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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A comparative study was conducted on the immunoenzymatic method based on the alkaline phosphatase - anti-alkaline phosphatase complex and the immunocytochemical ultramicromethod used for detecting antigen markers and for the quantification of T-lymphocyte subsets Cell antigens CD3, CD4 and CD8 from 30 apparently healthy adults were studied. When comparing the outcome of both techniques, statistically significant differences were found, (p< 0,05). It was concluded that although the diagnostic efficiency of both methods are similar, the alkaline phosphatase - anti-alkaline phosphatase method is quicker, more economical and less laborious than the immunocytochemical ultramicromethod, so it is recommended as a procedure of choice for these cell studies]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <h3>Técnicas </h3>    <p>Instituto de Hematología e Inmunología </p><h2>Comparación  del ultramicrométodo inmunocitoquímico (UMICIQ) con el de la fosfatasa alcalina-anti  fosfatasa alcalina (APAAP) para la cuantificación de subpoblaciones linfocitarias  T </h2>    <p><i>Lic. Beatriz Socarrás Ferrer, Dra. Vianed Marsán Suárez, Dra. Miriam  Sánchez Segura, Lic. Anissa Gramatges Ortiz, Lic. Rinaldo Villaescusa Blanco y  Dra. Consuelo Macías Abraham</i> </p><h4>Resumen </h4>    <p>Se realizó un estudio  comparativo entre el método inmunoenzimático que emplea el complejo fofatasa alcalina-anti  fofatasa alcalina (APAAP) y el ultramicrométodo inmunocitoquímico (UMICIQ) utilizado  para la detección de marcadores antigénicos y cuantificación de subpoblaciones  de linfocitos T. Se estudiaron los antígenos celulares CD3, CD4 y CD8 en 30 individuos  adultos supuestamente sanos. Al compararse los resultados por ambas técnicas,  se encontraron diferencias estadísticamente significativas para una p < 0,05.  Se concluyó que aún cuando la eficacia diagnóstica de ambos métodos es similar,  el APAAP resultó más rápido, económico y menos laborioso que el UMICIQ, por lo  que se recomienda como el procedimiento de preferencia para estos estudios celulares.  </p>    <p><i>DeCS:</i> FOSFATASA ALCALINA; INMUNOHISTOQUIMICA/métodos; ANTIGENOS  CD3/ análisis; ANTIGENOS CD4/análisis; ANTIGENOS CD8/análisis; SUBGRUPOS DE LINFOCITOS  T/química; SUBGRUPOS DE LINFOCITOS/inmunología; SUBGRUPOS DE LINFOCITOS/enzimología.</p>    <p>La  integridad de la respuesta inmune celular es importante en la defensa del organismo  frente a las infecciones, y dentro de estas respuestas, desempeñan un papel central  los linfocitos humanos, que se pueden clasificar en dependencia de determinados  marcadores presentes en su superficie celular.<span class="superscript">1-6</span>  </p>    <p>Tanto el diagnóstico de las hemopatías malignas como la determinación de  subpoblaciones linfocitarias en pacientes con otras enfermedades, se puede realizar  por inmunofluorescencia directa e indirecta<span class="superscript">7,8</span>  y por métodos inmunocitoquímicos que utilizan anticuerpos conjugados con enzimas  como la peroxidasa y la fofatasa alcalina. En este trabajo se realizó una comparación  entre el ultramicrométodo inmunocitoquímico (UMICIQ) previamente introducido en  nuestro laboratorio, y el método de la fosfatasa alcalina-antifosfatasa alcalina  (APAAP) para la cuantificación de subpoblaciones linfocitarias T en sangre periférica  humana.</p><h4> Métodos </h4>    <p>Se tomaron muestras de sangre periférica de 30  individuos supuestamente sanos, 16 hombres y 14 mujeres, que acudieron al Departamento  de Hemoterapia del Instituto de Hematología e Inmunología. El rango de edad osciló  entre 23 y 46 años. </p>    <p>El estudio se realizó tanto por el UMICIQ como por  la técnica APAAP.