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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Conservación de heces humanas para la detección de antígenos de excreción-secreción de Fasciola hepatica]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Preservation of human stools for the detection of Fasciola hepatica excretory secretory antigens]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí.  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[INTRODUCTION: fascioliasis is an endemic disease in cattle in Cuba, but in the last few years, there has been an increase in the number of reported human cases. OBJECTIVES: the difficulties in diagnosing this disease in rural areas or in zones far away from the laboratory make it necessary to find adequate solutions that allow preserving the stool specimens until the antigen is detected by the FasciDIG® method. METHODS: several preserving solutions were used (2 % potassium dichromate, 0,5 % aqueous hibitane, 2 % glutaral, 1 % benzalkonium chloride, 0,04% sodic azide and 0,05 % distilled water with 20 tween) at room temperature, 4 ºC and - 20 ºC. RESULTS: among the samples kept at room temperature, those with no preserve suffered a significant deterioration, and their values were higher than the ones of the samples conserved with distilled water with tween 20 and with sodium azide. The latter is a very toxic product and its use would require a greater care. CONCLUSIONS: 0,05 % distilled water with 20 tween at room temperature was the preserving solution with the best results in this study.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><b><font size="2" face="Verdana">COMUNICACI&Oacute;N BREVE</font></b></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="Verdana"><b>Conservaci&oacute;n de heces humanas para    la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n    de <I>Fasciola hepatica</I> </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B><font size="3">Preservation of human stools    for the detection of <I>Fasciola hepatica</I> excretory secretory antigens</font></B>    </font> </p>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>      <P><font size="2" face="Verdana"><b>Ingrid Domenech Ca&ntilde;ete<SUP>I</SUP></b>;<b>    Ricardo Marcet S&aacute;nchez<SUP>II</SUP></b>;<b> Mabel Figueredo Pino<SUP>III</SUP></b>;    <b> Jorge Sarracent P&eacute;rez<SUP>IV</SUP> </b></font>      <P>      <P><font size="2" face="Verdana"><SUP>I</SUP> M&aacute;ster en Infectolog&iacute;a.    Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a. Departamento de Parasitolog&iacute;a.    Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot; (IPK). Ciudad    de La Habana, Cuba.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </font><font size="2" face="Verdana"><SUP>II </SUP>Licenciado en Bioqu&iacute;mica.    Departamento de Parasitolog&iacute;a. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><SUP>III</SUP> T&eacute;cnico en Qu&iacute;mica.    Departamento de Parasitolog&iacute;a. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><SUP>IV</SUP> Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas.    Licenciado en Bioqu&iacute;mica. Departamento de Parasitolog&iacute;a. IPK.    Ciudad de La Habana, Cuba. </font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp;  <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><B>RESUMEN </B></font><B>      <P>  </B>      <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</b>: la fasciolosis en    Cuba es una enfermedad end&eacute;mica en el ganado y en los &uacute;ltimos    a&ntilde;os ha tenido un incremento en el n&uacute;mero de casos reportados    en humanos. <B>    <br>   OBJETIVOS</B>: por causa de las dificultades para realizar el diagn&oacute;stico    de esta enfermedad en zonas rurales o alejadas del laboratorio se ha hecho necesario    buscar soluciones preservantes, que permitan conservar las muestras de heces    hasta el momento de la determinaci&oacute;n de ant&iacute;geno por el m&eacute;todo    de FasciDIG<SUP>&#174;</SUP>. <B>    <br>   M&Eacute;TODOS</B>: se utilizaron diferentes soluciones preservantes (dicromato    de potasio 2 %, hibitane acuoso 0,5 %, glutaral 2 %, cloruro de benzalconio    1 %, azida s&oacute;dica 0,04 % y agua destilada con <I>tween</I> 20 0,05 %)    a temperatura ambiente, 4 &#186;C y - 20 &#186;C. <B><FONT COLOR="#ff0000">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <font color="#000000">RESULTADOS</font></FONT></B><font color="#000000">: en    las muestras preservadas a temperatura ambiente, las que no ten&iacute;an preservo    sufrieron un gran deterioro, mostraron valores superiores a las conservadas    con agua <I>tween</I> 20 y con azida s&oacute;dica. Esta &uacute;ltima es un    producto altamente t&oacute;xico, por ser un inhibidor de la cadena respiratoria    y requerir&iacute;a de un mayor cuidado en su utilizaci&oacute;n.</font></font>    <font size="2" face="Verdana"><B>    <br>   CONCLUSIONES</B>: se sugiere que la soluci&oacute;n preservante de agua destilada    con <I>tween</I> 20 0,05 % a temperatura ambiente mostr&oacute; los mejores    resultados en el estudio. </font>      <P>      <P><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>: <I>Fasciola hepatica</I>,<I>    </I>conservaci&oacute;n, diagn&oacute;stico. </font>  <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT </b></font>      <P>      <P><font size="2" face="Verdana"><B>INTRODUCTION:</B> fascioliasis is an endemic    disease in cattle in Cuba, but in the last few years, there has been an increase    in the number of reported human cases. <B>    <br>   OBJECTIVES</B>: the difficulties in diagnosing this disease in rural areas or    in zones far away from the laboratory make it necessary to find adequate solutions    that allow preserving the stool specimens until the antigen is detected by the    FasciDIG&#174; method. <B>    <br>   METHODS: </B>several preserving solutions were used (2 % potassium dichromate,    0,5 % aqueous hibitane, 2 % glutaral, 1 % benzalkonium chloride, 0,04% sodic    azide and 0,05 % distilled water with 20 tween) at room temperature, 4 &#186;C    and - 20 &#186;C.    <br>   <b>RESULTS</b>: a<font size="2" face="Verdana">mong the samples kept at room    temperature, those with no preserve suffered a significant deterioration, and    their values were higher than the ones of the samples conserved with distilled    water with tween 20 and with sodium azide. The latter is a very toxic product    and its use would require a greater care. </font><B>    <br>   CONCLUSIONS</B>: 0,05 % distilled water with 20 tween at room temperature was    the preserving solution with the best results in this study.</font> <B></B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana"><B>Key words</b>: <I>Fasciola hepatica</I>, preservation,    diagnosis. </font> <hr size="1" noshade>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>      <P>      <P>      <P>      <P>      <P>      <P><font size="3" face="Verdana"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font size="2" face="Verdana">La fasciolosis producida por <I>Fasciola hepatica    </I>es una enfermedad zoon&oacute;tica de gran importancia m&eacute;dico-veterinaria.    A pesar de que la infecci&oacute;n humana es menos com&uacute;n que la animal,<SUP>1    </SUP>en los &uacute;ltimos 25 a&ntilde;os se ha informado un total de 6 848    casos en 51 pa&iacute;ses. En Cuba la enfermedad es end&eacute;mica en el ganado    y se presenta en humanos en forma de casos espor&aacute;dicos y brotes epid&eacute;micos.<SUP>2,3</SUP>    </font>      <P><font size="2" face="Verdana">El diagn&oacute;stico en humanos est&aacute;    basado en el hallazgo de los huevos del par&aacute;sito en las heces o en el    fluido duodenal, pero este presenta serias dificultades, dado fundamentalmente    por la eliminaci&oacute;n de los huevos de forma intermitente por el par&aacute;sito    y por errores en el diagn&oacute;stico de laboratorio. Esto ha ocasionado que    los sistemas inmunoenzim&aacute;ticos de determinaci&oacute;n de ant&iacute;genos    de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n (AgES) del par&aacute;sito constituyan    una alternativa necesaria e indispensable para lograr este objetivo.