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<article-id>S0375-07602001000200009</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aportes al conocimiento acerca de la permanencia y circulación del poliovirus vacunal en el ambiente]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Institutu de Medicina Tropical Pedro Kouri  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0375-07602001000200009&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0375-07602001000200009&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0375-07602001000200009&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La erradicación de la poliomielitis mundialmente es una meta cercana y presupone la adopción de estrategias efectivas y seguras. Conocer cuánto tiempo pueden circular y permanecer en el ambiente las cepas de poliovirus derivadas de la vacuna oral de virus atenuado, resultó esencial en la definición de las medidas a asumir y fue el objetivo del presente trabajo. Se analizaron muestras de heces fecales y aguas albañales, obtenidas semanalmente al finalizar la Campaña Nacional de Vacunación Antipolio del año 1998 en Cuba. Los virus se aislaron e identificaron mediante cultivo y pruebas de neutralización para la identificación de poliovirus, en el caso particular de las aguas albañales se empleó además el método de la reacción en cadena de la polimerasa. Se trazaron las curvas de eliminación en ambos medios y se concluyó que la permanencia de los virus en el ambiente no sobrepasa las 12 semanas posteriores a la inmunización con la vacuna oral de virus atenuado.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[POLIOMIELITIS]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[CAMPAÑAS DE VACUNACIÓN]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[ENVIRONMENT]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <P>&nbsp;</P> <H3>Instituto de Medicina Tropical Pedro Kour&iacute; </H3> <H2>Aportes al conocimiento acerca de la permanencia y circulaci&oacute;n del poliovirus vacunal en el ambiente </H2>     <P><A HREF="#cargo"><I>Dra. Patricia Jim&eacute;nez,<span class="superscript">1 </span>Dr. Pedro J. M&aacute;s,<span class="superscript">2</span> Lic. Luis R. Sarmiento,<span class="superscript">3</span> Lic. Marit&eacute; Bello,<span class="superscript">4</span> T&eacute;c. Rosa E. Palomera<span class="superscript">5</span> y Dr. Julio Barrios<span class="superscript">6</span> </I></A><A NAME="autor"></A></P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>La erradicaci&oacute;n de la poliomielitis mundialmente es una meta cercana y presupone la adopci&oacute;n de estrategias efectivas y seguras. Conocer cu&aacute;nto tiempo pueden circular y permanecer en el ambiente las cepas de poliovirus derivadas de la vacuna oral de virus atenuado, result&oacute; esencial en la definici&oacute;n de las medidas a asumir y fue el objetivo del presente trabajo. Se analizaron muestras de heces fecales y aguas alba&ntilde;ales, obtenidas semanalmente al finalizar la Campa&ntilde;a Nacional de Vacunaci&oacute;n Antipolio del a&ntilde;o 1998 en Cuba. Los virus se aislaron e identificaron mediante cultivo y pruebas de neutralizaci&oacute;n para la identificaci&oacute;n de poliovirus, en el caso particular de las aguas alba&ntilde;ales se emple&oacute; adem&aacute;s el m&eacute;todo de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. Se trazaron las curvas de eliminaci&oacute;n en ambos medios y se concluy&oacute; que la permanencia de los virus en el ambiente no sobrepasa las 12 semanas posteriores a la inmunizaci&oacute;n con la vacuna oral de virus atenuado. </P>     <P>DeCS: POLIOMIELITIS/prevenci&oacute;n &amp; control; CAMPA&Ntilde;AS DE VACUNACI&Oacute;N; AMBIENTE. </P>     <P>&nbsp;</P>     <P>La poliomielitis es una enfermedad a erradicar en los primeros a&ntilde;os del nuevo milenio. Las Organizaciones Mundial y Panamericana de la Salud (OMS/OPS) se hallan enfrascadas en tal prop&oacute;sito.<span class="superscript">1 </span>La disponibilidad de vacunas efectivas para ser aplicadas a escala mundial, hace posible la materializaci&oacute;n de este sue&ntilde;o, que es el final ideal para todas las enfermedades infecciosas que azotan a la humanidad.</P>     <P>El virus de la polio es un miembro de la familia Picornaviridae, g&eacute;nero Enterovirus, e incluye 3 serotipos definibles cl&aacute;sicamente por pruebas de neutralizaci&oacute;n como poliovirus 1, 2 y 3.