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<institution><![CDATA[,Centro Nacional Coordinador de Ensayos Clínicos.  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The antioxidant effects of triacetoneamine hydrochloride (THC) were studied in vitro by a series of assays, in which the sequestering capacity of OH&middot; and the chelating capactiy of Fe were analyzed by the assay of 2 desoxy-d-ribose and the sequestering capacity of O2&middot; by the autooxidation of pyrogalol (2-12 mM THC). The prooxidant activity of THC (0.1-0.6 mM) on DNA induced by Cu-phenanthrolene and Fe-bleomycin was also studied. The prooxidant activity of TH-NO&middot; (10-12 mM) and of THNOO&middot; (10-12 mM), radicals derived from THC, was also assessed. Finally, it was determined the effect of THC on lipid peroxidation in rat's brain. homogenate The results showed that THC has a sequestering capacity of O2&middot; with a behavior depending on the concentration and CI50 of 10 mM of THC. A protective effect on 2 desoxy-d-ribose was found due to the chelating action of Fe and to the direct sequestration of OH&middot; with a ks of 4.6 &acute; 108M-1s-1. THC proved to have an effect depending on the concentration to damage DNA, whereas THNO&middot; did not damage this molecule, differently from THNOO&middot; that damaged the assayed concentrations. Lipid peroxidation in rat's brain homogenate was not inhibited.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[ALCALOIDES DE LA VINCA]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <h3 align="left">TRABAJOS ORIGINALES</h3>    <p>Centro Nacional Coordinador de Ensayos  Cl&iacute;nicos    <br> Centro de Investigaciones y Evaluaciones Biol&oacute;gicas</p><h2>Actividad  antioxidante del clorhidrato de triacetonamina <i>in vitro</i></h2>    <p><i>Lic.  Ivis C. Mendoza Hern&aacute;ndez, Dra. Tatiana Yoldi y Dr. Gregorio Mart&iacute;nez</i></p><h4>RESUMEN    <br>  </h4>    <p>Se estudiaron los efectos antioxidantes del clorhidrato de triacetonamina  (THC) in vitro a trav&eacute;s de una serie de ensayos, en los que se analiz&oacute;  la capacidad secuestrante del OH<span class="superscript">&middot;</span> y quelante  de Fe, con el ensayo de la 2 desoxi-d-ribosa y la capacidad secuestrante del O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;</span>  por la autooxidaci&oacute;n del pirogalol (2-12 mM THC). Se estudi&oacute; adem&aacute;s  la actividad prooxidante del THC (0,1-0,6 mM), sobre el ADN inducida por Cu-fenantrolina  y Fe-bleomicina. Tambi&eacute;n se valor&oacute; la actividad prooxidante del  TH-NO&middot; (10-12 mM) y del THNOO&middot; (10-12 mM), radicales derivados del  THC. Finalmente se determin&oacute; el efecto del THC sobre la peroxidaci&oacute;n  lip&iacute;dica en homogenato de cerebro de rata. Los resultados demostraron que  el THC posee capacidad secuestrante del O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;</span>,  con un comportamiento dependiente de la concentraci&oacute;n y CI<span class="subscript">50</span>  de 10 mM de THC. Se encontr&oacute; efecto protector sobre la 2 desoxi-d-ribosa,  tanto por acci&oacute;n quelante de Fe, como por secuestro directo de OH<span class="superscript">&middot;</span>  con una Ks de 4.6 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">8</span>  M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>. El THC  mostr&oacute; efecto dependiente de la concentraci&oacute;n para el da&ntilde;o  sobre el ADN, mientras que el THNO<span class="superscript">&middot;</span> no  da&ntilde;&oacute; a esta mol&eacute;cula, a diferencia del THNOO&middot; que  si produjo da&ntilde;o a las concentraciones ensayadas. La peroxidaci&oacute;n  lip&iacute;dica en homogenato de cerebro de rata no fue inhibida.</p>    <p><i>DeCS</i>:  ALCALOIDES DE LA VINCA/aislamiento de purificaci&oacute;n; ANTIOXIDANTES;AGENTES  ANTINEOPLASICOS; MELANOMA EXPERIMENTAL.    <br> </p>    <p>&nbsp;</p>    <p> El clorhidrato de triacetonamina  (THC) fue obtenido durante el proceso de aislamiento y purificaci&oacute;n de  los alcaloides de la Vinca por Cu&eacute;llar. Este compuesto surge como un artefacto  del m&eacute;todo de preparaci&oacute;n de los extractos totales de alcaloides,  utilizando acetona y amon&iacute;aco en el medio de reacci&oacute;n. Los estudios  realizados sobre las propiedades farmacol&oacute;gicas del THC, han demostrado:  acci&oacute;n midri&aacute;tica, ciclopl&eacute;jica, antiespasm&oacute;dica y  antisecretora, efectos cardiovasculares que reflejan una marcada hipotensi&oacute;n,  actividad antineopl&aacute;sica, efecto gangliobloqueador, actividad analg&eacute;sica  y antipir&eacute;tica, entre otros.<span class="superscript">1</span>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br>  La actividad citost&aacute;tica del THC ha sido ensayada en un variado n&uacute;mero  de tumores experimentales,<span class="superscript">2-5</span> encontr&aacute;ndose  un significativo efecto inhibidor en el melanoma de Harding Pasey.     <br>     <br> En  estudios realizados sobre compuestos atrapadores de electrones, se describe la  capacidad del TEMPONE, an&aacute;logo estructural del THC, para reaccionar con  las especies reactivas del ox&iacute;geno (EROs) y formar radicales estables por  horas. El TEMPONE es capaz de reaccionar con el ox&iacute;geno singlete (<span class="superscript">1</span>O<span class="subscript">2</span>),  el radical hidroxilo (OH<span class="superscript">&middot;</span>), el radical  ani&oacute;n super&oacute;xido (O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;-</span>),  el peroxinitrito (ONOO<span class="superscript">&middot;</span>) y el radical  peroxilo (RO<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;</span>)  para rendir los radicales TEMPONE-NO<span class="superscript">&middot;</span>  y/o TEMPONE-NOO<span class="superscript">&middot;</span>.    <br>     <br> Por su parte  las EROs se han vinculado con diferentes eventos asociados a la patogenia de gran  n&uacute;mero de patolog&iacute;as, entre estas el c&aacute;ncer.<span class="superscript">6-8  </span>Cabe entonces preguntarse si el THC posee la capacidad de reaccionar con  EROs y de hacerlo, si pudieran estas propiedades antioxidantes estar involucradas  en sus efectos antitumorales.    <br>     <br> Para dar respuesta a estas interrogantes  los autores de este estudio se propusieron evaluar la capacidad secuestrante in  vitro del THC sobre los radicales hidroxilo, ani&oacute;n super&oacute;xido y  su capacidad como quelante de iones de hierro, comprobar si el THC y sus radicales  ejercen efecto prooxidante sobre el ADN y evaluar el efecto del THC sobre la peroxidaci&oacute;n  lip&iacute;dica.    <br> </p><h4>M&eacute;todos    <br> </h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con concentraciones de  THC de 2-12 mM, se realizaron los ensayos siguientes:     <br>     <br> Ensayo de la 2-desoxi-d-ribosa:  el OH<span class="superscript">.</span> formado por reacci&oacute;n entre Fe<span class="superscript">3+</span>/EDTA/  H<span class="subscript">2</span>O<span class="subscript">2</span>, en presencia  de ascorbato, ataca al az&uacute;car y origina productos reactivos con el TBA.  El OH<span class="superscript">.</span> al generarse en el medio de reacci&oacute;n  es atrapado por el EDTA, y est&aacute; disponible para atacar a la desoxirribosa.  El THC competir&aacute; por el OH<span class="superscript">.</span>.     <br>     <br>  Actividad antioxidante in vitro empleando homogenato de cerebro de rata: eval&uacute;a  la actividad antioxidante por inhibici&oacute;n de los procesos peroxidativos  en homogenato de cerebro de ratas. En el medio se libera Fe, que cataliza los  procesos de peroxidaci&oacute;n. Se utilizaron 2 variantes: autoxidaci&oacute;n  espont&aacute;nea y catalizada por Fe<span class="superscript">3+</span>/ascorbato.    <br>      <br> Con concentraciones de THC de 0,1-0,6 mM se realizaron los ensayos siguientes:    <br>      <br> Ensayo del pirogalol: se basa en la autoxidaci&oacute;n espont&aacute;nea  del pirogalol en medio b&aacute;sico. Al generarse el radical O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">._</span>  en el medio de reacci&oacute;n, se acelerar&aacute; la autoxidaci&oacute;n del  pirogalol. La presencia de un secuestrador del radical ani&oacute;n super&oacute;xido  inhibir&aacute; la reacci&oacute;n de autoxidaci&oacute;n del pirogalol.