<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0864-0289</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Hematología, Inmunología y Hemoterapia]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter]]></abbrev-journal-title>
<issn>0864-0289</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Centro Nacional de Información de Ciencias MédicasEditorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0864-02892004000200003</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación evolutiva de la función fagocítica de los polimorfonucleares]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evolutionary evaluation of phagocytic function of polymorphonuclear neutrophils]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Torres Leyva]]></surname>
<given-names><![CDATA[Isabel]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[del Valle Pérez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Lázaro]]></given-names>
</name>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Marsán Suárez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Vianed]]></given-names>
</name>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Socarrás Ferrer]]></surname>
<given-names><![CDATA[Bertha Beatriz]]></given-names>
</name>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Macías Abraham<a name=cargo></a>]]></surname>
<given-names><![CDATA[Consuelo]]></given-names>
</name>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Instituto de Hematología e Inmunología  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Ciudad de La Habana ]]></addr-line>
<country>Cuba</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>08</month>
<year>2004</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>08</month>
<year>2004</year>
</pub-date>
<volume>20</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>0</fpage>
<lpage>0</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0864-02892004000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0864-02892004000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0864-02892004000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El neutrófilo es el responsable primario de mantener las defensas normales del hospedero contra los microorganismos invasores. Con el objetivo de estudiar la función fagocítica de los neutrófilos en el día de su obtención y 24 horas después se aislaron de la sangre periférica de 30 donantes procedentes del Departamento de Medicina Transfusional sobre un gradiente de Ficoll-Telebrix 38 (d=1,077g/cm3). Se determinó la viabilidad celular con la técnica de exclusión del azul tripán que en ambos días fue superior al 95 %. El estudio del índice opsonofagocítico se realizó con la técnica normalizada en el Instituto de Hematología e Inmunología. Se determinó la fagocitosis para los tiempos t15 y t60. No se observaron diferencias estadísticamente significativas en la viabilidad celular ni entre la función fagocítica al aplicar una t de Student para muestras pareadas entre los neutrófilos el día de su aislamiento y 24 horas después. Se concluye que se puede realizar la función fagocítica incluso 24 horas después de aislados los neutrófilos y guardados en condiciones especiales (RPMI 1640 al 10 % de suero fetal bovino y D glucosa 2mg/mL), lo cual permite estudiar el efecto in vitro de diferentes sustancias como extractos de plantas, de animales, e incluso de productos sintéticos sobre los neutrófilos]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The neutrophil is the primary responsible for keeping normal defense levels of the host against invasive microorganisms. With the objective of studying the phagocytic function of neutrophils at the same day of their obtaining and 24 hours later, they were isolated from the peripheral blood of 30 donors from the transfusional medicine department using a Ficox-Telebrix 38 (d=1,077 g/cm3 . Cell viability was determined with tripan blue exclusion technique, which was over 95 % in both days. The standardized technique of the Institute of Hematology and Immunology allowed