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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de anticuerpos, antígenos y complejos inmunes circulantes en las fascioliasis aguda y crónica.: Resultados preliminares]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[24 patients with fascioliasis were studied. 19 of them were in the chronic stage and 5 in acute stage. The presence of antigens and of circulating immune complexes (CIC) was detected in 100 % of the patients suffering from acute fascioliasis with less than 30 days of evolution of the clinical symptoms; whereas coproantigens were present in 100 % of the chronic patients. In this group it was observed a considerable number of cases with elevated levels of antibodies. 43.7 % of the cases with CIC were detected by using the precipitation technique with PEG and that of Clq deviation. A highly significant correlation was found between the eggs counting and the CIC levels by both techniques. Another important correlation was established between the eggs counting and the levels of coproantigens.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[FASCIOLIASIS]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;"  <H2> Detecci&oacute;n de anticuerpos, ant&iacute;genos y complejos inmunes circulantes en las fascioliasis aguda y cr&oacute;nica. Resultados preliminares</H2> <I><A HREF="#autores">Dra. Liliana Pelayo,<SUP>1</SUP> Lic. Ana Margarita Espino,<SUP>2</SUP> Dra. Blanca E. Dum&eacute;nigo Ripoll<SUP>3</SUP> y Dr. Carlos M. Finlay Villalvilla<SUP>4</SUP></A></I> <H4> Resumen</H4> Se estudi&oacute; un total de 24 pacientes con fascioliasis, de los cuales 19 se encontraban en la fase cr&oacute;nica y 5 en la fase aguda. Se detect&oacute; la presencia de ant&iacute;genos y complejos inmunes circulantes (CIC) en el 100 % de los pacientes con fascioliasis aguda que ten&iacute;an menos de 30 d&iacute;as de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos, en tanto que la presencia de coproant&iacute;genos se hizo evidente en el 100 % de los pacientes cr&oacute;nicos. En este grupo se observ&oacute; un significativo n&uacute;mero de casos con elevados niveles de anticuerpos y 43,7 % de casos con CIC detectados tanto por la t&eacute;cnica de precipitaci&oacute;n con PEG como por la de desviaci&oacute;n del C1q. Se encontr&oacute; una correlaci&oacute;n altamente significativa entre el conteo de huevos y los niveles de CIC por ambas t&eacute;cnicas, as&iacute; como una correlaci&oacute;n significativa entre el conteo de huevos y los niveles de coproant&iacute;genos.      <P>Descriptores DeCS: FASCIOLIASIS/inmunolog&iacute;a; COMPLEJO ANTIGENO-ANTICUERPO/an&aacute;lisis; FASCIOLA HEPATICA/inmunolog&iacute;a; ANTIGENOS HELMINTICOS/an&aacute;lisis; ANTICUERPOS HELMINTICOS/an&aacute;lisis.      <P>La fascioliasis producida por <I>Fasciola hepatica</I> es una enfermedad parasitaria de dif&iacute;cil diagn&oacute;stico, frecuente en los mam&iacute;feros herb&iacute;voros y el hombre. De forma cl&iacute;nica se caracteriza por 2 etapas, una invasiva, que tiene lugar pocas semanas despu&eacute;s de la infecci&oacute;n, que se manifiesta por la presencia de hepatomegalia y eosinofilia sangu&iacute;nea,<SUP>1</SUP> y una segunda etapa, que comienza varios meses despu&eacute;s de la infecci&oacute;n, caracterizada por la localizaci&oacute;n del par&aacute;sito en los conductos biliares y por la aparici&oacute;n de angiocolitis como s&iacute;ntoma m&aacute;s com&uacute;n.<SUP>2,3</SUP>      <P>El diagn&oacute;stico de certeza de esta enfermedad presenta grandes dificultades puesto que el hallazgo de los huevos del par&aacute;sito en las heces y el fluido duodenal se hace imposible en la fase invasiva de la enfermedad, porque el par&aacute;sito se encuentra inmaduro en migraci&oacute;n por el par&eacute;nquima hep&aacute;tico, en tanto que en la fase patente, cuando el par&aacute;sito alcanza la madurez sexual e inicia la oviposici&oacute;n, la excreci&oacute;n de huevos es intermitente.      <P>Como una soluci&oacute;n al diagn&oacute;stico de esta parasitosis, nuestro laboratorio ha desarrollado un conjunto de t&eacute;cnicas inmunoenzim&aacute;ticas basadas en la detecci&oacute;n de los ant&iacute;genos metab&oacute;licos del par&aacute;sito en el suero y las heces de los pacientes,<SUP>4,5</SUP> as&iacute; como de anticuerpos espec&iacute;ficos contra estos ant&iacute;genos,<SUP>6</SUP> mediante los cuales se ha podido realizar el diagn&oacute;stico sensible y espec&iacute;fico de la enfermedad y se ha podido evaluar el &eacute;xito terap&eacute;utico.<SUP>7</SUP>      <P>Los complejos inmunes circulantes (CIC) han sido detectados en una gran variedad de enfermedades parasitarias y han sido relacionados con la presencia de lesiones inmunopatol&oacute;gicas.<SUP>8,9</SUP> La mayor parte de los pacientes con <I>F. hepatica</I> desarrollan una inmunidad mediada por c&eacute;lulas y una elevada respuesta de anticuerpos contra los ant&iacute;genos del par&aacute;sito.<SUP>10,11</SUP> Esta respuesta humoral podr&iacute;a ser seguida por la formaci&oacute;n de CIC, los cuales podr&iacute;an estar involucrados en los mecanismos inmunopatol&oacute;gicos de la relaci&oacute;n hu&eacute;sped-par&aacute;sito.      <P>En el presente trabajo nos propusimos como objetivos, evaluar nuestras t&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico en pacientes que se encontraban en las fases aguda y cr&oacute;nica, e investigar la presencia de CIC y correlacionarlos con el conteo de huevos y el tiempo de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos. <H4> M&eacute;todos</H4>  <H4> Universo de estudio</H4> El universo de estudio comprendi&oacute; 51 individuos, de &eacute;stos, 19 eran pacientes que se encontraban en la fase cr&oacute;nica, y que fueron confirmados en el Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" como casos de <I>F. hepatica</I> por el hallazgo de los huevos del par&aacute;sito en las heces. Otros 5 pacientes se encontraban en la fase aguda, lo cual pudo determinarse por la ausencia de huevos en las heces, el antecedente de haber ingerido berro silvestre y el tiempo de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos. Los restantes 27 eran individuos sanos con repetidos ex&aacute;menes parasitol&oacute;gicos negativos que fueron utilizados como controles. A todos los pacientes y al grupo control negativo se les realiz&oacute; punci&oacute;n venosa para la obtenci&oacute;n de suero y se les tom&oacute; una muestra de heces.      <P>A cada uno de los sueros se les determin&oacute; la presencia de anticuerpos contra <I>F. hepatica</I> mediante un ELISA indirecto,<SUP>6</SUP> la presencia de ant&iacute;genos circulantes<SUP>4</SUP> y la de complejos inmunes circulantes (CIC) por los m&eacute;todos de precipitaci&oacute;n con polietilenglicol<SUP>9</SUP> y desviaci&oacute;n del Clq.<SUP>12</SUP>      <P>Las muestras fecales fueron divididas en 2 porciones, una de las cuales fue analizada por la t&eacute;cnica de Kato Katz<SUP>13</SUP> para la observaci&oacute;n y conteo de los huevos del par&aacute;sito, y la otra fue estudiada por la t&eacute;cnica de detecci&oacute;n de coproant&iacute;genos descrita en trabajos previos.<SUP>5</SUP>      <P>Los pacientes en la fase aguda fueron estudiados de forma evolutiva hasta la observaci&oacute;n de los huevos, para lo cual se colect&oacute; una muestra semanal de heces que tambi&eacute;n fue estudiada por una t&eacute;cnica de detecci&oacute;n de coproant&iacute;genos. Adem&aacute;s de la muestra de heces, se colect&oacute; una muestra de suero y en todos los casos se procedi&oacute; a su estudio por t&eacute;cnicas de determinaci&oacute;n de ant&iacute;genos circulantes, anticuerpos y CIC, se registr&oacute; la fecha en que cada determinaci&oacute;n se hizo positiva o negativa, y se correlacionaron &eacute;stos con el tiempo de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas. <H4> Obtenci&oacute;n de ant&iacute;genos de excreci&oacute;n secreci&oacute;n</H4> Los ant&iacute;genos de excreci&oacute;n secreci&oacute;n (ES) fueron obtenidos a partir del mantenimiento <I>in vitro</I> de adultos de <I>F. hepatica</I>, los cuales fueron extra&iacute;dos de los conductos biliares de reses sacrificadas en el Combinado C&aacute;rnico de Candelaria, Pinar del R&iacute;o, mediante el procedimiento seguido por<I> Espino</I> y otros.