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</front><body><![CDATA[ <p align="right"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ART&#205;CULO    ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b> Actividad    tripanocida de <i>Piper solmsianum</i> C. DC. sobre formas epimastigota y tripomastigota    de <i>Trypanosoma cruzi</i> </b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b> <font size="3">Trypanocidal    activity of <i>Piper solmsianum</i> C. DC. against epimastigote and trypomastigote    forms of <i>Trypanosoma cruzi</i> </font></b> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b> Jorge I. Jhoao    Mej&#237;a-Parra,<sup>I</sup> Michel A. P&#233;rez-Araujo,<sup>I</sup> Judith    Rold&#225;n-Rodr&#237;guez,<sup>II</sup> Consuelo Rojas-Idrogo,<sup>I</sup>    Massuo J. Kato,<sup>III</sup> Guillermo E. Delgado-Paredes<sup>I</sup> </b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>I </sup> Facultad    de Ciencias Biol&#243;gicas, Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo. Lambayeque,    Per&#250;.     <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>II </sup>    Departamento de Microbiolog&#237;a y Parasitolog&#237;a, Universidad Nacional    de Trujillo. Trujillo, Per&#250;.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>III    </sup> Instituto de Qu&#237;mica, Universidade de S&#227;o Paulo. S&#227;o Paulo-SP,    Brasil. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>RESUMEN </b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Introducci&#243;n:</b>    la infecci&#243;n por <i>Trypanosoma cruzi</i>, conocida como enfermedad de    Chagas, es un problema importante de salud p&#250;blica en pa&#237;ses de Am&#233;rica    Central y Sudam&#233;rica.     <br>   <b>Objetivo: </b>evaluar la actividad de extractos crudos de acetato de etilo    de plantas <i>in vitro</i> de 6-8 meses y 10-12 meses de edad, de tallos le&#241;osos    y hojas de plantas silvestres maduras y el lignano tetrahidrofurano grandisina,    aislados de <i>Piper solmsianum</i>, sobre las formas epimastigota y tripomastigota    de <i>T. cruzi</i> <i>in vitro</i>.     <br>   <b>M&#233;todos:</b> en la evaluaci&#243;n del efecto de diversos extractos    crudos de acetato de etilo y grandisina de <i>P. solmsianum</i>, sobre la viabilidad    de las formas epimastigota y tripomastigota de <i>T. cruzi</i>, se utiliz&#243;    el m&#233;todo MTT (3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)-2,5-difeniltetrazolium bromuro).    <b>    <br>   Resultados: </b>en la forma epimastigota, el mejor resultado en la inhibici&#243;n    del crecimiento fue obtenido con 50 &#181;g/mL de extracto de tallo y en la    forma tripomastigota con 25 y 50 &#181;g/mL de grandisina y plantas <i>in vitro</i>    de 6-8 meses de edad, respectivamente. En todos los casos los valores de inhibici&#243;n    oscilaron entre 86 a 96 %. Plantas <i>in vitro</i> de 6-8 meses de edad y grandisina    fueron m&#225;s activas sobre las formas epimastigota y tripomastigota de <i>T.    cruzi</i> con valores de CI<sub>50</sub> de 0,018 y 0,360 &#181;g/mL, respectivamente.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Conclusiones:</b>    se demuestra la actividad tripanocida de extractos de plantas silvestres y plantas    <i>in vitro</i> de <i>P. solmsianum</i>. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Palabras clave:</b>    actividad tripanocida; extracto de plantas; grandisina; Piperaceae; plantas    <i>in vitro.</i> </font></p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT </b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Introduction:</b>    the infection by <i>Trypanosoma cruzi</i>, known as Chagas' disease, poses a    major public health problem in Central and South America countries.    <br>   <b>Objective:</b> to evaluate the activity of crude ethyl acetate extracts from    <i>in vitro</i> plants of 6-8 and 10-12 months of age, stem barks and mature    wild plant leaves and tetrahydrofuran lignin grandisin isolated from <i>Piper    solmsianum</i> against the epimastigote and trypomastigote forms of <i>T. cruzi    in vitro</i>.     <br>   <b>Methods:</b> in the evaluation of the effect of various crude ethyl acetate    extracts and grandisin from <i>P. solmsianum</i> on the viability of epimastigote    and trypomastigote forms of <i>T. cruzi</i>, the MTT method (3-(4,5-dimethylthiazol-2-il)-2,5-diphenyltetrazolium    bromide) was used.    <br>   <b>Results:</b> in the epimastigote form, the best results in growth inhibition    was obtained with 50 &#181;g/mL of stem extract, and in the trypomastigote form,    with 25 and 50 &#181;g/mL of grandisin and <i>6-8 months-old in vitro</i> plants,    respectively. The inhibition values in all cases ranged from 86 to 96 %. 6-8    months old <i>in vitro</i> plants and grandisin were found to be active against    the epimastigote and trypomastigote forms of <i>T. cruzi</i> with IC<sub>50    </sub>of 0.018 &#181;g/mL and 0.360 &#181;g/mL, respectively.     <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Conclusions:</b>    the trypanocidal activity of extracts from wild plants and <i>in vitro</i> plants    of <i>P. solmsianum</i> was proved. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Keywords: </b>    trypanocidal activity; plant extract; grandisin; Piperaceae; <i> in vitro</i>    plants. </font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">INTRODUCCI&#211;N</font></b>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La enfermedad    de Chagas o tripanosomiasis americana es, despu&#233;s de la malaria, el mayor    problema end&#233;mico de salud p&#250;blica en varios pa&#237;ses de Am&#233;rica    del Sur y Central, con 18-20 millones de infectados, lo que representa un riesgo    para 25 millones de personas, desde el sur de los Estados Unidos hasta el sur    de la Argentina, con 200 000 nuevos casos anuales y 21 000 muertes por a&#241;o.