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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Incremento de la sensibilidad analítica del sistema FasciDIG® para el diagnóstico de Fasciola hepatica]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Increase of analytical sensitivity of FasciDIG® system for the diagnosis of Fasciola hepatica]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: fasciolosis is an endemic disease in cattle in Cuba and there is an increase in the number of reported human cases in recent years. The copro-parasitological diagnosis of fasciolosis has low sensitivity and is hard-working; for that reason, it is important to use immunoenzymatic methods mainly those that can detect this parasite antigens in the feces. A system for antigen detection called FasciDIG®, with a reported sensitivity of 10 ng/mL has been developed in "Pedro Kouri" Institute of Tropical Medicine. Objective: to increase the sensitivity of FasciDIG ® through some modifications to this diagnostic method. Methods: two foul dilutions (concentrations of antigen 1 000 ng/mL- 1.95ng/mL in H2O Tween-20) were evaluated in a simulated system using FasciDIG® and modified FasciDIG. The FasciDiG® was modified using the secondary antibody obtained from rabbit against excretory-secretory antigens of Fasciola hepatica combined with biotin and then adding commercial conjugated extravidine peroxidase. Feces were collected from the rectum of 96 animals for slaughter and were evaluated by both methods, FasciDig® and modified FasciDig. Kappa index was calculated between both assays. Results: the detection limit for the FasciDIG® was 3.9 ng/mL whereas the modified FasciDIG detected up to 1.95 ng/mL. The agreement index calculated between the two tests was 0.6238 corresponding to an index of substantive or good agreement. Conclusions: the modified method is more sensitive than FasciDIG® and it can supplement the diagnosis of fasciolosis. The number of analyzed samples should be increased and the sensitivity and specificity should also be determined using the serial conic-cup sedimentation technique as the gold standard.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Fasciola hepatica]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[diagnóstico]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"><B>COMUNICACI&Oacute;N BREVE </B></font></p>       <p>&nbsp;</p>       <div align="left">         <p><font face="Verdana" size="2"><b><font size="4">Incremento de la sensibilidad        anal&iacute;tica del sistema FasciDIG&#174; para el diagn&oacute;stico de        <I>Fasciola hepatica</I></font></b></font></p>         <p>&nbsp;</p>   </div> </div>     <div align="left"><B> </B></div> <B>     <P><font face="Verdana" size="3">Increase of analytical sensitivity of FasciDIG&#174;    system for the diagnosis of <I>Fasciola hepatica</I></font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Lic. Ricardo Marcet S&aacute;nchez, T&eacute;c.    Mabel Figueredo Pino, Dr. C. Fidel A. N&uacute;&ntilde;ez Fern&aacute;ndez,    Dr. C. L&aacute;zara Rojas Rivero, Dr. C. Jorge Sarracent</font><font face="Verdana" size="2">    P&eacute;rez</font> </B>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;.    La Habana, Cuba. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B></font>      <p><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n:</b> la fasciolosis en    Cuba es una enfermedad enzo&oacute;tica en el ganado y en los &uacute;ltimos    a&ntilde;os existe un incremento en el n&uacute;mero de casos en humanos. El    diagn&oacute;stico coproparasitol&oacute;gico de la fasciolosis es poco sensible    y laborioso, por lo que es importante el uso de los m&eacute;todos inmuno-enzim&aacute;ticos    sobre todo aquellos que son capaces de detectar ant&iacute;genos de este par&aacute;sito    en las heces. En el Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;    se cuenta con un sistema de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos denominado    FasciDIG&#174; con una sensibilidad de 10 ng/mL. <B>    <br>   Objetivo:</B> aumentar la sensibilidad del FasciDIG&#174; realizando modificaciones    a este m&eacute;todo diagn&oacute;stico. <B>    <br>   M&eacute;todos:</B> en un sistema simulado se evaluaron FasciDIG&#174; y FasciDIG    modificado, utilizando diluciones seriadas dobles de ant&iacute;genos a concentraciones    desde 1 000 ng/mL hasta 1,95 ng/mL. El FasciDIG se modific&oacute; utilizando    como segundo anticuerpo el obtenido en conejos contra ant&iacute;genos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n    de <I>Fasciola hepatica</I> conjugado con biotina seguido de la adici&oacute;n    de un conjugado extravidina-peroxidasa comercial. Las heces se colectaron del    recto de 96 reses destinadas para sacrificio y se evaluaron por ambos m&eacute;todos.    