute;lulas con una soluci&oacute;n de naftol blue-black y &aacute;cido ac&eacute;tico y el conteo de las placas virales se realiz&oacute; al quinto d&iacute;a posinoculaci&oacute;n. </P> <H4>Estudios serol&oacute;gicos</H4>     <P><I>Prueba de inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n (IH).</i> A cada muestra de suero se le determin&oacute; la presencia de anticuerpos inhibidores de la hemaglutinaci&oacute;n (IH) al virus dengue 2 utilizando un ant&iacute;geno preparado en cerebro de rat&oacute;n lactante y extra&iacute;do mediante el m&eacute;todo de sacarosa acetona seg&uacute;n describen <I>Clarke y Casals,</I><SUP>7</SUP> adaptado para microt&eacute;cnica. Todo suero que presentaba t&iacute;tulos de anticuerpos mayores o iguales que 1/20 se consider&oacute; como positivo de anticuerpos a dengue. Las muestras de pacientes que presentaron t&iacute;tulos de anticuerpos IH <FONT FACE=Symbol>&amp;sup3; </FONT>1/1 280 se clasificaron como portadores de una infecci&oacute;n secundaria seg&uacute;n el criterio establecido en las gu&iacute;as para la prevenci&oacute;n y control del dengue en las Am&eacute;ricas.<SUP>8</SUP> </P>     <P><I>Prueba de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n de placas (PNRP).</i> Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo descrito por Morens y otros.6 Se realizaron diluciones al doble de cada muestra de suero desde 1/2,5 a 1/80 en medio MEM con SFBI al 2 %. Un volumen de 100 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L de cada suero fue incubado a 37 <sup>o</sup>C durante 1 h con 100 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L de la diluci&oacute;n de trabajo del virus calculado para dar 10-20 ufp/50 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L en el volumen final de la mezcla virus-suero. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n, fueron inoculados por triplicado 50 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L de la mezcla virus-suero sobre c&eacute;lulas BHK21 previamente sembradas en placas de poliestireno de 24 pocillos en forma similar a como se describi&oacute; para la titulaci&oacute;n viral. Los pasos siguiente fueron similares a los antes descritos. Para cada suero, se calcul&oacute; la media del n&uacute;mero de placas y su porcentaje de reducci&oacute;n en relaci&oacute;n con el virus control. Toda muestra con un porcentaje de reducci&oacute;n del n&uacute;mero de placas mayor o igual que 50 % se consider&oacute; positiva de anticuerpos. </P>     <P><I>Elisa de captura de IgM.</i> En los sueros de pacientes cl&iacute;nicamente sospechosos de dengue se determin&oacute; la presencia de anticuerpos IgM a los 4 serotipos de dengue mediante un ELISA de captura<SUP>9</SUP> con el objetivo de confirmar la infecci&oacute;n reciente por estos agentes. </P> <H4>Resultados</H4>     <P>Para cumplimentar los objetivos propuestos, inicialmente, crecimos la cepa vacunal 17D de la FA en cultivos de c&eacute;lulas Vero, y observamos la aparici&oacute;n del efecto citop&aacute;tico caracter&iacute;stico (redondeamiento celular y desprendimiento) al sexto d&iacute;a posinoculaci&oacute;n. Para la titulaci&oacute;n viral por placas se aplic&oacute; el m&eacute;todo descrito por Morens y otros<SUP>6</SUP> para los virus del dengue, y se obtuvieron t&iacute;tulos infectivos de 2,8x10<SUP>5 </SUP>ufp/mL. El momento de coloraci&oacute;n de las placas se determin&oacute; mediante la tinci&oacute;n de las c&eacute;lulas a intervalos diferentes y se determin&oacute; que el quinto d&iacute;a era el &oacute;ptimo. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Para el montaje de la t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n de placas primero se utilizaron sueros humanos diluidos desde 1/10 hasta 1/80, lo que permiti&oacute; reconocer t&iacute;tulos variables de anticuerpos principalmente dependientes del tiempo de vacunaci&oacute;n. Despu&eacute;s, considerando que un gran n&uacute;mero de individuos vacunados pueden tener niveles bajos de anticuerpos a FA decidimos utilizar diluciones 1/2,5 y 1/5 siguiendo las recomendaciones de <I>Poland</I> y otros, quienes utilizan diluciones de 1/2 y 1/4.