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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antimalárica de un extracto hidroalcohólico de Bixa orellana L.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Bixa orellana L. is one species used in traditional herb medicine in several continents. Among the medicinal properties attributed to this plant, the antimalarial action has been included. Objective: to evaluate in vitro and in vivo antimalarial activity of extract from B. orellana grown in Cuba. Methods: the antimalarial activity of the hydroalcoholic extract fro Bija seeds was evaluated in vitro against Plasmodium falciparum Ghana strain and in vivo using a model of murine malaria, that is, Balb/c mice infected with Plasmodium berghei ANKA strain. Citotoxicity was determined against MRC-5 human fibroblasts. Additionally, phytochemical composition of the studied extract was preliminarily informed. Results: the extract exhibited IC50 (Medium Inhibitory Concentration) of 11.6 µg/mL, CC50 (Medium Citotoxic Concentration) of 60.2 µg/mL and SI (Selectivity Index) of 5.1. Subcutaneous administration of the extract at a 500 mg/kg dose caused parasitemia reduction of 50.3 ± 5.8 % on infected animals compared with that of the controls. Phytochemical screening was consistent with detection of triterpenoids and/or steroids, alkaloids, lactonic compounds, phenols, tanins and flavonoids. Conclusions: the hydroalcoholic extract from B. orellana seeds grown in Cuba showed in vitro and in vivo moderate antimalarial activity. Bioassay-guided fractioning will allow identifying the molecules responsible for the exhibited extract activity and re-evaluating the potentialities of this extract.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"><B>COMUNICACI&Oacute;N BREVE</B> </font></p>       <p>&nbsp; </p> </div>     <P>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><b><font size="4">Actividad antimal&aacute;rica    de un extracto hidroalcoh&oacute;lico de <I>Bixa orellana </I>L.</font></b></font>      <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana" size="3"><b>A</b></font><font face="Verdana" size="2"><font size="3"><b>ntimalarial    activity of hydroalcoholic extract from <I>Bixa orellana</I> L. </b></font></font>     <P>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;      <P><font face="Verdana" size="2"><b>Aym&eacute; Fern&aacute;ndez-Calienes Vald&eacute;s,<SUP>I</SUP>    Judith Mendiola Mart&iacute;nez,<SUP>I</SUP> Deyanira Acu&ntilde;a Rodr&iacute;guez,<SUP>II</SUP>    Ram&oacute;n Scull Lizama,<SUP>III</SUP> Yamilet Guti&eacute;rrez Gait&eacute;n</b></font><b><font face="Verdana" size="2"><SUP>III    </SUP></font> </b>     <P><font face="Verdana" size="2"><SUP>I</sup>M&aacute;ster en Bioqu&iacute;mica.    Investigadora Auxiliar. Asistente. Departamento de Parasitolog&iacute;a, Instituto    de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot; (IPK). La Habana, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>II</SUP>T&eacute;cnica. Departamento    de Parasitolog&iacute;a, IPK. La Habana, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>III</SUP>M&aacute;ster en Farmacia.    Departamento de Farmacia, Instituto de Farmacia y Alimentos, Universidad de    La Habana. La Habana. Cuba.</font>      <P>&nbsp;     <p>&nbsp; </p> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B></font>      <p><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n</b>: <I>Bixa orellana</I>    L. es una especie usada en la medicina tradicional de pa&iacute;ses de diversos    continentes. Entre las propiedades medicinales que se le atribuyen se incluye    su acci&oacute;n antimal&aacute;rica. <B>    <br>   Objetivo</B>: evaluar la actividad antimal&aacute;rica <I>in vitro</I> e <I>in    vivo</I> de un extracto de <I>B. orellana </I>cultivada en Cuba. <B>    <br>   M&eacute;todos</B>: la actividad antimal&aacute;rica del extracto hidroalcoh&oacute;lico    de semillas de Bija se evalu&oacute; <I>in vitro</I> frente a la cepa Ghana    de <I>Plasmodium falciparum </I>e <I>in vivo</I> utilizando un modelo de malaria    de roedores, ratones Balb/c infectados con la cepa ANKA de <I>Plasmodium berghei</I>.