<SUP>6</SUP> <H4> Ensayo inmunoenzim&aacute;tico sobre fase s&oacute;lida (ELISA) para la detecci&oacute;n de anticuerpos</H4> Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de ELISA indirecto establecido por <I>Espino</I> y otros<SUP>6</SUP> para la detecci&oacute;n de anticuerpos con la utilizaci&oacute;n de ant&iacute;genos de ES de <I>F. hepatica</I>. La concentraci&oacute;n de ant&iacute;geno utilizada para el recubrimiento de la placa fue de 60 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>g/mL, las muestras de suero fueron trabajadas a la diluci&oacute;n 1:800 y el conjugado a la diluci&oacute;n 1:5 000. El valor de corte establecido para este ensayo fue de 0,36 a partir del cual toda muestra estudiada fue considerada como positiva. <H4> Ensayo inmunoenzim&aacute;tico sobre fase s&oacute;lida para la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos circulantes y de coproant&iacute;genos</H4> Se utiliz&oacute; un ELISA tipo sandwich seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por <I>Espino </I>y otros,<SUP>4,5</SUP> para la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos de ES de <I>F. hep&aacute;tica</I> en sueros y heces de pacientes con fascioliasis. El valor de corte establecido para estos ensayos fue de 0,21 para la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos circulantes y de 0,24 para la de coproant&iacute;genos. <H4> Detecci&oacute;n de complejos inmunes circulantes (CIC)</H4> <I>M&eacute;todo de precipitaci&oacute;n con polietilenglicol (PEG) 6000.</I> Para la realizaci&oacute;n de esta t&eacute;cnica se sigui&oacute; el procedimiento descrito por <I>Lunde </I>y <I>Paranjape</I>.9 Para ello cada muestra de suero fue previamente diluida 1:3 con tamp&oacute;n borato de sodio 0,1 M pH 8,4; mezclado a partes iguales con PEG 6000 hasta una concentraci&oacute;n final de 4,16 % y despu&eacute;s se incub&oacute; durante 60 min a temperatura ambiente (TA). Al finalizar la incubaci&oacute;n, los valores de absorbancia de cada muestra fueron le&iacute;dos a 450 nm contra tamp&oacute;n borato en un espectrofot&oacute;metro (Pharmacia LKB Ultrospec III) y los resultados se expresaron mediante la f&oacute;rmula siguiente:      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>DO = DO<SUB>2</SUB> - DO<SUB>1</SUB>      <P>Donde DO<SUB>2</SUB> es la absorbancia obtenida para cada muestra problema conteniendo PEG 6000 y DO<SUB>1</SUB> es la absorbancia de su respectivo blanco reactivo. Se consider&oacute; positiva toda muestra cuyo valor de absorbancia fuera mayor o igual que 0,13 seg&uacute;n el criterio de absorbancia media (DO) + 2 desviaciones est&aacute;n- dar (DE) del grupo control negativo.      <P><I>M&eacute;todo de desviaci&oacute;n del C1q.</I> Para la realizaci&oacute;n de este ensayo se utiliz&oacute; el procedimiento descrito por <I>Sobel</I> y otros.12 Para ello cada muestra de suero fue diluida 1:2 en tamp&oacute;n veronal salino 0,1 M pH 7,2 con 6 % de Clq marcado con I<SUP>125</SUP> e incubado durante 30 min a TA. Esta preparaci&oacute;n posteriormente, fue mezclada a partes iguales con eritrocitos sensibilizados con un suero antieritrocitos de carnero de la clase IgG. Despu&eacute;s de agitar, la mezcla fue incubada a TA durante 60 min posterior a lo cual, &eacute;sta fue aplicada sobre un gradiente de sacarosa al 40 % diluida en tamp&oacute;n fosfato de sodio 0,05 M pH 7,0 y centrifugada a 1 500 rpm durante 5 min. El sobrenadante fue separado del precipitado y la cantidad de Clq marcado con I<SUP>125</SUP> presente en cada fase fue determinada en un contador gamma. Los resultados fueron expresados en porcentaje de inhibici&oacute;n (I) mediante la f&oacute;rmula siguiente:     <CENTER>    <PRE><A HREF="/img/revistas/mtr/v50n3/f0408398.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v50n3/f0408398.gif" ALT="Fórmula" BORDER=1 HEIGHT=112 WIDTH=316></A></PRE></CENTER> Tom&aacute;ndose como normales los valores de 0 a 20 % de inhibici&oacute;n obtenidos con el grupo control negativo. <H4> An&aacute;lisis estad&iacute;stico</H4> Cada muestra de suero y heces fue analizada por duplicado en los ensayos de detecci&oacute;n de anticuerpos y de ant&iacute;genos, y el resultado fue expresado como la DO media para cada determinaci&oacute;n. Las diferencias entre los valores medios del grupo positivo y del negativo en cada una de las t&eacute;cnicas aplicadas fueron determinadas mediante una prueba de la t de Student.      