<sup>1-3</sup>    La enfermedad de Chagas est&#225; asociada a las condiciones de pobreza de &#225;reas    rurales en Am&#233;rica del Sur y Central y es causada por <i>Trypanosoma cruzi</i>    Chagas, par&#225;sito transmitido al humano por los vectores <i>Triatoma infestans</i>,    <i>T. dimidiata</i>, <i>T. nitida</i>, <i>Pastrongylus megistus</i>, <i>Rhodnius    prolixus</i> y otros. Algunas personas infectadas con el par&#225;sito viven    toda su vida sin mostrar signos de la enfermedad, pero otras infectadas muestran    severos s&#237;ntomas que en muchos casos resultan fatales.<sup>4</sup> En general,    la infecci&#243;n con <i>T. cruzi</i> es una seria amenaza para la vida y en    su fase aguda y/o cr&#243;nica acarrea severas complicaciones cardiacas.<sup>5</sup>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Durante su complejo    ciclo de vida <i>T. cruzi</i> tiene tres principales estadios de desarrollo    en diferentes hospederos. La forma replicativa epimastigota ocurre en el intestino    del insecto vector, y las formas amastigota despu&#233;s que son liberados en    el flujo sangu&#237;neo como tripomastigota, en los mam&#237;feros hospederos,    pueden infectar otras c&#233;lulas o ser ingeridos por el insecto vector. En    el intestino del triatomino, los tripomastigota se diferencian en otras formas    reproductivas, epimastigota, los que en la ampolla rectal se transforman en    los infectivos tripomastigota metac&#237;clicos que son descargados con las    heces del insecto hasta alcanzar el flujo sangu&#237;neo de los vertebrados    hospederos.<sup>5-8</sup> Los mam&#237;feros constituyen reservorios naturales    y tenemos entre estos a armadillos, marsupiales, roedores, murci&#233;lagos    y primates silvestres, as&#237; como ciertos animales dom&#233;sticos como perros,    gatos e incluso ratas y cobayos.<sup>9</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las drogas m&#225;s    comunes utilizadas en el tratamiento de la enfermedad son nifurtimox (3-methyl-4(5-nitrofurfurylideneamino)-tetrahydro-[1,4]thiazine-1,1-dioxide)    y benznidazol (<i>N</i>-benzyl-2-nitro-1-imidazoleacetamide), ambas desarrolladas    hace m&#225;s de cuatro d&#233;cadas; sin embargo, varios autores han coincidido    en se&#241;alar que la quimioterapia corrientemente recomendada en el tratamiento    y prevenci&#243;n de la enfermedad de Chagas tiene serias limitaciones debido    a su limitada efectividad y sus efectos secundarios,<sup>10</sup> en dependencia    del &#225;rea geogr&#225;fica y la ocurrencia de resistencia natural as&#237;    como a la baja actividad antiprotozoaria sobre el &#250;ltimo estadio cr&#243;nico.<sup>11</sup>    Nifurtimox a menudo causa anorexia, disturbios gastrointestinales, neuropat&#237;as    y sarpullido, y en ambas drogas se ha observado toxicidad cardiaca y renal,    lo cual contituye un fracaso en la cura de la mayor&#237;a de pacientes cuando    la enfermedad es cr&#243;nica, de all&#237; que muy pocos pacientes se someten    al tratamiento a largo plazo y la mayor&#237;a lo abandonan.<sup>5,12,13</sup>    Por todas estas razones resulta prioritaria la b&#250;squeda de nuevos agentes    quiomiopreventivos o quimioterap&#233;uticos,<sup>14</sup> sint&#233;ticos o    naturales; no obstante, el conocimiento cada vez mayor que se tiene sobre la    bioqu&#237;mica de <i>T. cruzi</i> ha conducido al desarrollo de nuevos f&#225;rmacos    como alopurinol, purinas an&#225;logas, itraconazol, entre otros, y al conocimiento    de su modo de acci&#243;n,<sup>15-17</sup> pues el desarrollo de una vacuna    no es una perspectiva cercana. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los productos    naturales de origen vegetal, con actividad tripanocida potencial, son considerados    alternativas v&#225;lidas sobre las drogas sint&#233;ticas convencionales en    el control del par&#225;sito en sus diferentes estadios de vida. Al respecto,    los estudios sobre la actividad tripanocida de especies de Piperaceae son escasos    si consideramos que la familia cuenta con 14 g&#233;neros y alrededor de 4 000    especies a nivel mundial,<sup>18</sup> en que diversos compuestos bioactivos    aislados en las especies de <i>Piper</i> y <i>Peperomia,</i> como amidas, alcaloides,    lignanos, &#225;cido benzoico y cromenos,<sup>19,20</sup> han mostrado actividad    tripanocida.<sup>20-32</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> As&#237; tenemos,    como ejemplos relevantes, que el extracto hidroalcoh&#243;lico etanol:agua (90:10)    de hoja de <i>Piper regnellii</i>, colectada en el estado brasile&#241;o de    Paran&#225;, alcanz&#243; una alta inhibici&#243;n en el crecimiento de la forma    epimastigota de <i>T. cruzi</i>.<sup>23</sup> Asimismo, se evalu&#243; la actividad    tripanocida de 24 extractos y fracciones de <i>Piper arboreum</i> y <i>Piper    tuberculatum</i>, a trav&#233;s del ensayo colorim&#233;trico MTT, sobre las    formas epimastigota de la cepa Y de <i>T. cruzi</i>; se observ&#243; que las    actividades m&#225;s potentes correspondieron a las fracciones hex&#225;nicas    de hojas de <i>P. arboreum</i> y <i>P. tuberculatum</i>, al igual que las fracciones    hex&#225;nicas de frutos de <i>P. tuberculatum</i> y <i>P. arboreum</i>.