</P>     <P>La transmisi&oacute;n del virus sigue la v&iacute;a digestiva y en este sistema ocurre la mayor multiplicaci&oacute;n viral, que garantiza la propagaci&oacute;n de los virus desde este punto y por v&iacute;a axonal al sistema nervioso central y c&eacute;lulas motoras del asta anterior del cord&oacute;n espinal, as&iacute; como la excreci&oacute;n de nuevas part&iacute;culas infecciosas por las heces fecales. Afortunadamente, se presentan m&aacute;s de 1 000 casos de enfermedad inaparente por cada caso que desarrolla par&aacute;lisis. Por otra parte, la obtenci&oacute;n, producci&oacute;n y aplicaci&oacute;n de vacunas virales inactivadas (VIP) y vivas atenuadas ha causado reducci&oacute;n marcada de la incidencia de la poliomielitis en todo el mundo.<span class="superscript">2 </span>Hoy d&iacute;a en muchos pa&iacute;ses (casi todos desarrollados) solo las cepas vacunales con su consiguiente car&aacute;cter atenuado parecen circular, por lo que han reemplazado al poliovirus salvaje. No obstante, este virus sigue produciendo par&aacute;lisis aguda en 1 de cada 1 000 ni&ntilde;os que nacen en pa&iacute;ses subdesarrollados. </P>     <P>En Cuba se inici&oacute; la vacunaci&oacute;n antipolio por v&iacute;a oral (VOP) en forma de campa&ntilde;as anuales en 1962, de modo que hasta el presente suman ya 39 campa&ntilde;as. La poblaci&oacute;n cubana menor de 50 a&ntilde;os posee una cobertura vacunal mayor que 90 % y no ha sido reportado ning&uacute;n caso de par&aacute;lisis infantil por poliovirus salvaje desde que se aplica la vacunaci&oacute;n. Esta ha ido acompa&ntilde;ada siempre de un s&oacute;lido programa de vigilancia con soporte de laboratorio (Teja J, Ram&iacute;rez A, C&oacute;rdova L, Sant&iacute;n M, Galindo M, M&aacute;s P. Informe preliminar del MINSAP para optar por el certificado de erradicaci&oacute;n de la poliomielitis en el continente americano. MINSAP, Cuba, 1994.). </P>     <P>Dada toda esta serie de logros y teniendo en cuenta que la vacunaci&oacute;n con VOP en Cuba se lleva a cabo en un &uacute;nico per&iacute;odo del a&ntilde;o, de modo que no se justifica la circulaci&oacute;n de virus en otra &eacute;poca a menos que ocurra excreci&oacute;n permanente y persistencia ambiental, se decidi&oacute; fuera Cuba el modelo de estudio del tiempo de permanencia y circulaci&oacute;n del poliovirus vacunal en el ambiente, por parte del Comit&eacute; de Expertos de OMS/OPS: </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Suspender la administraci&oacute;n de VOP globalmente despu&eacute;s de la inmunizaci&oacute;n a la poblaci&oacute;n infantil de todo el mundo por campa&ntilde;as masivas, implica la acumulaci&oacute;n de susceptibles que se pueden poner en contacto con los virus derivados de la vacuna (excretados por los vacunados) presentes en el ambiente. Si a esto se a&ntilde;ade que las cepas de poliovirus vacunal al replicarse en el tracto gastrointestinal y circular entre la poblaci&oacute;n tienden a revertir al estado salvaje de las cepas que las originaron,<span class="superscript">3</span> cabe preguntarse:¿qu&eacute; tiempo pueden permanecer entre la poblaci&oacute;n y en el medio ambiente las cepas de poliovirus vacunal a partir de que se interrumpe la vacunaci&oacute;n? Dar respuesta a esa interrogante es el objetivo principal de esta investigaci&oacute;n. </P>     <P>&nbsp;</P> <H4>M&Eacute;TODOS</H4> <H4>Universo de estudio </H4>     <P>Estuvo conformado, de un lado, por los ni&ntilde;os menores de 3 a&ntilde;os de 2 &aacute;reas de salud de Ciudad de La Habana, seleccionados por an&aacute;lisis estad&iacute;stico seg&uacute;n su poblaci&oacute;n infantil, la condici&oacute;n de estar servidas estas &aacute;reas por un sistema de alcantarillado &uacute;nico y accesible y la carencia relativa de contaminantes ambientales. Por otra parte, se incluyeron las aguas alba&ntilde;ales de 2 puntos de recogida por cada &aacute;rea de salud seleccionada. </P>     <P>&nbsp;</P> <H4>DISE&Ntilde;O</H4>     <P>A partir de una semana despu&eacute;s de concluida la segunda vuelta de la Campa&ntilde;a Nacional Antipolio de 1998, y durante 5 semanas, se obtuvieron muestras de heces fecales de los ni&ntilde;os seleccionados. Este proceso se repiti&oacute; 15 d m&aacute;s tarde y durante una semana y 1 mes despu&eacute;s durante otra, para un total de 673 muestras. Coincidiendo con los per&iacute;odos de recolecci&oacute;n de las heces fecales, se tomaron un total de 56 muestras de aguas alba&ntilde;ales, a raz&oacute;n de 1 L por cada punto de recogida, 2 veces por semana, lo que represent&oacute; 8 L semanales de aguas negras. </P>     <P>Las muestras de heces fecales fueron procesadas mediante una suspensi&oacute;n a 10 % (peso/volumen) en medio esencial m&iacute;nimo con antibi&oacute;tico. Se homogeneizaron y centrifugaron a 13 000 rpm durante 10 min. Se mezclaron 900 µL del sobrenadante con 100 µL de cloroformo y tras una nueva centrifugaci&oacute;n se extrajo el sobrenadante listo para inocular en los cultivos celulares.