Se calcul&oacute; el &iacute;ndice de concordancia Kappa entre ambos sistemas.    <B>    <br>   Resultados:</B> el l&iacute;mite de detecci&oacute;n obtenido para el FasciDIG&#174;    fue de 3,9 ng/mL mientras que el FasciDIG modificado detect&oacute; hasta 1,95    ng/mL. El &iacute;ndice de concordancia calculado entre los dos ensayos fue    de 0,6238, que corresponde a un &iacute;ndice de acuerdo sustancial o bueno.    <B>    <br>   Conclusiones:</B> el m&eacute;todo FasciDIG modificado result&oacute; tener    una mayor sensibilidad anal&iacute;tica que el FasciDIG&#174; y puede ser un    complemento para el diagn&oacute;stico de la fasciolosis. Se debe incrementar    el n&uacute;mero de muestras y determinar la sensibilidad y especificidad utilizando    la t&eacute;cnica de sedimentaci&oacute;n copa-c&oacute;nica seriada como regla    de oro. </font></p> <B></B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave:</B> <I>Fasciola hepatica</I>,    diagn&oacute;stico, detecci&oacute;n de ant&iacute;genos. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT</B></font>      <p><font face="Verdana" size="2"><B>Introduction:</b> fasciolosis is an endemic    disease in cattle in Cuba and there is an increase in the number of reported    human cases in recent years. The copro-parasitological diagnosis of fasciolosis    has low sensitivity and is hard-working; for that reason, it is important to    use immunoenzymatic methods mainly those that can detect this parasite antigens    in the feces. A system for antigen detection called FasciDIG&#174;, with a reported    sensitivity of 10 ng/mL has been developed in &quot;Pedro Kouri&quot; Institute    of Tropical Medicine. <B>    <br>   Objective:</B> to increase the sensitivity of FasciDIG &#174; through some modifications    to this diagnostic method. <B>    <br>   Methods:</B> two foul dilutions (concentrations of antigen 1 000 ng/mL- 1.95ng/mL    in H2O Tween-20) were evaluated in a simulated system using FasciDIG&#174; and    modified FasciDIG. The FasciDiG&#174; was modified using the secondary antibody    obtained from rabbit against excretory-secretory antigens of Fasciola hepatica    combined with biotin and then adding commercial conjugated extravidine peroxidase.    Feces were collected from the rectum of 96 animals for slaughter and were evaluated    by both methods, FasciDig&#174; and modified FasciDig. Kappa index was calculated    between both assays. <B>    <br>   Results:</B> the detection limit for the FasciDIG&#174; was 3.9 ng/mL whereas    the modified FasciDIG detected up to 1.95 ng/mL. The agreement index calculated    between the two tests was 0.6238 corresponding to an index of substantive or    good agreement. <B>    <br>   Conclusions:</B> the modified method is more sensitive than FasciDIG&#174; and    it can supplement the diagnosis of fasciolosis. The number of analyzed samples    should be increased and the sensitivity and specificity should also be determined    using the serial conic-cup sedimentation technique as the gold standard. </font>  </p> <B></B>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words:</B> <I>Fasciola hepatica</I>, diagnosis,    detection of antigens. </font>  <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">La fasciolosis o distomatosis hep&aacute;tica    es una enfermedad zoon&oacute;tica parasitaria de una amplia distribuci&oacute;n    mundial que afecta tanto a humanos como animales herb&iacute;voros y omn&iacute;voros.    Est&aacute; estimado que la infecci&oacute;n por este par&aacute;sito afecta    a 2,4 millones de personas en el mundo, aunque en pa&iacute;ses de Asia y &Aacute;frica    se reporta una mayor incidencia.