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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Hematología, Inmunología y Hemoterapia]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Centro Nacional de Información de Ciencias MédicasEditorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aplicación del método inmunocitoquímico de la fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina para la clasificación inmunológica de las leucemias mieloides agudas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Application of the alkaline phosphatase anti-alkaline phosphatase immunocytochemical method for the immunological classification of acute myeloid leukemias]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Hematología e Inmunología  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0864-02892006000100008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0864-02892006000100008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0864-02892006000100008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se realizó el inmunofenotipaje celular de 30 pacientes con el diagnóstico de leucemia mieloide aguda por el método inmunocitoquímico fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina (APAAP) introducido en nuestro laboratorio. Los marcadores estudiados fueron: CD3, CD13, CD15, CD19, CD33 y CD41. Para el estudio se utilizaron extendidos de médula ósea o sangre periférica fijados en acetona pura e incubados con el respectivo anticuerpo monoclonal. Posteriormente se añadió la inmunoglobulina anti ratón obtenida en conejo ( Linking ) y por último, el complejo APAAP. Los períodos de incubación fueron de 30 minutos y se realizaron lavados con solución amortiguadora entre cada uno de los pasos. La lectura de las láminas se realizó en microscopio óptico y se consideró positivo cuando el número de células marcadas era mayor o igual a 20 %. De los pacientes estudiados, el 93,3 % y el 90 %, respectivamente, expresaron antígenos pan mieloides CD13 y CD33; 16 de ellos expresaron el CD15 (53,3 %); 3 el CD19 (10 %) y 2 el CD41 (6,6 %). Se concluyó que el método APAAP es rápido y de bajo costo y puede ser aplicado con confiabilidad en la clasificación inmunológica de las leucemias mieloides agudas]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The cellular immunophenotyping of 30 patients with the diagnosis of acute myeloid leukemia was conducted by the alkaline phosphatase anti-alkaline phosphatase immunocytochemical method (APAAP) introduced in our laboratory. The markers studied were: CD3, CD13, CD15, CD19, CD33 y CD41. Specimens of bone marrow or peripheral blood fixed in pure acetone and incubated with the respective monoclonal antibody were used for the study. Later on, the anti-mouse immunoglobulin obtained in rabbit (Linking) was added and, finally, the APAAP complex. The incubation periods were of 30 minutes and lavages with buffer solution were carried out between one step and the other. The reading of the slides was performed on the optical microscope and it was considered positive when the number of marked cells was higher than or equal to 20 %. Of the studied patients, 93.3 % and 90 %, respectively, expressed panmyeloid antigens CD13 and CD33; 16 of them expressed the CD15 (53.3 %); 3 the CD19 (10 %); and 2 the CD41 (6.6 %). It was concluded that the APAAP method is rapid and inexpensive and that it may be reliably applied in the immunological classification of the acute myeloid leukemias]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[leucemia mieloide aguda]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[anticuerpos monoclonales]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Acute myeloid leukemia]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a  </p> <h2>Aplicaci&oacute;n del m&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico de la fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina para la clasificaci&oacute;n inmunol&oacute;gica de las leucemias mieloides agudas </h2>     <p>Lic. Bertha B. Socarr&aacute;s Ferrer, Lic. L&aacute;zaro O. del Valle P&eacute;rez, Dra. Vianed Mars&aacute;n S&uacute;arez, Lic. Julio C. Merl&iacute;n Linares y Dra. Consuelo Mac&iacute;as Abraham </p> <h4>Resumen </h4>     <p align="justify">Se realiz&oacute; el inmunofenotipaje celular de 30 pacientes con el diagn&oacute;stico de leucemia mieloide aguda por el