<sup>26</sup></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otro lado,    en extracto metan&#243;lico de hojas de <i>Piper malacophyllum</i>, colectado    en el estado de S&#227;o Paulo, se aisl&#243; el alquenilfenol gibbilimbol B    el cual fue evaluado en su actividad leishmanicida contra las formas promastigota    y amastigota de <i>Leishmania</i> <i>infantum chagasi</i>, as&#237; como actividad    tripanocida contra la forma tripomastigota de <i>T. cruzi</i>,<sup>20</sup>    y m&#225;s recientemente, se han reportado compuestos aislados de productos    naturales, como es el caso de las amidas piperovatina y piperlonguminina, aisladas    de <i>Piper ovatum</i>, que resultaron activos sobre las formas epimastigota    y amastigota intracelular de <i>T. cruzi</i>.<sup>32</sup></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En otro estudio    tambi&#233;n se analiz&#243; la actividad tripanocida <i>in vivo</i> de sustancias    aisladas de especies de <i>Piper</i> como, por ejemplo, la evaluaci&#243;n de    las propiedades terap&#233;uticas <i>in vivo</i> de (-)-cubebina, un compuesto    aislado de semillas secas de <i>P. cubeba</i> y (-)-hinokinina, preparado por    oxidaci&#243;n de (-)-cubebina.<sup>33</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El objetivo del    estudio fue evaluar la actividad tripanocida de extractos crudos de plantas    <i>in vitro</i>, hojas y tallos de plantas silvestres maduras y la sustancia    pura grandisina, obtenidos de <i>P. solmsianum</i> C. DC. sobre las formas epimastigota    y tripomastigota de <i>T. cruzi</i>, agente causal de la enfermedad de Chagas.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">M&#201;TODOS</font></b>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   MATERIAL BIOL&#211;GICO </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El material biol&#243;gico    estuvo constituido por espigas maduras (con frutos y semillas), tallos y hojas    de plantas silvestres de <i>P. solmsianum</i> C. DC., colectado en el N&#250;cleo    de Picinguaba, ciudad de Ubatuba, estado de S&#227;o Paulo, Brasil, as&#237;    como plantas <i>in vitro</i> crecidas en condiciones as&#233;pticas, que comprendi&#243;    dos grupos de edades, plantas j&#243;venes de 6 a 8 meses y plantas adultas    de 10 a 12 meses. Adicionalmente, se cont&#243; con el compuesto puro (-) grandisina,    un lignano tetrahidrofurano (<a href="#fig1">Fig. 1</a>), purificado en el Instituto    de Qu&#237;mica de la Universidade de S&#227;o Paulo (IQ/USP), a partir de espigas    maduras. Las plantas fueron identificadas por el doctor Guillermo E. Delgado-Paredes    de la Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo (UNPRG), Lambayeque, quien se bas&#243;    en la descripci&#243;n realizada por Yuncker.<sup>34</sup> Una muestra herborizada    se deposit&#243; en el Herbario IQ/USP. </font></p>     <p align="center"><a name="fig1"></a><img src="/img/revistas/mtr/v68n3/f0104316.jpg" width="280" height="151"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El par&#225;sito<i>T.    cruzi</i>, procedente del departamento de Arequipa, en el sur del Per&#250;,    fue proporcionado por el Laboratorio de Parasitolog&#237;a de la Universidad    Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM), Lima, y mantenido en espec&#237;menes    de ratones (<i>Mus musculus</i>) BALB/c, en el Laboratorio de Artropolog&#237;a    Parasitaria de la Especialidad de Microbiolog&#237;a y Parasitolog&#237;a de    la Universidad Nacional de Trujillo (UNT). </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <br>   OBTENCI&#211;N Y CULTIVO DE PLANTAS <i>IN VITRO</i> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las semillas de    <i>P. solmsianum</i> se desinfestaron con etanol 70 % durante 1 min e hipoclorito    de sodio (lej&#237;a comercial Clorox 5,25 % de cloro activo) durante 5 min,    luego enjuagadas con agua destilada esterilizada e inoculadas, a raz&#243;n    de 3-5 semillas por tubo de ensayo de 18 x 150 mm, que conten&#237;a las sales    minerales MS,<sup>35</sup> las vitaminas m-inositol 100 mg/L y tiamina. HCl    1,0 mg/L, sacarosa 2 % y agar-agar 0,6 %; esta actividad se realiz&#243; en    el Laboratorio de Cultivo de Tejidos y Recursos Gen&#233;ticos de la Facultad    de Ciencias Biol&#243;gicas de la UNPRG. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Despu&#233;s de    6 meses de cultivo, las plantas fueron micropropagadas por &#225;pices caulinares    y segmentos nodales, en medio de cultivo similar al anterior excepto que fue    suplementado con &#225;cido indol-3-ac&#233;tico (AIA) y &#225;cido giber&#233;lico    (AG<sub>3</sub>) 0,02 mg/L, respectivamente. El pH del medio de cultivo fue    ajustado en 5,8 &#177; 0,1 con NaCl y HCl 0,1 N, respectivamente, y esterilizado    en autoclave a 15 lbs/pulg<sup>2</sup> de presi&#243;n y 121 <sup>o</sup>C de    temperatura durante 20 min. La incubaci&#243;n de los cultivos se realiz&#243;    con 10 W . m<sup>-2</sup> de irradiancia, 24-26 <sup>o</sup>C de temperatura    y 16-8 h de fotoperiodo. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   OBTENCI&#211;N DE LOS EXTRACTOS CRUDOS DE PLANTAS SILVESTRES Y PLANTAS <i>IN    VITRO</i> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En las plantas    silvestres, tallos le&#241;osos y hojas se secaron al ambiente complement&#225;ndose    en estufa a 50 <sup>o</sup>C de temperatura durante una semana; posteriormente,    la materia seca se moli&#243; para obtener un polvo fino y se someti&#243; a    extracci&#243;n con acetato de etilo (AcOEt) por tres veces consecutivas durante    24 h. En las plantas <i>in vitro</i>, la materia seca, obtenida de individuos    completos que incluy&#243; tallos, hojas y ra&#237;ces, de 6-8 (<a href="#fig2">Fig.    2</a>, A) y 10-12 meses (<a href="#fig2">Fig. 2</a>, B), se someti&#243; a un    proceso similar de extracci&#243;n. </font></p>     <p align="center"><a name="fig2"></a><img src="/img/revistas/mtr/v68n3/f0204316.jpg" width="420" height="436"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las concentraciones    del extracto crudo ensayadas resultaron de bioensayos previos; se tomaron como    criterio el porcentaje de mortalidad de las formas epimastigota y tripomastigota    de <i>T. cruzi</i> en relaci&#243;n con el tiempo transcurrido de exposici&#243;n;    se establecieron las siguientes concentraciones: 5, 25 y 50 &#181;g/mL. