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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The cellular immunophenotyping was carried out in 30 patients with the diagnosis of acute lympho- and myeloproliferative syndromes by the alkaline phosphatase-alkaline antiphosphatase immunoenzimatic method (APAA) introduced in our laboratory. The CD3, CD5, CD7, CD10; CDl3, CDl5, CD22, CD33 and CD41 markers were studied by using the corresponding monoclonal antibodies, according to each case. Of the acute leukemias, 16 were lymphoid leukemias (ALL) (53.3 %) and 12 were myeloid leukemias (AML) (40 %). Among the ALL, 50 % were phenotype B and of the rest, 1 case was type T (ALL-T) (3.33 %). A patient was diagnosed acute hybrid leukemia (AHL) (3.33 %) and the other was classified as acute undifferentiated leukemia (AUL) (3.33 %). It is concluded that the APAA is faster and as efficient as other enzimatic methods for the immunologic classification of the lympho- and myeloproliferative syndromes]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>Técnicas Instituto de Hematología e Inmunología </p><h2>Introducción del método  inmunocitoquímico de la fosfatasa alcalina-antifosfatasa alcalina para la clasificación  inmunológica de los Síndromes Linfo y Mieloproliferativos Agudos </h2>    <p><i><a name="autor"></a><a href="#cargo">Lic.  Berta B. Socarrás Ferrer, Dra. Vianed Marsán Suárez, Dra. Miriam Sánchez Segura  y Dra. Consuelo Macías Abraham </a></i></p><h4>RESUMEN</h4>    <p>Se realizó el inmunofenotipaje  celular en 30 pacientes con el diagnóstico de síndromes linfo y mieloproliferativos  agudos por el método inmunoenzimático fosfatasa alcalina-antifosfatasa alcalina  (APAAp) introducido en nuestro laboratorio. Los marcadores estudiados fueron:  CD3, CD5, CD7, CD10, CD13, CD15, CD22, CD33, CD34 y CD41 mediante los anticuerpos  monoclonales correspondientes, según cada caso. De las leucemias agudas, 16 resultaron  ser leucemias linfoides (LLA) (53,3 %) y 12 mieloides (LMA) (40 %). Entre las  LLA, el 50 % fue del fenotipo B y del resto, 1 caso del tipo T (LLA-T) (3,33 %).  Un paciente se diagnosticó como leucemia aguda híbrida (LAH) (3,33 %) y el otro  se clasificó como leucemia aguda indiferenciada (LAI) (3,33 %). Se concluye que  el APAAP es un método más rápido y tan eficaz como otros métodos enzimáticos para  la clasificación inmunológica de los síndromes linfo y mieloproliferativos. </p>    <p>DeCS:  TRASTORNOS LINFOPROLIFERATIVOS; TRASTORNOS MIELOPROLIFERATIVOS; TÉCNICAS PARA  INMUNOENZIMAS/métodos; LEUCEMIA. </p>    <p>El avance más importante en la identificación  de poblaciones y subpoblaciones de linfocitos ha sido la aplicación de anticuerpos  monoclonales (AcMo) específicos para el reconocimiento de antígenos expresados  en la superficie celular, los cuales corresponden a determinados estadios de diferenciación  o fase de activación de estas células.<span class="superscript">1,2 </span></p>    <p>El  diagnóstico de certeza, pronóstico y tratamiento de las hemopatías malignas depende  de la correcta clasificación inmunológica, que se realiza precisamente mediante  la identificación de diferentes conjuntos de diferenciación (CD, de cluster of  differentiation) y los estudios citogenético, morfológico, citoquímico y recientemente  el estudio molecular.<span class="superscript">3-5 </span></p>    <p>Existen numerosos  métodos para la identificación y la cuantificación de las células que participan  en la respuesta inmune, entre estos podemos mencionar los métodos inmunocitoquímicos,  por ejemplo, el ultramicrométodo inmunocitoquímico (UMICIQ), que emplea anticuerpos  conjugados con peroxidasa<span class="superscript">6</span> y el método inmunoenzimático  de la fosfatasa alcalina-antifosfatasa alcalina (APAAP), que emplea anticuerpos  conjugados a esta enzima<span class="superscript">7</span> y son utilizados en  nuestro laboratorio. </p>    <p>Con este método se realizó la clasificación inmunológica  de 30 pacientes con síndromes linfo y mieloproliferativos agudos, lo cual contribuye  a mejorar el diagnóstico, pronóstico y tratamiento de estos pacientes con hemopatías  malignas. </p><h4>M&Eacute;TODOS</h4>    <p>Se estudiaron 30 pacientes con hemopatías  malignas, 13 del sexo femenino y 17 del masculino, con un rango de edad de 2-69  años, diagnosticados y atendidos en el Instituto de Hematología e Inmunología.  