<I>    </I>La citotoxicidad se determin&oacute; frente a fibroblastos humanos de la    l&iacute;nea MRC-5. Adem&aacute;s, se caracteriz&oacute; preliminarmente la    composici&oacute;n fitoqu&iacute;mica del extracto estudiado. <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Resultados</B>: el extracto exhibi&oacute; un valor de concentraci&oacute;n    inhibitoria media de 11,6<B> </B>&#181;g/mL, concentraci&oacute;n citot&oacute;xica    media de 60,2 &#181;g/mL e &iacute;ndice de selectividad de 5,1. La administraci&oacute;n    subcut&aacute;nea del extracto a la dosis de 500 mg/kg caus&oacute; una reducci&oacute;n    de 50,3 &#177; 5,8 % de la parasitemia en los animales infectados en comparaci&oacute;n    con la observada en los controles. El tamizaje fitoqu&iacute;mico fue consistente    con la detecci&oacute;n de triterpenoides y(o) esteroides, alcaloides, compuestos    lact&oacute;nicos, compuestos fen&oacute;licos, taninos y flavonoides. <B>    <br>   Conclusiones</B>: el extracto hidroalcoh&oacute;lico de semillas de <I>B. orellana</I>    cultivada en Cuba mostr&oacute; actividad antimal&aacute;rica moderada tanto    <I>in vitro</I> como <I>in vivo</I>. El fraccionamiento guiado por bioensayos    permitir&iacute;a identificar las mol&eacute;culas responsables de la actividad    demostrada por este extracto y reevaluar sus potencialidades. </font> </p>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave</B>: <I>Bixa orellana</I>,    extracto crudo, malaria, actividad antimal&aacute;rica, citotoxicidad. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT </B></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Introduction</b>:<I> Bixa orellana</I> L.    is one species used in traditional herb medicine in several continents. Among    the medicinal properties attributed to this plant, the antimalarial action has    been included. <B>    <br>   Objective</B>: to evaluate <I>in vitro</I> and <I>in vivo</I> antimalarial activity    of extract from <I>B. orellana</I> grown in Cuba. <B>    <br>   Methods</B>: the antimalarial activity of the hydroalcoholic extract fro Bija    seeds was evaluated <I>in vitro</I> against <I>Plasmodium falciparum</I> Ghana    strain<I> </I>and <I>in vivo </I>using a model of murine malaria, that is, Balb/c    mice infected with <I>Plasmodium berghei</I> ANKA strain. Citotoxicity was determined    against MRC-5<I> </I>human fibroblasts. Additionally, phytochemical composition    of the studied extract was preliminarily informed. <B>    <br>   Results</B>: the extract exhibited IC<SUB>50 </SUB>(Medium Inhibitory Concentration)    of 11.6<B> </B>&#181;g/mL, CC<SUB>50</SUB> (Medium Citotoxic Concentration)    of 60.2 &#181;g/mL and SI (Selectivity Index) of 5.1. Subcutaneous administration    of the extract at a 500 mg/kg dose caused parasitemia reduction of 50.3 &#177;    5.8 % on infected animals compared with that of the controls. Phytochemical    screening was consistent with detection of triterpenoids and/or steroids, alkaloids,    lactonic compounds, phenols, tanins and flavonoids. <B>    <br>   Conclusions</B>: the hydroalcoholic extract from <I>B. orellana</I> seeds grown    in Cuba showed <I>in vitro</I> and <I>in vivo</I> moderate antimalarial activity.    