<SUP>4,5</SUP>    </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Cuba cuenta con el ensayo inmunoenzim&aacute;tico    FasciDIG<SUP>&#174;</SUP>, desarrollado en el Instituto de Medicina Tropical    &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;, altamente sensible y espec&iacute;fico, que    emplea el anticuerpo monoclonal (AcM) ES-78 y un conjugado peroxidasa-Ac policlonal    obtenido en conejos, ambos contra ant&iacute;genos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n    de adultos de <I>F. hepatica.</I><SUP>6-8</SUP> </font>      <P><font size="2" face="Verdana">Dada la importancia del diagn&oacute;stico de    <I>F. hepatica</I> en zonas rurales y conociendo las dificultades que existen    en la conservaci&oacute;n y transportaci&oacute;n de las muestras,<SUP>9</SUP>    se ha hecho necesario la b&uacute;squeda de preservantes que garanticen su estabilidad,    a temperatura ambiente por per&iacute;odos de tiempo m&aacute;s o menos prolongados.    Es por ello que se traz&oacute; como objetivo de este trabajo, utilizar diferentes    soluciones preservantes de uso frecuente en los laboratorios de Cuba, y evaluar    cu&aacute;les podr&iacute;an ser &uacute;tiles en la conservaci&oacute;n de    heces para su uso en el sistema de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos de <I>F.    hepatica</I>, a trav&eacute;s del ensayo inmunoenzim&aacute;tico FasciDIG<SUP>&#174;</SUP>.<SUP>6-8</SUP>    </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Para la realizaci&oacute;n de un sistema simulado,    se utilizaron 50 g de una mezcla de heces humanas procedentes de personas que    resultaron negativas al examen parasitol&oacute;gico (examen directo con eosina    y lugol, m&eacute;todos de concentraci&oacute;n de Willis, Ritchie y copa c&oacute;nica).    A la mezcla se le a&ntilde;adieron 100 mL de agua destilada, se dej&oacute;    en reposo durante 20 min. Al sobrenadante colectado se le adicion&oacute; una    soluci&oacute;n de Ag ES de <I>F. hepatica</I> para una concentraci&oacute;n    final de 1 &#181;g/mL (concentraci&oacute;n saturante) en la soluci&oacute;n    de heces.<SUP>9</SUP> Esta soluci&oacute;n fue distribuida en frascos a los    que se les a&ntilde;adieron diferentes sustancias como preservante: dicromato    de potasio (K<SUB>2</SUB>Cr<SUB>2</SUB>O<SUB>7</SUB>) 2 %, hibitane acuoso (clorhexidina)    0,5 %, glutaral (glutaraldeh&iacute;do) 2 %, cloruro de benzalconio (cloruro    de<B>&#160;</B>lauril dimetil bencil amonio) 1 %, azida s&oacute;dica (NaN<SUB>3</SUB>)    0,04 % y agua destilada con <I>tween</I> 20 (polioxietileno sorbitano monolaureato)    0,05 %, a raz&oacute;n de 2 partes del preservante por 4 partes de soluci&oacute;n    de heces. Posteriormente, al&iacute;cuotas de estas soluciones fueron sometidas    a diferentes temperaturas (temperatura ambiente, TA: 27 &#186;C - 30 &#186;C;    4 &#186;C y - 20 &#186;C) durante diferentes tiempos (0, 7 y 30 d). Un control    con ant&iacute;geno al que no se le adicion&oacute; preservante y otro sin ant&iacute;geno    y sin preservante, fueron tambi&eacute;n incluidos en el estudio. Seguidamente,    se procedi&oacute; a la realizaci&oacute;n del ensayo inmunoenzim&aacute;tico    FasciDIG<SUP>&#174;</SUP> para la detecci&oacute;n de ant&iacute;geno. Se hicieron    los experimentos por separado bajo las mismas condiciones de trabajo. </font>      <P><font size="2" face="Verdana">La soluci&oacute;n de glutaral 2 % es el &uacute;nico    de los antis&eacute;pticos utilizados que mostr&oacute; un efecto negativo dr&aacute;stico    a todas las temperaturas, sobre el ep&iacute;tope que reconoce el anticuerpo    monoclonal ES-78 en el sistema FasciDIG<SUP>&#174;</SUP>. El glutaral tiene    efecto alquilante sobre las prote&iacute;nas y provoca cambios estructurales    en estas.<SUP>10</SUP> Conociendo la naturaleza glicoproteica del ant&iacute;geno    de <I>F. hepatica</I> reconocido por el anticuerpo monoclonal ES-78,<SUP>11</SUP>    se puede inferir que esta sustancia afecta<B> </B>la estructura del ep&iacute;tope    (<a href="/img/revistas/mtr/v61n2/f0114209.gif" target="_blank">Fig. A, B y C</a>). </font>      
