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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[VIMANG® y mangiferina inhiben la expresión de ICAM-1 en células endoteliales estimuladas con citocinas proinflamatorias]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Laboratorio de Farmacología, Centro de Química Farmacéutica  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[It was proved that VIMANG® (aqueous extract of the cortex of Mangifera indica L.) has antioxidant, immunologic adjuvants and antiinflammatory actions. In the present paper it was demonstrated that VIMANG® and the mangiferin isolated from it inhibited the expression of the ICAM-1 adhesion molecule. Studies of adhesion in endothelial cells with a leucocytic cellular line (HL-60) allowed to show the inhibition on the expression of the ICAM-1 receptor, on proving that the pretreatment of the endothelial cells with the extract of M. indica and mangiferin had values similar to the controls without stimulus. Both products inhibited the chemotactic activity (mediated by ICAM-1) of polymorphonuclear leucocytes stimulated with N-formyl-methyonil-leucyl-phenylalanine. These studies allowed to know new aspects connected with the mechanisms of the antiinflammatory action of the aqueous extract of Mangifera inidca L., which shows the therapeutic potential of this extract for treating a variety of inflammatory diseases including cellular adhesion and the leucocytes traffic.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[MANGIFERA INDICA]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ Centro de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica    <br> Centro Nacional de Investigaciones  Cient&iacute;ficas    <br> Istituto di Ricerche Farmacologiche &quot;Mario Negri&quot;,  Italia <h2>VIMANG<font face="Symbol">&Ograve;</font> y mangiferina inhiben la  expresi&oacute;n de ICAM-1 en c&eacute;lulas endoteliales estimuladas con citocinas  proinflamatorias</h2>    <p><i>Dra. Amada E. Beltr&aacute;n N&uacute;&ntilde;ez, Dra.  Nurys Led&oacute;n Naranjo, Dra. Cheyla Romay Penabad, Dra. Marina Sironi, T&eacute;c.  Gypsy Quintero Rodr&iacute;guez, Dr. Gabino Garrido Garrido y Dr. Ren&eacute;  Delgado Hern&aacute;ndez</i></p><h4>    <br> Resumen</h4>    <p>Se demostr&oacute; que  VIMANG<font face="Symbol">&Ograve; </font>(extracto acuoso de la corteza de <i>Mangifera  indica</i> L.) posee acciones antioxidante, inmunomoduladora y antiinflamatoria;  tambi&eacute;n que VIMANG<font face="Symbol">&Ograve;</font> y la mangiferina  aislada de este inhibieron la expresi&oacute;n de la mol&eacute;cula de adhesi&oacute;n  ICAM-1. Estudios de adhesi&oacute;n en c&eacute;lulas endoteliales con una l&iacute;nea  celular leucocitaria (HL-60) permitieron demostrar la inhibici&oacute;n sobre  la expresi&oacute;n del receptor de ICAM-1, al comprobar que el pretratamiento  de las c&eacute;lulas endoteliales con el extracto de <i>M. indica </i>y la mangiferina  mantuvieron valores similares a los controles sin est&iacute;mulo. Ambos productos  inhibieron la actividad quimiot&aacute;ctica (mediada por ICAM-1) de leucocitos  polimorfonucleares estimulados con N-formil-metionil-leucil-fenilalanina. Estos  estudios permitieron incursionar en nuevos aspectos relacionados con los mecanismos  de acci&oacute;n antiinflamatoria del extracto acuoso de <i>Mangifera indica</i>  L., lo que demuestra el potencial terap&eacute;utico de este extracto para el  tratamiento de una variedad de enfermedades inflamatorias que incluyen la adhesi&oacute;n  celular y el tr&aacute;fico de leucocitos.</p>    <p><i>DeCS</i>: MANGIFERA INDICA;  MOLECULAS DE ADHESION CELULAR; ACCION FARMACODINAMICA DEL MEDICAMENTO HOMEOPATICO.