<span class="superscript">9-14</span> Los antígenos celulares  fueron CD3, CD4 y CD8, determinados con anticuerpos monoclonales donados gentilmente  por el Hospital Clínico de Barcelona y el Instituto de Inmunología Filatov de  Rusia. </p><h4>Umiciq </h4>    <p>Se extrajeron muestras de sangre periférica heparinizada  y se realizó el aislamiento de la células mononucleares según el método de Boyüm  modificado.<span class="superscript">15</span> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La concentración celular  se ajustó a 4x106 células/mL y se determinó la viabilidad (más del 95 %) según  el método de exclusión con tripán azul. </p>    <p>Se emplearon las células no deshidratadas  adheridas electrostáticamente a las láminas porta objetos de cristal que contenían  21 pocillos tratados con poli-L- lisina fijados con vapores de formaldehído. </p>    <p>Para  detectar la reacción antígeno anticuerpo se emplearon anticuerpos conjugados con  peroxidasa, el peróxido de hidrógeno como sustrato y un agente cromógeno.<span class="superscript">9-12</span>  </p><h4>Apaap </h4>    <p>Se realizaron estudios de sangre proveniente de punción  digital, en lámina porta objetos de cristal. El área del frotis a estudiar se  delimitó con lápiz con punta de diamante. La láminas se fijaron con acetona pura.  Posteriormente se distribuyó sobre cada lámina una fracción purificada de inmunoglobulina  del antisuero de conejo anti-ratón (<i>Linking</i>) y luego se les añadió el complejo  APAAP, que consistía en complejos solubles de fosfatasa alcalina-anti fosfatasa  (monoclonal de ratón). Además se utilizó como sustrato el naftol-AX-MX fosfato  y un agente cromógeno.<span class="superscript">13,14</span> </p>    <p>La lectura  de ambos métodos se realizó en un microscopio óptico DIALUX 20EB. Se contaron  al menos 100 células en cada lámina. </p>    <p>Se determinó la media aritmética y  la desviación estándar para los diferentes grupos estudiados. Para la comparación  se empleó la t de Student para muestras pareadas, para una p <font face="Symbol">£</font>  0,05.<span class="superscript">16</span> </p><h4>Resultados </h4>    <p>No se encontraron  diferencias estadísticamente significativas entre ambos métodos para ninguno de  los marcadores antigénicos estudiados (tabla).</p>    <p align="center">Tabla. <i>Resultados  obtenidos en la comparación del método inmunoenzimático de la fosfatasa alcalina-anti  fosfatasa alcalina (APAAP) con el ultramicrométodo inmunocitoquímico (UMICIQ).</i></p><table width="75%" border="1" align="center">  <tr> <td>Variables (%)</td><td>     <div align="center">UMICIQ n= 30    <br> <a href="X018102.gif"><img src="X018102.gif" width="15" height="14" border="0"></a>  ± DE</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">APAAP n = 30    <br> <a href="X018102.gif"><img src="X018102.gif" width="15" height="14" border="0"></a>  ± DE</div></td><td>     <div align="center">P </div></td></tr> <tr> <td>CD3</td><td>      <div align="center">61,60 ± 5,36</div></td><td>     <div align="center">61,53 ± 4,58</div></td><td>      <div align="center">NS</div></td></tr> <tr> <td>CD4</td><td>     <div align="center">44,13  ± 3,13</div></td><td>     <div align="center">42,73 ± 3,43</div></td><td>     <div align="center">NS</div></td></tr>  <tr> <td>CD8</td><td>     <div align="center">24,13 ± 6,43</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">24,13  ± 5,69</div></td><td>     <div align="center">NS</div></td></tr> </table>    <p align="center"><a href="X018102.gif"><img src="X018102.gif" width="14" height="20" border="0"></a>:  media aritmética; DE: desviación estándar; NS: no significativo, p <font face="Symbol">£</font>  0,05; UMICIQ: ultramicrométodo inmunocitoquímico; APAAP: método fosfatasa alcalina-anti  fosfatasa alcalina. </p>    <p>El tiempo de procesamiento de las muestras por el método  APAAP fue de 4 h, mientras que por el UMICIQ fue de 72 h.