<P>Para conocer si existe correlaci&oacute;n entre el n&uacute;mero de huevos por gramo de heces y los niveles de coproant&iacute;genos y CIC se utiliz&oacute; una prueba de funci&oacute;n de potencia. <H4> Resultados</H4> Como se observa en la tabla, todos los pacientes en la fase aguda presentaron niveles crecientes de anticuerpos anti-<I>F. hepatica</I>. La presencia de antigenemia pudo ser demostrada en el 100 % de los pacientes con fascioliasis aguda que presentaban un tiempo m&aacute;ximo de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de 15 a 30 d. Despu&eacute;s de este intervalo de tiempo los niveles de ant&iacute;genos circulantes no fueron detectables en ninguno de los pacientes, en tanto que comenzaron a observarse niveles detectables de CIC por ambas t&eacute;cnicas utilizadas.     <CENTER></CENTER>      <CENTER>TABLA. Resultados del seguimiento por m&eacute;todos inmunoenzim&aacute;ticos aplicado a los pacientes en la fase aguda.</CENTER>      <CENTER></CENTER>      <CENTER>&nbsp;</CENTER>      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER><TABLE BORDER=0 CELLSPACING=1 CELLPADDING=4 WIDTH="636" > <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>Pacientes</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>Tiempo de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>Ac</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>AgS</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>CIC*</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>AgHF</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>15</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,39</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>0,72</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,08</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,07</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>28</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,95</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,29</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,07</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,08</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>35</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,25</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     ]]></body>
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<body><![CDATA[<CENTER>1,0</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>42</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,43</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,09</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,27</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,6</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>5</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>30</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,05</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,29</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>0,156</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,1</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>37</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,3</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,18</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,205</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,58</CENTER> </TD> </TR>  <TR> <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>42</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,30</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>0,09</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>0,21</CENTER> </TD>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">     <CENTER>1,8</CENTER> </TD> </TR> </TABLE></CENTER>      <CENTER>&nbsp;*Valores obtenidos por la t&eacute;cnica de precipitaci&oacute;n con PEG.</CENTER>      <CENTER></CENTER>      <CENTER>AgS: Ant&iacute;geno circulante. AC: Anticuerpos. AgHF: Coproant&iacute;genos.</CENTER>      <CENTER></CENTER>      <CENTER>Criterio de positividad: Valores de DO 0,36 para AC. Valores de DO 0,21 para AgS. Valores de DO 0,24 para AgHF. Valores de DO 0,13 para CIC.