Bioassay-guided fractioning will allow identifying the molecules responsible    for the exhibited extract activity and re-evaluating the potentialities of this    extract. </font>  <B></B>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words</B>: <I>Bixa orellana</I>, crude    extract, malaria, antimalarial activity, citotoxicity. </font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P>      <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Bixa orellana</I> L., nombrada como bija,    es una especie muy conocida por la utilidad de sus semillas como colorante en    la industria cosm&eacute;tica y en la alimentaria. Esta planta es tambi&eacute;n    muy usada en la medicina tradicional de muchos pa&iacute;ses. En Cuba se emplea    para combatir el asma bronquial y como cicatrizante de heridas y quemaduras.<SUP>1</SUP>    Entre las propiedades medicinales de esta especie se reporta su acci&oacute;n    antitumoral,<SUP>2</SUP> antibacteriana,<SUP>3,4</SUP> antif&uacute;ngica,<SUP>4,5</SUP>    leishmanicida,<SUP>5</SUP> antipir&eacute;tica<SUP>1,6</SUP> y antimal&aacute;rica.<SUP>6,7</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Varios estudios han demostrado la acci&oacute;n    antiplasmodial de extractos preparados a partir de diferentes partes de <I>B.    orellana</I>.<SUP>8-10</SUP> Estos trabajos y la baja toxicidad mostrada por    el extracto hidroalcoh&oacute;lico de semillas de bija cultivada en Cuba,<SUP>11</SUP>    motivaron a los autores del presente art&iacute;culo a investigar la actividad    antimal&aacute;rica de este preparado. Espec&iacute;ficamente, evaluar la actividad    <I>in vitro</I> del extracto de <I>B. orellana</I> frente a <I>Plasmodium falciparum,    </I>su citotoxicidad frente a fibroblastos humanos<I> </I>y su acci&oacute;n    <I>in vivo</I> utilizando un modelo de malaria de roedores. Adem&aacute;s, caracterizar    de manera preliminar la composici&oacute;n fitoqu&iacute;mica del extracto estudiado.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La identificaci&oacute;n de la especie, la colecta    de las semillas y la preparaci&oacute;n del extracto se describieron detalladamente    con anterioridad.<SUP>11</SUP> El ensayo de actividad antimal&aacute;rica se    realiz&oacute; empleando la cepa Ghana de <I>P. falciparum<B> </B></I>susceptible    a cloroquina.<SUP>12</SUP> Los par&aacute;sitos se cultivaron en eritrocitos    humanos A<SUP>+</SUP> a 37 &#176;C en presencia de una atm&oacute;sfera baja    en ox&iacute;geno (O<SUB>2</SUB>:<SUB> </SUB>3 %, CO<SUB>2</SUB>: 4 % y N<SUB>2</SUB>:    93 %), en una c&aacute;mara modular de incubaci&oacute;n (ICN Biomedicals, EE.    UU.). Se utiliz&oacute; RPMI-1640 suplementado con 20 % de suero humano como    medio de cultivo. Los experimentos se realizaron en placas de cultivo de 96    pozos con fondo plano (Nunc). Se probaron concentraciones de extractos entre    100 y 1,56 &#181;g/mL; se prepararon diluciones dobles en medio de cultivo hasta    un volumen final de 100 L. Al extracto prediluido se le adicionaron otros 100    &#181;L de medio que conten&iacute;a eritrocitos parasitados en suspensi&oacute;n    (parasitemia 1 %, hematocrito 4 %), con m&aacute;s de 90 % en el estadio de    trofozoito joven (formas anulares). Las placas del ensayo se incubaron durante    48 h, al cabo de las cuales la multiplicaci&oacute;n de los par&aacute;sitos    se midi&oacute; mediante conteo microsc&oacute;pico despu&eacute;s de realizar    la tinci&oacute;n con Giemsa de una muestra de gl&oacute;bulos de cada pocillo.    M&aacute;s de 2 000 c&eacute;lulas rojas se examinaron para ver la presencia    de par&aacute;sitos en cada r&eacute;plica de cada concentraci&oacute;n del    extracto en un experimento. El crecimiento de los par&aacute;sitos en presencia    de los extractos se expres&oacute; como un porcentaje de los controles sin extracto.    