<span class="superscript">9,10</span>    <br>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Potencial prooxidante en el modelo de da&ntilde;o al ADN inducido por Cu<span class="superscript">++</span>-fenantrolina:  se fundamenta en la capacidad del complejo Cu<span class="superscript">++</span>  -fenantrolina para da&ntilde;ar las bases del ADN en presencia de ox&iacute;geno.<span class="superscript">11</span>    <br>      <br> Potencial prooxidante en el modelo de da&ntilde;o al ADN inducido por bleomicina:  se fundamenta en la capacidad del complejo Fe+++-bleomicina para degradar los  az&uacute;cares del ADN, en presencia de ox&iacute;geno y agentes reductores,  cualquier compuesto que reduzca este complejo a Fe<span class="superscript">2+</span>-bleomicina  puede causar da&ntilde;os al ADN.<span class="superscript">11</span>    <br>     <br>  Determinaci&oacute;n del tiempo de autoxidaci&oacute;n del pirogalol en presencia  del THC: se mezclaron en un TE: 2,8 mL de soluci&oacute;n amortiguadora (TRIS-HCl)  a pH = 8,20 (50 mM), 100 &micro;L de THC (10 mM y 12 mM), 50 &micro;L de la soluci&oacute;n  de EDTA (1 mM) y 50 &micro;L de la soluci&oacute;n de pirogalol (0,124 mM). Se  midi&oacute; la absorbancia a 420 nm a t=o y cada 10 min por 2 h. Se llev&oacute;  a un gr&aacute;fico la absorbancia en funci&oacute;n del tiempo de reacci&oacute;n.    <br>  </p>    <p><i>Con concentraciones de 10 y 12 mM de THC</i>    <br> </p>    <p>Actividad prooxidante  del radical peroxinitrito (TH-NOO<span class="superscript">.</span>) en el modelo  de da&ntilde;o al ADN inducido por bleomicina: se expuso el ADN al TH-NOO<span class="superscript">.</span>  formado durante la autoxidaci&oacute;n del pirogalol en presencia de TRIS-HCl  8,20 (50mM), 100 &micro;L de muestra, soluci&oacute;n EDTA (1 mM) y soluci&oacute;n  de pirogalol (0,124 mM). Se dej&oacute; reaccionar durante 1 &frac12; h.<span class="superscript">9,10</span>    <br>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Actividad prooxidante del radical nitr&oacute;xido (TH-NO<span class="superscript">.</span>)  en el modelo de da&ntilde;o al ADN inducido por bleomicina: Se expuso el ADN al  TH-NO<span class="superscript">.</span> previamente formado seg&uacute;n la t&eacute;cnica  de la 2-desoxi-d-ribosa. En presencia de soluci&oacute;n EDTA (100 mM), soluci&oacute;n  de FeCl<span class="subscript">3 </span>(100 mM), 100 &micro;L de THC, soluci&oacute;n  amortiguadora 7,4 (10 mM), per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (2,8 mM) y soluci&oacute;n  de &aacute;cido asc&oacute;rbico (100 mM). Se dej&oacute; reaccionar durante 1  &frac12; h.<span class="superscript">12 </span>    <br> En todos los casos las determinaciones  se hicieron mediante productos reactivos con el &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico  (TBA) seg&uacute;n describe el procedimiento de Auroma.<span class="superscript">13</span></p><h4>RESULTADOS</h4>    <p>En  el ensayo de la 2-desoxi-d-ribosa (fig. 1) se encontr&oacute; que a bajas concentraciones  de THC se logra un nivel constante de captaci&oacute;n del OH<span class="superscript">&middot;</span>  en presencia de EDTA y que esta reacci&oacute;n aumenta a altas concentraciones.  La Ks calculada es de 4,6 <font face="Symbol">&acute;</font>10<span class="superscript">8</span>  M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>.<span class="superscript">15</span>  Seg&uacute;n muestra la curva sin EDTA el THC exhibe capacidad quelante de Fe,  dosis-dependiente, encontr&aacute;ndose el efecto m&aacute;ximo para la protecci&oacute;n  del az&uacute;car con 10 mM.</p>    <p>&nbsp;</p>    <p align="center"><a href="img/revistas/ibi/v22n2/f0101203.jpg"><img src="img/revistas/ibi/v22n2/f0101203.jpg" width="162" height="89" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  1. Efecto antioxidante del THC en el ensayo de 2-desoxi-d-ribosa.</p>    <p align="left">    <br>  Al realizar el gr&aacute;fico del porcentaje de inhibici&oacute;n de la autoxidaci&oacute;n  del pirogalol contra concentraci&oacute;n de THC (fig. 2) se observa que existe  captaci&oacute;n dosis-dependiente del O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;-</span>  y la CI<span class="subscript">50</span> se alcanza con 10 mM de THC.</p>    <p align="left">&nbsp;</p>    <p align="center"><a href="img/revistas/ibi/v22n2/f0201203.jpg"><img src="img/revistas/ibi/v22n2/f0201203.jpg" width="151" height="89" border="0"></a></p>    