m&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina (APAAP) introducido en nuestro laboratorio. Los marcadores estudiados fueron: CD3, CD13, CD15, CD19, CD33 y CD41. Para el estudio se utilizaron extendidos de m&eacute;dula &oacute;sea o sangre perif&eacute;rica fijados en acetona pura e incubados con el respectivo anticuerpo monoclonal. Posteriormente se a&ntilde;adi&oacute; la inmunoglobulina anti rat&oacute;n obtenida en conejo ( <em>Linking </em>) y por &uacute;ltimo, el complejo APAAP. Los per&iacute;odos de incubaci&oacute;n fueron de 30 minutos y se realizaron lavados con soluci&oacute;n amortiguadora entre cada uno de los pasos. La lectura de las l&aacute;minas se realiz&oacute; en microscopio &oacute;ptico y se consider&oacute; positivo cuando el n&uacute;mero de c&eacute;lulas marcadas era mayor o igual a 20 %. De los pacientes estudiados, el 93,3 % y el 90 %, respectivamente, expresaron ant&iacute;genos pan mieloides CD13 y CD33; 16 de ellos expresaron el CD15 (53,3 %); 3 el CD19 (10 %) y 2 el CD41 (6,6 %). Se concluy&oacute; que el m&eacute;todo APAAP es r&aacute;pido y de bajo costo y puede ser aplicado con confiabilidad en la clasificaci&oacute;n inmunol&oacute;gica de las leucemias mieloides agudas. </p>     <p><em>Palabras clave</em>: leucemia mieloide aguda, m&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico APAAP, anticuerpos monoclonales. </p>     <p align="justify">La leucemia mieloide aguda (LMA) es una neoplasia maligna de las c&eacute;lulas hematopoy&eacute;ticas caracterizada por una proliferaci&oacute;n anormal de las c&eacute;lulas precursoras mieloides que detiene e impide la diferenciaci&oacute;n celular y el crecimiento no controlado de c&eacute;lulas leuc&eacute;micas que se originan en la m&eacute;dula &oacute;sea (MO), y posteriormente se diseminan a sangre perif&eacute;rica (SP) y al resto de los tejidos.<span class="superscript">1,2</span> </p>     <p align="justify">La LMA es menos frecuente que la leucemia linfoide aguda e implica del 15 al 20 % de los pacientes con leucemia. 2 Tanto en Cuba como en el resto del mundo, la LMA es poco frecuente en las edades pedi&aacute;tricas y su incidencia se incrementa a partir de los 45 a&ntilde;os de edad. La relaci&oacute;n de frecuencia entre los sexos es ligeramente superior en el masculino. En los pa&iacute;ses industrializados, las tasas de incidencia son discretamente superiores.<span class="superscript">3-6</span> </p>     <p align="justify">El diagn&oacute;stico de las hemopat&iacute;as malignas como la determinaci&oacute;n de subpoblaciones linfocitarias se puede realizar por inmunofluorescencia directa e indirecta y por m&eacute;todos inmunocitoqu&iacute;micos como el ultramicrom&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico (UMICIQ) y el de la fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina (APAAP), que utilizan anticuerpos conjugados con enzimas como la peroxidasa y la fosfatasa alcalina.<span class="superscript">7-10</span> Estas t&eacute;cnicas inmunoenzim&aacute;ticas permiten visualizar las c&eacute;lulas con un microscopio &oacute;ptico y adem&aacute;s observar simult&aacute;neamente tanto la morfolog&iacute;a celular como la reacci&oacute;n inmunol&oacute;gica de sus ant&iacute;genos con los anticuerpos espec&iacute;ficos. </p>     <p align="justify">Por tal motivo, en este trabajo nos propusimos utilizar el m&eacute;todo APAAP introducido previamente en nuestro laboratorio para la clasificaci&oacute;n inmunol&oacute;gica de las c&eacute;lulas bl&aacute;sticas de un grupo de pacientes con leucemia mieloide aguda. </p> <h4>M&eacute;todos </h4>     <p align="justify">Se estudiaron 30 pacientes con diagn&oacute;stico de LMA, 23 del sexo masculino y 7 del femenino, con un rango de edades entre 7 y 80 a&ntilde;os, atendidos y diagnosticados en las consultas del Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a. </p> <h4>M&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico APAAP </h4>     <p align="justify">Los marcadores estudiados fueron: CD3, CD13, CD15, CD19, CD33, CD41. Se utilizaron extendidos de MO o de SP fijados en acetona pura por 10 minutos, a temperatura ambiente (TA) en incubados en c&aacute;mara h&uacute;meda con su respectivo anticuerpo monoclonal (AcMo) en una diluci&oacute;n de 1:20. Posteriormente, se a&ntilde;adi&oacute; la inmunoglobulina anti rat&oacute;n obtenida en conejo (<em>Linking</em>) y por &uacute;ltimo, el complejo APAAP, que consiste en complejos solubles de fosfatasa alcalina del intestino de ternero y un AcMo de rat&oacute;n anti-fosfatasa alcalina. Los per&iacute;odos de incubaci&oacute;n fueron de 30 minutos y se realizaron lavados con una soluci&oacute;n amortiguadora de tris hidroximetilaminometano 0,5 M , pH 7,6 entre cada uno de los pasos. La coloraci&oacute;n se realiz&oacute; con naftol-AX-MX- fosfato, levamisol y rojo violeta y la contracoloraci&oacute;n con hematoxilina de Gill.