Cada concentraci&oacute;n de extracto se evalu&oacute; 3 veces. Se calcul&oacute;    la concentraci&oacute;n del extracto que inhibi&oacute; 50 % del crecimiento    parasitario (CI<SUB>50</SUB>) con la utilizaci&oacute;n del m&eacute;todo de    interpolaci&oacute;n lineal. Se utiliz&oacute; difosfato de cloroquina (SIGMA)    como droga de referencia. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Una l&iacute;nea celular humana embri&oacute;nica    diploide de pulm&oacute;n (MRC-5) se us&oacute; para determinar el efecto citot&oacute;xico    del extracto. Las c&eacute;lulas se cultivaron en medio m&iacute;nimo esencial    (MEM, Sigma), suplementado con L-glutamina (20 mM), 16,5 mM de hidr&oacute;geno    carbonato de sodio y 5 % de suero fetal bovino a 37 &#176;C en una atm&oacute;sfera    de CO<SUB>2 </SUB>al 5 %. La evaluaci&oacute;n se realiz&oacute; en placas de    cultivo de 96 pocillos con fondo plano. Para el ensayo, se sembraron 15 000    c&eacute;lulas por pozo suspendidas en un volumen de 100 L de MEM. Despu&eacute;s    de la formaci&oacute;n de la monocapa confluente, se adicionaron 2 &#181;L de    extracto prediluido para un rango final de concentraciones de 200 &#181;g/mL    a 1,56 &#181;g/mL. La incubaci&oacute;n se realiz&oacute; durante 72 h bajo    las mismas condiciones de cultivo. Dimetilsulf&oacute;xido (DMSO) al 0,1 % y    c&eacute;lulas no tratadas se incluyeron como controles. La citotoxicidad se    determin&oacute; utilizando el ensayo colorim&eacute;trico de la sal de tetrazolium    MTT.<SUP>13</SUP> Se adicionaron 10 &#181;L de la soluci&oacute;n madre de MTT    (5 mg/mL) a cada pozo despu&eacute;s del per&iacute;odo de incubaci&oacute;n    de las c&eacute;lulas con los extractos. La incubaci&oacute;n de las placas    continu&oacute; durante 4 h m&aacute;s. Finalmente, se adicionaron 100 &#181;L    de una soluci&oacute;n de dodecil sulfato de sodio (SDS 10 % en 0,01 M HCl)    a cada pozo. La cantidad de formazan formado se midi&oacute; mediante la determinaci&oacute;n    de la absorbancia a 560 nm y a 630 nm (longitud de onda de referencia) utilizando    un lector de ELISA (MRX Revelation, Dynex Technology). El da&ntilde;o causado    por cada concentraci&oacute;n de los extractos se expres&oacute; como un porcentaje    de la absorbancia de los controles. La concentraci&oacute;n de extracto que    caus&oacute; 50 % de la toxicidad celular o concentraci&oacute;n citot&oacute;xica    media (CC<SUB>50</SUB>) se calcul&oacute; por interpolaci&oacute;n lineal. El    &iacute;ndice de selectividad (IS) se determin&oacute; como el cociente de los    valores de la CC<SUB>50</SUB> y de la CI<SUB>50</SUB>. </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n de la actividad antimal&aacute;rica    <I>in vivo</I> se utilizaron ratones Balb/c hembras de 20 &#177; 2 g. Los animales    se infectaron por la v&iacute;a intraperitoneal mediante la inoculaci&oacute;n    de 0,2 mL de una suspensi&oacute;n de eritrocitos parasitados (1 x 10<SUP>7</SUP>)    con <I>P. berghei</I>, cepa ANKA. Los ratones infectados se distribuyeron en    4 grupos de 5 animales. Un grupo de animales se mantuvo sin tratar como control    de la infecci&oacute;n. En el resto de los grupos los animales se trataron por    la v&iacute;a subcut&aacute;nea con 0,2 mL de: extracto disuelto en DMSO (10    %) a una dosis de 500 mg/kg, o difosfato de cloroquina disuelta en NaCl (0,9    %) a una dosis de 10 mg/kg o DMSO (10 %) diluido en NaCl (0,9 %) como control    del veh&iacute;culo. El tratamiento se realiz&oacute; por la v&iacute;a subcut&aacute;nea    una vez al d&iacute;a durante 4 d seguidos, incluido el d&iacute;a de la infecci&oacute;n.