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Fig.  2. Efecto de la concentraci&oacute;n de THC en % Inhibici&oacute;n de autoxidaci&oacute;n  del pirogalol (r<span class="subscript">e</span>= 0,98; r<span class="superscript">2</span><span class="subscript">e</span>=  0,96; r<span class="subscript">a</span>= 0,98; r<span class="superscript">2</span><span class="subscript">a</span>  = 0,97)</p>    <p>    <br> La tabla 1 muestra los resultados en los ensayos de actividad  prooxidante en los modelos de da&ntilde;o al ADN inducidos por Cu-fenantrolina  y Fe-bleomicina a las concentraciones de 0,1-0,6 mM. En ambos ensayos el valor  de absorbancia del blanco representa el da&ntilde;o provocado al ADN por el i&oacute;n  met&aacute;lico presente en el medio. El control positivo indica el deterioro  oxidativo en el ADN por el &aacute;cido asc&oacute;rbico adicionado a las muestras.  </p>    <p align="center">Tabla 1. Evaluaci&oacute;n de la actividad prooxidante del  THC </p>    <div align="center"> <table width="75%" border="1" align="center"> <tr>  <td>     <div align="center">Concentraci&oacute;n THC (mM)</div></td><td>     <div align="center">Cu2+  fenantrolina A (535 nm)</div></td><td>     <div align="center">Fe3+ bleomicina A (535nm)</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="center">0,1 </div></td><td>     <div align="center">0,191 &plusmn;  0,004 a</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">0,074 &plusmn; 0,003 a</div></td></tr>  <tr> <td height="19">     <div align="center">0,2</div></td><td height="19">     <div align="center">0,177  &plusmn; 0,002 a</div></td><td height="19">     <div align="center">0,073 &plusmn;  0,002 a</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="center">0,3 </div></td><td>     <div align="center">0,172  &plusmn; 0,0007 a</div></td><td>     <div align="center">0,063 &plusmn; 0,006 a</div></td></tr>  <tr> <td height="20">     <div align="center">0,4</div></td><td height="20">     <div align="center">0,170  &plusmn; 0,009 a</div></td><td height="20">     <div align="center">0,058 &plusmn;  0,004 a </div></td></tr> <tr> <td height="23">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">0,5</div></td><td height="23">      <div align="center">0,165 &plusmn; 0,007 a</div></td><td height="23">     <div align="center">0,056  &plusmn; 0,003 a</div></td></tr> <tr> <td height="23">     <div align="center">0,6</div></td><td height="23">      <div align="center">0,160 &plusmn; 0,005 a</div></td><td height="23">     <div align="center">0,044  &plusmn; 0,000 b</div></td></tr> <tr> <td height="19">     <div align="center">Blanco</div></td><td height="19">      <div align="center">0,147 &plusmn; 0,001 b </div></td><td height="19">     <div align="center">0,044  &plusmn; 0,003 b</div></td></tr> <tr> <td height="19">     <div align="center">Control  positivo</div></td><td height="19">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">0,232 &plusmn; 0,009 c</div></td><td height="19">      <div align="center">0,224 &plusmn; 0,005 c</div></td></tr> </table></div>    <p align="center">&nbsp;</p>    <p align="center">A:  valor promedio de 3 determinaciones &plusmn; DE. Letras diferentes representan  diferencias (p&lt; 0,05).    <br> </p>    <p>&nbsp;</p>    <p>En el ensayo Cu-fenantrolina los valores  de absorbancia reportados para el THC son menores que el correspondiente al control  positivo, encontr&aacute;ndose diferencias significativas (p&lt; 0,05) entre ellos.  