<span class="superscript">9</span> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Se realiz&oacute; la lectura en un microscopio &oacute;ptico Dialux 20 EB (Leitz, RFA). Se contaron al menos 100 c&eacute;lulas en cada l&aacute;mina y se consider&oacute; positivo para ese marcador cuando el n&uacute;mero de c&eacute;lulas marcadas fuera igual o mayor que el 20 %. </p>     <p align="justify">Se determin&oacute; el porcentaje de los marcadores de membrana estudiados y el de los distintos subtipos de LMA. </p>     <p align="justify">El panel de AcMo utilizados en el inmunofenotipaje celular se observa en la tabla. </p>     <p align="center">Tabla. Panel de anticuerpos monoclonales (AcMo) para el inmunofenotipaje celular </p> <table align="center" cellpadding="0" cellspacing="3">   <tr>     <td width="198" valign="top">    <p>CD </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>AcMo </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>Fuente </p>             <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="282" colspan="2" valign="top">Dirigidos contra c&eacute;lulas T     <p>&nbsp; </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="198" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>CD3 </p>             <p>&nbsp; </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>OKT3 </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>Hosp. Cl&iacute;n. Barcelona, Barcelona, Espa&ntilde;a </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="282" colspan="2" valign="top">Dirigidos contra c&eacute;lulas B     <p>&nbsp; </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="198" valign="top">    <p>CD19 </p>             <p>&nbsp; </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>anti-CD19 </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>Inst. of Cancer Research, Londres, Inglaterra </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="282" colspan="2" valign="top">Dirigidos contra c&eacute;lulas mieloides     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp; </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="198" valign="top">    <p>CD13 </p>             <p>&nbsp; </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>My7 </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>Hosp. Cl&iacute;n. Barcelona, Barcelona, Espa&ntilde;a </p>             <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="198" valign="top">    <p>CD15 </p>             <p>&nbsp; </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>Leu21 </p></td>     <td width="360" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Filatov Institute of Immunology, Rusia </p>             <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="198" valign="top">    <p>CD33 </p>             <p>&nbsp; </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>My9 </p></td>     <td width="360" valign="top">    <p>Institute of Cancer Research, Londres, Inglaterra </p>             <p>&nbsp; </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="198" valign="top">    <p>CD41 </p>             <p>&nbsp; </p></td>     <td width="84" valign="top">    <p>943D </p></td>     <td width="360" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Hosp. Cl&iacute;n. Barcelona, Barcelona, Espa&ntilde;a </p>             <p>&nbsp; </p></td>   </tr> </table> <h4>Resultados </h4>     <p align="justify">De los 30 pacientes estudiados expresaron ant&iacute;genos pan mieloides CD13 y CD33, el 93,3 % y el 90 %, respectivamente; 16 de ellos expresaron el CD15 para el 53,3 % y solo 3 pacientes el CD19, lo que representa el 10 % del total (fig. 1). </p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/v22n1/f0108106.gif"><img src="/img/revistas/v22n1/f0108106.gif" width="358" height="214" border="0"></a></p>     