</CENTER>       <P>En 3 de los 5 pacientes en la fase aguda la presencia de coproant&iacute;genos pudo ser demostrada entre los 37 y 42 d de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas, en tanto que los otros 2 resultaron altamente positivos desde su incorporaci&oacute;n al estudio con 28 y 30 d de evoluci&oacute;n. Todos estos pacientes fueron seguidos por parasitolog&iacute;a y luego de repetidos ex&aacute;menes se pudo demostrar la presencia de huevos cuando hab&iacute;an transcurrido 70 d de iniciados los s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos.      <P>A diferencia de los pacientes en la fase aguda, s&oacute;lo 3 de los 19 pacientes cr&oacute;nicos estudiados (16 %) resultaron positivos en la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos circulantes con valores medios de absorbancia de 0,33 &amp;plusmn; 0,05. En tanto que 16 de 19 (84 %) presentaron niveles detectables de anticuerpos en un rango de absorbancia de 0,29 a 1,95; con un valor medio de 0,92 &amp;plusmn; 0,493. El 100 % de los pacientes cr&oacute;nicos presentaron niveles detectables de coproant&iacute;genos con valores de absorbancia entre 0,3 y 2,19, para una media de 1,421 &amp;plusmn; 0,557.      <P>La presencia de CIC fue demostrada en 9 de los 19 pacientes cr&oacute;nicos (47,3 %) con valores que oscilaron entre 0,14 y 0,28 por la t&eacute;cnica de PEG, y valores de 21 a 32 % por la de desviaci&oacute;n del Clq, para una media de 0,216 y 26,6 %, respectivamente. Todos los pacientes que resultaron positivos a la detecci&oacute;n de CIC lo fueron por las 2 t&eacute;cnicas.      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Ninguno de los controles negativos presentaron niveles detectables de anticuerpos ni resultaron positivos en los ensayos de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos y CIC. Se encontraron diferencias altamente significativas entre los niveles de CIC y de anticuerpos del grupo de pacientes con fascioliasis cr&oacute;nica respecto al grupo control negativo, para una p &lt; 0,01.      <P>Al correlacionar el n&uacute;mero de huevos por gramo de heces con los niveles de CIC determinados por la t&eacute;cnica de PEG y desviaci&oacute;n del Clq se encontr&oacute; relaci&oacute;n positiva, para una p &lt; 0,01 (figs. 1 y 2). Del mismo modo, en la figura 3 se observa la correlaci&oacute;n encontrada entre el conteo de huevos y los niveles de coproant&iacute;genos, la cual result&oacute; positiva (p &lt; 0,01) cuando el conteo de huevos no excedi&oacute; de 150 huevos/g de heces.     <CENTER></CENTER>      <CENTER><A HREF="/img/revistas/mtr/v50n3/f0108398.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v50n3/f0108398.gif" ALT="Figura 1" BORDER=0 HEIGHT=129 WIDTH=145></A></CENTER>      
<CENTER></CENTER>      <CENTER>Fig. 1. Correlaci&oacute;n entre el conteo de huevos (HxG) y los niveles de CIC por la t&eacute;cnica de precipitaci&oacute;n con PEG, r = 0,85; p &lt; 0,01.</CENTER>      <CENTER></CENTER>      <CENTER><A HREF="/img/revistas/mtr/v50n3/f0208398.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v50n3/f0208398.gif" ALT="Figura 2" BORDER=0 HEIGHT=145 WIDTH=149></A></CENTER>      
<CENTER></CENTER>      <CENTER>Fig. 2. Correlaci&oacute;n entre el conteo de huevos (HxG) y los niveles de CIC por la t&eacute;cnica de desviaci&oacute;n del C1q, r = 0,66; p &lt; 0,01.</CENTER>      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER></CENTER>      <CENTER><A HREF="/img/revistas/mtr/v50n3/f0308398.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v50n3/f0308398.gif" ALT="Figura 3" BORDER=0 HEIGHT=141 WIDTH=153></A></CENTER>      