<P><font size="2" face="Verdana">En las muestras positivas conservadas a 20 &#186;C,    se obtuvo disminuci&oacute;n en las densidades &oacute;pticas a los 7 y a los    30 d con todas las soluciones preservantes, en relaci&oacute;n con el control    sin preservo, por lo que los autores de este trabajo sugieren que si la muestra    se va a conservar a 20 &#186;C es mejor mantenerla sin preservantes (<a href="/img/revistas/mtr/v61n2/f0114209.gif" target="_blank">Fig.    A</a>). </font>      
<P><font size="2" face="Verdana">En las muestras conservadas a 4 &#186;C, el hibitane    acuoso 0,05 % y el agua m&aacute;s <I>tween</I> 20 0,05 % fueron los que mejores    resultados mostraron. Un valor inferior se obtuvo con el cloruro de benzalconio.    Tambi&eacute;n la muestra control sin preservo a esta temperatura se mantuvo    en buen estado por 30 d<B> </B>(<a href="/img/revistas/mtr/v61n2/f0114209.gif" target="_blank">Fig.    B</a>). Es de tener en cuenta que el hibitane y el cloruro de benzalconio son    sustancias irritantes y cancer&iacute;genas, por lo que en estas condiciones    de temperatura se consider&oacute; mantener la preparaci&oacute;n de heces en    agua <I>tween </I>20 como preservante. </font>      
<P><font size="2" face="Verdana">En las muestras preservadas a temperatura ambiente,    principal objetivo de este estudio, las muestras sin preservo sufrieron un gran    deterioro, mostraron valores superiores a las conservadas con agua <I>tween</I>    20 y con azida s&oacute;dica (<a href="/img/revistas/mtr/v61n2/f0114209.gif" target="_blank">Fig.    A</a>). La azida s&oacute;dica es un producto altamente t&oacute;xico por ser    un inhibidor de la cadena respiratoria, y requerir&iacute;a de un mayor cuidado    en su utilizaci&oacute;n. </font>      
]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">Varios autores plantean la importancia de utilizar    preservantes poco t&oacute;xicos y de bajo costo. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os    muchos laboratorios han propiciado la b&uacute;squeda de diferentes preservantes    de heces, libres de mercurio y formalina, que no traigan afectaciones morfol&oacute;gicas    a los huevos y quistes vistos en el diagn&oacute;stico parasicol&oacute;gico.<SUP>12</SUP>    Por otra parte, tambi&eacute;n se buscan preservantes que no traigan afectaciones    en las estructuras antig&eacute;nicas reconocidas en los sistemas de detecci&oacute;n    de ant&iacute;genos en muestras de heces.<SUP>13</SUP> </font>      <P><font size="2" face="Verdana">Teniendo en cuenta estos resultados para el ensayo    inmunoenzim&aacute;tico FasciDIG<SUP>&#174;</SUP>, se recomienda que la conservaci&oacute;n    de las muestras de heces a - 20 &#186;C debe realizarse sin adicionarles preservos.    Las muestras a temperatura de 4 &#186;C sin preservantes o preparadas en agua    <I>tween</I> 20 se pueden mantener hasta 1 mes. En caso de que no sea posible    almacenar las muestras en condiciones de refrigeraci&oacute;n, los autores del    presente trabajo recomiendan el uso de agua <I>tween</I> 20 como preservante    durante el tiempo que se conserve hasta la aplicaci&oacute;n del procedimiento    inmunoensayo enzim&aacute;tico. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Estudios posteriores deben realizarse para evaluar    los preservantes seleccionados a las diferentes condiciones de almacenamiento,    en muestras de heces de pacientes diagnosticados con <I>Fasciola hepatica</I>.    </font>     <P>&nbsp;      <P>      <P><font size="3" face="Verdana"><B>AGRADECIMIENTOS</B> </font>      <P>      <P><font size="2" face="Verdana">Al doctor Roberto Hern&aacute;ndez Merlo por    su colaboraci&oacute;n t&eacute;cnica para la realizaci&oacute;n de este trabajo.</font>     <P>&nbsp;      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font size="3" face="Verdana"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>      <P>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">1. Esteban JG, Barguez MD, and Mas-Coma S. Geografical    distribution diagnosis and treatment of human fasciolasis: a review. Rev Res    Parasitol. 