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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Hematología, Inmunología y Hemoterapia]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Quimerismo molecular en el trasplante alogénico de células hematopoyéticas: Resultados preliminares]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Molecular chimerism in the allogeneic transplantation of hematopoietic cells: Preliminary results]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Hematología e Inmunología  ]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Centro de Investigaciones Médico Quirúrgicas (CIMEQ)  ]]></institution>
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<kwd lng="en"><![CDATA[Chimerism]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[hematopoietic cells]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a </p> <h2 align="left">Quimerismo molecular en el trasplante alog&eacute;nico de c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas. Resultados preliminares </h2>     <p align="left"><a href="#cargo">Dra.C. Ana Mar&iacute;a Amor Vigil,<span class="superscript">1</span> Dr. Juan Carlos Jaime Fagundo,<span class="superscript">1 </span>Dra. Valia Pav&oacute;n Mor&aacute;n,<span class="superscript">1</span> Dr. Yrving E. Figueredo Peguero,<span class="superscript">2</span> Dra. Clara Luna Conde,<span class="superscript">2</span> Dr. Mario Wilford de Le&oacute;n,<span class="superscript">2</span> Dra. Elvira Dortic&oacute;s Balea<span class="superscript">1</span> y Dra.C. Gisela Mart&iacute;nez Antu&ntilde;a<span class="superscript">1</span> </a><a name="autor"></a></p> <h4>Resumen  </h4>     <p align="justify">El estudio del quimerismo en el trasplante alog&eacute;nico de c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas permite conocer si el sistema linfohematopoy&eacute;tico del donante ha sido capaz de implantarse en el organismo del receptor y si lo hace desplazando totalmente al sistema linfohematopoy&eacute;tico del receptor o en coexistencia con este. Se utiliza la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa para amplificar zonas del ADN altamente polim&oacute;rficas y se muestran los primeros resultados del estudio molecular del quimerismo en 12 pacientes con diferentes patolog&iacute;as malignas y no malignas. El estudio permiti&oacute; determinar si el trasplante fue exitoso y evaluar la evoluci&oacute;n del injerto. </p>     <p><em>Palabras clave</em>: quimerismo, trasplante alog&eacute;nico, c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas. </p>     <p align="justify">Actualmente, el trasplante de c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas tiene un importante papel en el tratamiento de las leucemias y otras enfermedades hematol&oacute;gicas como la aplasia medular (AM) y la anemia drepanoc&iacute;tica (AD). Una importante herramienta cl&iacute;nica en la evaluaci&oacute;n de los trasplantes de c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas es el estudio del quimerismo, el cual nos permite conocer si el sistema linfohematopoy&eacute;tico del donante ha sido capaz de implantarse en el organismo del receptor o paciente y si lo ha hecho desplazando al sistema linfohematopoy&eacute;tico del receptor o coexistiendo en equilibrio con este. De esta manera, mediante determinaciones secuenciales, es posible conocer la evoluci&oacute;n o comportamiento de la quimera con vistas a confirmar el fallo primario del injerto o conocer, antes que otros indicadores se manifiesten, la posibilidad de un fallo secundario del mismo. </p>     <p align="justify">La reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) como m&eacute;todo r&aacute;pido y sensible para amplificar fragmentos de ADN ha proporcionado una importante herramienta para los estudios de quimerismo.<span class="superscript">1</span> Actualmente, es de uso general en el mundo para estos fines y ha devenido en an&aacute;lisis de rutina en los centros dedicados a la terapia de trasplante de tejido linfohematopoy&eacute;tico. Para los fines del trasplante, se estudian zonas muy polim&oacute;rficas presentes en el ADN que permiten identificar el origen de las c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas presentes en el organismo del receptor en un momento dado.