</p><h4> Discusión </h4>    <p>Los  métodos inmunocitoquímicos (APAAP y UMICIQ) se aplican con éxito en el estudio  de las inmunodeficiencias y en la caracterización inmunológica de las células  malignas en pacientes con leucemias, linfomas y otras enfermedades hematológicas.<span class="superscript">2,3,6,12,15</span>  Estos métodos presentan algunas ventajas sobre los de inmunofluorescencia, como  la posibilidad de visualizar las células con un microscopio óptico y además observar  simultáneamente tanto la morfología celular como la reacción inmunológica de sus  antígenos con los anticuerpos específicos. </p>    <p>La técnica APAAP permite el  inmunofenotipaje celular con las siguientes ventajas: se realiza de extendidos  de sangre periférica o medular, por lo que no es necesario el aislamiento de las  células mononucleares y el uso del Ficoll, mientras que en el UMICIQ las células  mononucleares se obtienen a partir de un gradiente de Ficoll y se adhieren por  atracción electrostática de cargas, a láminas portaobjetos recubiertos con poli-L-lisina,  y esto provoca un mayor tiempo de ejecución y costo del sistema de diagnóstico.  </p>    <p>El APAAP es más rápido, pues los resultados se obtienen a las 4 h de extraídas  las muestras, y el UMICIQ es un método más largo y laborioso. Por último, en el  método APAAP se pueden conservar las láminas sin procesar, durante largos períodos  de tiempo, lo que permite estudios retrospectivos; esto no es posible con el UMICIQ.  Tiene la desventaja de que necesita una lámina para cada anticuerpo monoclonal,  mientras que con el UMICIQ se pueden realizar 21 determinaciones en cada lámina  portaobjeto. </p>    <p>Por los resultados alcanzados, podemos concluir que el método  APAAP es un procedimiento más rápido, menos laborioso y tan eficaz como el UMICIQ,  aplicable con confiabilidad para la clasificación inmunológica de los síndromes  linfo y mieloproliferativos, en la evaluación de poblaciones y subpoblaciones  celulares en nuestro laboratorio, por lo que pudiera hacerse extensivo a otros  centros del país. </p><h4> Summary </h4>    <p>A comparative study was conducted on  the immunoenzymatic method based on the alkaline phosphatase – anti-alkaline phosphatase  complex and the immunocytochemical ultramicromethod used for detecting antigen  markers and for the quantification of T-lymphocyte subsets Cell antigens CD3,  CD4 and CD8 from 30 apparently healthy adults were studied. When comparing the  outcome of both techniques, statistically significant differences were found,  (p< 0,05). It was concluded that although the diagnostic efficiency of both methods  are similar, the alkaline phosphatase – anti-alkaline phosphatase method is quicker,  more economical and less laborious than the immunocytochemical ultramicromethod,  so it is recommended as a procedure of choice for these cell studies. </p>    <p><i>Subject  headings:</i> ALKALINE PHOSPHATASE; IMMUNOHISTO-CHEMISTRY/methods; ANTIGENS, CD4/analysis;  ANTIGENS, CD3/analysis; ANTIGENS, CD8/analysis; T-LYMPHOCYTE SUBSETS/chemistry;  T-LYMPHOCYTE SUBSETS/immunology; T-LYMPHOCYTE SUBSETS/enzyme. </p><h4>Referencias  bibliográficas </h4><ol>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><li> Sánchez- Madrid F. Linfocitos T: diferenciación,  subpoblaciones, activación. En: Larraga V, Fresno M, Enjuanes L. (eds). Inmunología.  