<SUP>10</SUP> </P>     <P>En la tabla 1 se presentan los resultados obtenidos en un grupo de sueros de individuos cubanos con antecedentes o no de vacunaci&oacute;n por FA y de inmunidad conocida a dengue, y en la tabla 2 se presentan los t&iacute;tulos de anticuerpos neutralizantes a la cepa 17D de la FA en sueros de pacientes cl&iacute;nicamente sospechosos de dengue sin antecedentes de vacunaci&oacute;n por FA. Los sueros fueron estudiados a las diluciones 1/2,5; 1/5 y 1/10. Como puede observarse, 7 casos presentaban niveles bajos de anticuerpos a dengue que oscilaron entre 1/20 a 1/40 y 5 eran portadores de una infecci&oacute;n de tipo secundaria dado por los niveles de anticuerpos a dengue mayores o iguales que 1/10 240. Algunos sueros mostraron entrecruzamiento antig&eacute;nico con la FA a diluciones de 1/2,5; pero a diluciones de 1/5 en ninguno se detect&oacute; la presencia de anticuerpos neutralizantes (Nt) a FA. </P>     <P>TABLA 1. Determinaci&oacute;n de la presencia de anticuerpos neutralizantes a la cepa 17D de la FA en sueros humanos de individuos sanos, inmunes y no inmunes a dengue y FA     <BR> &nbsp; </P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=1 BORDER=0 CELLPADDING=4 WIDTH=624> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Vacunaci&oacute;n FA</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Anticuerpos IH</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Anticuerpos</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">Anticuerpos</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>No.&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">(a&ntilde;o)</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Dengue 2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">IgG/ELISA</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Nt a FA</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Dengue 2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">NR</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">&lt;1/10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>3</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>&nbsp;</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>4</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1990</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">NR</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">1/40</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>5</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1983</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/20</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>6</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1983</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/160</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/160</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">&lt;1/10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>7</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1983</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/160</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/160</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>8</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1986</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/40</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/40</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">1/20</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    <p></P>      <P ALIGN="CENTER">NR: No realizado.</P>     <P>TABLA 2. Determinaci&oacute;n de la presencia de anticuerpos neutralizantes a la cepa 17D de la FA en sueros de pacientes cl&iacute;nicamente sospechosos de dengue sin antecedentes de vacunaci&oacute;n por FA     <BR> &nbsp; </P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=1 BORDER=0 CELLPADDING=4 WIDTH=624> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">No.</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Anticuerpos IgM a dengue</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">T&iacute;tulo de anticuerpos IH (dengue 2)</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">Tipo de infecci&oacute;n por dengue</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">T&iacute;tulo de anticuerpos Nt a FA</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP"> <FONT FACE=Symbol>³</FONT>1/10 240</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Sec.</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/5</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/40</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Prim.</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