<CENTER></CENTER>      <CENTER>Fig. 3. Correlaci&oacute;n entre el conteo de huevos (HxG) y los niveles de coproant&iacute;genos, r = 0,66; p &lt; 0,01.</CENTER>  <H4> Discusi&oacute;n</H4> Como se observa en los resultados del presente trabajo, el ensayo de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos circulantes present&oacute; su mayor utilidad diagn&oacute;stica en las etapas m&aacute;s tempranas de la fase aguda de la enfermedad, se observ&oacute; que los niveles m&aacute;s elevados de antigenemia se encontraban asociados con los menores tiempos de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos.      <P>Se ha descrito que durante las primeras 3 &oacute; 4 semanas de la infecci&oacute;n el par&aacute;sito inmaduro se encuentra en migraci&oacute;n por el par&eacute;nquima hep&aacute;tico,1 por lo que sus productos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n son vertidos a la circulaci&oacute;n y pueden ser detectados en la sangre en forma libre. La presencia de estos productos en la circulaci&oacute;n constituye el principal est&iacute;mulo antig&eacute;nico al sistema inmunol&oacute;gico del hu&eacute;sped e induce de manera inmediata la formaci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos contra el par&aacute;sito, a partir de las 2 &oacute; 3 semanas de infecci&oacute;n, lo cual se corresponde con lo reportado por otros autores.<SUP>14</SUP>      <P>Una din&aacute;mica de antigenemia semejante a la observada en estos 5 pacientes, fue descrita previamente por nuestro grupo en un modelo experimental, en el cual ratas de la raza Wistar que fueron infectadas con metacercarias de <I>F. hepatica,</I> presentaron ant&iacute;genos circulantes entre las semanas 1 y 3 de la infecci&oacute;n.15 Teniendo en cuenta estos resultados y si se relacionan &eacute;stos con la ya conocida trayectoria del par&aacute;sito dentro del hu&eacute;sped, podemos establecer que la presencia de la antigenemia est&aacute; vinculada con las etapas en las que el par&aacute;sito inmaduro comienza a migrar por el par&eacute;nquima hep&aacute;tico y vierte a la circulaci&oacute;n sus productos de excreci&oacute;n y secreci&oacute;n, en tanto que se demuestra la ausencia total de &eacute;sta en los per&iacute;odos m&aacute;s avanzados de la fase aguda y en la vasta mayor&iacute;a de los pacientes cr&oacute;nicos.      <P>A diferencia de la antigenemia, la presencia de coproant&iacute;genos se hizo evidente en todos los pacientes en la fase aguda con m&aacute;s de 28 d de evoluci&oacute;n de los s&iacute;ntomas y en todos los pacientes cr&oacute;nicos, lo cual nos permiti&oacute; inferir, que los coproant&iacute;genos est&aacute;n relacionados con los per&iacute;odos en que el par&aacute;sito, alojado en los conductos biliares, se encuentra en fase de maduraci&oacute;n sexual o en su forma adulta, de modo que el valor diagn&oacute;stico de su detecci&oacute;n podr&iacute;a ser &uacute;til no s&oacute;lo en la fase prepatente sino tambi&eacute;n en la fase patente de la infecci&oacute;n tal como hemos descrito en trabajos previos.<SUP>5,15</SUP> Dado que el n&uacute;mero de casos agudos estudiados en el presente trabajo es muy peque&ntilde;o, estos resultados no pueden ser a&uacute;n considerados como concluyentes y &eacute;stos deber&aacute;n ser verificados con un n&uacute;mero mayor de casos en la fase aguda, por lo cual, se ha dise&ntilde;ado un estudio mucho m&aacute;s amplio y se encuentra en fase de desarrollo.      <P>En este estudio la presencia de CIC fue observada tanto en pacientes en la fase aguda como en la cr&oacute;nica, lo cual sugiere que &eacute;stos pudieran estar asociados con la actividad de la infecci&oacute;n. La presencia de CIC en los pacientes con fascioliasis aguda es f&aacute;cilmente comprensible si tenemos en cuenta que &eacute;stos son la consecuencia inmunol&oacute;gica de una constante estimulaci&oacute;n antig&eacute;nica proporcionada por el par&aacute;sito en su migraci&oacute;n por el par&eacute;nquima. En otras enfermedades parasitarias como la esquistosomiasis, es muy frecuente el hallazgo de CIC en la fase aguda de la infecci&oacute;n8 asociados con el desarrollo de lesiones inmunopatol&oacute;gicas. Aunque en la fascioliasis este fen&oacute;meno a&uacute;n no ha sido descrito y son muy pocos los trabajos que abordan esta tem&aacute;tica, no debe ser descartada la posibilidad de un fen&oacute;meno similar, si tenemos en cuenta que un elevado n&uacute;mero de los pacientes sintom&aacute;ticos que se encuentran en fase invasiva presenta entre sus s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos m&aacute;s frecuentes reacciones t&oacute;xicas y al&eacute;rgicas as&iacute; como hepatomegalia.