<span class="superscript">2 </span>A iferencia de su antecesora, la t&eacute;cnica de <em>Southern </em><em>blot</em>, la PCR requiere peque&ntilde;as cantidades de ADN, consume menos tiempo, es m&aacute;s sencilla de realizar y no utiliza enzimas de restricci&oacute;n, ni radiois&oacute;topos.<span class="superscript">3</span> Su gran sensibilidad, permite identificar peque&ntilde;as poblaciones de c&eacute;lulas del donante o del receptor y ha hecho posible realizar un estudio cin&eacute;tico del comportamiento del injerto, e incluso conocer si el injerto se ha establecido o no, antes que las evidencias morfol&oacute;gicas aparezcan.<span class="superscript">4</span> </p>     <p align="justify">En el presente trabajo se amplifican 5 fragmentos polim&oacute;rficos del ADN gen&oacute;mico conocidos como VNTR (<em>variable number of tandem repeat</em>, por sus siglas en ingl&eacute;s). El polimorfismo de estos fragmentos es una caracter&iacute;stica hereditaria, por lo que se requiere estudiar varios de ellos en el paciente y el donante (que por lo general son hermanos), con el objetivo de encontrar los que sean diferentes y por lo tanto, informativos para el estudio del quimerismo . </p>     <p>Se exponen los primeros resultados obtenidos en ni&ntilde;os y adultos con diferentes patolog&iacute;as trasplantados en el IHI y el CIMEQ. </p> <h4>M&eacute;todos </h4>     <p><strong>Pacientes: </strong></p>     <p>Se estudiaron 12 pacientes entre ni&ntilde;os y adultos, de ambos sexos. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los adultos (2 hombres y 3 mujeres) con una edad promedio de 34 a&ntilde;os y un rango de edad de 21 a 62 a&ntilde;os, fueron trasplantados en el CIMEQ. </p>     <p>Los ni&ntilde;os (2 varones y 5 hembras) con una edad promedio de 8 a&ntilde;os y un rango de edad de 2 a 15 a&ntilde;os, fueron trasplantados en el IHI. </p>     <p>Los pacientes presentaron diferentes enfermedades. De ellos, 5 con leucemia mieloide cr&oacute;nica (LMC), 2 con leucemia linfoide aguda (LLA), uno con leucemia mieloide aguda (LMA), uno con linfoma no hodgkiniano (LNH), uno con AD y 2 con AM. </p>     <p>En todos los casos, el donante fue hermano o hermana del receptor. </p>     <p>Siguiendo las recomendaciones de <em>Antin </em> y colaboradpres, 4 el estudio se realiz&oacute; en muestras de sangre perif&eacute;rica. </p> <strong>An&aacute;lisis de los VNTR por la t&eacute;cnica de PCR </strong>     <p align="justify">El ADN gen&oacute;mico se aisl&oacute; a partir de leucocitos de sangre perif&eacute;rica (10 mL ) del paciente y el donante antes del trasplante, y del paciente despu&eacute;s del trasplante. Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de extracci&oacute;n con cloroformo/alcohol isoam&iacute;lico (24:1) y precipitaci&oacute;n con etanol absoluto. </p>     <p align="justify">Se utilizaron los oligonucle&oacute;tidos correspondientes a los extremos 5<span class="Estilo1">&acute; </span>y 3<span class="Estilo1">&acute;</span> para la amplificaci&oacute;n por PCR de 5 regiones neutras del ADN, conocidas como VNTR: YNZ22, Apo-B, Apo-C, PAH y MCT118, 2,5-8 &nbsp; que fueron recomendados y donados por el Centro <em>Ricerca </em><em>Tettamanti </em> en Monza , Italia, por ser muy polim&oacute;rficos e informativos para este tipo de estudio. En cada caso se estudiaron todos los VNTR que resultaron informativos. </p>     <p align="justify">Para la PCR se incub&oacute; un microgramo de ADN, en un termociclador o m&aacute;quina de PCR <em>minicycler</em>, en presencia de: 2,5 unidades de Taq ADN polimerasa, 200 nM de una mezcla de nucle&oacute;tidos ( dNTP ), 30 pmoles de cada oligonucle&oacute;tido (correspondientes a los extremos 5<span class="Estilo1">&acute;</span> y 3<span class="Estilo1">&acute;</span> del fragmento amplificado), 1,25 mM de MgCl 2 y de una soluci&oacute;n tamp&oacute;n que conten&iacute;a Tris- HCl 10mM (a pH 9, 25 &deg; C), KCl 50 