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   EVALUACI&#211;N DEL EFECTO DEL EXTRACTO CRUDO DE AcOEt DE <i>P. SOLMSIANUM</i>    SOBRE LA VIABILIDAD DE LAS FORMAS EPIMASTIGOTA Y TRIPOMASTIGOTA DE <i>T. CRUZI</i></font></p>     <p>    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Epimastigota</b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En epimastigota    la siembra y aislamiento se inici&#243; a partir de sangre obtenida de dos espec&#237;menes    de <i>Mus musculus</i> BALB/c, infectados con <i>T. cruzi</i>; se realizaron    hemocultivos en medio de cultivo bif&#225;sico BHI suplementado con 10 % de    sangre de conejo desfibrinada e incubados a 28 <sup>o</sup>C de temperatura.    Estos medios de cultivo se examinaron diariamente con ayuda de un microscopio    invertido. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La curva de crecimiento    se determin&#243; a partir del cultivo primario sembr&#225;ndose 1 x 10<sup>5</sup>    epimastigota/mL, en medio de cultivo bif&#225;sico BHI modificado, suplementado    con 10 % de sangre de conejo desfibrinado e incub&#225;ndose a 28 <sup>o</sup>C    de temperatura; luego se realiz&#243; conteos diarios en c&#225;mara de Neubauer    para la determinaci&#243;n de la curva de crecimiento en relaci&#243;n con el    tiempo durante seis d&#237;as. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Durante la ejecuci&#243;n    del bioensayo, en una microplaca de poliestireno de 96 pocillos, se establecieron    tres grupos experimentales (I, II y III) y dos grupos control (IV y V), cada    uno por triplicado, agreg&#225;ndole a cada grupo 20 &#181;L de epimastigota    de <i>T. cruzi</i>, en fase de crecimiento logar&#237;tmico, a una concentraci&#243;n    de 1x10<sup>5</sup> epimastiogota/mL y 80 &#181;L de medio de cultivo BHI con    gentamicina. Se prepararon concentraciones de 5,0; 25,0 y 50,0 &#181;g/mL, las    que fueron utilizadas en los ensayos, usando como disolvente dimetilsulf&#243;xido    (DMSO) 1 % y de cada concentraci&#243;n se aplic&#243; 50,0 &#181;L a los grupos    I, II y III, respectivamente, al grupo IV 50,0 &#181;L de BHI y al grupo V 50,0    &#181;L de DMSO. La microplaca fue incubada a 28 <sup>o</sup>C de temperatura    por cuatro d&#237;as. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En relaci&#243;n    con los blancos de estandarizaci&#243;n, para determinar el porcentaje de inhibici&#243;n    se cont&#243; con los valores de las soluciones de referencia estableci&#233;ndose    cuatro grupos a los que se incorpor&#243; 100 &#181;L de BHI con gentamicina;    luego al primer grupo se le suplement&#243; 20 &#181;L de BHI y a los otros    grupos 50,0 &#181;L del EC en las concentraciones de 5,0; 25,0 y 50,0 &#181;g/mL,    respectivamente, e incubaron a 28 <sup>o</sup>C de temperatura durante cuatro    d&#237;as. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la determinaci&#243;n    de la viabilidad, despu&#233;s de cuatro d&#237;as de incubaci&#243;n de los    grupos, se a&#241;adi&#243; a cada pocillo de la microplaca 10 &#181;L de 2,5    mg/mL de 3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)-2,5-difeniltetrazolium bromuro (MTT) incub&#225;ndose    durante 75 min en oscuridad a 28 <sup>o</sup>C de temperatura (Mosmann, 1983);<sup>36</sup>    posteriormente, se agreg&#243; 100 &#181;l de soluci&#243;n de dodecil sulfato    de sodio (SDS) 10 %, mantenida a temperatura ambiente y en oscuridad por 30    min. La absorbancia de las muestras fue le&#237;da a 492 nm en un lector de    ELISA y no a 595 nm como usualmente se realiza, seg&#250;n lo disponible en    el laboratorio. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otro lado,    la concentraci&#243;n inhibitoria 50 % (CI<sub>50</sub>) fue determinada mediante    el an&#225;lisis de regresi&#243;n lineal del gr&#225;fico, porcentaje de inhibici&#243;n    <i>vs.</i> logaritmo de la concentraci&#243;n del extracto.Tambi&#233;n se determinaron    los valores de CI<sub>50</sub> de los grupos, experimental y control, con la    siguiente f&#243;rmula: </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> % inhibici&#243;n=    [1-(Am-Abm) / (Ar-Abr) x 100 </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> donde: </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Am: absorbancia    de la muestra, </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Abm. absorbancia    del blanco de la muestra, </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Ar: absorbancia    de las soluciones de referencia y </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Abr: absorbancia    del blanco de referencia. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>    <br>   Tripomastigota sangu&#237;neos</b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la ejecuci&#243;n    del ensayo, a partir de ratones previamente infectados, se obtuvo una muestra    por punci&#243;n cardiaca para la obtenci&#243;n de tripomastigota sangu&#237;neos    de <i>T. cruzi</i>, la que se coloc&#243; en tubos de ensayo esterilizados con    heparina y se centrifug&#243; a 2 000 r.p.m. durante 10 min. El sobrenadante    se ajust&#243; a una concentraci&#243;n de 1 x 10<sup>5</sup> tripomastigota    sangu&#237;neos/mL, realiz&#225;ndose el recuento en c&#225;mara de Neubauer.    