<SUP>1</SUP>      <P>Los complejos inmunitarios de la sangre circulante son eliminados con rapidez en su mayor parte por el sistema de fagocitos mononucleares, en particular por las c&eacute;lulas de Kupffer. Cuando el par&aacute;sito se aloja en los conductos biliares escapa definitivamente a la acci&oacute;n del sistema inmunol&oacute;gico del hu&eacute;sped, y desaparece de esta forma la fuente de ant&iacute;geno que el par&aacute;sito vert&iacute;a a la circulaci&oacute;n. Debido a esto, constituye una aparente contradicci&oacute;n en el presente trabajo, el hallazgo de CIC en pacientes cr&oacute;nicos que se encuentran en una fase de exceso de anticuerpos. Estos resultados pueden ser explicados si tenemos en cuenta que en la fase cr&oacute;nica de la fascioliasis y en dependencia de la intensidad de la infecci&oacute;n, la funci&oacute;n hep&aacute;tica suele encontrarse afectada y con ella la posibilidad de un adecuado funcionamiento de la din&aacute;mica de eliminaci&oacute;n de los complejos inmunitarios.      <P>Otro de los resultados importantes obtenidos en este estudio es la demostraci&oacute;n de la correlaci&oacute;n existente entre el n&uacute;mero de huevos, los coproant&iacute;genos y los niveles de CIC, lo cual se corresponde con los resultados obtenidos por <I>Espino</I> y otros5 y <I>Sampaio-Silva</I> y otros.<SUP>16</SUP> Esto podr&iacute;a apoyar la hip&oacute;tesis antes expuesta.      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Si tenemos en cuenta que el n&uacute;mero de huevos puede estar asociado con el n&uacute;mero de par&aacute;sitos alojados en el h&iacute;gado, es muy probable por tanto, que los niveles de complejos inmunes as&iacute; como los de coproant&iacute;genos est&eacute;n directamente relacionados con el n&uacute;mero de par&aacute;sitos alojados en el conducto biliar<SUP>5,16</SUP> y pudiera constituir un criterio indirecto de intensidad de la infecci&oacute;n. En aquellas circunstancias donde debido a infecciones muy intensas la relaci&oacute;n existente entre el n&uacute;mero de huevos y la cantidad de par&aacute;sitos se hace dif&iacute;cil de correlacionar,<SUP>1</SUP> es de suponer que tambi&eacute;n el conteo de huevos y la concentraci&oacute;n de coproant&iacute;genos dejen de guardar relaci&oacute;n. Este hecho pudiera explicar el por qu&eacute; en aquellos individuos donde el conteo de huevos fue superior a los 150 huevos/g no se encontrara relaci&oacute;n positiva con los niveles del ant&iacute;geno en las heces.      <P>Se ha demostrado que en &aacute;reas end&eacute;micas, la reinfecci&oacute;n por <I>F. hepatica</I> puede ocurrir con frecuencia,1 de tal manera que la fase aguda de una infecci&oacute;n secundaria puede superponerse a la fase cr&oacute;nica de la infecci&oacute;n inicial o simplemente, que el individuo pueda reinfectarse de forma continua, de modo que varias infecciones sucesivas puedan cursar a intervalos de diferencia cortos. Si esto ocurre, es muy probable que pacientes cr&oacute;nicos puedan tener ant&iacute;genos circulantes tal como ha sido reportado por <I>Espino</I> y otros,<SUP>4</SUP> y pudiera tambi&eacute;n ser una posible explicaci&oacute;n al hecho de que en el presente estudio, 3 de los pacientes cr&oacute;nicos tuvieran a la vez niveles detectables de antigenemia, complejos inmunes, anticuerpos y coproant&iacute;genos, de la misma manera que pudiera explicar el hallazgo de que 2 de los pacientes en la fase aguda presentaran tan elevados niveles de coproant&iacute;genos con s&oacute;lo 28 y 30 d de evoluci&oacute;n. <H4> Summary</H4> 24 patients with fascioliasis were studied. 19 of them were in the chronic stage and 5 in acute stage. The presence of antigens and of circulating immune complexes (CIC) was detected in 100 % of the patients suffering from acute fascioliasis with less than 30 days of evolution of the clinical symptoms; whereas coproantigens were present in 100 % of the chronic patients. In this group it was observed a considerable number of cases with elevated levels of antibodies. 