</P>     <P>En las aguas alba&ntilde;ales se realizaron la recuperaci&oacute;n y concentraci&oacute;n de virus seg&uacute;n los principios generales del m&eacute;todo descrito por Sobsey y otros en 1987,4 de tal forma que se obtuvo un volumen final de 6 mL por cada litro de agua.</P>     <P>Las muestras procesadas se inocularon en los sistemas celulares para aislamiento: c&eacute;lulas de l&iacute;nea de rhabdomiosarcoma embrionario humano (RD) altamente sensibles al crecimiento de Enterovirus,<span class="superscript">5</span> y c&eacute;lulas de l&iacute;nea transfectada a partir de la l&iacute;nea L de rat&oacute;n con el clon ADN (20B) del gen que codifica para el receptor humano para poliovirus (L20b), sistema selectivamente permisivo para el crecimiento de los poliovirus.<span class="superscript">6</span> En cada caso se inocularon por duplicado las muestras en ambos sistemas celulares, se incubaron los tubos a 37 °C y se observaron durante 10 d en busca de la aparici&oacute;n de efecto citop&aacute;tico (ECP). </P>     <P>Las muestras que causaron ECP en RD fueron pasadas a L20b y todas las que mostraron ECP en L20b se sometieron a prueba de neutralizaci&oacute;n para la identificaci&oacute;n del poliovirus, previa titulaci&oacute;n viral por microm&eacute;todo. En el caso espec&iacute;fico de las muestras de aguas negras, se aplic&oacute; RCP tanto a las positivas por cultivo celular como a la totalidad de las muestras directamente, para esto se hizo extracci&oacute;n del ARN por el m&eacute;todo del TRIZOL. Los cebadores usados para la RCP fueron cebadores degenerados, dise&ntilde;ados por Kilpatrick y otros en 1998 e hibridan con sitios altamente conservados dentro de la regi&oacute;n VP1 de los poliovirus, lo que permite la amplificaci&oacute;n de una secuencia de 79 pb.<span class="superscript">7</span> </P>     <P>&nbsp;</P> <H4>RESULTADOS</H4> <H4>&nbsp;</H4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La tabla indica el n&uacute;mero de muestras de heces fecales y aguas alba&ntilde;ales recogidas cada semana, los aislamientos de poliovirus encontrados y el porcentaje que estos representaron respecto del n&uacute;mero total de muestras.</P>     <P>&nbsp;</P>     <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v53n2/F010901.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v53n2/F010901.gif" BORDER=0></A></P>     
<P ALIGN="CENTER">Fig. Curvas de eliminaci&oacute;n de poliovirus vacunal en heces fecales y aguas alba&ntilde;ales, despu&eacute;s de concluida la inmunizaci&oacute;n con la vacuna oral de virus atenuado.</P>     <P ALIGN="CENTER">Tabla. Muestras de heces fecales y aguas negras analizadas cada semana, cantidad y porcentaje de aislamientos positivos y poliovirus </P> <TABLE BORDER CELLSPACING=1 WIDTH=468> <TR><TD VALIGN="MIDDLE" ROWSPAN=2>     <P>Semanas</TD> <TD VALIGN="MIDDLE" COLSPAN=2>     <BLOCKQUOTE>    <div align="center">Heces fecales </div></BLOCKQUOTE>     <BLOCKQUOTE>&nbsp;</BLOCKQUOTE></TD> <TD VALIGN="MIDDLE" COLSPAN=2>     <P>    ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">Aguas alba&ntilde;ales </div></TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE">     <P>No. muestras</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>Positivas %</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>No. muestras</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>Positivas % </TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE">     <P>1 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>100</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>26(26)</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>8(100)</TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=30>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>2</TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=30>     <P>92</TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=30>     <P>22(23,9)</TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=30>     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=30>     <P>8(100)</TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=16>     <P>3 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=16>     <P>100</TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=16>     <P>30(30) </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=16>     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=16>     <P>5(62,5)</TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>4 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>93</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>25(26,9)</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>3(37,5) </TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE">     <P>5 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>91 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>12(13,2) </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>3(37,5)</TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=24>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=24>     <P>104</TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=24>     <P>0 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=24>     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE" HEIGHT=24>     <P>1(12,5) </TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE">     <P>12 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>93 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>0 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>8 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>0 </TD> </TR> <TR><TD VALIGN="MIDDLE">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Total </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>673 </TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>115(17,1)</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>56</TD> <TD VALIGN="MIDDLE">     <P>28(50) </TD> </TR> </TABLE>      <P>&nbsp; </P>     <P>La expresi&oacute;n gr&aacute;fica de estos resultados permite plantear las curvas de eliminaci&oacute;n en ambos medios, seg&uacute;n se muestra en la figura. Se evidencia una tendencia descendente de los niveles de detecci&oacute;n desde la semana primera hasta la quinta, y la interrupci&oacute;n de las identificaciones en heces fecales y aguas alba&ntilde;ales a partir de las semanas 8 y 12 respectivamente.</P>     <P ALIGN="CENTER">Puede apreciarse, y fue comprobado mediante la prueba de diferencia de proporciones aplicada a los datos, que existe una marcada diferencia (estad&iacute;sticamente significativa para p <0,01) entre los porcentajes de positividad calculados para las muestras de heces fecales y las de aguas negras. ></P>     <P>&nbsp;</P> <H4>DISCUSI&Oacute;N</H4>     <P>Las curvas trazadas seg&uacute;n los porcentajes semanales de positividad describen una brusca ca&iacute;da, lo que concuerda con los reportes de otros investigadores como Sabin y otros en 1960,<span class="superscript">8</span> M&aacute;s y otros en 1975<span class="superscript">9</span> y 1991-1992<span class="superscript">10</span> y Poyri y otros en 1988,<span class="superscript">11</span> aunque los dise&ntilde;os de sus investigaciones no se concibieron con la finalidad de demostrar, por medio de una muestra representativa, el tiempo de permanencia y circulaci&oacute;n de las cepas de poliovirus derivadas de la vacuna en el ambiente y entre una poblaci&oacute;n con alta cobertura vacunal. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La muezca en la curva correspondiente a las muestras de heces fecales por la diferencia entre los porcentajes de aislamientos positivos en las semanas 2 y 3, pudiera deberse a la excreci&oacute;n intermitente que se produce despu&eacute;s de administrar la VOP. </P>     <P>La diferencia en altura de las curvas obedece a que los promedios respectivos de los porcentajes de positividad para heces fecales y aguas negras son de 17,1 y 50 %. Esto es atribuible a que el agua alba&ntilde;al es 100 veces m&aacute;s sensible que las heces fecales para detectar magnitud de ni&ntilde;os excretores de virus (lo que significa matem&aacute;ticamente que con 0,01 de individuo excretando virus ya ser&aacute; positiva una muestra de aguas negras).<span class="superscript">12 </span></P>     <P>En cuanto al tiempo, relativamente mayor, de eliminaci&oacute;n de virus de las aguas negras con respecto a las heces fecales, debe considerarse que en las primeras converger&aacute;n los virus eliminados por toda la poblaci&oacute;n y su permanencia en ese medio no estar&aacute; limitada por los mecanismos aclaradores de virus que act&uacute;an al nivel de individuo como respuesta de su sistema inmunitario, sino por condiciones ambientales espec&iacute;ficas de salinidad, temperatura, acidez y contenido de sustancias org&aacute;nicas e inorg&aacute;nicas. </P>     <P>&nbsp;</P> <H4>SUMMARY</H4>     <P>The erradication of poliomyelitis in the world is a goal that requires the adoption of effective and safe strategies for its