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<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">Sec.</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/5</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">12</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1/80</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Prim.</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">&lt;1/5</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    <p></P>      <P ALIGN="CENTER">Prim.: primaria Sec.: secundaria.</P> <H4>Discusi&oacute;n</H4>     <P>La FA y el dengue son Flavivirus estrechamente relacionados, que comparten en su envoltura ant&iacute;genos comunes de grupo capaces de inducir la producci&oacute;n de anticuerpos de reactividad cruzada detectables mediante diferentes t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas como la IH y los ensayos inmunoenzim&aacute;ticos.<SUP>11-13</SUP> Esta estrecha relaci&oacute;n ha hecho sugerir a los investigadores que la inmunidad natural o adquirida mediante vacunas para la FA podr&iacute;a tener alg&uacute;n efecto sobre la enfermedad del dengue. A&uacute;n m&aacute;s, se ha planteado si una vacuna para el dengue pudiera tener alg&uacute;n efecto sobre la infecci&oacute;n por FA o alg&uacute;n otro Flavivirus relacionado como la encefalitis japonesa (EJ).<SUP>5,14</SUP> Tres posibles efectos podr&iacute;an observarse en el primer caso: 1) incremento del riesgo de desarrollo de la FHD debido a la producci&oacute;n del fen&oacute;meno de inmu-noamplificaci&oacute;n dependiente de anticuerpos, 2) efecto protector y 3) no producir&iacute;an alguna incidencia sobre la enfermedad. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Estudios en voluntarios realizados por <I>Sabin</I> parecen sugerir que la presencia de anticuerpos antiFA no resulta en protecci&oacute;n cruzada para el dengue.<SUP>15</SUP> En su lugar, la inmunidad a FA parece aumentar la respuesta inmune a cepas atenuadas de dengue. En este sentido, <I>Scott</I> y <I>otros</I>, en 1983, demostraron un aumento en la magnitud y duraci&oacute;n de los anticuerpos espec&iacute;ficos a dengue en un grupo de voluntarios inmunes a FA frente a otro grupo no inmune.<SUP>15</SUP> Estos resultados indican aparentemente, que los anticuerpos antiFA "amplificaron" la infectividad de la cepa vacunal PR159/S1 del virus dengue 2 utilizada en el estudio, pudiendo esperarse que la presencia de anticuerpos de reactividad cruzada no neutralizantes para dengue pudieran resultar en infecciones m&aacute;s agresivas.<SUP>16</SUP> No obstante lo anterior, hasta el momento no se ha atribuido ning&uacute;n caso de FHD a una secuencia de infecci&oacute;n de un Flavivirus no dengue-dengue,<SUP>5</SUP> adem&aacute;s, las infecciones por dengue en el personal militar norteamericano radicado en Viet Nam fueron muy ligeras<SUP>17</SUP> y sueros de individuos inmunes a otro Flavivirus, el que produce la EJ, han fallado para amplificar la infecci&oacute;n por dengue 2 en l&iacute;neas celulares de macr&oacute;fagos.<SUP>18</SUP> </P>     <P>Las regiones end&eacute;micas de FA est&aacute;n restringidas a &aacute;reas tropicales de Suram&eacute;rica y &Aacute;frica, mientras las de FHD se localizan en el Sudeste Asi&aacute;tico, el Caribe y Centroam&eacute;rica.<SUP>1,8</SUP> Hasta finales de los a&ntilde;os 80 las zonas end&eacute;micas de FA y FHD hab&iacute;an sido diferentes, lo que explica el por qu&eacute; este problema ha sido tan poco estudiado. Con el desarrollo de epidemias de FHD en Venezuela, Brasil y Colombia, y de FD en Per&uacute; y Bolivia, estas regiones se superponen por primera vez, por lo que surge la disyuntiva de evaluar las ventajas y potenciales desventajas de la vacunaci&oacute;n con FA a la poblaci&oacute;n general de estos pa&iacute;ses como un problema real. Existen algunas evidencias de una relaci&oacute;n directa en el n&uacute;mero de casos de FHD asociados con una historia previa de vacunaci&oacute;n