<SUP>14</SUP>    Al quinto d&iacute;a se hicieron extensiones de sangre en l&aacute;minas portaobjetos    de todos los animales. Las extensiones de sangre secas se fijaron con metanol    y se colorearon con Giemsa. La parasitemia se determin&oacute; mediante el conteo    microsc&oacute;pico de, al menos, 2 000 c&eacute;lulas rojas. La inhibici&oacute;n    del crecimiento parasitario se determin&oacute; por comparaci&oacute;n del grupo    tratado con el veh&iacute;culo, tomado como 100 % del crecimiento parasitario.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La composici&oacute;n del extracto de <I>B. orellana</I>    se caracteriz&oacute; utilizando reacciones qu&iacute;micas para detectar los    principales metabolitos secundarios:<SUP>15</SUP> reacci&oacute;n de Dragendorff    para detectar alcaloides, Fehling para sustancias reductoras, Baljet para detectar    compuestos lact&oacute;nicos, prueba para resinas, prueba de espuma para detectar    saponinas, reacci&oacute;n de Lieberman-Burchard para triterpenoides y(o) esteroides,    FeCl<SUB>3</SUB> (cloruro f&eacute;rrico) para fenoles y taninos, ninhidrina    para detectar amino&aacute;cidos, B&ouml;rntrager para quinonas, Kedde para    glic&oacute;sidos cardiot&oacute;nicos, prueba de antocianidinas, y Shinoda    para detectar flavonoides. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La droga de referencia mostr&oacute; una CI<SUB>50</SUB>    frente a <I>P. falciparum</I> de 20 nM, lo cual se corresponde con lo obtenido    en evaluaciones anteriores.<SUP>12,16</SUP> El extracto hidroalcoh&oacute;lico    de <I>B. orellana</I> exhibi&oacute; un valor de CI<SUB>50</SUB> de 11,6<B>    </B>&#181;g/mL frente a <I>P. falciparum</I>, CC<SUB>50</SUB> de 60,2 &#181;g/mL    e IS de 5,1. Estos valores son similares a los obtenidos por otros autores,    la CI<SUB>50 </SUB>de extractos de bija frente a <I>P. falciparum</I> muestra    valores superiores a 9 &#181;g/mL,<SUP>7-10,17</SUP> y los valores de IS oscilan    entre 2,5<SUP>10</SUP> y 5,3.<SUP>9</SUP> Varias revisiones recientes sobre    la actividad antimal&aacute;rica de extractos crudos de plantas coinciden en    establecer un valor de CI<SUB>50</SUB> por debajo de 10 &#181;g/mL como criterio    de buena actividad <I>in vitro</I>.<SUP>18,19</SUP> Definir un valor de IS como    criterio de eficacia de un extracto crudo es m&aacute;s dif&iacute;cil, porque    el componente activo es deconocido. Adem&aacute;s, otras mol&eacute;culas presentes    en el crudo pudieran contribuir a la citotoxicidad. No obstante, varios autores    proponen IS&gt; 10 para considerar un extracto como fuente de posibles antimal&aacute;ricos.    Teniendo en cuenta estos criterios, la actividad antiplasmodial <I>in vitro</I>    de nuestro extracto puede ser considerada como moderada y de baja selectividad,    aunque estos valores pueden modificarse a partir de un fraccionamiento del crudo.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La administraci&oacute;n subcut&aacute;nea de    cloroquina inhibi&oacute; completamente el crecimiento parasitario. El extracto,    administrado por la misma v&iacute;a, caus&oacute; una reducci&oacute;n de la    parasitemia de 50,3 &#177; 5,8 % en los animales infectados a la dosis de 500    mg/kg. <I>Krettli </I>y otros<SUP>20</SUP> consideran un extracto activo cuando    administrado por v&iacute;a subcut&aacute;nea es capaz de reducir al menos 30    % de la parasitemia de los ratones a la dosis de 1 g/kg. <I>Deharo</I> y otros<SUP>17</SUP>    clasificaron como moderada la actividad antimal&aacute;rica <I>in vivo</I> mostrada    por los extractos de plantas que inhib&iacute;an 50 % de la parasitemia al ser    administrados intraperitonealmente a la dosis de 500 mg/kg. La actividad exhibida    por nuestro extracto puede clasificarse, siguiendo este &uacute;ltimo criterio,    como moderada; aunque la v&iacute;a de administraci&oacute;n utilizada por esos    autores es mucho m&aacute;s directa que la empleada en el presente estudio.    