43.7 % of the cases with CIC were detected by using the precipitation technique with PEG and that of Clq deviation. A highly significant correlation was found between the eggs counting and the CIC levels by both techniques. Another important correlation was established between the eggs counting and the levels of coproantigens.      <P>Subject headings: FASCIOLIASIS/immunology; ANTIGEN- -ANTIBODY COMPLEX/analysis; FASCIOLA HEPATICA/immunology; ANTIGENS, HELMINTH/analysis; ANTIBODIES, HELMINTH/analysis. <H4> Referencias Bibliogr&aacute;ficas</H4>  <OL>     <!-- ref --><LI> Chen MG, Mott KE. Progress in assessment of morbidity due to Fasciola hepatica infection: a review of a recent literature. Trop Dis Bull 1990;87:1-38.</LI>    <!-- ref --><LI> Biguet J, Capr&oacute;n A. Aspects &eacute;pidemiologiques, cliniques et diagnostiques actuels de la distomatose h&eacute;patique &aacute; Fasciola hepatica<I> </I>en France. Rev Gastroent&eacute;rol 1966;21:55-65.</LI>    <!-- ref --><LI> Wattre P, Capr&oacute;n M, Capr&oacute;n A. Le diagnostic immunologique de la distomatose &aacute; Fasciola hepatica. Lille Med 1978;23:292-6.</LI>    <!-- ref --><LI> Espino AM, Marcet R, Finlay CM. Detection of circulating excretory secretory antigens in human fascioliasis by sandwich enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol 1990;28:2637-40.</LI>    <!-- ref --><LI> Espino AM, Finlay CM. Sandwich enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of excretory secretory antigens in human fascioliasis. J Clin Microbiol 1994;32:190-4.</LI>    <!-- ref --><LI> Espino AM, Dum&eacute;nigo BE, Fern&aacute;ndez R, Finlay CM. Immunodiagnosis of human fascioliasis by enzyme-linked immunosorbent assay using excretory secretory products. Am J Trop Med Hyg 1987;37:605-8.</LI>    <!-- ref --><LI> Espino AM, Mill&aacute;n JC, Finlay CM: Detection of antibodies and circulating excretory secretory antigens for assessing cure in patients with fascioliasis. Trans R Soc Trop Med Hyg 1992;86:649.</LI>    <!-- ref --><LI> Lawley TJ, Ottesen EA, Hiatt RA, Gazzle LA. Circulating immune complexes in acute schistosomiasis. Clin Exp Immunol 1979:37:221-7.</LI>    <!-- ref --><LI> Lunde MN, Paranjape R, Lawley TJ, Ottesen EA. Filarial antigen in circulating immune complexes from patients with Wuchereria bancrofti<I> </I>filariasis. Am J Trop Med Hyg 1988;38:366-71.</LI>    <!-- ref --><LI> Armour J, Dargie JD. Immunity to Fasciola hepatica in the rat. Successful transfer of immunity by cells and by serum. Exp Parasitol 1974;35:381-8.</LI>    <!-- ref --><LI> Poitou Y, Baeza E, Boulard C. Humoral and cellular immune responses in rats during a primary infestation with Fasciola hepatica<I>.</I> Vet Parasitol 1992;45:59-71.</LI>    <!-- ref --><LI> Katz N, Chavez A, Pellegrino J. A simple device for quantitative stool tick-smear technique in schistosomiasis mansoni. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1972;14:397-400.</LI>    <!-- ref --><LI> Langley R, Hillyer GV. Detection of circulating parasite antigen in murine fascioliasis by two site enzyme linked immunosorbent assay. Am J Trop Med Hyg 1989;41:472-8.</LI>    <!-- ref --><LI> Espino AM, Marcet R, Finlay CM. Fasciola hepatica<I>: </I>Detection of antigenemia and coproantigens in experimentally infected rats. Exp Parasitol 1997;85:117-20.</LI>    <!-- ref --><LI> Sampaio-Silva ML, Santoro F, Capr&oacute;n A. Circulating inmune complexes in human fascioliasis. Relationship with Fasciola hepatica egg output. Acta Trop 1981;38:39-44.</LI>    </OL> Recibido: 18 de febrero de 1997. Aprobado: 9 de abril de 1998.     <BR>Dra. <I>Liliana Pelayo</I>. Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. <OL>     ]]></body>
<body><![CDATA[<LI> <A NAME="autores"></A>Especialista de I Grado en Microbilog&iacute;a.</LI>      <LI> Doctora en Ciencias M&eacute;dicas Diagn&oacute;sticas. Investigadora Auxiliar.</LI>      <LI> M&eacute;dica Veterinaria, Investigadora Titular.</LI>      <LI> Doctor en Ciencias M&eacute;dicas. Subdirector de Parasitolog&iacute;a.</LI>     </OL>       ]]></body><back>
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