studying opsophagocytic index. Phagocytosis was detected for times T15 and T60. When applying Student t test to paired samples, no statistically significant difference was observed either in cell viability or in the phagocytic function between neutrophils at the day of isolation and 24 hours after. It was concluded that phagocytic function is present even 24 hours after the neutrophils being isolated and preserved under special conditions (RPMI 1640 10 % fetal bovine serum plus D glucose 2mg/ml). This allows studying in vitro effect of different substances such as plant extracts, animal extracts and even synthetic products on neutrophils]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[granulocito]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[neutrófilo]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[función fagocítica]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[índice opsonofagocítico]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[granulocyte]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[neutrophil]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[phagocytic function]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[opsonophagocytic index]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <h3>Art&iacute;culos originales</h3>    <p>Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a  </p><h2></h2><h2></h2><h2></h2><h2>Evaluaci&oacute;n evolutiva de la funci&oacute;n  fagoc&iacute;tica de los polimorfonucleares</h2>    <p><i><a href="#autor">Lic. Isabel  Torres Leyva, Lic. L&aacute;zaro del Valle P&eacute;rez, Dr. Vianed Mars&aacute;n  Su&aacute;rez, Lic. Bertha Beatriz Socarr&aacute;s Ferrer y Dra. Consuelo Mac&iacute;as  Abraham</a><a name="cargo"></a></i></p><h4></h4><h4>    <br> Resumen</h4>    <p>El neutr&oacute;filo  es el responsable primario de mantener las defensas normales del hospedero contra  los microorganismos invasores. Con el objetivo de estudiar la funci&oacute;n fagoc&iacute;tica  de los neutr&oacute;filos en el d&iacute;a de su obtenci&oacute;n y 24 horas despu&eacute;s  se aislaron de la sangre perif&eacute;rica de 30 donantes procedentes del Departamento  de Medicina Transfusional sobre un gradiente de Ficoll-Telebrix 38 (d=1,077g/cm<span class="superscript">3</span>).  Se determin&oacute; la viabilidad celular con la t&eacute;cnica de exclusi&oacute;n  del azul trip&aacute;n que en ambos d&iacute;as fue superior al 95 %. El estudio  del &iacute;ndice opsonofagoc&iacute;tico se realiz&oacute; con la t&eacute;cnica  normalizada en el Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a. Se determin&oacute;  la fagocitosis para los tiempos t<span class="subscript">15</span> y t<span class="subscript">60</span>.  No se observaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en la viabilidad  celular ni entre la funci&oacute;n fagoc&iacute;tica al aplicar una t de Student  para muestras pareadas entre los neutr&oacute;filos el d&iacute;a de su aislamiento  y 24 horas despu&eacute;s. Se concluye que se puede realizar la funci&oacute;n  fagoc&iacute;tica incluso 24 horas despu&eacute;s de aislados los neutr&oacute;filos  y guardados en condiciones especiales (RPMI 1640 al 10 % de suero fetal bovino  y D glucosa 2mg/mL), lo cual permite estudiar el efecto <i>in vitro</i> de diferentes  sustancias como extractos de plantas, de animales, e incluso de productos sint&eacute;ticos  sobre los neutr&oacute;filos. </p>    <p><em>Palabras clave</em>: granulocito, neutr&oacute;filo,  funci&oacute;n fagoc&iacute;tica, &iacute;ndice opsonofagoc&iacute;tico.    <br> </p>    <p>  Una caracter&iacute;stica com&uacute;n de la mayor parte de las formas de inflamaci&oacute;n  aguda inducidas por procesos inmunol&oacute;gicos es la acumulaci&oacute;n de  granulocitos polimorfonucleares neutr&oacute;filos (GN) en el sitio de la reacci&oacute;n  donde intervienen activamente. Se ha establecido que la inflamaci&oacute;n aguda  en casi todos los organismos pluricelulares se produce como consecuencia de una  serie de procesos como la adherencia al endotelio, emigraci&oacute;n extravascular,  migraci&oacute;n dirigida hacia las part&iacute;culas que van a ser ingeridas  (quimiotaxis), reconocimiento y adherencia de las part&iacute;culas por las membranas,  englobamiento de los cuerpos extra&ntilde;os (fagocitosis), fusi&oacute;n de lisosomas  con las vacuolas fagoc&iacute;ticas (desgranulaci&oacute;n) con descarga de constituyentes  lisos&oacute;micos en la vacuola y un estallido del metabolismo oxidativo (con  generaci&oacute;n de radicales libres derivados del ox&iacute;geno) del per&oacute;xido  de hidr&oacute;geno, donde las c&eacute;lulas fagoc&iacute;ticas intentan defender  al hospedero de los invasores extra&ntilde;os. El GN es el responsable primario  del mantenimiento de las defensas normales del hospedero contra los microorganismos  invasores.<span class="superscript">1</span>    <br>     <br> La prueba de funci&oacute;n  fagoc&iacute;tica (FF) requiere conteos de la ingesti&oacute;n de las part&iacute;culas  o microorganismos a tiempo 0, 15, 60 minutos por los GN, lo que limita el n&uacute;mero  de estudios a realizar en el d&iacute;a.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Con el objetivo de comparar  la FF de los GN el d&iacute;a de su obtenci&oacute;n y a las 24 horas, se realiza  este estudio, que permitir&iacute;a ampliar la muestra a estudiar y determinar  el efecto de diferentes sustancias sobre la FF. </p><h4>M&eacute;todos</h4>    <p>Se  extrajeron 20 mL de sangre heparinizada (15 UI/mL) de 30 donantes procedentes  del Departamento de Medicina Transfusional del Instituto de Hematolog&iacute;a  e Inmunolog&iacute;a (IHI) que no hab&iacute;an recibido tratamiento medicamentoso  en el &uacute;ltimo mes previo al estudio. </p>    <p><b>Aislamiento de los (GN)</b></p>    <p>Se  realiz&oacute; mediante la t&eacute;cnica descrita por <i>Weening </i>y colaboradores,  <span class="superscript">2</span> que consiste b&aacute;sicamente en colocar  la sangre diluida 1:1 en soluci&oacute;n amortiguada de fosfatos (PBS, pH 7,2)  sobre un gradiente de Ficoll-Telebrix 38 (densidad 1,077g/cm<span class="superscript">3</span>),  para obtener un concentrado de hemat&iacute;es y GN que se somete a hem&oacute;lisis  2 veces con una soluci&oacute;n isot&oacute;nica de NH<span class="subscript">4</span>  Cl (4 &deg; C).    <br> Los GN se resuspendieron en PBS (0,5 % de alb&uacute;mina)  y se ajustaron a 1x10<span class="subscript">7</span> c&eacute;lulas /mL.     <br>      <br> El porcentaje de GN fue siempre superior al 80 % y las c&eacute;lulas contaminantes  fueron linfocitos. La viabilidad de los GN se determin&oacute; por el m&eacute;todo  de exclusi&oacute;n del trip&aacute;n azul.<span class="superscript">3</span></p><b>Obtenci&oacute;n  del suero</b>     <p>Se extrajeron 5 mL de sangre por punci&oacute;n venosa, que se  dej&oacute; coagular a temperatura ambiente para su posterior centrifugaci&oacute;n  y obtenci&oacute;n del suero.</p>    <p><b>Preparaci&oacute;n de la <i>Candida albicans</i></b></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se  emple&oacute; una cepa cultivada en medio de agar Saboureaud que fue lavada 2  veces y resuspendida en PBS, se contaron en c&aacute;mara de Neubauer y se ajustaron  a 1x10<span class="superscript">7</span> candidas/mL.    <br> </p>    <p> <b>Mantenimiento  de los GN por 24 horas</b></p>    <p>La suspensi&oacute;n de GN fue mantenida en tubos  pl&aacute;sticos sin agitaci&oacute;n en RPMI 1640 suplementado al 10 % con suero  fetal bovino (Gibco RU) y 2 mg/mL de D glucosa (Sigma, EE.UU.) a 4 &deg; C durante  24 horas, determinando la viabilidad de las c&eacute;lulas.</p>    <p><b>Medici&oacute;n  de la fagocitosis</b></p>    <p>La fagocitosis fue estudiada mediante una modificaci&oacute;n  del m&eacute;todo <i>Leijhi </i>y colaboradores. <span class="superscript">4</span>  Los GN ya aislados y ajustados se enfrentaron a las <i>Candidas albicans</i> previamente  opsonizadas con el suero con una proporci&oacute;n de 0,5mL GN +0,5mL de <i>Candidas  albicans</i> +0,5mL de suero para el conteo de Candidas extracelulares no fagocitadas  en los tiempos 0', 15' y 60'. Las muestras fueron adicionadas a 0,3mL de soluci&oacute;n  Turk's y contadas en C&aacute;mara de Neubauer y al microscopio &oacute;ptico.  