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Durante la aplicaci&#243;n    del EC, 20 &#181;L de tripomastiogota de <i>T. cruzi</i> se distribuyeron en    pocillos de una microplaca, a una concentraci&#243;n de 1 x 10<sup>5</sup> tripomastigota/mL,    y se procedi&#243; con el mismo protocolo seguido para el caso de los epimastigota.    Asimismo, en la determinaci&#243;n de la viabilidad de los tripomastigota se    sigui&#243; el protocolo desarrollado para los epimastigota. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   AN&#193;LISIS DE DATOS </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los resultados    se sometieron al an&#225;lisis de varianza (ANOVA) y a la prueba de comparaci&#243;n    de medias de Tukey con la finalidad de establecer las diferencias significativas    entre los grupos experimentales y el control, para lo cual se utiliz&#243; el    programa computarizado SPSS vr. 20 con 0,05 de significancia. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   INHIBICI&#211;N DE EPIMASTIGOTA </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los ensayos de    inhibici&#243;n de epimastigota de <i>T. cruzi</i> en diferentes concentraciones    (5, 25 y 50 &#181;g/mL) de extractos crudos de AcOEt de plantas <i>in vitro</i>    j&#243;venes (6-8 meses), plantas <i>in vitro</i> maduras (10-12 meses), de    tallos le&#241;osos y hojas de plantas silvestres y grandisina, obtenida de    espigas maduras, indicaron que la menor tasa de inhibici&#243;n en el crecimiento    de epimastigota fue 72,87 % en 5,0 &#181;g/mL de la sustancia pura grandisina    mientras que la mayor tasa de inhibici&#243;n en el crecimiento de epimastigota    fue 96,09 % con 50,0 &#181;g/mL de extracto de tallos (<a href="/img/revistas/mtr/v68n3/t0104316.gif">tabla    1</a>). La tendencia general mostrada en la <a href="/img/revistas/mtr/v68n3/t0104316.gif">tabla 1</a>    fue que conforme se incrementaba la concentraci&#243;n de los extractos de 5,0    a 50,0 &#181;g/mL aumentaba tambi&#233;n la tasa de inhibici&#243;n en el crecimiento    de epimastigota, y fue precisamente en la concentraci&#243;n de 50,0 &#181;g/mL    de todos los extractos ensayados, incluyendo la grandisina, en que se alcanzaron    las tasas m&#225;s altas de inhibici&#243;n en el crecimiento de epimastigota.    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El an&#225;lisis    de varianza (ANOVA) realizado para cada clase de extracto ensayado, indic&#243;    que la inhibici&#243;n en el crecimiento de epimastigota result&#243; significativo,    con el menor valor en la prueba de F de 18,48 para extractos de tallos y el    mayor valor de 145,86 para plantas <i>in vitro</i> j&#243;venes (6-8 meses)    (datos no mostrados en <a href="/img/revistas/mtr/v68n3/t0104316.gif">tabla 1</a>). Por otro lado, la    prueba de Tukey mostr&#243; que el extracto de plantas <i>in vitro</i> j&#243;venes    (6-8 meses) de 25,0 y 50,0 &#181;g/mL tuvieron un efecto estad&#237;sticamente    similar, mientras que 5,0 &#181;g/mL y el control resultaron estad&#237;sticamente    iguales y diferentes a los otros tratamientos; adem&#225;s, los extractos de    plantas <i>in vitro</i> maduras (10-12 meses), tallos y hojas de plantas silvestres,    as&#237; como la grandisina, resultaron estad&#237;sticamente iguales y diferentes    al control, mientras que los extractos de tallos y hojas de plantas silvestres    resultaron estad&#237;sticamente iguales en las tres concentraciones ensayadas    y diferentes respecto al control. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <br>   INHIBICI&#211;N DE TRIPOMASTIGOTA </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los ensayos de    inhibici&#243;n de tripomastigota de <i>T. cruzi</i> en diferentes concentraciones    (5, 25 y 50 &#181;g/mL) de extractos crudos de AcOEt de plantas <i>in vitro</i>    y estructuras vegetales de plantas silvestres, indicaron que la menor tasa de    inhibici&#243;n en el crecimiento de tripomastigota fue 70,88 % en 5,0 &#181;g/mL    de extracto de hojas, mientras que la mayor tasa de inhibici&#243;n en el crecimiento    de tripomastigota fue 93,37 % con 50,0 &#181;g/mL de grandisina (<a href="/img/revistas/mtr/v68n3/t0204316.gif">tabla    2</a>). </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El an&#225;lisis    de varianza (ANOVA), realizada para cada clase de extracto ensayado, indic&#243;    que la inhibici&#243;n en el crecimiento de tripomastigota result&#243; significativo,    con el menor valor en la prueba de F de 91,38 para extractos de plantas <i>in    vitro </i>j&#243;venes (6-8 meses) y el mayor valor de 2347,28 para extractos    de tallos (datos no mostrados en <a href="/img/revistas/mtr/v68n3/t0204316.gif">tabla 2</a>). Por otro    lado, la prueba de Tukey, para concentraciones del extracto de plantas <i>in    vitro</i> j&#243;venes (6-8 meses) mostr&#243; que 25,0 y 50,0 &#181;g/mL tuvieron    un efecto estad&#237;sticamente similar y diferente cuando se utiliz&#243; 5,0    &#181;g/mL, mientras que el tratamiento control fue diferente a todos; asimismo,    una respuesta similar ocurri&#243; con el extracto de plantas <i>in vitro</i>    maduras (10-12 meses) en que la concentraci&#243;n de 5,0 &#181;g/mL result&#243;    diferente a las concentraciones de 25,0 y 50,0 &#181;g/mL y el control diferente    a todos, mientras que en el caso de los extractos de tallos y hojas de plantas    silvestres, as&#237; como con grandisina, todos los tratamientos fueron estad&#237;sticamente    diferentes entre s&#237;, incluyendo al control. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <br>   EVALUACI&#211;N DE CI<sub>50</sub> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la evaluaci&#243;n    de CI<sub>50</sub>, si bien los valores mostrados salen fuera de la curva (&lt;    5,0 &#181;g/mL) (<a href="/img/revistas/mtr/v68n3/t0304316.gif">tabla 3</a>), lo que indicar&#237;a    que hubiera sido conveniente el ensayo de concentraciones aun m&#225;s bajas,    los resultados se&#241;alaron que el extracto de plantas <i>in vitro</i> (6-8    meses) 0,018 &#181;g/mL inhibi&#243; el 50 % de crecimiento de epimastigota    de <i>T. cruzi</i>, seguido de la grandisina, plantas <i>in vitro</i> (10-12    meses), hojas y tallos, en que se alcanz&#243; el mayor valor con 0,254 &#181;g/mL.    A excepci&#243;n del extracto de tallos, los otros extractos tuvieron un efecto    similar en la actividad inhibitoria media. Referente al crecimiento de tripomastigota    de <i>T. cruzi</i>, el valor m&#225;s bajo de CI<sub>50</sub> se alcanz&#243;    con la grandisina 0,360 &#181;g/mL, mientras que en los otros extractos ensayados    los valores de CI<sub>50</sub> fueron superiores a 0,5 &#181;g/mL; el valor    m&#225;s alto con 1,143 &#181;g/mL correspondi&#243; al extracto de plantas    <i>in vitro</i> (6-8 meses). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Al comparar los    resultados de la inhibici&#243;n del crecimiento entre epimastigota y tripomastigota    de <i>T. cruzi</i>, los valores m&#225;s bajos de CI<sub>50</sub> correspondieron    a epimastigota en un rango de 0,018 a 0,254 &#181;g/mL, mientras que los valores    m&#225;s altos de CI<sub>50</sub> correspondieron a tripomastigota en un rango    de 0,360 a 1,143 &#181;g/mL; resultados que indicaron que la forma tripomastigota    fue m&#225;s resistente a los tratamientos ensayados <s> . </s> </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">DISCUSI&#211;N</font></b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La enfermedad    de Chagas o tripanosomiasis americana, causada por el protozoario flagelado    <i>T. cruzi</i>, constituye un importante problema de salud p&#250;blica en    Am&#233;rica Latina que afecta anualmente a millones de personas.<sup>37</sup>    El tratamiento m&#225;s com&#250;n para el control de la enfermedad es el uso    de las drogas nifurtimox y benznidazol; sin embargo, el tratamiento genera diversos    efectos colaterales adversos y baja eficacia cl&#237;nica en dependencia del    genotipo del par&#225;sito.<sup>10,11,38</sup> Es por ello la necesidad de buscar    alternativas en el tratamiento de la enfermedad con el uso de plantas medicinales,    muchas de estas utilizadas en la medicina tradicional. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Una familia vegetal    importante de amplia ocurrencia en especies en Am&#233;rica Tropical es la Piperaceae    en que varias especies de <i>Piper </i>han mostrado actividad biol&#243;gica    contra plagas y enfermedades; se destacan entre estas <i>P. solmsianum</i>,    un arbusto de 1-3 m de altura, com&#250;nmente establecido en el sudeste del    Brasil, cuyos estudios fitoqu&#237;micos revelaron la presencia de monoterpenos,    sesquiterpenos, arilpropanoides, fenilpropanoides, lignanos y neolignanos, con    actividad biol&#243;gica contra bacterias, hongos y la forma tripomastigota    de <i>T. cruzi</i>.<sup>39</sup></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En algunos estudios    se ensayaron extractos crudos y en otros casos sustancias puras. Precisamente,    en <i>P. solmsianum</i> se evaluaron los lignanos tetrahidrofuranos grandisina    (a), <i>rel</i> -(7R,8R,7&#180;R,8&#180;R)-3&#180;,4&#180;-metilendioxi-3,4,5,5&#180;-tetrametoxi-7,7&#180;-epoxilignana    (b) y <i>rel-</i> (7R,8R,7&#180;R,8&#180;R)-3,4,3&#180;,4&#180;-dimetilendioxi-5,5&#180;-dimetoxi-7,7&#180;-epoxilignana    (c). Estos &#250;ltimos qu&#237;micamente muy similares, aislados de inflorescencias    y ensayados sobre formas tripomastigota de <i>T. cruzi</i> (cepa Y) en las concentraciones    de 5, 25 y 50 &#181;g/mL; se ha observado una mayor actividad tripanocida en    la sustancia (a) que alcanza 92,8 % de inhibici&#243;n en el crecimiento en    la concentraci&#243;n de 50 &#181;g/mL.<sup>21</sup> En <i>P. regnellii</i>,    extracto hidroalcoh&#243;lico etanol:agua (90:10) de hoja, en 100 &#181;g/mL    de concentraci&#243;n se observ&#243; una inhibici&#243;n en el crecimiento    de la forma epimastigota de <i>T. cruzi</i> de 89,7 %;<sup>23</sup> de manera    que resulta posible que la actividad biol&#243;gica de <i>P. regnellii</i> se    deba a la presencia del neolignano eupomatenoide-7 y el lignano fragransina    E<sub>1</sub>, aislados de <i>Aristolochia taliscana</i> y que inmovilizaron    formas epimastigota de <i>T. cruzi</i>.<sup>40</sup> En <i>P. arboreum</i> y    <i>P. tuberculatum</i> las fracciones hex&#225;nicas de hojas, ensayadas sobre    formas epimastigota cepa Y de <i>T. cruzi</i>, presentaron mayor efecto inhibitorio,    mientras que las fracciones hex&#225;nicas de frutos presentaron menor efecto    inhibitorio; la actividad biocida se le atribuy&#243; a las amidas, piperilina    y 4,5-dihidropiperilina.<sup>26</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Por otro lado,    las amidas naturales piperovatina y piperlonguminina, aisladas de <i>P. ovatum</i>,    resultaron activas sobre la forma epimastigota de <i>T. cruzi</i>; se observaron    alteraciones en la membrana plasm&#225;tica y mitocondria, y se asumi&#243;    que las disfunciones mitocondriales inducidas por las amidas conllevan a alteraciones    bioqu&#237;micas que conducen a la muerte de las c&#233;lulas.