</p>    <p>    <br>      <br> La adhesi&oacute;n de los leucocitos a las c&eacute;lulas endoteliales ha  sido implicada en la patog&eacute;nesis de una variedad de enfermedades que ocasionan  la afectaci&oacute;n de &oacute;rganos, como aterosclerosis, &uacute;lceras g&aacute;stricas,  choque hemorr&aacute;gico, infarto de miocardio, entre otras.<span class="superscript">1,2</span>  En estas interacciones participan familias de glicoprote&iacute;nas de adhesi&oacute;n  que son las responsables, entre otros factores, de que los leucocitos se adhieran  firmemente al endotelio y migren hacia los tejidos, lo que produce posteriormente  el da&ntilde;o. Es por esta raz&oacute;n que, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os,  los esfuerzos de los investigadores se han dirigido a la b&uacute;squeda de compuestos  capaces de modular los mediadores y receptores que intervienen en estos procesos  de reconocimiento celular.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> ICAM-1 (intracellular adhesion molecule-1)  es una de las principales glicoprote&iacute;nas pertenecientes a la superfamilia  de las inmunoglobulinas presentes en el endotelio vascular, responsable de la  adhesi&oacute;n y migraci&oacute;n leucocitaria. Esta mol&eacute;cula incrementa  su expresi&oacute;n en la superficie vascular despu&eacute;s de estimulaci&oacute;n  con est&iacute;mulos proinflamatorios, como el factor necrosante de tumores a  (TNF<font face="Symbol">a</font>) y la interleucina-1 (IL-1<font face="Symbol">b</font>).<span class="superscript">3</span>  En numerosos estudios realizados tanto in vitro como in vivo se ha demostrado  que diversos factores tanto qu&iacute;micos como f&iacute;sicos pueden influenciar  en el tiempo y la magnitud en que los leucocitos son capaces de adherirse al endotelio  vascular.<span class="superscript">1,2</span>    <br>     <br> El Centro de Qu&iacute;mica  Farmac&eacute;utica ha desarrollado un nuevo producto obtenido a partir de la  experiencia en el uso etnom&eacute;dico en Cuba del extracto acuoso de la corteza  de <i>Mangifera indica</i> L. (familia Anacardiaceae) y que se comercializa como  suplemento nutricional antioxidante bajo la marca registrada VIMANG<font face="Symbol">&Ograve;</font>.  En el an&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico realizado a este extracto se ha comprobado  la presencia de 9 compuestos fen&oacute;licos cuyo componente mayoritario es la  glucosilxantona mangiferina. Tambi&eacute;n se determinaron az&uacute;cares libres,  &aacute;cidos grasos y polioles.<span class="superscript">4</span> En investigaciones  recientes se ha podido demostrar que posee una acci&oacute;n antioxidante potente,<span class="superscript">5-9</span>  as&iacute; como efecto inmunomodulador,<span class="superscript">10 </span>antigenot&oacute;xico<span class="superscript">11</span>  y antiinflamatorio<span class="superscript">12,13</span> Debido a estos antecedentes,  en el presente trabajo se estudi&oacute; la actividad del extracto acuoso de <i>Mangifera  indica</i> y la mangiferina sobre el proceso de adhesi&oacute;n de c&eacute;lulas  leucocitarias (HL-60) a endotelio vascular activado con TNF<font face="Symbol">a</font>  e IL-1<font face="Symbol">b</font>, as&iacute; como la acci&oacute;n moduladora  sobre la actividad quimiot&aacute;ctica de leucocitos polimorfonucleares (PMN)  estimulados con N-formil-metionil-leucil-fenilalanina (fMLP) y la expresi&oacute;n  de ICAM-1 en c&eacute;lulas endoteliales activadas. </p><h4>M&eacute;todos</h4>    <p>Obtenci&oacute;n  del extracto estandarizado de <i>Mangifera indica</i> L. y mangiferina: <i>M.  indica</i> fue colectada en campos cultivados en la regi&oacute;n de Pinar del  R&iacute;o, Cuba. Muestras de la planta (c&oacute;digo: 