1998;58:13-42. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">2. Gonz&aacute;lez JF, P&eacute;rez O, Rodr&iacute;guez    G, Aros E, Lastre M. Fascioliasis humana epid&eacute;mica,Cuba 1983. VI. Estudio    cl&iacute;nico de 44 adultos del Hospital General de Fomento. GEN. 1985;39:276-81.    </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">3. Espino AM, D&iacute;az A, Perez A, Finlay    CM. Detection of antigenemia and coproantigens during a human <I>Fasciola hepatica    </I>outbreak. J Clin Microbiol. 1998;36:2723-6. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">4. Nagaty IM, Hegazi MM. Dot-ELISA copro-antigen    and direct stool examination in diagnosis of giardiasis patients. J Egypt Soc    Parasitol. 2007;37:641-8. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">5. El Shazly AM, Soltan DM, El-Sheikha HM, Sadek    GS, Morsy AT. Correlation of ELISA copro-antigen and oocysts count to the severity    of <I>Cryptosporidium parvum</I> in children. J Egypt Soc Parasitol. 2007;37:107-20.    </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">6. Espino AM, Marcet R, Finlay CM. Detection    of circulating excretory secretory antigens in human fascioliasis by sandwich    enzyme-linked immunosorbent assay. </font><font size="2" face="Verdana">J Clin    Microbiol. 1990;28:2637-40. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">7. Espino, A.M and Finlay, C.M. Sandwich enzyme-linked    immunosorbent Assay for Detection of Excretory Secretory Antigens in Humans    With Fascioliasis. J Clin Microbiol. 1994;32:190-3. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">8. Dumenigo BE, Espino AM, Finlay CM, Detection    of <I>Fasciola hepatica </I>antigen in cattle faeces by a monoclonal antibody    - based sandwich immunoassay. Res Vet Sci. 1996;60:278-9. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">9. Espino AM. Inmunodiagn&oacute;stico de la    fasciolosis humana y su aplicaci&oacute;n en brotes epid&eacute;micos [Tesis    para Doctor en Ciencias M&eacute;dicas]. Ciudad de La Habana: IPK; 2005. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">10. Fedorko DP, Williams EC, Nelson NA, Calhoun    LB, Yan SS.<B> </B>Performance of three enzyme immunoassays and two direct fluorescence    assays for detection of <I>Giardia lamblia</I> in stool specimens preserved    in ECOFIX. J Clin Microbiol. 2000;38:2781-3. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">11. D&iacute;az A, Espino AM, Marcet R, Otero    O, Torres D, Finlay CM, et al. Partial characterization of epitope on excretory-secretory    products of <I>Fasciola hepatica</I> recognized by Monoclonal Antibody ES78.    J Parasitol. 1998;84:51-61. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">12. Pietrzak-Johnston SM, Bishop H, Wahlquist    S, Moura H, De Oliveira Da Silva N, Pereira Da Silva S, et al. Evaluation of    commercially available preservatives for laboratory detection of helminths and    protozoa in human fecal specimens. J Clin Microbiol. 2000;38:1959-64. </font>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">13. Daoan R, Fraser D, El-On J, Kassis I, Deckelbaum    R, Turner S. Evaluation of an enzyme immunoassay for the detection of <I>Cryptosporidium    spp</I>. in stool specimens from infants and young children in field studies.    Am J Trop Med Hyg. 1995;52:134-8. </font>    <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>      <P><font size="2" face="Verdana">Recibido: 8 de enero de 2009.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Aprobado: 7 de marzo de 2009. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P><font size="2" face="Verdana">Dra. <I>Ingrid Domenech Ca&ntilde;ete</I>. Instituto    de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;. AP 601, Marianao 13, Lisa,    Ciudad de La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico: <U><FONT  COLOR="#000080"><a href="mailto:ingrid@ipk.sld.cu" target="_blank">ingrid@ipk.sld.cu</a></FONT></U>    </font>       ]]></body><back>
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