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</front><body><![CDATA[ <p align="right"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ART&#205;CULO    ORIGINAL</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b> <font size="4">Efecto    antibacteriano <i>in vitro</i> del extracto etan&#243;lico de <i>Prosopis pallida</i>    sobre <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212 </font></b> </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">In    vitro</font></b> </font></i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>antibacterial    activity of an ethanolic extract of </b></font><font size="3"><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Prosopis    pallida </i></b></font></i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>against</b></font><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>    <i>Enterococcus faecalis</i></b></font></i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>    ATCC 29212</b></font><i> </i></font></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Stephany L.    Alvarado Saavedra,<sup>I</sup> Paul Herrera-Plasencia,<sup>I</sup> Erika Enoki-Mi&#241;ano,<sup>I</sup>    Miguel Ruiz-Barrueto,<sup>I </sup>Pablo Alejandro Millones G&#243;mez<sup>II</sup>    </b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>&nbsp;I</sup>    Universidad C&#233;sar Vallejo. Piura, Per&#250;. </font>    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>II</sup> Universidad    Alas Peruanas. Per&#250;. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>RESUMEN</b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Introducci&#243;n:</b>    <i>Prosopis pallida</i> es un &#225;rbol que crece principalmente en el norte    de Per&#250; y sur de Ecuador. A los componentes de sus hojas (flavonoides y    taninos) se les atribuyen posibles efectos antimicrobianos. <i>Enterococcus    faecalis</i> es una bacteria cocoide, grampositiva, anaerobia facultativa, que    constituye motivo de investigaci&#243;n porque es causa frecuente de infecci&#243;n    de los conductos radiculares en dientes con fracaso en el tratamiento endod&#243;ntico.    </font>    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Objetivo: </b>    evaluar el efecto antibacteriano del extracto alcoh&#243;lico de las hojas de    <i>Prosopis pallida </i>(algarrobo) sobre <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC    29212. </font>    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>M&#233;todos:</b>    el extracto total de <i>Prosopis pallida</i> se obtuvo mediante el m&#233;todo    de extracci&#243;n por soluci&#243;n. El solvente fue etanol al 80 %. El efecto    antibacteriano <i>in vitro</i> del extracto se evalu&#243; mediante los m&#233;todos    de difusi&#243;n en disco y microdiluci&#243;n. Las concentraciones del extracto    fueron de 10 hasta 90 mg/mL, un control positivo gluconato de clorhexidina al    2 % y un control negativo soluci&#243;n salina fisiol&#243;gica est&#233;ril.    </font>    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Resultados: </b>    la mayor inhibici&#243;n se obtuvo a las concentraciones de 80 y 90 mg/mL, con    halos de inhibici&#243;n de 16 mm de di&#225;metro. El control positivo obtuvo    un halo de inhibici&#243;n de 16,9 mm. El control negativo no gener&#243; inhibici&#243;n.    La concentraci&#243;n m&#237;nima inhibitoria y la concentraci&#243;n m&#237;nima    bactericida mediante el m&#233;todo de microdiluci&#243;n fueron &lt; 10 mg/mL.    </font>    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Conclusiones:</b>    el extracto etan&#243;lico de <i>Prosopis pallida</i> tiene efecto antibacteriano    <i>in vitro </i>sobre <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212, pero no es significativo    con respecto al control positivo (<i>p&gt; 0,05</i>).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave:</b>    antibacteriano; plant extract; Prosopis; <i>Enterococcus faecalis</i>.</font></p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Introduction:</b>    <i>Prosopis pallida</i> is a tree that grows mainly in northern Peru and southern    Ecuador. The components of its leaves (flavonoids and tannins) are attributed    potential antimicrobial effects. <i>Enterococcus faecalis </i>is a gram-positive    facultative anaerobic coccus bacterium of interest to researchers because it    is a frequent cause of root canal infection in teeth with failed endodontic    treatment.    <br>   <b>Objective:</b>    evaluate the antibacterial activity of an alcoholic extract of<i>Prosopis pallida    </i>(algarrobo) leaves against <i>Enterococcus faecalis </i>ATCC 29212.    <br>   <b>Methods:</b> total extract of <i>P. pallida</i> was obtained by the method    of solvent extraction. The solvent used was 80 % ethanol. <i>In vitro</i> antibacterial    activity of the extract was evaluated by the methods of disc diffusion and microdilution.    Concentration of the extract ranged from 10 to 90 mg/mL. The positive control    was 2 % chlorhexidine gluconate, whereas the negative control was sterile physiological    saline.    <br>   <b>Results:</b> the highest inhibition was obtained at concentrations of 80    and 90 mg/mL, with inhibition haloes of 16 mm in diameter. The positive control    achieved an inhibition halo of 16.9 mm. The negative control did not produce    any inhibition. Minimum inhibitory concentration and minimum bactericidal concentration    by the microdilution method were &lt; 10 mg/mL.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Conclusions:</b>    the ethanolic extract of <i>Prosopis pallida</i> has antibacterial activity    <i>in vitro</i> against <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212, but its action    is not significant with respect to the positive control (p&gt; 0.05). </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Keywords:</b>    antibacterial; plant extract; Prosopis;<i>Enterococcus faecalis</i>. </font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">INTRODUCCI&#211;N</font></b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La cavidad bucal    est&#225; conformada por distintas superficies. Cada una de estas superficies    se constituye en h&#225;bitats espec&#237;ficos para distintos microorganismo.<sup>1</sup>    Gracias a la gen&#243;mica se han logrado aislar hasta 200 especies bacterianas    diferentes en una misma cavidad bucal.<sup>2</sup> Algunas de estas bacterias    est&#225;n asociadas con el desarrollo de enfermedades bucales como la caries,    la periodontitis y en el caso de <i>Enterococcus faecalis</i> al fracaso del    tratamiento endod&#243;ntico.<sup>3</sup> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Una de las principales    causas de fracaso endod&#243;ntico es la infecci&#243;n bacteriana persistente.<sup>3    </sup>El papel de las bacterias en la infecci&#243;n perirradicular ha quedado    bien establecido en la literatura, y el tratamiento endod&#243;ntico se ver&#225;    afectado por una mayor probabilidad de fracaso si los microorganismos persisten    en los canales en el momento de la obturaci&#243;n del conducto radicular.<sup>4,5</sup>    Las condiciones ambientales como un pH bajo en el conducto radicular podr&#237;an    ser los responsables de la persistencia de las bacterias grampositivas.<sup>6,7</sup>    </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>Enterococcus    faecalis</i> es un coco grampositivo, anaerobio facultativo que forma parte    de la microbiota del ser humano; su habitad natural es el tracto gastrointestinal    y a veces aislado de la cavidad bucal.<sup>8</sup> Este microorganismo es muy    prevalente en pacientes con tratamiento o retratamiento endod&#243;ntico, el    cual se relaciona con las infecciones persistentes y es capaz de sobrevivir    a los protocolos de terapia pulpar.<sup>4,9,10</sup> La prevalencia de <i>Enterococcus    faecalis</i> en infecciones endod&#243;nticas persistentes asintom&#225;ticas    oscila entre el 24 % y el 77 %.<sup>11,12</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La eliminaci&#243;n    de las bacterias persistentes en el conducto radicular garantiza el &#233;xito    del tratamiento endod&#243;ntico.<sup>13,14</sup> La pr&#225;ctica cl&#237;nica    y estudios realizados <i>in vitro</i> han demostrado que la instrumentaci&#243;n    mec&#225;nica no asegura la completa eliminaci&#243;n de los microorganismos    alojados en los conductos radiculares, es por ello que durante a&#241;os se    han empleado irrigantes qu&#237;micos aplicados antes, durante y despu&#233;s    de la preparaci&#243;n, con la finalidad de desinfectar y mantener est&#233;ril    el sistema de conductos radiculares.