La Habana: Editorial Científico-Técnica, 1987:129-30 (Edición Revolucionaria).  </li>    <!-- ref --><li> Boffill M, Janossy G, Lee CA. Laboratory control values for CD4 and  CD8 T lymphocytes. Implications for HIV-1 diagnosis. Clin Exp Immunol 1992;88:242-52.  </li>    <!-- ref --><li> Rivero RA, Aranda RE, Cruz C, Lorigados LC, Hernández P. Subpoblaciones  de linfocitos en la anemia drepanocítica. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1986;2(1):90-92.  </li>    <!-- ref --><li> Knapp W, Dorken B, Rieber P, Schidt RE, Stein H, von Borne AEG.CD Antigens-1989.  Am J Pathol 1989;135:420-1. </li>    <!-- ref --><li> Schlossman SF. CD Antigens 1993. Immunol  Today 1994;5:98-9. </li>    <!-- ref --><li> Fournier AM, Sosenko JM. The relationship of total  lymphocyte count to CD4 in patients infected with human immunodeficiency virus.  Am J Med Sc 1992;304:79-82. </li>    <!-- ref --><li> Lorigados LC, Aranda RE, Rivero RA, Palma  LE. Estandarización de la técnica de la inmunofluorescencia indirecta para el  estudio de las subpoblaciones linfocitarias con anticuerpos monoclonales. Rev  Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1985;1(2);185-92. </li>    <!-- ref --><li> Landay A, Gartland  GL, Abo T, Cooper MO. Enumeration of human lymphocyte subpopulations by immunofluorescence:  a comparative study using automated flow microfluorometry and fluorescence microscopy.  J Immunol Methods. 1983;58:337-47. </li>    <!-- ref --><li> Rivero R , Bello M, Suárez L, Cruz  C, Martínez M, Palma L. Introducción de un ultramicrométodo inmunocitoquímico  para la cuantificación de subpoblaciones linfocitarias identificadas con anticuerpos  monoclonales. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1995;11(1):46-56. </li>    <!-- ref --><li> Cruz  C, Rivero R, Suárez L. Detección mejorada del antígeno CD2 por un ultramicrométodo  inmunocitoquímico en células T no-deshidratadas unidas a láminas recubiertas con  poli-L-lisina y fijadas con vapores de formaldehído. Rev Cubana Hematol Inmunol  Hemoter 1995;11(1):71-72. </li>    <!-- ref --><li> Cruz C, Pérez L, Rivero R, González C, Pérez  J. Ultramicrométodo inmunocitoquímico (UMICIQ): su aplicación para cuantificar  linfocitos T CD4 + en portadores del VIH y en pacientes con SIDA. Rev Cubana Hematol  Inmunol Hemoter 1996;12(1):41-46. </li>    <!-- ref --><li> Suárez L, Cruz C, Rivero R. Ultramicrométodo  inmunocitoquímico. Titulación de anticuerpos utilizados para el inmunofenotipaje  celular. Rev Cubana hematol Inmunol Hemoter 1995; 11 (1):57-62. </li>    <!-- ref --><li> Cordell  F, Falini B, Erber WN. Immunoenzymatic labelling of monoclonal antibodies using  immune complex of alkaline phosphatase and monoclonal anti-alkaline phosphatase.  J Histochem 1984;32:219-29. </li>    <!-- ref --><li> Houmand A, Abrahamsen B, Tinggaard Perdensen  N. Revelance of Ki-67 expressión in the classification of non-Hodking´s lymphomas:  A morphometric and double-immunostaining study. Histopathology 1992;20:13-20.  </li>    <!-- ref --><li> Boyüm A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human  blood. Scand J Clin Lab Invest 1968;21 (suppl 97):77-89. </li>    <!-- ref --><li> Freund JE.  Estadística elemental moderna. 2da. ed. Londres: Universidad de Cambridge, 1960:85-89.  </li>    </ol>    <p>Recibido: 14 de noviembre del 2001. Aprobado: 24 de noviembre del  2001.     <br> Lic: <i>Beatriz B. Socarrás Ferrer</i>. Instituto de Hematología e  Inmunología. Apartado 8070, CP 10800, Ciudad de La Habana, Cuba. e-mail:<a href="mailto:ihidir@hemato.sld.cu">ihidir@hemato.sld.cu</a>  </p>      ]]></body><back>
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