<sup>32</sup>    Igualmente, en otro estudio realizado en ratones, se evalu&#243; las propiedades    terap&#233;uticas <i>in vivo</i> de (-)-cubebina (50 mg/kg), un compuesto aislado    de semillas secas de <i>P. cubeba</i> L. y (-)-hinokina (20 mg/kg), preparado    por oxidaci&#243;n de (-)-cubebina; se observaron diferencias en el n&#250;cleo    de las c&#233;lulas del bazo de ratones no infectados, infectados tratados e    infectados no tratados, de manera que result&#243; el per&#237;metro del n&#250;cleo    mayor en animales infectados no tratados, sin evidenciar toxicidad.<sup>33</sup>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En general, los    resultados de la actividad tripanocida de extractos crudos y sustancias puras    de varias especies de <i>Piper</i> fueron inferiores frente a los del presente    trabajo, como fue el caso de <i>P. regnellii</i> en que los resultados fueron    iguales que los de extractos de plantas <i>in vitro</i> (10-12 meses) (89,7    %) e inferioesr que los de extractos de tallos (96,09 %) de <i>P. solmsianum</i>,    pero en ambos casos con extractos de 50 &#181;g/mL de concentraci&#243;n e incluso    con extractos de tallos de 25 &#181;g/mL en que se alcanz&#243; hasta 92,49    % de inhibici&#243;n en el crecimiento; asimismo, respecto a <i>P. arboreum</i>    y <i>P. tuberculatum</i> en que los valores de CI <sub>50</sub> presentaron    menor efecto inhibitorio respecto a los valores de <i>P. solmsianum</i>, en    el presente trabajo. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En otros estudios    realizados en 311 especies evaluadas procedentes de varias regiones de Am&#233;rica    Central y Sudam&#233;rica, solamente 17 especies (5,4 %) mostraron actividad    antiparasitaria sobre <i>Plasmodium falciparum</i>, <i>Leishmania mexicana</i>    y <i>T. cruzi</i> con CI<sub>50</sub>&#8804; 10 &#181;g/mL; la mayor actividad    sobre<i> T. cruzi</i> correspondi&#243; al extracto etan&#243;lico de tallos    de <i>Bourreria huanita</i> (Boraginaceae).<sup>41</sup> Igualmente, en otro    estudio similar realizado en Brasil con 92 extractos etan&#243;licos obtenidos    de diferentes partes de plantas de numerosas familias de la Mata Atl&#225;ntica    y el Cerrado de S&#227;o Paulo, sobre la forma epimastigota Y y cepas de Bolivia    de <i>T. cruzi</i>, se observ&#243; que la mayor actividad tripanocida se alcanz&#243;    con extractos de frutos de <i>Ocotea paranapiacabensis</i> y <i>Aegiphila lhotzkiana</i>.<sup>42</sup>    Tambi&#233;n, extractos de diclorometano o metanol agua (4:1) de 31 especies    de la regi&#243;n central de Chile se evaluaron sobre formas tripomastigota    de <i>T. cruzi</i>; la mayor actividad tripanocida se observ&#243; con los extractos    de <i>Podanthus ovalifolius</i>,<i> Berberis microphylla</i>, <i>Kageneckia    oblonga</i> y <i>Drymis winteri</i>, y se atribuy&#243; la actividad biol&#243;gica,    en el caso de <i>D. winteri,</i> a los sesquiterpenos drimanos: poligodial,    drimenol e isodrimenina.<sup>43</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En otro estudio,    extractos etan&#243;licos de <i>Senna villosa </i> (Fabaceae), <i>Serjania yucatenensis</i>    (Sapindaceae), <i>Byrsonima bucidaefolia</i> (Malpighiaceae) y <i>Bourreria    pulchra</i> (Boraginaceae), fueron evaluados sobre formas epimastigota y triopomastigota    de <i>T. cruzi</i>, y se observ&#243; que los extractos de hojas de <i>S. yucatenensis</i>    y <i>B. pulchra</i> fueron m&#225;s activos sobre epimastigota y tripimastigota;    asimismo, solamente el extracto de hoja de <i>S. yucatenensis</i> mostr&#243;    significativa actividad tripanocida en ensayos <i>in vivo</i>, y redujo en 75    % la parasitemia en ratones infectados.<sup>44</sup> Al igual que en los estudios    anteriores, estos valores, sean expresados en porcentaje de inhibici&#243;n    o como CI<sub>50</sub>, resultaron similares o inferiores a los mostrados en    el estudio realizado en nuestro trabajo con <i>P. solmsianum</i>. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Aunque los extractos    de plantas <i>in vitro</i> de <i>P. solmsianum</i> mostraron un ligero menor    efecto inhibitorio en el crecimiento de <i>T. cruzi</i>, respecto a los extractos    de plantas silvestres maduras y la grandisina, este fue ligeramente menor en    la forma epimastigota, la que en general mostr&#243; mayor susceptibilidad que    la forma tripomastigota; no se observaron diferencias significativas entre las    plantas <i>in vitro</i> de 6-8 meses respecto a las plantas <i>in vitro</i>    de 10-12 meses. La fuerte actividad tripanocida de las plantas <i>in vitro</i>    abre la posibilidad de biosintetizar los compuestos activos en gran escala con    el establecimiento de suspensiones celulares.<sup>45,46</sup> Las mayores ventajas    del sistema de cultivo de c&#233;lulas sobre los m&#233;todos convencionales    de propagaci&#243;n de plantas completas, estriban en que los compuestos &#250;tiles    pueden ser producidos bajo condiciones controladas independientemente de los    cambios clim&#225;ticos o condiciones del suelo; los cultivos pueden establecerse    libres de microorganismos y plagas; las c&#233;lulas pueden multiplicarse para    producir metabolitos espec&#237;ficos; y el control automatizado del crecimiento    celular y la regulaci&#243;n racional de los procesos metab&#243;licos pueden    reducir significativamente los costos y mejorar la productividad.