por FA en la regi&oacute;n de Bucaramanga, Colombia (Villar LA. Comunicaci&oacute;n personal). </P>     <P>Para realizar cualquier estudio al respecto se hace necesario contar con una t&eacute;cnica serol&oacute;gica con suficiente especificidad que permita determinar la presencia de anticuerpos a FA aun en individuos que han sufrido una o varias infecciones por dengue. Por tal motivo nos propusimos normalizar la t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n por reducci&oacute;n de placas para determinar la presencia de anticuerpos a este agente. Varios estudios han demostrado que despu&eacute;s de 30 a&ntilde;os posvacunaci&oacute;n con la cepa 17D de la FA, los anticuerpos neutralizantes est&aacute;n presentes aunque en t&iacute;tulos bajos, por lo que decidimos estudiar tambi&eacute;n un grupo de sueros de individuos con antecedentes conocidos de vacunaci&oacute;n o no por FA y de la presencia de anticuerpos a dengue y determinar la menor diluci&oacute;n de suero capaz de discriminar la presencia de los anticuerpos antiFA. </P>     <P>En los sueros de individuos cubanos se pudo observar 2 casos sin anticuerpos a dengue ni antecedentes de vacunaci&oacute;n en los que no se detect&oacute; la presencia de anticuerpos Nt a FA en t&iacute;tulos de 1/10. Un caso sin antecedentes de vacunaci&oacute;n y con anticuerpos a dengue no present&oacute; anticuerpos Nt a FA como era de esperar. Un caso sin anticuerpos a dengue pero con antecedentes de vacunaci&oacute;n demostr&oacute; la presencia de anticuerpos Nt a FA en t&iacute;tulos de 1/10. De los restantes casos que mostraban anticuerpos a dengue y antecedentes de vacunaci&oacute;n por FA, 2 mostraron t&iacute;tulos de anticuerpos antiFA de 1/20 y 1/40. En 2 sueros no se detectaron anticuerpos antiFA, lo que podr&iacute;a deberse a que el t&iacute;tulo fuera menor que la diluci&oacute;n de suero estudiada. Uno de ellos probado posteriormente mostr&oacute; t&iacute;tulos de anticuerpos de 1/5. </P>     <P>Para estudiar el posible entrecruzamiento antig&eacute;nico de los anticuerpos a dengue frente al virus de la FA estudiamos 12 sueros de pacientes de dengue con t&iacute;tulos variables de anticuerpos a &eacute;ste sin historia previa de vacunaci&oacute;n con FA y procedentes de un &aacute;rea geogr&aacute;fica donde este agente no circula (Costa Rica). A la diluci&oacute;n 1/5 del suero no se observ&oacute; entrecruzamiento antig&eacute;nico entre ambos agentes. Estos resultados sugieren que la diluci&oacute;n 1/5 es &oacute;ptima, ya que se mantiene la especificidad de los anticuerpos y permite discriminar la respuesta de anticuerpos espec&iacute;fica frente a cada agente. </P>     <P>Los resultados obtenidos nos permiten contar con una t&eacute;cnica &uacute;til y de gran especificidad para la realizaci&oacute;n de estudios serol&oacute;gicos que permitan dilucidar la problem&aacute;tica planteada anteriormente. </P> <H4>Summary</H4>     <P>The plaque reduction neutralization assay was standardized to differentiate an infection caused by dengue from another infection produced by yellow fever. Serum samples from Cuban donors were used to this end. Information on previous vaccination against yellow fever was available. Samples from Costa Rican patients with a clinical picture of dengue and with no antecedents of vaccination against yellow fever were also utilized. The optimal plaque staining day was the fifth day and the smallest serum dilution capable of differentiating an infection resulting from dengue from another infection caused by yellow fever was of 1/5. According to the high specificity of the standardized technique, risk factor studies of dengue hemorrhagic fever could be made among individuals vaccinated against yellow fever, which is a present and important topic. </P>     <P>Subject headings: NEUTRALIZATION TESTS/standards; DENGUE/diagnosis; YELLOW FEVER/diagnosis. </P> <H4>Referencias Bibliogr&aacute;ficas</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>Monath TP. Yellow fever and dengue-the interactions of virus, vector and host in the reemergence of epidemic disease. Semin Virol 1994;5:133-45.</LI>    <!-- ref --><LI>Gubler D, Clark G. Dengue/dengue hemorrhagic fever: the emergence of a global health problem. Emerg Infect Dis 1995;1:55-7.