mM y Triton X-100 al 0,1 % en un volumen total de 50 m L. En un primer paso de desnaturalizaci&oacute;n y antes de a&ntilde;adir la Taq ADN polimerasa, se incub&oacute; la mezcla de reacci&oacute;n a 99 &ordm;C durante 10 min ; posteriormente, previa incubaci&oacute;n en ba&ntilde;o de hielo durante 3 min , se a&ntilde;adi&oacute; la enzima para iniciar la amplificaci&oacute;n. El programa de amplificaci&oacute;n const&oacute; de 30 ciclos, cada uno con 3 cambios de temperatura: 94 &ordm;C durante 1' 30'', 55 &ordm;C durante 1' 30'' y 72 &ordm;C durante 1' 30''. </p>     <p align="justify">Antes del trasplante fueron amplificadas, en el ADN del paciente y el donante, las 5 regiones polim&oacute;rficas seleccionadas, a fin de encontrar las que ser&iacute;an &uacute;tiles o informativas para el seguimiento postrasplante . Despu&eacute;s del trasplante, fueron amplificadas las regiones informativas en el ADN del paciente trasplantado, el ADN del paciente antes de ser trasplantado y el ADN del donante. </p>     <p>El producto de amplificaci&oacute;n se analiz&oacute; de manera cualitativa en electroforesis en gel de agarosa al 2,5 % con bromuro de etidio como marcador de fluorescencia. </p> <h4>Resultados </h4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En el presente trabajo, los 5 VNTR amplificados resultaron informativos en m&aacute;s de una ocasi&oacute;n, a pesar de que el n&uacute;mero de pacientes no fue grande. Adem&aacute;s, en todos los pacientes siempre se encontr&oacute; al menos uno informativo, lo que permiti&oacute; realizar el estudio en el 100 % de los casos. El MCT118 result&oacute; ser el de mayor polimorfismo de los 5 VNTR estudiados, y por lo tanto, fue utilizado con m&aacute;s frecuencia para el estudio. El orden de frecuencia en que los VNTR resultaron informativos fue: MCT118 (6) &gt; YNZ22 (5) &gt; PAH (3) = Apo B (3) &gt; Apo C (2). </p>     <p>La cantidad de VNTR informativos por caso vari&oacute; desde 1, en 6 de los pacientes, hasta 3, en 1 de ellos. </p>     <p align="justify">La figura 1A muestra, de manera representativa, la amplificaci&oacute;n de los 5 VNTR en uno de los casos estudiados. Se aprecia como informativo el YNZ22 por presentar un patr&oacute;n de bandas diferente entre el donante y el receptor. La figura 1B compara el patr&oacute;n de bandas del paciente a los 30 d&iacute;as de trasplantado con el del paciente antes del trasplante y el del donante. Como se observa, el patr&oacute;n de bandas del paciente despu&eacute;s del trasplante es igual al del donante, lo cual muestra la aparici&oacute;n de una quimera 100 % del donante, es decir, una quimera completa (QC). </p>     <p align="justify">El estudio de los pacientes con enfermedades &nbsp; malignas, 9 en total, se muestra &nbsp; en la tabla 1. De 5 pacientes con LMC (2 ni&ntilde;os y 3 adultos), a 3 se les aplic&oacute; un r&eacute;gimen de acondicionamiento mieloablativo , mientras que en los otros 2 el r&eacute;gimen de acondicionamiento fue no mieloablativo. La aparici&oacute;n de QC o mixta (QM) no estuvo relacionada con el r&eacute;gimen de acondicionamiento; de hecho apareci&oacute; QM solo en un caso, que recibi&oacute; recibi&oacute; acondicionamiento mieloablativo. La QM fue detectada a los 20 d&iacute;as del trasplante , pero result&oacute; ser temporal ya que en los estudios posteriores, a los 6 y 10 meses, se hab&iacute;a transformado en QC . </p>     <p align="center">Tabla 1. Caracter&iacute;sticas generales, resultado del estudio de quimerismo y evoluci&oacute;n del injerto en los &nbsp; pacientes con hemopat&iacute;as malignas. </p> <table width="200" border="1" align="center">   <tr>     <td width="9%">Paciente </td>     <td width="7%">    <p align="center">Edad      (a&ntilde;os) </p>    </td>     <td width="6%">    <p align="center">Sexo R/D</p>    </td>     <td width="9%">Patolog&iacute;a</td>     <td width="18%">Acondicionamiento </td>     <td width="11%">    <p>VNTR informativos</p>    </td>     <td colspan="4">Tiempo de toma de muestra (d&iacute;as o meses)      Resultado </td>     <td width="15%">Evoluci&oacute;n </td>   </tr>   <tr>     <td>    <div align="center">1</div></td>     <td>    <div align="center">28 </div></td>     <td>    ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">F/M</div></td>     <td>    <div align="center">LMC</div></td>     <td>    <div align="center">No mieloablativo </div></td>     <td>    <div align="center">PAH </div></td>     <td width="5%">30 d&iacute;as QC</td>     <td width="8%">    <p align="center">60 d&iacute;as    <br>       QC </p>    </td>     <td width="8%">    <p align="center">90 d&iacute;as QC </p>    </td>     <td width="4%">nr </td>     <td>EICH aguda e infecci&oacute;n por citomegalovirus. Falleci&oacute; </td>   </tr>   <tr>     <td>    <div align="center">2 </div></td>     <td>    <div align="center">26</div></td>     <td>    <div align="center">F/M</div></td>     <td>    ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">LMC</div></td>     <td>    <div align="center">No mieloablativo </div></td>     <td>    <div align="center">Apo C </div></td>     <td>30 d&iacute;as QC </td>     <td>    <p align="center">60 d&iacute;asQC </p>    </td>     <td>    <p align="center">120 d&iacute;asQC </p>    </td>     <td>    <p align="center">8 meses    <br>     QC</p>    </td>     <td>Alta m&eacute;dica </td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">3 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">35 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">M/M </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">LMC </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">MCT118 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">30 d&iacute;as QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>Caso reciente con buena evoluci&oacute;n </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">4 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">8 </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">F/F </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">LMC </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">YNZ22 MCT118 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">34 d&iacute;as QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>Caso reciente con buena evoluci&oacute;n </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">5 </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">15 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">M / M </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">LMC </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">PAH </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">20 d&iacute;as QM* </p>             <p align="center">&nbsp; </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">6 meses    <br>       QC     <br>       bcr-abl positivo </p>     </td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">10 meses QC     <br>       bcr-abl negativo </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>EICH cr&oacute;nica en la boca </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">6 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">21 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">M / M </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">LMA </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Apo B </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">35 d&iacute;as    <br>       QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>Caso reciente con buena evoluci&oacute;n </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">7 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">3 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">F / M </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">LLA </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Apo B     <br>       Apo C </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">21 d&iacute;as    <br>       nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">33 d&iacute;as    <br>       nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">120 d&iacute;as    <br>       nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">9 meses    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p>Rechaz&oacute; el injerto.     <br>       No reca&iacute;da.     <br>       Est&aacute; sin tratamiento </p>     </td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">8 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">6 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">F / F </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">LLA </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">YNZ22 MCT118 </p>     </td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">33 d&iacute;as QC </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>Infecci&oacute;n por Citomegalovirus.    <br>       Falleci&oacute; </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">9 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">62 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">F/F </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">LNH </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">No mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">YNZ22     <br>       Apo B MCT118 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">34 d&iacute;as QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">60 d&iacute;as    <br>       QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>EICH aguda en piel.     <br>       Buena recuperaci&oacute;n </p></td>   </tr> </table>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">       <p>    <br>     LMC: leucemia mieloide cr&oacute;nica; LMA: leucemia mieloide aguda; LLA: leucemia linfoide aguda; LNH: linfoma no hodgkiniano; R/D: receptor/donante; F: femenino; M: masculino; VNTR: fragmentos polim&oacute;rficos del ADN; QC: quimera completa; QM:: quimera mixta; nQ: no aparece quimera; nr: no realizado; bcr-abl: gen quim&eacute;rico caracter&iacute;stico de LMC; EICH: enfermedad de injerto contra hospedero.     <br> Muy bajo porcentaje del paciente. </p>       <p><a href="/img/revistas/hih/v21n3/f0107305.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v21n3/f0107305.jpg" width="229" height="98" border="0"></a> </p>       
<p>Figura. Patrones de bandas que se observan en el estudio molecular del quimerismo. </p>       <p>A: estudio del paciente (P) y el donante (D) antes del trasplante, es informativo el fragmento YNZ22. B: estudio despu&eacute;s del trasplante, el patr&oacute;n de bandas en el paciente trasplantado (PT) es igual al del D. </p> </div>     <p align="left">En los 4 casos restantes con LMC, se observ&oacute; QC desde la primera determinaci&oacute;n que se les realiz&oacute; despu&eacute;s del trasplante (entre los 30 y 34 d&iacute;as). Dos de estos son casos recientes, por lo que solo hab&iacute;an sido estudiados por primera vez. En los otros 2, se manten&iacute;a la QC al momento de publicar estos resultados, uno de ellos a los 8 meses y el otro a los 90 d&iacute;as de realizado el trasplante. </p>     <p align="justify">En el resto de los casos de la tabla 1, el r&eacute;gimen de acondicionamiento fue mieloablativo , excepto para el caso con LNH, que recibi&oacute; un acondicionamiento no mieloablativo. El caso con LMA es reciente y se observ&oacute; QC a los 35 d&iacute;as del trasplante. Con respecto a los 2 casos con LLA, en uno de ellos se observ&oacute; una QC a los 33 d&iacute;as, pero el paciente falleci&oacute; poco despu&eacute;s por infecci&oacute;n por citomegalovirus . El segundo caso de LLA fue estudiado hasta los 9 meses, pero en ning&uacute;n momento apareci&oacute; quimera, y fue posible concluir que hubo un rechazo del injerto. Por &uacute;ltimo, en el caso con LNH, apareci&oacute; QC a los 34 d&iacute;as y se mantuvo como tal en el segundo estudio a los 60 d&iacute;as. </p>     <p align="justify">La tabla 2 presenta los resultados del estudio en pacientes con patolog&iacute;as no malignas, 1 con AD y 2 con AM. En el caso de la AD , no se observ&oacute; quimera desde la primera muestra a los 12 d&iacute;as del trasplante y hasta los 6 meses, lo cual permiti&oacute; concluir que hubo un fallo primario del injerto. Por otra parte, ambos casos con AM mostraron QC en el primer estudio (86 y 30 d&iacute;as) y tambi&eacute;n en el segundo estudio a los 8 y 4 meses, respectivamente. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Tabla 2. Caracter&iacute;sticas generales, resultado del estudio de quimerismo y evoluci&oacute;n del injerto en los pacientes con hemopat&iacute;as no malignas. </p> <table width="200" border="1" align="center">   <tr>     <td>Patolog&iacute;a </td>     <td>    <p>Edad (a&ntilde;os)</p>    </td>     <td>    <p align="center">Sexo D/R </p>    </td>     <td>Acondicionamiento </td>     <td>    <p>VNTR informativos</p>    </td>     <td colspan="4">Tiempo de toma de muestra (d&iacute;as o meses)           <br>     Resultado </td>     <td>Evoluci&oacute;n </td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">AD </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">14 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">M / F </p></td>     <td valign="top">    <p>No mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p>PAH     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       YNZ22 </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">12 d&iacute;as nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">21 d&iacute;as nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">60 d&iacute;as nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">6 meses nQ </p>     </td>     <td valign="top">    <p>Fallo primario del injerto </p>             <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">AM </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">8 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">F / M </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p>YNZ22 MCT118 </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">86 d&iacute;as QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">8 meses QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>Buena evoluci&oacute;n </p></td>   </tr>   <tr>     <td valign="top">    <p align="center">AM </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">2 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">F / M </p></td>     <td valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Mieloablativo </p></td>     <td valign="top">    <p>MCT118 </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">30 d&iacute;as QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">4 meses QC </p>     </td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p align="center">nr </p></td>     <td valign="top">    <p>Buena evoluci&oacute;n </p></td>   </tr> </table>     <p align="center">AD: anemia drepanoc&iacute;tica; AM: aplasia medular; R / D: receptor / donante; F: femenino; M: masculino; VNTR: fragmentos polim&oacute;rficos del ADN; QC: quimera completa; nQ: no aparece quimera; nr: no realizado. </p>     <p align="left">Hasta la fecha de la &uacute;ltima determinaci&oacute;n, no se observ&oacute; una QC que desapareciera o evolucionara hacia QM en ambos grupos de pacientes. </p> <h4>Discusi&oacute;n &nbsp;&nbsp; </h4>     <p align="justify">Fue posible la realizaci&oacute;n del estudio del quimerismo en los pacientes con trasplante de c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas mediante la amplificaci&oacute;n de los 5 VNTR utilizados con dicho fin. En el grupo de pacientes estudiados, pudo detectarse, seg&uacute;n el caso, la aparici&oacute;n de QC, de QM y la no aparici&oacute;n de quimera alguna, indicativa del fallo primario del injerto. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La aparici&oacute;n de QC indica que la hematopoyesis del donante se ha implantado, pero no es posible asegurar que esta continuar&aacute; establecida permanentemente, ya que varios factores influyen para que esto suceda. Por esta raz&oacute;n, es necesario mantener el estudio del quimerismo de manera peri&oacute;dica hasta el a&ntilde;o de trasplantado el enfermo. La literatura recomienda que se realice el estudio a los 30, 60, 90, 120 d&iacute;as, 6 y 12 meses.<span class="superscript">4</span> </p>     <p align="justify">Cuando aparece quimera mixta, esta puede evolucionar hacia el fallo del injerto, si predominan las c&eacute;lulas del receptor, mantenerse como tal o llegar al estado de QC con predominio casi absoluto (98 a 100 %) de la hematopoyesis del donante.