<sup>15-17</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las plantas medicinales    son consideradas como una alternativa de soluci&#243;n para controlar las enfermedades    que afectan a la poblaci&#243;n debido a sus propiedades antibacterianas, antihemorr&#225;gicas,    analg&#233;sicas, antitumorales, antiinflamatorias, entre otras.<sup>18</sup>    Hoy en d&#237;a la medicina alternativa ha tomado mayor &#233;nfasis siendo    usada por la poblaci&#243;n para controlar el dolor y combatir infecciones que    afectan la salud del ser humano, por ello se ha incrementado el desarrollo de    investigaciones con la finalidad de buscar alternativas terap&#233;uticas.<sup>19,20</sup>    La Organizaci&#243;n Mundial de la Salud aprueba el uso de plantas medicinales    o medicina alternativa pues estudios han demostrado su eficacia y porcentajes    m&#237;nimos de riesgo.<sup>21</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El g&#233;nero    <i>Prosopis</i> es originario en mayor parte de Am&#233;rica y en menor proporci&#243;n    de &#193;frica y el sudeste de Asia. La especie <i>Prosopis pallida</i> es la    m&#225;s dominante en la costa del Per&#250; y aparece descrita en 13 departamentos,    desde Tumbes a Tacna.<sup>22 </sup> Posee compuestos biol&#243;gicamente activos    como taninos, flavonoides, fenoles y terpenos.<sup>23</sup> <i>C&#225;rdenas</i>    determin&#243; su efecto antibacteriano sobre <i>Staphylococcus aureus</i> y<i>    Staphylococcus epidermidis</i>.<sup>24</sup> Por su parte, <i>Sandoval</i> y    <i>Z&#250;&#241;iga</i> demostraron el efecto de los alcaloides totales extra&#237;dos    de las hojas de <i>Prosopis pallida Escherichia coli</i> y tambi&#233;n <i>Staphylococcus    aureus</i>.<sup>25</sup> Estos resultados y otros en que se evalu&#243; el efecto    antibacteriano sobre cepas de <i>Bacillus subtilis</i>, <i>Pseudomonas aeruginosa</i>,    <i>Salmonella </i>spp.,<sup>26,27</sup> motivaron el desarrollo de esta investigaci&#243;n    cuyo objetivo fue evaluar el efecto antibacteriano del extracto alcoh&#243;lico    de las hojas de <i>Prosopis pallida </i>(algarrobo) sobre <i>Enterococcus faecalis    </i>ATCC 29212.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">M&#201;TODOS</font></b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> RECOLECCI&#211;N    DE LAS HOJAS, OBTENCI&#211;N Y DILUCI&#211;N DEL EXTRACTO ALCOH&#211;LICO DE    <i>PROSOPIS PALLIDA</i><sup>28-30</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La investigaci&#243;n    fue de tipo b&#225;sica, de corte transversal, con dise&#241;o experimental    de est&#237;mulo creciente. Se evaluaron 12 tratamientos correspondientes a    las 10 concentraciones del extracto alcoh&#243;lico de<i> Prosopis pallida</i>    y dos controles. Las unidades de ensayo fueron 120 (placas de Petri) y 4 repeticiones.    Se llev&#243; a cabo durante los meses de enero a julio del a&#241;o 2017. Se    recolectaron y seleccionaron hojas de <i>Prosopis pallida</i> en la zona de    Carrizalillo a 11 km. de Cruceta en la provincia de Tambo Grande, departamento    de Piura y luego trasladadas al Laboratorio de Biolog&#237;a de la Universidad    C&#233;sar Vallejo filial Piura, Per&#250;. Una parte de las hojas y flores    fue llevada a la Universidad Nacional de Piura para su identificaci&#243;n,    caracterizaci&#243;n y certificaci&#243;n en el Herbarium Piurense. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Para la obtenci&#243;n    del extracto se seleccionaron de forma unitaria las hojas para descartar aquellas    con signos de infecci&#243;n o deterioro. Posteriormente fueron lavadas con    agua destilada y desinfectadas con una torunda de algod&#243;n embebida con    alcohol de 96&#176;. Se colocaron sobre papel Kraff y se dejaron a temperatura    ambiente (25 &#176;C) durante 24 h, despu&#233;s de las cuales se llevaron a    estufa a 50 &#176;C durante 4 h para su secado final. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La molienda del    material vegetal seco se realiz&#243; utilizando un mortero y posteriormente    un molino casero con el que se obtuvo la pulverizaci&#243;n total. A partir    del polvo obtenido se pesaron 100 g y se coloc&#243; en un frasco de vidrio    color &#225;mbar de capacidad de 1 000 mL, luego se le agreg&#243; el solvente    que consisti&#243; en etanol al 80 %. El extracto total se obtuvo por maceraci&#243;n    con agitaci&#243;n constante durante 14 d&#237;as, despu&#233;s de los cuales    el producto fue filtrado 5 veces con papel de filtro Whatman No. 1 y No. 2.    