<div align="center">Fig. 1.  &nbsp;Porcentaje de los marcadores de  membrana en pacientes con leucemia mieloide aguda.</div>     <p align="justify">Al analizar el comportamiento de los subtipos de LMA, se observ&oacute; un predominio de las variedades M1 y M2, para el 73,3 % (22 casos). Las variedades M4, M5 y M7 constituyeron las menos frecuentemente observadas, con el 6,7 % (2 casos), el 13,3 % (4 casos) y el 6,7 % (2 casos), respectivamente (fig. 2). </p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/v22n1/f0208106.gif"><img src="/img/revistas/v22n1/f0208106.gif" width="358" height="214" border="0"></a></p>     
<div align="center">Fig. 2.  Porcentaje de los subtipos  de LMA de leucemia mieloide aguda. </div> <h4>Discusi&oacute;n </h4>     <p align="justify">Para un diagn&oacute;stico exacto de las leucemias agudas es necesario emplear diferentes m&eacute;todos. El morfol&oacute;gico es el m&aacute;s antiguo y el m&aacute;s importante en la actualidad, pues destaca las 2 variedades principales de leucemia aguda: la linfoide y la mieloide. Existen adem&aacute;s m&eacute;todos citoqu&iacute;micos, citogen&eacute;ticos, de biolog&iacute;a molecular y de inmunofenotipaje celular. Todos estos par&aacute;metros son importantes para la clasificaci&oacute;n de estas enfermedades en sus diferentes subtipos, y de esta manera, el tratamiento de estas hemopat&iacute;as es m&aacute;s espec&iacute;fico y puede utilizarse con mayor precisi&oacute;n y efectividad.<span class="superscript">11-13 </span></p>     <p align="justify">Por lo general, la LMA presenta fenotipos heterog&eacute;neos y la mayor&iacute;a de las c&eacute;lulas leuc&eacute;micas mieloides expresan los ant&iacute;genos CD13 y CD33. Esto fue comprobado en nuestro estudio, donde del total de pacientes, 28 (93,3 %), expresan el CD13, y 27 de ellos (90 %) expresaron el CD33.<span class="superscript">14 </span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En cuanto al porcentaje de los subtipos de LMA, 22 pacientes se clasificaron como M1/M2, lo que constituye el 73,3 % del total, 2 casos (6,7 %) se diagnosticaron como M4 y M7, y 4 (13,3 %) como M5, lo que coincide con lo descrito por otros investigadores.<span class="superscript">14,15 </span></p>     <p align="justify">Los m&eacute;todos inmunocitoqu&iacute;micos APAAP y UMICIQ se aplican con &eacute;xito en el estudio de las inmunodeficiencias y en la caracterizaci&oacute;n inmunol&oacute;gica de las c&eacute;lulas malignas en pacientes con leucemia y otras enfermedades hematol&oacute;gicas.<span class="superscript">8,9,16</span> A diferencia de otros m&eacute;todos utilizados en nuestra instituci&oacute;n de hemopat&iacute;as malignas, la t&eacute;cnica inmunocitoqu&iacute;mica APAAP permite: </p>     <p>a) Llegar a un diagn&oacute;stico certero y seguro en un breve tiempo (3 horas). </p> <ul>       <li> La conservaci&oacute;n de l&aacute;minas a temperatura ambiente con fines docentes, investigativos y estudios retrospectivos. </li>       <li> Trabajar con sangre total, con lo que se prescinde el uso del Ficoll para el aislamiento de las c&eacute;lulas mononucleares. </li>     </ul> <h4>Summary</h4> <h6>Application of the alkaline phosphatase anti-alkaline phosphatase <strong></strong>immunocytochemical method for the immunological classification of acute myeloid leukemias </h6>     <p align="justify">The cellular immunophenotyping of 30 patients with the diagnosis of acute myeloid leukemia was conducted by the alkaline phosphatase anti-alkaline phosphatase <strong></strong>immunocytochemical method (APAAP) introduced in our laboratory. The markers studied were: CD3, CD13, CD15, CD19, CD33 y CD41. Specimens <strong></strong>of bone marrow or peripheral blood fixed in pure acetone and incubated with the respective monoclonal antibody were used for the study. Later on, the anti-mouse immunoglobulin obtained in rabbit (Linking) was added and, finally, the APAAP complex. The incubation periods were of 30 minutes and lavages with buffer solution were carried out between one step and the other. The reading of the slides was performed on the optical microscope and it was considered positive when the number of marked cells was higher than or equal to 20 %. Of the studied patients, 93.3 % and 90 %, respectively, expressed panmyeloid antigens CD13 and CD33; 16 of them expressed the CD15 (53.3 %); 3 the CD19 (10 %); and 2 the CD41 (6.6 %). It was concluded that the APAAP method is rapid and inexpensive and that it may be reliably applied in the immunological classification of the acute myeloid leukemias. </p>     <p><em>Key words</em>: Acute myeloid leukemia, APAAP immunocytochemical method, monoclonal antibodies </p> <h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas </h4>     <p>1. Meneghello J, Fanta E, Paris E, Puga TF. Pediatr&iacute;a. 5ta ed. Buenos Aires: Panamericana; 1997. p. 1812-22. </p>     <p> 2. Milan&eacute;s MT, Losada R, Hern&aacute;ndez P, Agramonte O, Rosell E. Aspectos cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos de la leucemia aguda en el anciano. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 2002:18:25-33. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> 3. Leith C, Kopecky K, Godwin J, Mc Connell T, Slovak M, Chen M, et al. Acute myeloid leukemia in the elderly: Asseement of multidrug resistance MDR, and cytogenetics distinguishes biologic subgroups with remarkably distinct responses to standard chemotherapy. A Southwest Oncology Group Study. Blood 1997;89:3323-9. </p>     <p> 4. M Catwright RA, Staines A. Acute leukemias. Epidemiology of haematological diseases Part 1. Fleming A, ed. Bailere Clin Haematol 1992;5:1-26. </p>     <p> 5. Taylor PR, Reid MM, Stack AN, Bown N, Hamilton P. De novo acute myeloid leukemia in patients over 55 years old. A population-based study of incidence treatment and outcome. Nother Region Haematology Group. Leukemia 1995 9:231-5. </p>     <p> 6. Harani MS, Adil SN, Shaikh MU, Kakepoto GN, Khurshid M. Frequency of FAB subtypes in acute myeloid leukemia patients at Aga Khan University Hospital Karachi. J Ayub Med Coll Abbottabad 2005;17:26-9. </p>     <p> 7. Rivero RA, Bello M, Su&aacute;rez LE, Cruz C, Mart&iacute;nez M, Palma L. Introducci&oacute;n de un ultramicrom&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico para la cuantificaci&oacute;n de subpoblaciones linfocitarias identificadas con anticuerpos monoclonales. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1995;11:46-56 </p>     <p> 8. Cordell F, Fallini B, Erber WN. Immunoenzymatic labelling of monoclonal antibodies using immune complexes of alkaline phosphatase and monoclonal anti-alkaline phosphatase. J Histochem Cytochem 1984;32:219-29. </p>     <p> 9. Socarr&aacute;s BB, Mars&aacute;n V, S&aacute;nchez M, Gramatges A, Villaescusa R, Mac&iacute;as C. Comparaci&oacute;n del ultramicrom&eacute;todo (UMICIQ) con el de la fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina (APAAP) para la cuantificaci&oacute;n de subpoblaciones linfocitarias T. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 2002;18:63-6. </p>     <p> 10. Socarr&aacute;s BB, Mars&aacute;n V, S&aacute;nchez M, Mac&iacute;as C. Introducci&oacute;n del m&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico de la fosfatasa alcalina anti-fosfatasa alcalina para la clasificaci&oacute;n inmunol&oacute;gica de los s&iacute;ndromes linfo y mieloproliferativos agudos. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 2001;17;65-9. </p>     <p> 11. Mckenzie SB. Advances in understanding the biology and genetics of acute myelocytic leukemia. Cl&iacute;n Lab Sci 2005;18:28-37. </p>     <p> 12. Svarch E. Clasificaci&oacute;n de las leucemias agudas. Rev Cubana Pediatr 1989;61:298-308. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> 13. Sucin S, Zeller W, Weh HJ, Hossfeld DK. Immunophenotype of mitotic cells with clonal chromosome abnormalities demonstrating multilineage involvement in acute myeloid leukemia. Cancer Genet Cytogenet 1993;70:1-5. </p>     <p> 14. Sucic M, Boban D, Markovich- Glamocak M, Uzarevic B, Zadro R, Petrovecki M, et al. Double immunoenzymatic APAAP staining for the detection of leukemia-associated immunophenotypes. J Hematother Stem Cell Res 1999; 8:635-43. </p>     <p> 15. Gorczyca W. Flow cytometry immunophenotypic characteristic of monocytic population in acute monocytic leukemia (AML-M5), acute myelomonocytic leukemia (AML-M4), and chronic myelomonocytic leukemia (CMML). Methods Cell Biol 2004;75:665-77. </p>     <p> 16. Cruz C, P&eacute;rez L, Rivero R, Gonz&aacute;lez C, P&eacute;rez J. Ultramicrom&eacute;todo inmunocitoqu&iacute;mico (UMICIQ): su aplicaci&oacute;n para cuantificar linfocitos TCD4+ en portadores del VIH y en pacientes con SIDA. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter 1996;12:41-6. </p>     <p>Recibido: 20 de mayo de 2006. Aprobado: 2 de junio de 2006.      ]]></body>
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