Estos resultados confirman la actividad observada <I>in vitro</I> e indican    la ausencia de problemas de biodisponibilidad en los componentes activos del    extracto. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El tamizaje fitoqu&iacute;mico fue consistente    con la detecci&oacute;n de triterpenoides y(o) esteroides, alcaloides, compuestos    lact&oacute;nicos, taninos y flavonoides. Un extracto metan&oacute;lico de las    semillas de <I>B. orellana</I> cultivada en Brasil mostr&oacute; una composici&oacute;n    similar.<SUP>5</SUP> Varios compuestos pertenecientes a las clases qu&iacute;micas    detectadas constituyen los principios activos de otras especies de plantas usadas    para combatir la malaria.<SUP>21</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las semillas de esta planta son ricas en carotenoides,    la presencia de estos metabolitos se hizo evidente al observar el intenso color    anaranjado del extracto. Los pigmentos m&aacute;s abundantes son los apocarotenos    bixina, norbixina e isobixina, para los cuales se describen varias propiedades    farmacol&oacute;gicas<SUP>2</SUP> pero no se les ha demostrado acci&oacute;n    antimal&aacute;rica. Tambi&eacute;n est&aacute;n presentes otros carotenoides:    orellina, b-caroteno (pro-vitamina A), lute&iacute;na, criptoxantina y zeaxantina.<SUP>22</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En la literatura disponible se encuentran reportes    del efecto antimal&aacute;rico de algunos carotenoides. Se ha demostrado el    efecto inhibidor del retinol (alcohol de la vitamina A) sobre cultivos de estadios    intraeritrocitarios de <I>P. falciparum</I><SUP>23,24</SUP> y su acci&oacute;n    potenciadora de la eficacia de drogas antimal&aacute;ricas,<SUP>25</SUP> aunque    el mecanismo por el cual el suplemento de vitamina A potencia la resistencia    a la malaria consiste esencialmente en el incremento de la fagocitosis de eritrocitos    parasitados y la reducci&oacute;n de la respuesta de citoquinas proinflamatorias.<SUP>26</SUP>    Otro pigmento perteneciente a esta clase qu&iacute;mica con buena actividad    antimal&aacute;rica es la fucoxantina, purificada a partir de extractos del    alga <I>Sargassum heterophyllum</I>,<SUP>27</SUP> este carotenoide mostr&oacute;    valores de CI<SUB>50</SUB> frente a <I>P. falciparum</I> de 1,5 &#181;M. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, el extracto hidroalcoh&oacute;lico    de semillas de <I>B. orellana</I> cultivada en Cuba mostr&oacute; actividad    antimal&aacute;rica moderada tanto <I>in vitro</I> como <I>in vivo</I>. El fraccionamiento    guiado por bioensayos permitir&aacute; aislar e identificar las mol&eacute;culas    responsables de la actividad demostrada por este extracto y reevaluar sus potencialidades.    </font>     <P>&nbsp;      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></B>    </font>      <P>      <P>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Roig JT. Plantas medicinales, arom&aacute;ticas    o venenosas de Cuba. La Habana: Editorial Cient&iacute;fico-T&eacute;cnica;    1974.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Tibodeau J, Isham C, Bible K. Annatto constituent    cis-bixin has selective antimyeloma effects mediated by oxidative stress and    associated with inhibition of thioredoxin and thioredoxin reductase. Antioxid    Redox Signal. 2010;13:987-97.     </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Fleischer TC, Ameade EP, Mensah ML, Sawer    IK. Antimicrobial activity of the leaves and seeds of <I>Bixa orellana</I>.    Fitoterapia. 2003;74:136-8.     </font>      ]]></body>
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