<sup>47</sup>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Por otro lado,    el uso de sustancias puras no siempre resulta m&#225;s efectivo que los extractos    crudos. Al respecto, se ha se&#241;alado que el uso de extractos crudos tiene    una profunda significaci&#243;n y ventaja ecol&#243;gica puesto que por ser    fuente de una complejidad de mol&#233;culas muestra diversas bioactividades,    lo que eleva los niveles de toxicidad en relaci&#243;n con los compuestos individuales    qu&#237;micamente puros, a lo que se suma el riesgo de inducir resistencia.<sup>48</sup>    Adicionalmente, se ha propuesto como estrategia de trabajo el uso de extractos    heterog&#233;neos de toda la biomasa de la planta, para inducir un efecto sinerg&#237;stico    sobre alg&#250;n organismo espec&iacute;fico.<sup>49</sup> Es el caso que en    el control del IV estadio larval de <i>Anticarsia gemmatalis</i>, se report&#243;    que los extractos crudos de semillas, hojas y tallos causaron 80 % de mortalidad    con 800 &#181;g/insecto y las amidas pillitorina y 4,5-dihidropiperlonguminina    causaron 100 % de mortalidad con 200 y 700 &#181;g/insecto,<sup>50</sup> lo    que de alguna manera confirm&#243; la importancia de utilizar extractos crudos.    Recientemente, en <i>Croton cajucara </i>el extracto metan&#243;lico de tallo    le&#241;oso fue m&#225;s activo que los compuestos aislados trans-dehidrocrotonina    y &#225;cido acetil aleurit&#243;lico sobre la forma tripomastigota de <i>T.    cruzi</i>.<sup>51</sup> En nuestro estudio sobre la actividad tripanocida de    <i>P. solmsianum </i>sobre las formas epimastigota y tripomastigota de <i>T.    cruzi</i>, varios extractos crudos de plantas <i>in vitro</i> y plantas silvestres    resultaron superiores a la sustancia pura grandisina.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Conflictos de intereses</font></b>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los autores declaran que no existen conflictos    de intereses. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">REFERENCIAS    BIBLIOGR&#193;FICAS </font></b> </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 1. Urbina JA,    Docampo R. Specific chemotherapy of Chagas disease: controversies and advances.    Trends in Parasitol.<b> </b>2003;19:495-501.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2. WHO (World    Health Organization). Triatomine bugs. 2007. p. 213. [cited 2015 Aug 12]. Available    from: <a href="http://www.who.int/entity/water_sanitation_health/resources/vector210to222.pdf" target="_blank">http://www.who.int/entity/water_sanitation_health/resources/vector210to222.pdf</a></font><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 3. Organizaci&#243;n Mundial de la Salud. Control de la enfermedad de Chagas: segundo informe del    comit&#233; de expertos de la OMS. Ginebra: OMS; 2003. Serie de Informes T&#233;cnicos    905.     </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 4. Berger I, Barrientos    AC, C&#225;ceres A, Hern&#225;ndez M, Rastrelli L, Passreiter CM, et al. 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<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 8. Tyler KM, Engman    DM. The life cycle of <i>Trypanosoma cruzi</i> revisited. Int J Parasitol. 2001;31:472-1.        </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 9. Carrada-Bravo    T. <i>Trypanosoma cruzi</i>: Historia natural y diagn&#243;stico de la enfermedad    de Chagas. Rev Mex Patol Clin.<b> </b> 2004;51:205-19.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 10. Paulino M,    Iribarne F, Dubin M. Aguilera-Morales S, Tapia O, Stoppani AO. The chemoterapy    of Chagas' disease: an overview. Mini Rev Med Chemi. 2005; 5: 499-519.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 11. Da Silva CF,    Batista D da G, Oliveira GM, de Souza EM, Hammer ER, da Silva PB, et al. <i>In    vitro</i> and <i>in vivo</i> investigation of the efficacy of arylimidamide    DB1831 and its mesylated salt form&#8213;DB1965&#8213;against <i>Trypanosoma    cruzi </i>infection. PLoS One. 2012;7:e30356.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 12. Maya JD, Repetto    Y, Agosin M, Ojeda JM, Tellez R, Gaule C, et al. Effects of nifurtimox and benznidazole    upon glutatione and trypanothione content in epimastigote, trypomastigote and    amastigote forms of <i>Trypanosoma cruzi</i>. Mol Biochem Parasit. 1997;86:101-6.        </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 13. Veloso VM,    Carneiro CM, Toledo MJO, Chiari E, Tafuri WL, Bahia MT. Variation in susceptibility    to benznidazole in isolates derived from <i>Trypanosoma cruzi </i>parenteral    strains. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96:1005-11.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 14. Schinella    G, Tournier H, Zaidenberg A. <i>In vitro</i> and<i>in vivo</i> activity of berberine    on the blood trypomastigote from <i>Trypanosoma cruzi</i>. Bol Latinoam Caribe    Plant Med Aromat. 2007;6:81-5.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 15. Lockman JW,    Hamilton AD. Recent developments in the identification of chemotherapeutics    for Chagas disease. Curr Med Chem. 2005;12:945-59.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 16. Maya JD, Cassels    BK, Iturriaga-V&#225;squez P, Ferreira J, Fa&#250;ndez M, Galanti N, et al.    Mode of action of natural and synthetic drugs against <i>Trypanosoma cruzi</i>    and their interaction with the mammalian host. Comp Biochem Physiol, Part A.    2007;146:601-20.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 17. Duschak VG,    Couto AS. An insight on targets and patented drugs for chemotherapy of Chagas    disease. Recent Pat Antiinfect Drug Discov. 2007;2:19-51.     </font></p>     ]]></body>
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