Tambi&eacute;n se hallaron diferencias significativas (p&lt; 0,05) con respecto  al blanco, lo que indica que el THC en las concentraciones ensayadas produjo efecto  oxidativo sobre las bases del ADN, aunque la concentraci&oacute;n que ocasion&oacute;  mayor da&ntilde;o (0,1 mM) no sobrepas&oacute; 30 % con respecto al blanco. La  disminuci&oacute;n en la absorbancia concentraci&oacute;n dependiente se&ntilde;ala  a un posible efecto quelante de iones Cu, lo que puede condicionar el efecto protector  del THC sobre la mol&eacute;cula de ADN (fig. 3). </p>    <p align="center"><a href="img/revistas/ibi/v22n2/f0301203.jpg"><img src="img/revistas/ibi/v22n2/f0301203.jpg" width="152" height="91" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  3. Ensayo Cu - fenantrolina (r<span class="subscript">e</span>= 0,94; r<span class="superscript">2</span><span class="subscript">e</span>=  0,89; r<span class="subscript">a</span>= 0,95; r<span class="superscript">2</span><span class="subscript">a</span>=  0.91).</p>    <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> En el ensayo de bleomicina tambi&eacute;n se encuentran diferencias  significativas (p&lt; 0,05) entre los valores de absorbancia para las diferentes  concentraciones de THC, el control positivo y el blanco, lo que indica la existencia  de un peque&ntilde;o da&ntilde;o del THC sobre los az&uacute;cares del ADN; sin  embargo, si se compara el valor de la absorbancia de la concentraci&oacute;n de  mayor efecto prooxidante (0,1 mM) con el control positivo se puede observar que  esta concentraci&oacute;n produce solo 16,66 % del da&ntilde;o provocado por el  ascorbato.    <br>     <br> La figura 4 representa la relaci&oacute;n absorbancia contra  la concentraci&oacute;n de THC en el ensayo de bleomicina. En este caso, al igual  que en el ensayo anterior, existi&oacute; una disminuci&oacute;n concentraci&oacute;n  dependiente del efecto prooxidante en la medida en que aument&oacute; la concentraci&oacute;n  de THC. Como se observa en la tabla 1 a los valores de 10 a 12 mM se produce efecto  protector, inclusive con respecto a los valores del blanco.    <br>     <br> </p>    <p align="center"><a href="f0401203.jpgimg/revistas/ibi/v22n2/"><img src="img/revistas/ibi/v22n2/f0401203.jpg" width="174" height="82" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  4. Ensayo de bleomicina (r<span class="subscript">e</span>= 0,94; r<span class="superscript">2</span><span class="subscript">e</span>=  0,88; r<span class="subscript">a</span>= 0,95; r<span class="superscript">2</span><span class="subscript">a</span>=  0.91).</p>    <p>    <br> La actividad de los radicales TH-NOO<span class="superscript">&middot;</span>  y TH-NO<span class="superscript">&middot;</span> fue evaluada en el modelo de  da&ntilde;o al ADN de esperma de salm&oacute;n inducido por bleomicina. Seg&uacute;n  se muestra en la tabla 2, las concentraciones de TH-NOO<span class="superscript">&middot;</span>,  que corresponden a las concentraciones de 10 y 12 mM de THC de partida, producen  un aumento significativo (p&lt; 0,05) de la absorbancia a 535 nm, con respecto  al blanco, que se corresponde con un aumento concentraci&oacute;n-dependiente  de da&ntilde;o al ADN. En cambio, los valores de absorbancia para iguales concentraciones  de THC no superan el reportado para el blanco, mientras que para el TH-NO<span class="superscript">&middot;</span>  los valores de absorbancia no superan los valores encontrados para el blanco;  esto demuestra que al igual que el THC, del cual se genera (tabla 2), no ejerce  efectos prooxidantes sobre el ADN.</p>    <p>&nbsp;</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Tabla 2. Evaluaci&oacute;n  de la actividad prooxidante del THC, TH-NOO<span class="superscript">&middot;  </span>y del TH - NO<span class="superscript">&middot;</span></p>    <div align="center">  <table width="75%" border="1" align="center"> <tr> <td>     <div align="center">Concentraci&oacute;n  (mM)</div></td><td>     <div align="center">A ( 535 nm)</div></td></tr> <tr> <td>      <div align="center">    <br> TH-NOO&middot; (10) </div>    <p align="center">TH-NOO&middot;  (12)</p>    <p align="center">Blanco </p></td><td>     <p align="center">0,312 &plusmn;  0,008 a</p>    <p align="center">0,330 &plusmn; 0,004 