El filtrado final se llev&#243; a sequedad forzada en rotavapor, obteni&#233;ndose    el extracto seco de las hojas de <i> Prosopis pallida</i>. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> A partir del extracto    seco se realizaron diluciones en etanol al 80 % obteni&#233;ndose concentraciones    de 10 mg/mL, 20 mg/mL, 30 mg/mL, 40 mg/mL, 50 mg/mL, 60 mg/mL, 70 mg/mL, 80    mg/mL y 90 mg/mL. Cada concentraci&#243;n fue colocada en un vial est&#233;ril    de color &#225;mbar, tapado herm&#233;ticamente y refrigerado hasta su utilizaci&#243;n.    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   OBTENCI&#211;N Y REACTIVACI&#211;N DE LA CEPA DE <i>ENTEROCOCCUS FAECALIS </i>ATCC    29212<sup>31-35</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La cepa bacteriana    utilizada fue <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212, proporcionada por el    Laboratorio de Microbiolog&#237;a de la Universidad Se&#241;or de Sip&#225;n,    situada en el Km 5 carretera a Pimentel. Distrito de Pimentel, provincia de    Chiclayo. Departamento de Lambayeque, Per&#250;. La cepa se proporcion&oacute;    refrigerada por lo que fue necesario reactivarla en agar Mueller Hinton (MERCK).    Su cultivo se realiz&#243; en condiciones de microaerobiosis en recipientes    de incubaci&#243;n GasPak a 36 &#176;C. Se usa el t&#233;rmino "microaerobiosis"    pues el sistema GasPak no produce una anaerobiosis estricta. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   PREPARACI&#211;N DE MEDIOS DE CULTIVO Y DISCOS DE DIFUSI&#211;N PARA LA EVALUACI&#211;N    DEL EFECTO ANTIBACTERIANO DEL EXTRACTO ALCOH&#211;LICO DE <i>PROSOPIS PALLIDA</i><sup>36-38</sup>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El medio de cultivo    utilizado para la evaluaci&#243;n del efecto antibacteriano de las diferentes    concentraciones del extracto alcoh&#243;lico de <i>Prosopis pallida</i> fue    el agar Mueller Hinton (Merck), el cual fue preparado siguiendo las especificaciones    del fabricante y servido en placas de vidrio de 100 mm. Se secaron en estufa    a 36,5 &#176;C durante 30 min. El medio de cultivo fue preparado el mismo d&#237;a    de su utilizaci&#243;n. En paralelo se prepararon discos de difusi&#243;n de    papel filtro Whatman de 6 mm de di&#225;metro. Estos fueron esterilizados en    un sobre de papel kraft y mantenido bajo esas condiciones hasta que fueron impregnados    con las concentraciones de 10 mg/mL, 20 mg/mL, 30 mg/mL, 40 mg/mL, 50 mg/mL,    60 mg/mL, 70 mg/mL, 80 mg/mL y 90 mg/mL del extracto alcoh&#243;lico de <i>Prosopis    pallida.</i> Tambi&#233;n se impregnaron los discos con gluconato de clorhexidina    al 2 % (sustancia utilizada como control positivo) y con SSFE (control negativo).    Los discos embebidos se secaron en una cabina de bioseguridad Nivel II a temperatura    ambiente e inmediatamente se utilizaron en los ensayos. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   PRUEBA DE SUSCEPTIBILIDAD ANTIBACTERIANA MEDIANTE EL M&#201;TODO DE DIFUSI&#211;N    EN DISCO<sup>36-38</sup> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> A partir del cultivo    puro de <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212 reactivado, se realz&#243; una    suspensi&#243;n bacteriana equivalente al patr&#243;n 0,5 de la escala de McFarland,    el que constituy&#243; el in&#243;culo para la siembra. Con ayuda de un hisopo    est&#233;ril embebido en la suspensi&#243;n del tubo preparado, se sembr&#243;    sobre la superficie del agar Mueller Hinton hasta obtener una distribuci&#243;n    uniforme del in&#243;culo en toda la superficie de las placas. Despu&#233;s    de que todas las placas fueron sembradas se procedi&#243; a colocar los discos    impregnados con las 10 concentraciones del extracto de <i>Prosopis pallida</i>,    gluconato de clorhexidina al 2 % y con soluci&#243;n salina fisiol&#243;gica    (dichos discos hab&#237;an sido embebidos y secados antes de la inoculaci&#243;n    bacteriana) comenzando por las placas que hab&#237;an sido sembradas primero.    Una vez listas las placas de Petri se dejaron reposar durante 30 min a temperatura    ambiente, y despu&#233;s fueron llevadas a incubaci&#243;n a 36 &#176;C por    24 h en condiciones de microaerobiosis. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   DETERMINACI&#211;N DE LA CONCENTRACI&#211;N M&#205;NIMA INHIBITORIA Y CONCENTRACI&#211;N    M&#205;NIMA BACTERICIDA MEDIANTE MICRODILUCI&#211;N EN CALDO<sup>39-42</sup>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La concentraci&oacute;n    m&iacute;nima inhibitoria (CMI) se define como la m&#237;nima cantidad del antimicrobiano    que impide el crecimiento de un microorganismo en condiciones normalizadas;    mientras que la concentraci&oacute;n m&iacute;nima bactericida (CMB) es la m&#237;nima    cantidad del antimicrobiano que destruye (mata) el 99,9 % de los microorganismos    en condiciones estandarizadas. En una microplaca de 96 pocillos con fondo en    forma de U se colocaron por septuplicado, en los 12 pocillos numerados, 100    &#181;L/pocillo de la suspensi&#243;n de <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212    equivalente al est&#225;ndar 0,5 de McFarland preparada en caldo Mueller Hinton.    Inmediatamente despu&#233;s se le agreg&#243; al pocillo 1 (y a sus r&#233;plicas)    100 &#181;L de la concentraci&#243;n de 10 mg/mL del extracto alcoh&#243;lico    de <i>Prosopis pallida</i>. Se hizo de forma seriada hasta la concentraci&#243;n    de 100 mg/mL (pocillo 10). Al pocillo 11 se le agreg&#243; 100 &#181;L de gluconato    de clorhexidina al 2 % (control positivo) y al pocillo 12 se le incorpor&#243;    100 &#181;L de caldo Mueller Hinton para control del crecimiento bacteriano.    Una vez preparada la microplaca fue sellada con cinta Parafilm e incubada durante    24 h a 36 &#176;C en condiciones de microerobiosis alcanzada con el sistema    Anaerocult&#174; A mini (Merck), con la finalidad de recrear las condiciones    de crecimiento de <i>Enterococcus faecalis</i> en el conducto radicular. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   LECTURA DE RESULTADOS<sup>36-42</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Se evaluaron 12    tratamientos correspondientes a las 10 concentraciones del extracto alcoh&#243;lico    de <i>Prosopis pallida</i> y los controles gluconato de clorhexidina y SSFE.    Las unidades de ensayo fueron 120 placas de Petri, 10 placas por cada tratamiento    (decuplicado). Se realizaron cuatro repeticiones de la investigaci&#243;n (en    febrero, marzo abril y mayo respectivamente). Para el m&#233;todo de difusi&#243;n    en disco se examinaron todas las placas de Petri evaluadas. Los halos de inhibici&#243;n    formados fueron medidos con un vernier digital Futec DC-1 e informados en mil&#237;metros    en la ficha de recolecci&#243;n de datos. Para el m&#233;todo de microdiluci&#243;n,    se examin&#243; la microplaca inoculada despu&#233;s de su incubaci&#243;n.    Se observ&#243; cada pocillo con ayuda de un lente de aumento para la b&#250;squeda    de sedimento (bot&#243;n de crecimiento bacteriano). El pocillo donde no se    observ&#243; formaci&#243;n de sedimento fue reportado como la CMI. A partir    de ese pocillo y con ayuda de un asa bacteriol&#243;gica en punta se procedi&#243;    a realizar la siembra de cada pocillo subsiguiente en placas de Petri con agar    Mueller Hinton e incubadas a 36 &#176;C en condiciones de microaerobiosis a    partir de las cuales se determin&#243; la CMB.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   PROCESAMIENTO ESTAD&#205;STICO </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los datos se recopilaron    en una ficha de recolecci&#243;n y luego almacenados en Microsoft Office Excel.    Se se procesaron en el paquete estad&#237;stico spss v. 22. Se aplic&#243;    la prueba no param&#233;trica de Joncheere Tepstra, para establecer valores    significativos y las pruebas de normalidad Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp; </p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="#fig1_287">figura</a>    de barras se observa el di&#225;metro promedio de halos de inhibici&#243;n en    mil&#237;metros alcanzado por las 10 concentraciones del extracto alcoh&#243;lico    de las hojas de <i>Prosopis pallida</i>, de soluci&#243;n salina fisiol&#243;gica    est&#233;ril (SSFE) y de gluconato de clorhexidina al 2 % sobre una cepa de    <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212 investigado en condiciones de laboratorio.