<span class="superscript">4</span>  Inicialmente se crey&oacute; que un trasplante sostenido era aquel en el que el 100 % de la hematopoyesis pasaba a ser &nbsp; originaria del donante. Sin embargo, hoy se conoce que a&uacute;n en presencia de c&eacute;lulas del paciente, este puede sobrevivir, libre de enfermedad, durante un largo per&iacute;odo de tiempo.<span class="superscript">9 </span>Particularmente, en el caso de las leucemias, se ha observado que la ocurrencia de una reca&iacute;da cuando aparece quimerismo mixto depende fundamentalmente de la l&iacute;nea celular que hace mixto al quimerismo, y si ella a su vez es el mismo tipo de c&eacute;lula que causa la leucemia.<span class="superscript">9</span>  <em>Serrano </em>y colaboradores, por ejemplo, en un estudio sobre la evoluci&oacute;n del quimerismo en pacientes con LMC, encontraron que la posibilidad de reca&iacute;da estaba directamente relacionada con la aparici&oacute;n de QM en las c&eacute;lulas mieloides.<span class="superscript">10</span> </p>     <p>En los casos con LMC se realiz&oacute; de forma paralela el estudio del gen quim&eacute;rico BCR-ABL por la t&eacute;cnica de RT-PCR para detectar enfermedad m&iacute;nima residual. Por comunicaci&oacute;n personal (Lic. <em>Niubys </em><em> Callado </em>), conocimos que en uno de estos casos, precisamente el que hab&iacute;a presentado QM a los 20 d&iacute;as del trasplante, se detect&oacute; la presencia de este gen quim&eacute;rico a los 6 meses de trasplantado, momento en que presentaba QC, y que a los 10 meses no se detect&oacute; el gen quim&eacute;rico BCR-ABL y se manten&iacute;a la QC. </p>     <p align="justify">El resultado de QC y la presencia simult&aacute;nea del gen BCR-ABL puede parecer contradictoria. Sin embargo, debe destacarse que la RT-PCR es una t&eacute;cnica mucho m&aacute;s sensible que la amplificaci&oacute;n de los VNTR y a su vez es espec&iacute;fica para el gen quim&eacute;rico, el cual solo se encuentra en el paciente. Esta especificidad implica que, en la reacci&oacute;n de amplificaci&oacute;n del gen BCR-ABL, no hay competencia entre el ADN del donante y el del receptor por los oligos. Sin embargo, en la amplificaci&oacute;n de los VNTR s&iacute; hay competencia, ya que los fragmentos de ADN, que ser&aacute;n amplificados, est&aacute;n presentes tanto en el donante como en el receptor.<span class="superscript">9</span> Este hecho contribuye a que los estudios de quimerismo realizados con  la &nbsp; t&eacute;cnica descrita,  tengan  a&uacute;n &nbsp; una  menor  sensibilidad  con respecto  a la RT-PCR, y cabe la posibilidad de que el citado paciente presente una micro QM no detectada por nuestra t&eacute;cnica. </p>     <p align="justify">Cuando el trasplante se realiza en pacientes con patolog&iacute;as no malignas, no es primordial eliminar totalmente la hematopoyesis del paciente y por tanto, la aparici&oacute;n de QM no es alarmante. Sin embargo, s&iacute; debe establecerse una quimera hematopoy&eacute;tica, sea completa o mixta, capaz de sustituir o proporcionar aquella funci&oacute;n deficiente o ausente en cada una de estas enfermedades.<span class="superscript">4</span> </p>     <p align="justify">La amplificaci&oacute;n de los VNTR por PCR pudo ser utilizada para estudiar el quimerismo a&uacute;n cuando coincidieron el sexo del paciente y el donante, a diferencia de otras t&eacute;cnicas incluso m&aacute;s sensibles que la presente, por ejemplo la amplificaci&oacute;n por PCR de secuencias espec&iacute;ficas de los cromosomas X y Y, que no son &uacute;tiles en estos casos.<span class="superscript">11</span> </p>     <p>En resumen, el estudio molecular del quimerismo permite conocer el &eacute;xito o fracaso del trasplante y la posibilidad de una reca&iacute;da, incluso antes que aparezcan las evidencias morfol&oacute;gicas. </p> <h4>Summary</h4>     <p>The study of chimerism in the allogeneic transplantation of hematopoietic cells allows to know&nbsp; if the the lymphohematopoietic system of the donor has been able to implant itself in the recipient and if it does it by totally displacing the lymphohematopoietic system of the recepient or coexisting with it.