a</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">0,246  &plusmn; 0,001 b</p></td></tr> <tr> <td>     <p align="center">TH - NO&middot; (10)</p>    <p align="center">H  - NO&middot; (12)</p>    <p align="center">Blanco</p></td><td>     <p align="center">0,248  &plusmn; 0,015 a</p>    <p align="center">0,293 &plusmn; 0,015 b</p>    <p align="center">0,303  &plusmn; 0,008 b</p></td></tr> <tr> <td height="100">     <p align="center">THC (10)T</p>    <p align="center">HC  (12)</p>    <p align="center">Blanco</p></td><td height="100">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">0,030  &plusmn; 0,004 a </p>    <p align="center">0,020 &plusmn; 0,003 a</p>    <p align="center">0,044  &plusmn; 0,003 b</p></td></tr> </table></div>    <p align="center">&nbsp;</p>    <p align="center">A:  valor promedio de 3 determinaciones &plusmn; DE. Letras diferentes representan  diferencias (p&lt; 0,05). </p>    <p>    <br> En el ensayo de actividad antioxidante en  la POL espont&aacute;nea y catalizada por Fe<span class="superscript">3+</span>/ascorb  in vitro la absorbancia del blanco representa 100 % del da&ntilde;o producido  sobre los fosfol&iacute;pidos. En la autoxidaci&oacute;n catalizada por Fe<span class="superscript">3+</span>-  ascorbato, el porcentaje Imx (D.O.blanco - D.O.muestra / D.O.blanco x 100) se  obtuvo para los 10 mM de THC y fue tan solo de 18,3 %, mientras que para la autooxidaci&oacute;n  espont&aacute;nea fue insignificante. </p><h2></h2><h4>DISCUSI&Oacute;N</h4>    <p>El  ensayo de la 2-desoxi-d-ribosa demostr&oacute; que el EDTA es m&aacute;s af&iacute;n  por el Fe que con el THC, es por eso que cuando el THC est&aacute; en presencia  de EDTA no puede proteger a esta mol&eacute;cula, porque el quelato EDTA-Fe<span class="superscript">3</span>  formado permite que el Fe catalice la formaci&oacute;n del OH&middot;. Hasta la  C=10 mM el efecto protector sobre la mol&eacute;cula de 2-desoxi-d-ribosa es fundamentalmente  por acci&oacute;n quelante de Fe, a partir de ese valor, aparece un incremento  de la protecci&oacute;n por reacci&oacute;n directa con el OH&middot;.    <br>     <br>  La Ks calculada para el THC (4,6 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">8</span>  M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>), resulta  de menor magnitud comparada con secuestrantes m&aacute;s efectivos, por ejemplo:  f&aacute;rmacos pertenecientes al grupo de los AINE cuyas Ks oscilan entre 10<span class="superscript">9</span>  y 10<span class="superscript">10</span> M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>.<span class="superscript">13,14</span>  El valor de la Ks del THC con el OH<span class="superscript">&middot;</span> no  limita su efecto secuestrante, siempre que se logre acumulaci&oacute;n en el sitio  de acci&oacute;n.<span class="superscript">15</span> De igual forma sucede con  la CI<span class="subscript">50</span>, para el secuestro del radical O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;-</span>,  la cual es relativamente alta para un efecto secuestrante in vivo.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Si  se toma en cuenta que el THC demostr&oacute; poseer capacidad quelante para el  hierro en el modelo de la 2 desoxi-d-ribosa, se pudiera pensar que las concentraciones  m&aacute;s peque&ntilde;as de THC no protegen al ADN, sino que probablemente propicien  la reducci&oacute;n de los iones met&aacute;licos, con lo que se ocasiona el da&ntilde;o.  Pero en la medida en que se aumenta su concentraci&oacute;n se manifiesta el efecto  quelante, que es predominante, de modo que los iones Cu<span class="superscript">+</span>  y Fe<span class="superscript">++</span> no pueden catalizar el da&ntilde;o provocado  por las EROs generadas en la reacciones de actividad prooxidante.    <br>     <br> El  aumento de la absorbancia en presencia de TH-NOO<span class="superscript">&middot;</span>,  con respecto al blanco, se corresponde a un aumento concentraci&oacute;n-dependiente  de da&ntilde;o al ADN; sin embargo, los valores de absorbancia para iguales concentraciones  de THC no superan el reportado para el blanco, lo que demuestra que el THC per  se no lesiona al ADN, pero en forma de radical TH-NOO<span class="superscript">&middot;  </span>s&iacute; produce da&ntilde;o sobre esta mol&eacute;cula.    <br>     <br> Para  el TH-NO<span class="superscript">&middot; </span>se obtuvieron valores similares  con respecto al blanco, lo que demuestra que este radical no ejerce efectos prooxidantes  sobre el ADN. A pesar de que no se dispone de la t&eacute;cnica de esp&iacute;n  electr&oacute;n para corroborar la presencia del TH - NO<span class="superscript">&middot;</span>,  existen elementos que permiten suponer la presencia del radical. El ensayo de  la desoxirribosa demostr&oacute; que el THC es capaz de secuestrar OH&middot;  con una Ks de 4,6 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">8</span>  M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>, lo que  debe conducir a su transformaci&oacute;n en radical NO<span class="superscript">&middot;</span>,<span class="superscript">16-19</span>  adem&aacute;s compuestos similares como el TEMPONE al reaccionar con el OH<span class="superscript">&middot;</span>  generan radicales NO<span class="superscript">&middot;</span>.    <br>     <br> Como se  deriva de la interpretaci&oacute;n de los resultados en el ensayo de POL en homogenato  de cerebro de ratas, el THC no es capaz de inhibir los procesos de peroxidaci&oacute;n  lip&iacute;dica en este ensayo. Los resultados parecen contradictorios con los  de 2-desoxi-d-ribosa, donde se encontr&oacute; efecto protector por secuestro  directo de OH<span class="superscript">&middot;</span> y por efecto quelante de  Fe para las concentraciones de THC ensayadas.    <br>     <br> La ausencia de efecto en  este caso pudiera explicarse porque el radical peroxilo (RO<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;</span>),<span class="superscript">14</span>  causante del da&ntilde;o oxidativo en este ensayo, no fuera efectivamente secuestrado  por el THC, o porque la reacci&oacute;n del THC con este radical produjera un  compuesto incapaz de quelatar Fe y por tanto disminuir o detener los efectos oxidativos.  Por &uacute;ltimo, el radical formado en esta reacci&oacute;n pudiera a su vez  provocar da&ntilde;o sobre los l&iacute;pidos.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p>    <p><i>Relaci&oacute;n actividad  citost&aacute;tica/actividad &quot;antioxidante&quot; del THC</i>    <br> </p>    <p>En  los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han demostrado grandes oscilaciones en la actividad  de MnSOD de c&eacute;lulas tumorales, en un grupo de tumores se presenta una alta  actividad y en otros se observa el efecto contrario.<span class="superscript">20  </span>Considerando los estudios farmacocin&eacute;ticos y de biodistribuci&oacute;n<span class="superscript">15</span>  donde se reporta acumulaci&oacute;n del THC en cerebro, cerebelo, h&iacute;gado  y pr&oacute;stata y teniendo en cuenta estos resultados, se puede suponer que  para alcanzar el efecto citost&aacute;tico con el THC es necesario que este se  acumule en el tejido donde se encuentre el tumor, y lograr as&iacute; las concentraciones  necesarias para que reaccione con las EROs.     <br>     <br> Por otra parte si el tumor  se caracteriza por presentar baja actividad de MnSOD, como ocurre en los melanomas,  esto conducir&iacute;a a que el status redox tumoral se caracterice por una sobreproducci&oacute;n  de O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;-</span>,  que trae consigo cambios fisiol&oacute;gicos en la c&eacute;lula, p&eacute;rdida  de la regulaci&oacute;n del proceso de diferenciaci&oacute;n entre otras alteraciones.      <br>     <br> La presencia de THC en el medio y su reacci&oacute;n con O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;-</span>  dar&iacute;a lugar a TH-NOO<span class="superscript">&middot;</span>, este mecanismo  podr&iacute;a conducir a la inhibici&oacute;n del crecimiento tumoral por 2 v&iacute;as:  produciendo microlesiones en el ADN que conduzcan a la mutaci&oacute;n o a la  muerte celular o por reducciones en los niveles de O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;-</span>  consecuentemente alterando el balance redox celular, con lo cual alterar&iacute;a  la fisiolog&iacute;a celular. El efecto diferenciado del THC sobre diversos tumores  pudiera explicarse tanto por el hecho de que no se alcancen en todos los casos  las concentraciones precisas en el sitio blanco, as&iacute; como a las especificidades  del balance redox de cada tumor.    <br>     <br> El THC mostr&oacute; capacidad secuestrante  de radicales hidroxilo, exhibiendo una Ks de 4,6 <font face="Symbol">&acute;</font>  10<span class="superscript">8</span> M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>  as&iacute; como capacidad de secuestro de radical ani&oacute;n super&oacute;xido,  encontr&aacute;ndose un efecto dependiente de la concentraci&oacute;n con una  CI<span class="subscript">50</span> de 10 mM de THC, para la autoxidaci&oacute;n  del pirogalol. De igual forma se encontr&oacute; un moderado efecto quelante de  iones Fe dependiente de la concentraci&oacute;n de THC.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> El efecto prooxidante  del THC sobre el ADN es concentraci&oacute;n dependiente, disminuyendo el da&ntilde;o  al aumentar la concentraci&oacute;n. El radical THNO<span class="superscript">&middot;</span>  no mostr&oacute; efecto prooxidante, mientras que el THNOO<span class="superscript">&middot;</span>  produjo da&ntilde;os oxidativos.    <br>     <br> La peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica  en homogenato de cerebro de rata no fue inhibida por el THC (2-12 mM).</p><h4>Summary  </h4>    <p>The antioxidant effects of triacetoneamine hydrochloride (THC) were studied  in vitro by a series of assays, in which the sequestering capacity of OH<span class="superscript">&middot;</span>  and the chelating capactiy of Fe were analyzed by the assay of 2 desoxy-d-ribose  and the sequestering capacity of O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;  </span>by the autooxidation of pyrogalol (2-12 mM THC). The prooxidant activity  of THC (0.1-0.6 mM) on DNA induced by Cu-phenanthrolene and Fe-bleomycin was also  studied. The prooxidant activity of TH-NO<span class="superscript">&middot;</span>  (10-12 mM) and of THNOO&middot; (10-12 mM), radicals derived from THC, was also  assessed. Finally, it was determined the effect of THC on lipid peroxidation in  rat's brain. homogenate The results showed that THC has a sequestering capacity  of O<span class="subscript">2</span><span class="superscript">&middot;</span>  with a behavior depending on the concentration and CI50 of 10 mM of THC. A protective  effect on 2 desoxy-d-ribose was found due to the chelating action of Fe and to  the direct sequestration of OH<span class="superscript">&middot;</span> with a  ks of 4.6 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">8</span>M<span class="superscript">-1</span>s<span class="superscript">-1</span>.  THC proved to have an effect depending on the concentration to damage DNA, whereas  THNO<span class="superscript">&middot;</span> did not damage this molecule, differently  from THNOO<span class="superscript">&middot;</span> that damaged the assayed concentrations.  Lipid peroxidation in rat's brain homogenate was not inhibited.     <br> .    <br> <i>Subject  headings:</i> VINCA ALCALOIDS/isolation of purification; ANTIOXIDANTS; ANTINEOPLASTIC  AGENTS; MELANOMA, EXPERIMENTAL.</p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>      <!-- ref --><li> Cu&eacute;llar A. Tesis de doctorado: &quot;Contribuci&oacute;n al estudio  qu&iacute;mico y biol&oacute;gico de Catharanthus roseus G. Don que crece en Cuba&quot;,  1996.</li>    <!-- ref --><li> Castillo B. Efecto antitumoral de la Vincubina sobre el melanoma  de Harding Pasey. Rev Cubana Farm 1977;11:287-92.</li>    <!-- ref --><li>&#151;&#151;&#151;&#151;.  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Mendoza Hern&aacute;ndez</i> Centro Nacional  Coordinador de Ensayos Cl&iacute;nicos. 200 y Avenida 21, Atabey, Ciudad de La  Habana, Cuba. Tel&eacute;f: 218308, 217397</p>    ]]></body>
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