<SUP>1</SUP> Por otra parte, los problemas de    salud m&aacute;s grandes se encuentran en pa&iacute;ses Andinos, &aacute;reas    del Caribe, Norte de &Aacute;frica, Oeste de Europa y el &aacute;rea del mar    Caspio.<SUP>2-4</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En el mundo la fasciolosis causa grandes p&eacute;rdidas    econ&oacute;micas al incidir sobre animales productivos como vacunos, ovinos,    cabras y b&uacute;falos,<SUP>5</SUP> estim&aacute;ndose una p&eacute;rdida de    hasta 3 mil millones de d&oacute;lares anuales.<SUP>6</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En Cuba esta enfermedad es enzo&oacute;tica en    el ganado y se presenta en humanos en forma de brotes epid&eacute;micos espor&aacute;dicos.<SUP>7</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Tradicionalmente, el diagn&oacute;stico de la    fasciolosis se realiza por examen microsc&oacute;pico de heces de pacientes    o animales, basado en la detecci&oacute;n de los huevos del par&aacute;sito;    sin embargo, el resultado puede ser negativo en la fase inicial o en la fase    cr&oacute;nica de la enfermedad, en este &uacute;ltimo caso debido a la intermitencia    en la eliminaci&oacute;n de los huevos.<SUP>8</SUP> Este m&eacute;todo, aunque    en la mayor&iacute;a de las muestras analizadas es espec&iacute;fico, demuestra    una sensibilidad pobre, solo permite el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n    aguda y patente, exige la toma de muestras seriadas, es laborioso y requiere    determinado grado de especializaci&oacute;n t&eacute;cnica del personal de laboratorio.<SUP>9</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, el avance    en las investigaciones sobre esta enfermedad ha posibilitado el desarrollo de    sistemas de detecci&oacute;n m&aacute;s eficaces que apoyan la realizaci&oacute;n    de estudios cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos, necesarios para su control.<SUP>10,11</SUP>    Estos estudios sugieren que los inmunoensayos enzim&aacute;ticos (ELISA) pueden    ser muy &uacute;tiles en el diagn&oacute;stico de esta parasitosis, por la posibilidad    que brindan al detectar ant&iacute;genos en heces con una buena especificidad    y sensibilidad.<SUP>10,12,13</SUP> Adem&aacute;s, se han desarrollado formatos    sencillos para este diagn&oacute;stico, como la inmunocromatograf&iacute;a,<SUP>14</SUP>    que se convierte en una herramienta &uacute;til en los laboratorios y en los    ensayos de campo. En nuestro grupo se cuenta con un sistema de detecci&oacute;n    de ant&iacute;genos en heces, FasciDIG&#174;, con una sensibilidad anal&iacute;tica    de 10 ng/mL.<SUP>10</SUP> Se ha reportado adem&aacute;s que este ensayo tiene    una especificidad y sensibilidad diagn&oacute;stica de 100 % y 94,9 %, respectivamente,    para copro-ant&iacute;genos respecto al examen parasitol&oacute;gico copa c&oacute;nica    luego de 6 muestreos, presentando un valor predictivo (+) de 100 % y un valor    predictivo (-) de 89,5 %. Estos resultados sugirieron que se puede sustituir    al examen parasitol&oacute;gico en su condici&oacute;n de regla de oro.<SUP>13</SUP>    </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Con el prop&oacute;sito de mejorar la sensibilidad    anal&iacute;tica del sistema, se le realiz&oacute; una modificaci&oacute;n y    as&iacute; evaluar la sensibilidad anal&iacute;tica para su posible uso en el    diagn&oacute;stico de la fasciolosis tanto humana como animal. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo denominado    FasciDIG&#174;, descrito por <I>Espino</I> y otros<SUP>10</SUP> con modificaciones    y sin estas. Brevemente, como recubrimiento se utiliz&oacute; el anticuerpo    monoclonal ES78 (10 &#181;g/mL) y como segundo anticuerpo el obtenido en conejos    contra ant&iacute;genos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n de adulto de <I>Fasciola    hepatica</I> conjugado a peroxidasa para el FasciDIG&#174; y con biotina para    el FasciDIG modificado. Este &uacute;ltimo sistema requiere de la adici&oacute;n    de un conjugado extravidina peroxidasa comercial (Sigma, USA) a la diluci&oacute;n    1/8 000, previamente estandarizado. La reacci&oacute;n fue revelada por la adici&oacute;n    para ambos sistemas de una soluci&oacute;n de sustrato (5 mg de ortofenilendiamina    (OPD) + 5 &#181;L de H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB> + 12,5 mL de tamp&oacute;n citrato-fosfato    pH 5,0). Finalmente, la reacci&oacute;n se detuvo a los 15 min para el FasciDIG&#174;    y a los 8 min para el sistema modificado. La absorbancia se midi&oacute; a 492    nm en un lector de ELISA Sirio S Reader, Italia. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para la comparaci&oacute;n de ambos sistemas    en cuanto a sensibilidad anal&iacute;tica se utilizaron ant&iacute;genos de    excreci&oacute;n-secreci&oacute;n de adultos de <I>Fasciola hepatica</I> seg&uacute;n    <I>Espino</I> y otros.<SUP>10</SUP> Se prepar&oacute; un sistema simulado utilizando    diluciones dobles de ant&iacute;genos en H<SUB>2</SUB>O-Tween 20, a concentraciones    desde 1 000 ng/mL hasta 1,9 ng/mL. Se tom&oacute; como l&iacute;mite de detecci&oacute;n,    el valor de densidad &oacute;ptica con el doble de la media m&aacute;s dos desviaciones    est&aacute;ndar de la densidad &oacute;ptica del blanco (H<SUB>2</SUB>O-Tween    20). Por otra parte, se realiz&oacute; un estudio de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos    en heces de 96 bovinos procedentes del matadero de Nueva Paz, provincia de Mayabeque,    utilizando FasciDIG&#174; y FasciDIG modificado. Se determin&oacute; el &iacute;ndice    Kappa o grado de concordancia entre ambos sistemas.<SUP>15</SUP><B> </B> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Para el estudio en muestras de heces de bovino    con el objetivo de establecer un valor de corte, entre positivo y negativo,    se seleccionaron 53 heces provenientes de animales cuyos h&iacute;gados hab&iacute;an    resultado negativos en el examen anatomopatol&oacute;gico macrosc&oacute;pico    y que adem&aacute;s resultaron negativas por el m&eacute;todo de copa c&oacute;nica.    El valor de corte se estableci&oacute; por el m&eacute;todo de la media de estos    negativos m&aacute;s dos desviaciones est&aacute;ndar.<SUP>16</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Como resultado del estudio de los sistemas simulados    de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos se pudo observar un aumento de la sensibilidad    anal&iacute;tica en el FasciDIG modificado fundamentado por el uso del anticuerpo    policlonal anti ant&iacute;geno biotinilado y la adici&oacute;n del conjugado    extravidina-peroxidasa (Sigma, USA). La sensibilidad anal&iacute;tica del FasciDIG&#174;    fue de 3,9 ng/mL, mayor que la reportada antes por <I>Espino</I> y otros de    10 ng/mL, diferencia que puede ser justificada por la optimizaci&oacute;n del    procedimiento de inmunizaci&oacute;n utilizado en la obtenci&oacute;n del anticuerpo    policlonal anti-ant&iacute;geno de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n de <I>Fasciola    hepatica </I>y algunas diferencias en el procedimiento de conjugaci&oacute;n    de estos anticuerpos a la peroxidasa. El l&iacute;mite de detecci&oacute;n para    el FasciDIG modificado fue de 1,9 ng/mL, se mostr&oacute; una mayor sensibilidad    con respecto al FasciDIG&#174; (<a href="#fig1">Fig.</a>). Este resultado se    explicar&iacute;a porque el procedimiento de biotinilaci&oacute;n aumenta la    cantidad de sitios de uni&oacute;n a la extravidina-peroxidasa. La sensibilidad    alcanzada est&aacute; en concordancia con el trabajo realizado por <I>Ubeira    </I>y otros, donde se reporta para el MM3 copro ELISA (sistema ELISA de elevada    sensibilidad y especificidad donde al igual que FasciDIG modificado se utiliza    un segundo anticuerpo biotinilado) un l&iacute;mite de detecci&oacute;n de 1,1    ng/mL.<SUP>17</SUP> Estos sistemas se diferencian fundamentalmente en que el    MM3 copro utiliza el anticuerpo policlonal anti ant&iacute;genos como recubrimiento    y el anticuerpo monoclonal MM3 biotinilado como segundo anticuerpo. El FasciDIG    modificado busca su especificidad utilizando el anticuerpo monoclonal ES78 como    captura y usa como segundo anticuerpo el policlonal anti-ant&iacute;geno biotinilado.    </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/mtr/v64n3/f0114312.jpg" width="420" height="498"><a name="fig1"></a>      <P><font face="Verdana" size="2">Otros de los m&eacute;todos reportados en la    literatura para el diagn&oacute;stico de la fascioliosis es el Fas2 ELISA.<SUP>18</SUP>    Este est&aacute; basado en la captura de anticuerpos IgG anti-ant&iacute;genos    de <I>Fasciola hepatica</I> por una prote&iacute;na purificada (ant&iacute;geno    inmunodominante, Fas2) de material regurgitado del par&aacute;sito adulto en    agua fr&iacute;a.<SUP>18 </SUP>En contraste con los m&eacute;todos de detecci&oacute;n    de ant&iacute;genos, los de detecci&oacute;n de anticuerpos no discriminan entre    la infecci&oacute;n activa de la pasada, sobre todo en &aacute;reas end&eacute;micas    y no son &uacute;tiles para medir respuesta positiva al tratamiento. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Como parte del proceso de validaci&oacute;n del    FasciDIG modificado para el diagn&oacute;stico, se realiz&oacute; una comparaci&oacute;n    con el FasciDIG&#174;, ensayo ya validado en diferentes pa&iacute;ses para el    diagn&oacute;stico de la fasciolosis tanto humana como animal. Se emplearon    96 muestras de heces de bovinos colectadas del recto de animales destinados    para sacrificio y se confeccion&oacute; una tabla de contingencia entre los    valores obtenidos para las muestras positivas y negativas de ambos sistemas.    Fue posible detectar un mayor n&uacute;mero de casos positivos por el FasciDIG    modificado que por el FasciDIG&#174;, lo que est&aacute; en correspondencia    con la mayor sensibilidad anal&iacute;tica encontrada en el sistema modificado.    Se encontr&oacute; coincidencia en 20 de las muestras positivas para ambos sistemas    y 13 muestras resultaron positivas con el FasciDIG modificado. Solo 2 de las    muestras positivas por el FasciDIG&#174; no fueron positivas por el sistema    modificado (<a href="/img/revistas/mtr/v64n3/t0114312.gif">tabla</a>). Estas 2 muestras, en FasciDIG    modificado, tienen valores de densidad &oacute;ptica muy cercanos al valor de    corte calculado en este estudio. El grado de concordancia o &iacute;ndice kappa    entre ambos m&eacute;todos fue de 0,6238, en un intervalo de confianza de 95    % (IC 95 %; 0,4569-0,7907). Este &iacute;ndice de acuerdo sustancial o bueno    entre ambos sistemas es un criterio que indica la posibilidad de utilizar cualquiera    de los dos sistemas como herramienta de diagn&oacute;stico para fasciolosis.    En el estudio realizado de sensibilidad anal&iacute;tica se encontr&oacute;    que el m&eacute;todo modificado es m&aacute;s sensible lo cual indica que pudiera    ser de mayor utilidad para este prop&oacute;sito. La mayor sensibilidad del    ensayo modificado determina que el &iacute;ndice de concordancia no sea a&uacute;n    mejor. Consideramos importante ampliar este estudio con un n&uacute;mero mayor    de muestras utilizando como regla de oro el m&eacute;todo de concentraci&oacute;n    copa c&oacute;nica y toma de muestras seriadas, o considerar la posibilidad    de utilizar modelos animales donde la infecci&oacute;n puede ser controlada    durante el desarrollo del experimento. </font>      <P>&nbsp;     <P><b><font face="Verdana" size="3">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></b>     <P>      <P>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Mas-Coma S. Human fascioliasis. En: Cotruvo    JA, Dufour A, Rees G, Bartram J, Carr R, Cliver DO, et al., editors. Waterborne    zoonoses: Identification, causes and control. London, UK: World Health Organization    (WHO); 2004. p. 305-22.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Mas-Coma S. Epidemiology of fascioliasis in    human endemic areas. 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<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><I>Ricardo Marcet.</I> Instituto de Medicina    Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;, Autopista Novia del Mediod&iacute;a    Km 6 &#189;. AP 601. Marianao 13, CP 11300. La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico:    <a href="mailto:marcet@ipk.sld.cu">marcet@ipk.sld.cu</a> </font>      ]]></body><back>
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