&nbsp;Polymerase chain reaction is used to amplify the highly polymorphic DNA zones. The first results of the mollecular study of chimerism in 12 patients with different malignant&nbsp;and nonmalignant pathologies are shown. This study made possible to determine if the transplant was successful and to evaluate the graft ' s evolution. </p>     <p><em>Key words:</em> Chimerism, allogeneic transplantation, hematopoietic cells. </p> <h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas </h4>     <p> 1. Saiki R, Gelfand D, Stoffel S. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a &nbsp; thermostable DNA polymerase. Science 1988 ;239:487-91. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>2. Lawler M, Humphries P, McCann SR. Evaluation of mixed chimerismby in vitro amplification of dinucleotide repeat sequences using the polymerase chain reaction. Blood 1991; 77:2504-14. </p>     <p>3. Wang LJ, Chou P, Gonz&aacute;lez -Ryan L, Huang W, Haut PR, Kletzel M. Evaluation of mixed hematopoietic chimerism in pediatric patients with leukemia after allogeneic stem cell transplantation by quantitative PCR analysis of variable number of tandem repeat and testis determination gen. Bone Marrow Transplantation 2002;29:51-6. </p>     <p> 4. Antin JH, Childs R, Filipovich AH. Establishment of complete and mixed donor chimerism after allogeneic lymphohematopoietic transplantation: Recomendations from a workshop at the 2001  Tandem &nbsp; Meetings. &nbsp; Biol &nbsp; Blood Marrow Transplant 2001;7:473-85. </p>     <p>5. Horn TG, Richards B, Klinger KW. Amplification of a highly polymorphic VNTR segment by the polymerase chain reaction. Nucleic Acids Research 1989;17:2140 . </p>     <p>6. Boerwinkle E, Xiong W, Fourest E, Chan L. Rapid typing of tandemly repeated hypervariable loci by the polymerase chain reaction: Application to the apolipoprotein B 3&acute; hypervariable region. Proc Natl Acad Sci USA 1989;86:212-6. </p>     <p>7. Goltsov AA, Eisensmith RC, Konecki DS, Lichter-Konecki U, Woo SLC. Associations between mutations and a VNTR in the human phenylalanine hydroxylase gene.  Am J Hum Genet 1992 ;51:627 -36. </p>     <p>8. Tanaka J, Kasai M, Imamura M, Masauzi N, Ohizumi H, Matsuura A, et al. Evaluation of mixed chimaerism and origin of bone marrow transplantation. Bone Marrow Transpant 1994 ;86:436 -8. </p>     <p>9. Zetterquist H, Mattsson J, Uzunel M, N&auml;sman-Bj&ouml;rk I, Svenberg P, Tammik L, et al. Mixed chimerism in the B cell lineage is a rapid and sensitive indicator of minimal residual disease in bone marrow transplant recipients with pre-B cell acute lymphoblastic leukemia. Bone Marrow Transplant 2000 ;25:843 -51. </p>     <p> 10. Serrano J, Rom&aacute;n J, S&aacute;nchez J, Jim&eacute;nez A, Castillejo JA, Herrera C, et al. Molecular analysis of lineage-specific chimerism and minimal residual disease by RT-PCR of p210 BCR-ABL and p190 BCR- ABL &nbsp; after allogeneic bone marrow transplantation for chronic myeloid leukemia: Increasing mixed myeloid chimerism and p190 BCR-ABL &nbsp; detection precede cytogenetic relapse. Blood 2000 ;95:2659 -65. </p>     <p> 11. Khan F, Agarwal A, Agrawal S. Significance of chimerism in hematopoietic stem cell transplantation: New variations on an old theme. Bone Marrow Transplant 2004;34:1-12. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: 15 de diciembre de 2005. Aprobado:     <br>   Dra. Ana Mar&iacute;a Amor Vigil . Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a. Apartado Postal 8070,  Ciudad de La Habana, CP 10800, Cuba. Tel (537) 578268,  578695,  544214. Fax (537) 442334. e-mail: <a href="mailto:ihidir@hemato.sld.cu">ihidir@hemato.sld.cu </a> </p>     <p><span class="superscript"><a href="#autor">1</a></span><a href="#autor">Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a (IHI).    <br>     <span class="superscript">2</span>Centro de Investigaciones M&eacute;dico Quir&uacute;rgicas (CIMEQ). </a><a name="cargo"></a></p>      ]]></body>
</article>