attainment. Knowing how long the strains of poliovirus derived from the oral attenuated virus vaccine may circulate and remain in the environment was essential to define the measures to be taken and was also the objective of our paper. Specimens of stools and sewage water, which were weekly obtained at the end of the National Polio Vaccination Campaign, in 1998, were analyzed. Viruses were isolated and identified by culture and neutralization tests for the identification of poliovirus. In the particular case of the sewage water, it was also used the polymerase chain reaction. The curves of elimination in both media were drawn and it was concluded that the permanence of viruses in the environment did not exceed the 12 weeks after the immunization with the oral attenuated virus vaccine. </P>     <P>Subject headings: POLIOMYELITIS/prevention &amp; control; MASS VACCINATION; ENVIRONMENT. </P>     <P>&nbsp;</P> <H4>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>WHO. Global erradication of poliomyelitis by the year 2000. Resolution of the 41st World Health Assembly 1998: Resolution 41.28. </LI>    <!-- ref --><LI>Melnick J. Enterovirus. Poliovirus, coxsackievirus, echovirus, and newer enteroviruses. En: Fields BN, Knipe DM, eds. Virology 3ed. VoIIUSA: Raven Press, 1996:549-645. </LI>    <!-- ref --><LI>Chezzi C, Dommann CJ, Blackburn NK, Maselesele E. Genetic stability of oral polio vaccine prepared on primary monkey kidney cells or Vero cells-effects of passage in cell culture and the human gastrointestinal tract. Vaccine 1998;16:2031-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Sobsey M. Methods for recovering viruses from shellfish, seawater and sediments. En: Methods for recovering viruses in the environments. Boca de Rat&oacute;n, FL: CRC Press, 1987:77-108. </LI>    <!-- ref --><LI>Hay R, Caputo J, Chen TR, Macy M, Mc Clintoch P. American type culture collection cataloge of cell lines and hibridomas. 7 ed. 1996:48. </LI>    <!-- ref --><LI>Mendelson C, Johnson B, Leonetti K, Nobis P, Wimmer E, Racaniello R. Transformation of a human poliovirus receptor gen into mouse cells. Proct Natl Acad Sci 1986:7845-9.</LI>    <!-- ref --><LI>Kilpatrick D, Nottay B, Yang S, Da Silva E, Pe&ntilde;aranda S, Pallanch M, et al. Serotype-specific identification of polioviruses by PCR using primers containing mixed-base or Deoxyinosine residues at positions of codon degeneracy. J Clin 1998;36(2):352-7. </LI>    <!-- ref --><LI>Sabin A, Ramos-&Aacute;lvarez M, &Aacute;lvares-Almequita J. Live orally given poliovirus vaccine: Effects of rapid mass immunization on population under conditions of massive enteric infection with other viruses. J Am Med Ass 1960;173:1521-6.</LI>    <!-- ref --><LI>M&aacute;s P, Louzara C, Beltr&aacute;n J, Jacobo M, Palomera R. Circulaci&oacute;n de poliovirus en la poblaci&oacute;n infantil de Cuba. Bolet&iacute;n Ofic Sanit Panam 1979;87(5):443-9. </LI>    <!-- ref --><LI>M&aacute;s P, Bravo R, Andrus J. Lessons from Cuba: mass administration of trivalent oral poliovirus vaccine and seroprevalence of poliovirus neutralizing antibodies. Bulletin WHO 1994;71(2):221-5. </LI>    <!-- ref --><LI>Poyri T, Stenvik M, Hovi T. Viruses in sewage waters during and after a poliomyelitis outbreak and subsequent nationwide oral poliovirus vaccination campaign in Finland. Applied Environment Microbiol 1998;54:371-4. </LI>    <!-- ref --><LI>Bottiger M, Herrstrom E. Isolation of polioviruses from sewage and their characteristics: experience over two decades in Sweden. Scand JID, 1992;24:151-5.</LI>    </OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Recibido: 27 de diciembre del 2000. Aprobado: 23 de enero del 2001. Dra. Patricia Jim&eacute;nez. Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;. Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba Correo electr&oacute;nico: ciipk@ipk.sld.cu </P>     <P>&nbsp;</P>     <P><A HREF="#autor"><span class="superscript">1</span> Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a. <span class="superscript">    <BR> 2</span> Especialista de II Grado en Microbiolog&iacute;a. Profesor Titular. <span class="superscript">    <BR> 3</span> M&aacute;ster en Ciencias. Licenciado en Bioqu&iacute;mica. <span class="superscript">    <BR> 4</span> M&aacute;ster en Ciencias. Licenciada en Microbiolog&iacute;a. <span class="superscript">    <BR> 5</span> T&eacute;cnica en Microbiolog&iacute;a. <span class="superscript">    <BR> 6 </span>Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a.</A><A NAME="cargo"></A></P>     ]]></body><back>
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