Para la aplicación del método APAAP se realizaron extendidos de sangre provenientes  de punción digital y de médula ósea en láminas portaobjetos de cristal. El área  del frotis a estudiar se delimitó con lápiz con punta de diamante y se preparó  un microtubo para cada AcMo en la dilución 1:20. Se estudiaron los siguientes  antígenos celulares: CD3, CD5, CD7, CD10, CD15, CD22, CD33, CD34 y CD41 (tabla)  mediante los AcMo específicos, según el caso. Se fijaron las láminas en acetona  pura durante 10 min a temperatura ambiente (TA), después se lavaron en una solución  amortiguadora de tris hidroximetilamino metano 0,5 M, pH 7,6. Las láminas lavadas  se colocaron en una cámara húmeda y se le añadieron 50 mL del AcMo (para cada  monoclonal se utilizó una lámina) y se incubaron durante 30 min a TA. Nuevamente  se lavaron con la solución amortiguadora durante 2 min. Una vez concluido el lavado,  se distribuyó sobre cada lámina la fracción purificada de inmunoglobulina del  antisuero de conejo-anti-ratón (Linking) y se incubaron durante 30 min a TA. Posteriormente  se lavaron con el mismo amortiguador y se les añadió el complejo APAAP, que consiste  en complejos solubles de fosfatasa alcalina del intestino de ternero y un AcMo  de ratón anti fosfatasa alcalina. </p>    <p align="center">Tabla. Panel de anticuerpos  monoclonales (AcMo) para el inmunofenotipaje celular </p><table width="75%" border="1" align="center">  <tr> <td width="20%">CD </td><td width="17%">&nbsp;</td><td width="63%">&nbsp;</td></tr> <tr>  <td width="20%">dirigidos contra</td><td width="17%">AcMo </td><td width="63%">Fuente  </td></tr> <tr> <td width="20%">células B</td><td width="17%">&nbsp;</td><td width="63%">&nbsp;</td></tr>  <tr> <td width="20%">CD10</td><td width="17%">OKB-CALLA</td><td width="63%">Institute  of Cancer Research, Londres, Inglaterra </td></tr> <tr> <td width="20%">CD19</td><td width="17%">anti-CD19  </td><td width="63%">Institute of Cancer Research, Londres, Inglaterra</td></tr>  <tr> <td width="20%">CD22 </td><td width="17%">Leu 14 </td><td width="63%">Hospital  Clínico de Barcelona, Barcelona, España</td></tr> <tr> <td width="20%">Dirigidos  contra</td><td width="17%">&nbsp;</td><td width="63%">&nbsp;</td></tr> <tr> <td width="20%">células  T</td><td width="17%">&nbsp;</td><td width="63%">&nbsp;</td></tr> <tr> <td width="20%">CD3</td><td width="17%">OKT3</td><td width="63%">Hospital  Clínico de Barcelona, Barcelona, España</td></tr> <tr> <td width="20%">CD5 </td><td width="17%">Cris-1  </td><td width="63%">Hospital Clínico de Barcelona,Barcelona, España </td></tr>  <tr> <td width="20%">CD7 </td><td width="17%">Leu9 </td><td width="63%">Institute  of Cancer Research, Londres, Inglaterra </td></tr> <tr> <td width="20%">Dirigidos  contra células mieloides</td><td width="17%">&nbsp;</td><td width="63%">&nbsp;</td></tr> <tr>  <td width="20%">CD13 </td><td width="17%">My7</td><td width="63%">Hospital Clínico  de Barcelona, Barcelona, España</td></tr> <tr> <td width="20%">CD33</td><td width="17%">My9  </td><td width="63%">Institute of Cancer Research, Londres, Inglaterra</td></tr>  <tr> <td width="20%">CD15 </td><td width="17%">Leu21 </td><td width="63%">Filatov  Institute of Immunology, Rusia </td></tr> <tr> <td width="20%">CD41</td><td width="17%">943D</td><td width="63%">Hospital  Clínico de Barcelona, Barcelona, España </td></tr> <tr> <td width="20%">Otros  </td><td width="17%">&nbsp;</td><td width="63%">&nbsp;</td></tr> <tr> <td width="20%">CD34  </td><td width="17%">K3 </td><td width="63%">Greiner Laboratory, Alemania</td></tr>  </table>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hih/v17n1/f0110101.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v17n1/f0110101.jpg" width="204" height="165" border="0"></a>  </p>    