</LI>    <!-- ref --><LI>Hasltead SB. The pathogenesis of dengue: molecular epidemiology in infectious disease. Am J Epidemiol 1981;114:632-48.</LI>    <!-- ref --><LI>Kurane I, Ennis FE. Immunity and immunopathology in dengue virus infection. Semin Immunol 1994;4:121-7.</LI>    <!-- ref --><LI>Halstead SB. Pathophysiology and pathogenesis of dengue haemorrhagic fever. Monograph on dengue/dengue haemorrhagic fever. World Health Organization. Regional Office for South-East Asia, New Delhi. Regional Publication 1993, SEARO, # 22, pps. 80-10.</LI>    <!-- ref --><LI>Morens DM, Halstead SB, Repik PM, Putvatana R, Raybourne N. Simplified plaque reduction neutralization assay for dengue viruses by semimicro methods in BHK21 cells: comparison of the BHK suspension test with the standard plaque reduction neutralization. J Clin Microbiol 1985;22:250-54.</LI>    <!-- ref --><LI>Clarke DH, Casals J. Techniques for hemagglutination and hemagglutination-inhibition with arthropod-borne viruses. Am J Trop Med Hyg 1958;7:561-73.</LI>    <!-- ref --><LI>Pan American Health Organization. Dengue and dengue hemorrhagic fever in the Americas: Guidelines for prevention and control. Washington, 1994 (Scientific Publication; No. 548).</LI>    <!-- ref --><LI>V&aacute;zquez S, Saenz E, Huelva G, Gonz&aacute;lez A, Kour&iacute; G, Guzm&aacute;n MG. Utilizaci&oacute;n de muestras de sangre total en papel de filtro para la detecci&oacute;n de anticuerpos IgM a virus dengue. 1997 (en prensa).</LI>    <!-- ref --><LI>Poland JD, Calisher CH, Monath TP. Persistence of neutralizing antibody to yellow fever virus 30 to 35 years following immunization with 17D yellow fever vaccine: a study of World War II veterans in 1975-1976. Bull World Health Organ 1981;59:895-900.</LI>    <!-- ref --><LI>Calisher C, Karabatsos N, Dalrymple JM, Shope R, Porterfiel JS, Westaway EG, et al. Antigenic relationship between Flaviviruses as determined by cross-neutralization tests with polyclonal antisera. J Gen Virol 1989;70:37-43.</LI>    <!-- ref --><LI>Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression and replication. Annu Rev Microbiol 1990;44:649-88.</LI>    <!-- ref --><LI>Monath TP. Flavivirus. En: Fields BN, Knipe DM, eds. Virology. New York: Raven, 1990:763-814.</LI>    <!-- ref --><LI>Hoke CH, Malinoski FJ, Eckels KH, Scott RM, Dubois D, Summers PL, et al. Preparation of an attenuated dengue 4 (341750 CARIB) virus vaccine. II Safety and immunogenecity in humans. Am J Trop Med Hyg 1990;43:219-26.</LI>    <!-- ref --><LI>Scott RM, Eckels KH, Bancroft WH, Summers PL, McCown JM, Anderson JH, et al. Dengue 2 vaccine: dose response in volunteers in relation to yellow fever immune status. J Infect Dis 1983;148:1005-60.</LI>    <!-- ref --><LI>Bancroft WH, Scott RMc, Eckels KH, Hoke CH, Simms TE, Jesrani KDT, et al. Dengue virus type 2 vaccine: reactogeni-city and immunogenicity in soldiers. J Infect Dis 1984; 149:1005-10.</LI>    <!-- ref --><LI>Deller JJ, Russell PK. An analysis of fevers of unknown origin in American soldiers in Viet Nam. Ann Int Med 1967;66:1129-43.</LI>    <!-- ref --><LI>Halstead SB, Porterfield JW, O’Rourke EJ. Enhancement of dengue virus infection in monocytes by flavivirus antisera. Am J Trop Med Hyg 1980;29:638-42.</LI>    </OL>      <P>Recibido: 18 de enero de 1998. Aprobado: 20 de mayo de 1998.     <BR> Lic. <I>Mayling &Aacute;lvarez Vera</I>. Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. </P> <OL>      <LI><A NAME="autores"></A>Master en Virolog&iacute;a. Licenciada en Microbiolog&iacute;a. Aspirante a Investigadora.</LI>     ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>T&eacute;cnica en Procesos Biol&oacute;gicos.</LI>     <LI>Doctora en Ciencias M&eacute;dicas. Licenciada en Bioqu&iacute;mica. Investigadora Auxiliar.</LI>     <LI>Licenciada en Microbiolog&iacute;a.</LI>     <LI>T&eacute;cnica en Microbiolog&iacute;a.</LI>     <LI>Licenciado en Microbiolog&iacute;a. Investigador Auxiliar.</LI>     <LI>Doctora en Ciencias M&eacute;dicas. Especialista de II Grado en Microbiolog&iacute;a. Profesora e Investigadora Titular.</LI>    </OL>  <H5>&nbsp;</H5>     <P>&nbsp; </P>     ]]></body><back>
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