</font></p>     <p align="center"><a name="fig1_287"></a><img src="/img/revistas/mtr/v70n2/f01_287.jpg" width="580" height="538"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <br>   Se observa que de las 10 concentraciones del extracto evaluadas las de 80 mg/mL,    90 mg/mL y 100 mg/mL, con halos promedios de 16 mm, 16,1 mm y 16,5 mm respectivamente    tuvieron la mayor inhibici&#243;n. El gluconato de clorhexidina alcanz&#243;    un halo de inhibici&#243;n promedio de 16,9 mm. La SSFE no form&#243; halo de    inhibici&#243;n. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La CMI y CMB se    determinaron mediante el m&#233;todo de microdiluci&#243;n en caldo. La CMI    del extracto alcoh&#243;lico de las hojas de <i>Prosopis pallida</i> (algarrobo)    sobre <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 29212 fue &lt; 10 mg/mL. La CMB fue    igual a la CMI. </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">DISCUSI&#211;N</font></b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La resistencia    bacteriana a los antibi&#243;ticos en el mundo contin&#250;a aumentando. Una    de las alternativas de soluci&#243;n es la b&#250;squeda de compuestos bioactivos    en las plantas que tengan actividad antibacteriana sobre los pat&#243;genos    de importancia para la salud de la humanidad. Las plantas pueden constituirse    en fuente primaria de agentes antibacterianos principalmente por los compuestos    fen&#243;licos que se producen como metabolitos secundarios.<sup>19-21</sup>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las hojas de las    diferentes especies de <i>Prosopis</i> presentan compuestos bioactivos como    alcaloides, taninos, fenoles, flavonoides, terpenos y esteroides. Un estudio    con extracto etan&#243;lico de hojas de <i>Prosopis juliflora</i> mostr&#243;    capacidad antibacteriana contra bacterias gramnegativas resistentes a antibi&#243;ticos    como la minociclina, cloranfenicol y eritromicina. Este efecto se pudo deber    a los alcaloides y principalmente a las saponinas y taninos presentes en el    extracto.<sup>23-25</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Otras investigaciones    utilizaron extractos acuosos de hojas de <i>Prosopis</i> para superar infecciones    bucales y periodontales. Tambi&#233;n se ha demostrado su efecto bactericida    sobre bacterias persistentes en el espacio periodontal y la cavidad bucal, con    resultados semejantes a los obtenidos con colutorios comerciales que conten&#237;an    gluconato de clorhexidina, sorbitol, alcohol, n-propanol, eucaliptol, salicilato    de metilo, timol y benzoato de sodio.<sup>24</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Se ha logrado    caracterizar fitoqu&#237;micamente un compuesto denominado juliflorine a partir    del g&#233;nero <i>Prosopis</i> y se ha establecido que tiene actividad antibacteriana    frente a bacterias pat&#243;genas humanas como <i>Corynebacterium </i>difteria,    Bacillus<i> subtilis, Staphylococcus aureus</i>, <i>Streptococcus pyogenes</i>    y <i>Enterococcus faecalis</i>. Su efecto es m&aacute;s potente incluso que    el de los antibi&#243;ticos estreptomicina y penicilina. En otra investigaci&#243;n    se demostr&#243; que los extractos etan&#243;licos y metan&#243;licos de hojas    de <i>Prosopis juliflora</i> tienen actividad antibacteriana contra<i>Pseudomonas    aeruginosa</i>, <i>Escherichia coli</i> y <i>Staphylococcus aureus</i>.<sup>23</sup>    </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>Flores</i><sup>43</sup>    encontr&#243; que el extracto etan&#243;lico de <i>Caesalpinia spinosa</i> (Taya)    presenta efecto inhibitorio sobre la bacteria <i>Enterococcus faecalis</i>.    Si bien es cierto &#233;l trabaj&#243; concentraciones porcentuales de 10 a    60 %; en todas se observ&#243; inhibici&#243;n del crecimiento de <i>Enterococcus    faecalis</i> al igual que en la presente investigaci&#243;n en la cual se estableci&#243;    que la CMI y CMB eran menor a 10 mg/mL. Los halos obtenidos fueron aproximados    (entre 10 y 14 mm), lo que le da mayor similitud. Por su parte, <i>Thakur</i>    y otros,<sup>44</sup> encontraron actividad antibacteriana variable de los extractos    etan&#243;licos y metan&#243;lico de <i>Prosopis juliflora</i>, a una concentraci&#243;n    de 100 mg/mL. Estableciendo que el efecto puede variar seg&#250;n el tipo de    solvente utilizado en la extracci&#243;n y el m&#233;todo de extracci&#243;n    (en fr&#237;o o caliente). Estas consideraciones les permitieron obtener halos    de inhibici&#243;n de 6 mm (extracci&#243;n etan&#243;lica en caliente) y 16    mm (extracci&#243;n etan&#243;lica en fr&#237;o). Los resultados obtenidos en    el presente estudio se encuentran dentro del rango obtenido por <i>Thakur</i>    y m&#225;s cercanos a los alcanzados con extracci&#243;n etan&#243;lica en fr&#237;o    considerando que fue el m&#233;todo utilizado para la obtenci&#243;n del extracto    en esta investigaci&#243;n.