<p align="center">Figura. Distribución de la frecuencia relativa de los pacientes  con leucemias agudas estudiadas por el método APAAP. </p>    <p>En el momento de utilizar  se preparó la solución de coloración reveladora APAAP: 20 mL de NAFTOL-AX-MX fosfato;  5 mL de levamisol y una punta de rojo violeta, que se añadió e incubó durante  25 min en la oscuridad. Posteriormente se lavaron las láminas con el amortiguador  y luego en agua corriente. Después de concluidos los lavados, se realizó una contracoloración,  para lo cual se distribuyó sobre cada lámina un volumen de aproximadamente 200  mL de hematoxilina de Gill y pasados 8 min, se enjuagaron con agua corriente y  se montaron con glicerol.</p>    <p> Se realizó la lectura en microscopio óptico DIALUX  20 EB (Leitz, RFA). Se contaron al menos 200 células en cada lámina. </p><h4>RESULTADOS</h4>    <p>Se  realizó la introducción del método APAAP para el inmunofenotipaje celular de síndromes  linfo y mieloproliferativos agudos. </p>    <p>De las leucemias agudas estudiadas,  16 resultaron leucemias linfoides (LLA) (53,33 %) y 12 leucemias mieloides (LMA)  (40 %). Entre las LLA, el 50 % presentaron el fenotipo B. En el resto, en 1 paciente  (3,33 %) los blastos expresaron antígenos de células T (LLA-T). Un caso fue diagnosticado  como leucemia aguda híbrida (LAH) (3,33 %) con expresión de antígenos linfoides  T y mieloides y 1 paciente se clasificó como leucemia aguda indiferenciada (LAI)  (3,33 %) (figura). </p><h4>DISCUSI&Oacute;N</h4>    <p>Las preparaciones y extendidos  celulares se pueden tipificar con fines diagnósticos por métodos inmunocitoquímicos,  con la participación de enzimas fundamentalmente fosfatasa alcalina<span class="superscript">7,8</span>  y peroxidasa<span class="superscript">6,9-11</span>, y con el empleo de AcMo que  reconocen a los antígenos celulares. Estos métodos se aplican con éxito en la  caracterización inmunológica de las células malignas en pacientes con leucemias  y otras enfermedades hematológicas. Estas técnicas presentan ventajas sobre otros  métodos diagnósticos (inmunofluorescencia indirecta) porque permiten visualizar  las células marcadas a través del microscopio óptico, la observación simul-tánea  de la morfología celular y la reacción inmunológica antígeno-anticuerpo, además  de que brindan la posibilidad de conservar a 4 °C las preparaciones coloreadas  por largos períodos, sin que se pierdan las características de las células marcadas.  El método APAAP permite también el inmunofenotipaje con las siguientes características  técnicas: se realiza en extendidos de sangre periférica o medular, por lo que  no es necesario el uso del Ficoll para el aislamiento de las células mononucleares;  es un método rápido, pues los resultados se obtienen a las 4 horas de extraídas  las muestras; y por último, en el método APAAP se pueden conservar las láminas  sin procesar en congelación a -20 °C durante largos períodos, lo que permite estudios  restrospectivos, aunque se necesita una lámina para cada AcMo. </p>    <p>En el caso  de los métodos como el UMICIQ, se utilizan células no deshidratadas adheridas  por atracción electrostática a la superficie de láminas portaobjeto recubiertas  con poli-L-lisina, por lo que se requiere del aislamiento de las células mononucleares  con la aplicación de un gradiente de Ficoll, lo que provoca un mayor tiempo de  ejecución y costo del sistema de diagnóstico, las muestras no se pueden conservar  sin procesar y se realizan 21 determinaciones en una misma lámina con el uso de  pequeños volúmenes (ultramicrométodo) de reactivos, pues el interés está dirigido  a realizar tanto estudios de marcadores en la superficie celular como intranucleares  e intracitoplasmáticos. </p>    <p>Por los resultados alcanzados, podemos concluir  que el método APAAP es un procedimiento rápido y eficaz, es aplicable con confiabilidad  para la clasificación inmunológica de los síndromes linfo y mieloproliferativos  en nuestro laboratorio y se puede utilizar en la evaluación de poblaciones y subpoblaciones  celulares en otras investigaciones biomédicas y otros centros del Sistema Nacional  de Salud, por lo que recomendamos su generalización a través de la fabricación  nacional de un juego diagnóstico con características similares al OPTI-CIM que  comercializa CIMAB SA, pero basado en el procedimiento descrito en este trabajo.  </p><h4>SUMMARY</h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>The cellular immunophenotyping was carried out in 30 patients  with the diagnosis of acute lympho- and myeloproliferative syndromes by the alkaline  phosphatase-alkaline antiphosphatase immunoenzimatic method (APAA) introduced  in our laboratory. The CD3, CD5, CD7, CD10; CDl3, CDl5, CD22, CD33 and CD41 markers  were studied by using the corresponding monoclonal antibodies, according to each  case. Of the acute leukemias, 16 were lymphoid leukemias (ALL) (53.3 %) and 12  were myeloid leukemias (AML) (40 %). Among the ALL, 50 % were phenotype B and  of the rest, 1 case was type T (ALL-T) (3.33 %). A patient was diagnosed acute  hybrid leukemia (AHL) (3.33 %) and the other was classified as acute undifferentiated  leukemia (AUL) (3.33 %). It is concluded that the APAA is faster and as efficient  as other enzimatic methods for the immunologic classification of the lympho- and  myeloproliferative syndromes.</p>    <p> Subject headings: LYMPHOPROLIFERATIVE DISORDERS;  DISORDERS; IMMUNOENZYME TECHNIQUES/methods; LEUKEMIA. </p><h4> REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</h4>    <!-- ref --><P>1.  Sánchez-Madrid F. Linfocitos T: diferenciación. Subpoblaciones. Activación. En:  Laraga V, Fresno M. Enjuanes. Inmunología. La Habana: Editorial Científico-Técnica,  1987:129-30. (Edición Revolucionaria). <!-- ref --><P> 2. Boffil M, Janossy G, Lee CA.  Laboratory control values for CD4 and CD8. Lymphocytes. Implications for HIV-1  diagnosis. Clin Exp Immunol 1992;88:243-52. <!-- ref --><P> 3. Schlossman SF. CD Antigens  1993. Immunol Today 1994;5:98-9. <!-- ref --><P> 4. Dewal GM. Chromosome abnormalities  in malignant hematologic disorders. Mayo Clin Proc 1985;60:675.<!-- ref --><P> 5. Martínez  G. The molecular heterogeneity of chronic Lymphocytic leukemia. Futher data. Hematología  1988;73:169-72. <!-- ref --><P> 6. Rivero RA, Bello M, Suárez LE, Cruz C, Martínez M,  Palma L. Introducción de un ultramicrométodo inmunocitoquímico para la cuantificación  de subpoblaciones linfocitarias identificadas con anticuerpos monoclonales. Rev  Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1995;11(1):46-56. <!-- ref --><P> 7. Cordell F, Fallin  B, Erber WN. Immunoenzymatic labelling of monoclonal antibodies using immune complexes  of alkaline phosphatase and monoclonal anti-alkaline phosphatasa. J Histochem  Cytochem 1984;32:219-29.<!-- ref --><P> 8. Houmand A, Abrahamsen B, Tinggaard D, Pedensen  N. Relevance of ki-67 expression in the classification of non-Hodgkin’s Lymphomas.  A morphometric and double-immunostaining study. Histopatology 1992;20:13-20. <!-- ref --><P>  9. Kranz BR, Thierfelder S. Improve detection of terminal transferase (TdT): the  use of detergents on glutaraldehyde-fixed-non-dehydrated cells prevents denaturation  and diffusion artifacts. Leuk Res 1986;10:1041-9. <!-- ref --><P> 10. Cruz C, Rivero R,  Suárez L. Detección mejorada del antígeno CD2 por un ultramicrométodo inmunocitoquímico  en células T no deshidratadas unidas a láminas recubiertas con poli-L-Lisina y  fijadas con vapores de formaldehído. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1995;11(1):71-2.  <!-- ref --><P> 11. Cruz C, Pérez L, Rivero R, González C, Pérez J. Ultramicrométodo inmunocitoquímico  (UMICIQ): su aplicación para cuantificar linfocitos T CD4+ en portadores del VIH  y en pacientes con SIDA. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1996;12(1):41-6. <p>Recibido:  22 de noviembre de 1999. Aprobado: 27 de noviembre de 1999.    <br> <a name="cargo"></a><a href="#autor">Lic.  Berta B. Socarrás Ferrer. Instituto de Hematología e Inmunología. Apartado 8070,  CP 10800, Ciudad de La Habana, Cuba. Teléf.: (537)578268. Fax: (537)338979.</a>  <a href="mailtoe-mail:%20ihidir@hemato.sld.cu%20">e-mail: ihidir@hemato.sld.cu  </a></p>      ]]></body><back>
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