Los resultados se expresan en porcentaje de <i>Candidas albicans</i> extracelulares  (no fagocitadas) para cada per&iacute;odo de incubaci&oacute;n, considerando el  t' 0 como el valor equivalente al 100 % de <i>Candida albicans</i> no fagocitadas.</p>    <p><b>Bio&eacute;tica</b></p>    <p>  A los donantes se les explic&oacute; el objetivo del estudio, los posibles beneficios  derivados de los resultados y la ausencia de riesgos asociados. Se confeccion&oacute;  una planilla para el consentimiento informado de los donantes que participaron  en dicho estudio.    <br> </p>    <p><b>Tratamiento estad&iacute;stico</b></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se utiliz&oacute;  el estad&iacute;grafo t de Student para muestras pareadas con el objetivo de estudiar  posibles diferencias entre los tiempos (15' y 60') en la fagocitosis el d&iacute;a  de su obtenci&oacute;n y 24 horas despu&eacute;s, para una p<font face="Symbol">&pound;</font>0,05.</p><h4>Resultados</h4>    <p align="left">En  la figura se representa el porcentaje de la media de la fagocitosis de GN en los  tiempos 15' y 60', en el d&iacute;a de su obtenci&oacute;n y 24 horas despu&eacute;s.</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hih/v20n2/f0103204.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v20n2/f0103204.jpg" width="299" height="117" border="0"></a></p>    
<p align="center">FIG.  Porcentaje de c&eacute;lulas no fagocitadas por los neutr&oacute;filos el d&iacute;a  de su obtenci&oacute;n y 24 horas despu&eacute;s.</p>    <p align="left">No se encontraron  diferencias estad&iacute;sticamente significativas al aplicar la t de Student  para muestras pareadas entre los tiempos 0', 15', y 60', en el d&iacute;a de su  obtenci&oacute;n y 24 horas despu&eacute;s. </p><h4>Discusi&oacute;n</h4>    <p>El  estudio de la funci&oacute;n fagoc&iacute;tica es &uacute;til para evaluar a los  pacientes con inmunodeficiencias causadas por defectos en la fagocitosis, para  el monitoreo de enfermos sometidos a quimioterapia o radioterapia, entre otras.<span class="superscript">  5,6</span>    <br>     <br> La necesidad de estudiar el efecto<i> in vitro</i> de diferentes  sustancias como extractos de plantas, de animales, medicamentos y otros productos  sint&eacute;ticos sobre los GN, nos motiv&oacute; realizar un estudio comparativo  de la fagocitosis el d&iacute;a de su obtenci&oacute;n y a las 24 horas bas&aacute;ndonos  en un estudio previo.<span class="superscript"> 7</span>    <br>     <br> Los GN frescos  sin la presencia de la glucosa se pueden conservar para estudios funcionales por  per&iacute;odos de incubaci&oacute;n cortos, pero para tiempos m&aacute;s prolongados,  se hace necesario la suplementaci&oacute;n del medio RPMI 1640 con suero fetal  bovino al 10 % y D glucosa, que nunca deben exceder de 4mg/mL porque puede resultar  t&oacute;xico a los GN, aspecto comprobado en nuestros ensayos, donde se mantuvieron  viables los GN por encima del 95 % a las 24, 48 y 72 horas utilizando la prueba  de exclusi&oacute;n del azul trip&aacute;n.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Se ha sugerido en otros  trabajos que las condiciones &oacute;ptimas para conservar los GN son: pH= 7,2,  a 4 &deg;C y sin agitaci&oacute;n, aspectos que coinciden con nuestras condiciones  experimentales y nuestros resultados.<span class="superscript"> 8,9</span> Otros  investigadores han planteado que los factores que m&aacute;s afectaban a los GN  eran su conservaci&oacute;n a 24 horas, pero a 37 &deg;C. <span class="superscript">10  </span>No se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas al  comparar las medias de las muestras pareadas, tanto para la viabilidad de los  GN como para la FF.    <br>     <br> Estos resultados nos permiten realizar estudios <i>in  vitro</i> de diferentes sustancias sobre los GN al tiempo de su obtenci&oacute;n  y 24 horas despu&eacute;s, tanto sobre la viabilidad celular como en su capacidad  fagoc&iacute;tica, as&iacute; como ampliar el n&uacute;mero de casos a estudiar  tanto para la investigaci&oacute;n como en la asistencia. </p>    <p><b>Agradecimientos</b></p>    <p>A  <i>Martha Ponce Sandoval</i>, del Departamento de Inmunolog&iacute;a del Instituto  de Hematolog&iacute;a de Inmunolog&iacute;a, por su apoyo en el trabajo t&eacute;cnico.</p><h4>Summary    <br>  </h4>    <p>The neutrophil is the primary responsible for keeping normal defense levels  of the host against invasive microorganisms. With the objective of studying the  phagocytic function of neutrophils at the same day of their obtaining and 24 hours  later, they were isolated from the peripheral blood of 30 donors from the transfusional  medicine department using a Ficox-Telebrix 38 (d=1,077 g/cm3 . Cell viability  was determined with tripan blue exclusion technique, which was over 95 % in both  days. The standardized technique of the Institute of Hematology and Immunology  allowed studying opsophagocytic index. Phagocytosis was detected for times T15  and T60. When applying Student t test to paired samples, no statistically significant  difference was observed either in cell viability or in the phagocytic function  between neutrophils at the day of isolation and 24 hours after. It was concluded  that phagocytic function is present even 24 hours after the neutrophils being  isolated and preserved under special conditions (RPMI 1640 10 % fetal bovine serum  plus D glucose 2mg/ml). This allows studying in vitro effect of different substances  such as plant extracts, animal extracts and even synthetic products on neutrophils.    <br>  </p>    <p><i>Key words</i>: granulocyte, neutrophil, phagocytic function, opsonophagocytic  index.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>     <li> Goodman JW.  La respuesta inmunitaria. En: Stites DP, Terr AI, Parslow TG, eds: Inmunolog&iacute;a  B&aacute;sica y Cl&iacute;nica. 8 ed. M&eacute;xico: El Manual Moderno; 1996.  p. 28-9.    <br> </li>    <li> Weening RS, Rous D, Loos RA. Origen consumption of phagocytic  cells in human leukocyte and granulocyte preparation: a comparative study. J Lab  Clin Med 1974;83:570-6.    <br> </li>    <li> Basic Laboratory Techniques in cell culture.  US Department of Health and Human Services. Atlanta 1981.p. 45-6.    <br> </li>    <li>  Leijh PC, Van der B, Van Furth R. Kinetic of phagocytosis and intracellular killing  od Candida albicans by human granulocytes and monocytes. Infect Immunol 1977;17:316-7.    <br>  </li>    <li> Egger G, Kukovetz EM, Hayn M, Fabjan JS. Changes in the polymorphonuclear  leukocyte function of blood samples induced by storage time, temperature and agitation.  J Immunol Meth 1997;206:61-72.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </li>    <li> Mackay IR, Rosen FS. Immunodeficiency  diseases caused by defects in phagocytes. N Engl J Med 2000;343:1703-14.    <br> </li>    <li>  Glasser L. Liquid storage of granulocytes. Prog Clin Bio Res 1982; 88:31-4.    <br>  </li>    <li> Hammer MC, Baltch AL, Conroy JV, Smith RP. Effects of storage and incubation  conditions on human granulocyticic phagocytic, bactericidad and chemotactic functions.  Cryobiology 1986; 23:525-30.    <br> </li>    <li> Hodge GL, Flower R, Han P. Optimal  storage conditions for preserving granulocyte viability as monitored by Annexin  V binding in whole bood. J Immunol Meth 1999; 225:27-38.</li>    </ol>    <p>Recibido:&nbsp;30  de&nbsp;mayo del 2004. Aprobado: 12 de julio del 2004.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Lic. <i>Isabel Torres  Leyva</i>. Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a. Apartado 8070,  CP 10800, Ciudad de La Habana, Cuba. Tel (537) 578268, 578695, 544214. Fax (537)  442334. e-mail: <a href="mailto:%20ihidir@hemato.sld.cu">ihidir@hemato.sld.cu</a></p>      ]]></body>
</article>