<sup>23,26</sup> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El efecto antibacteriano    del extracto alcoh&#243;lico de <i>Prosopis pallida</i> podr&#237;a tener respuesta    en la abundante cantidad de compuesto fen&#243;licos, taninos y flavonoides,    presente en las hojas de esta planta. Se ha establecido que las propiedades    antibacterianas y antif&#250;ngicas de estos compuestos radican en la capacidad    de provocar lesiones en la membrana citoplasm&#225;tica de los microorganismos.    La funci&#243;n de los flavonoides es actuar como metabolitos en el crecimiento    y reproducci&#243;n de las plantas, y actuar como agente protector en un mecanismo    de defensa; asimismo los taninos ejercen una acci&#243;n defensiva limitando    el desarrollo de los microorganismos del medio en las superficies de la planta.<sup>    </sup>Los mecanismos que pueden ser responsables de la toxicidad fen&#243;lica    a los microorganismos incluyen la inhibici&#243;n de la enzima beta-glucano    sintasa por los compuestos oxidados, probablemente por la reacci&#243;n de los    grupos sulfhidrilo o por las interacciones no espec&#237;ficas con prote&#237;nas.<sup>23-27</sup>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Durante los &#250;ltimos    a&#241;os, ha aumentado el n&#250;mero de investigaciones de plantas en la b&#250;squeda    de efectos terap&#233;uticos alternativos a la medicina tradicional. Existen    a&#250;n gran n&#250;mero de plantas que no han sido estudiadas completamente,    pero vienen mostrando m&#250;ltiples propiedades conforme van siendo investigadas.    El presente estudio reporta el efecto antibacteriano del extracto alcoh&#243;lico    de <i>Prosopis pallida</i> sobre <i>Enterococcus faecalis</i>, lo que ofrece    opciones de investigaciones futuras en caracterizaci&#243;n fitoqu&#237;mica,    determinaci&#243;n de principios activos, pruebas de citotoxicidad as&#237;    como su evaluaci&#243;n cl&#237;nica; es de esperarse en un futuro cercano que    estos resultados la validen como una nueva opci&#243;n terap&#233;utica importante.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3">CONCLUSIONES<b>    </b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El extracto alcoh&#243;lico    de <i>Prosopis pallida </i>tiene efecto antibacteriano <i>in vitro </i>de tipo    bactericida<i> </i>sobre <i>Enterococcus faecalis </i>ATCC 29212. De manera    que se establece para el presente estudio la CMI es igual a la CMB y es &lt;    10 mg/mL. </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   CONFLICTO DE INTERESES</b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> No se declara    conflicto de intereses </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">REFERENCIAS    BIBLIOGR&#193;FICAS </font></b> </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Serrano-Coll    HA, S&#225;nchez-Jim&#233;nez M, Cardona-Castro N. Conocimiento de la microbiota    de la cavidad oral a trav&#233;s de la metagen&#243;mica. Rev CES Odont. 2015;28(2):112-8.        </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2. Cruz S, D&#237;az    P, Arias D, Maz&#243;n G. Microbiota de los ecosistemas de la cavidad bucal.    Rev Cubana Estomatol. 2017;54(1):84-99.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 3. Pupo-Marrugo    S, D&#237;az-Caballero A, Castellanos-Berrio P, Simancas-Escorcia V. Eliminaci&#243;n    de <i>Enterococcus faecalis</i> por medio del uso de hipoclorito de sodio, clorhexidina    y MTAD en conductos radiculares. Av Odontoestomatol. 2014;30(5):263-70.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 4. Tabassum S,    Khan FR. Failure of endodontic treatment: The usual suspects. European Journal    of Dentistry. 2016;10(1):144-7. doi: 10.4103/1305-7456.175682.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 5. Oliveira-Ruiz    G, Machicao-Chacon N, Hern&#225;ndez-A&#241;a&#241;os J. Frecuencia y tiempo    promedio para la rehabilitaci&#243;n postendod&#243;ntica en una Cl&#237;nica    Dental Docente Peruana. Rev Estomatol Herediana. 2016;26(1):20-7.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 6. Ferreira N,    Martinho F, Cardoso F, Nascimento G, Carvalho C, Valera M. Microbiological Profile    Resistant to Different Intracanal Medications in Primary Endodontic Infections.    Journal of Endodontics. 2015;41(6):824-30.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 7. N&#243;brega    L, Montagner F, Ribeiro A, Mayer M, Gomes B. Molecular Identification of Cultivable    Bacteria From Infected Root Canals Associated With Acute Apical Abscess. Brazilian    Dental Journal. 2016;27(3):318-24.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 8. Dahl&#233;n    G, Blomqvist S, Almstahl A, Carl&#233;n A. Virulence factors and antibiotic    susceptibility in enterococci isolated from oral mucosal and deep infections.    Journal of Oral Microbiology. 2012;4:10. DOI:10.3402/jom.v4i0.10855.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 9. Jara-Chalco    LB, Zubiate-Meza JA. Retratamiento endod&#243;ntico no quir&#250;rgico. Rev    Estomatol Herediana. 2011;21(4):231-6.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 10. Narayanan    LL, Vaishnavi C. Endodontic microbiology. Journal of Conservative Dentistry&#8239;:    JCD. 2010;13(4):233-9. doi:10.4103/0972-0707.73386.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 11. Stuart C,    Schwartz S, Beeson T, Owatz C. <i>Enterococcus faecalis</i>: Its Role in Root    Canal Treatment Failure and Current Concepts in Retreatment. J Endod. 2006;32(2):93-8.    DOI: 10.1016/j.joen.2005.10.049.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 12. Bhonchal-Bhardwaj    S. Role of <i>Enterococci faecalis</i> in failure of Endodontic treatment. Int    J Curr Microbiol App Sci. 2013;2(8):272-7.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 13. Vallejo-Labrada    M, Maya-Cer&#243;n C. Influencia de la calidad de restauraci&#243;n coronal    en el pron&#243;stico de dientes tratados endod&#243;nticamente. Rev Cubana    Estomatol. 2015;52(1):47-62.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 14. Jhajharia    K, Parolia A, Shetty KV, Mehta LK. Biofilm in endodontics: A review. Journal    of International Society of Preventive <i>&amp;</i> Community Dentistry. 2015;5(1):1-12.    DOI: 10.4103/2231-0762.151956.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 15. Koch M. On    implementation of an endodontic program. Swed Dent J Suppl. 2013;(230):9-97.        </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 16. Subramaniam    P, Tabrez TA, Babu KL. Microbiological assessment of root canals following use    of rotary and manual instruments in primary molars. Clin Pediatr Dent. 2013;38(2):123-7.        </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 17. Plotino G,    Cortese T, Grande N, Leonardi D, Di Giorgio G, Testarelli L, et al. New Technologies    to Improve Root Canal Disinfection. Braz Dent J. 2016; 27(1):3-8.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 18. Sofowora A,    Ogunbodede E, Onayade A. The role and place of medicinal plants in the strategies    for disease Prevention. Afr J Tradit Complement Altern Med. 2013;10(5):210-29.        </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 19. Pandey AK,    Kumar S. Perspective on plant products as antimicrobial agents: A review. Pharmacologia.    2013;4(7):469-80.     </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 20. Gallegos-Zurita    M. Las plantas medicinales: principal alternativa para el cuidado de la salud,    en la poblaci&#243;n rural de Babahoyo, Ecuador. An Fac Med. 2016;77(4):327-32.        </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 21. Organizaci&#243;n    Mundial de la Salud. Estrategia de la OMS sobre medicina tradicional 2014-2023.    [citado 4 Feb 2018]. Disponible en: <a href="http://apps.who.int/medicinedocs/documents/s21201es/s21201es.pdf" target="_blank">    http://apps.who.int/medicinedocs/documents/s21201es/s21201es.pdf </a> </font><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 22. 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