41722) fueron depositadas  en el Herbario de la Academia de Ciencias, bajo la custodia del Instituto de Ecolog&iacute;a  y Sistem&aacute;tica, Ministerio de Ciencia, Tecnolog&iacute;a y Medio Ambiente,  La Habana, Cuba. El extracto de la corteza fue preparado por decocci&oacute;n  durante 1 h y posteriormente concentrado por evaporaci&oacute;n y atomizaci&oacute;n  para obtener un polvo fino de color carmelita. Este funde a 210-215 &ordm;C con  descomposici&oacute;n. La composici&oacute;n qu&iacute;mica del extracto ha sido  caracterizada por cromatograf&iacute;a (plana, l&iacute;quida y gaseosa), espectrometr&iacute;a  de masa y espectroscopia UV/VIS.<span class="superscript">4</span>    <br>     <br> La  mangiferina (2-<font face="Symbol">b</font>-D-glucopiranosil-1,3,6,7-tetra-hidroxi-9H-xanten-9-ona)  fue obtenida en el laboratorio de Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica del Centro de  Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica. Esta fue purificada del extracto estandarizado  de la corteza del &aacute;rbol de <i>M. indica</i> por extracci&oacute;n con metanol  y su pureza (90 %) fue comparada con un patr&oacute;n (Sigma, St. Louis, EE.UU.)  por m&eacute;todos espectrosc&oacute;picos.<span class="superscript">4</span>    <br>      <br> Para los diferentes ensayos, tanto el extracto como la mangiferina se disolvieron  en una disoluci&oacute;n de dimetil sulf&oacute;xido (DMSO) a 0,4 % y agua est&eacute;ril.    <br>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br> L&iacute;neas celulares: las c&eacute;lulas HUVEC, fueron obtenidas a partir  de un cultivo primario de endotelio aislado de vena de cord&oacute;n umbilical  humano por tratamiento con colagenasa 0,02 % (Sigma, St. Louis, EE.UU.) y mantenidas  en medio M199 (Sigma, St. Louis, EE.UU.) suplementado con glutamina (2 mM), y  penicilina-estreptomicina (100 <font face="Symbol">m</font>g/mL) y 10 % de suero  fetal bovino (Hyclone Lab. Inc., Logan, EE.UU.), en frascos T25 cm<span class="superscript">2</span>  est&eacute;riles (Costar, EE.UU.), seg&uacute;n metodolog&iacute;a descrita por  <i>Lampugnani </i>y otros<span class="superscript">14</span> Posteriormente, las  c&eacute;lulas fueron transferidas a placas de 96 pocillos (100<font face="Symbol">  m</font>L/pozo) y se mantuvieron en el mismo medio suplementado, adem&aacute;s,  con heparina 100 <font face="Symbol">m</font>g/mL (Sigma, St. Louis, EE.UU.) y  un suplemento de crecimiento celular (50 <font face="Symbol">m</font>g/mL) en  una atm&oacute;sfera de (5 % de CO<span class="subscript">2</span> y 37 &ordm;C)  hasta que alcanzaron el estado de confluencia.    <br>     <br> La l&iacute;nea celular  leucocitaria HL-60 fue gentilmente donada por el Instituto de Inmunolog&iacute;a  Molecular (La Habana, Cuba) y mantenidas en medio RPMI 1640 (Seromed, Berl&iacute;n,  Alemania) suplementado con glutamina (2 mM), penicilina-estreptomicina (100 <font face="Symbol">m</font>g/mL)  y suero fetal bovino 10 % en atm&oacute;sfera de 5 % de CO<span class="subscript">2  </span>y 37 &ordm;C.    <br>     <br> Expresi&oacute;n de ICAM-1. ELISA celular: las c&eacute;lulas  HUVEC cultivadas en placas de 96 pozos se estimularon con IL-1<font face="Symbol">b</font>  (1 ng/mL) durante 24 h en medio de cultivo M199 (Sigma, St. Louis, EE.UU.) suplementado  con 10 % de suero suero fetal bovino inactivado (FCS, Hyclone Lab. Inc., Logan,  EE.UU.) y simult&aacute;neamente con el est&iacute;mulo se a&ntilde;adieron las  diferentes concentraciones del extracto de <i>M. indica </i>y mangiferina (50-100<font face="Symbol">  m</font>g/mL). Posteriormente, se retir&oacute; el medio de cultivo de los pozos  y las c&eacute;lulas se lavaron 2 veces con medio de cultivo RPMI 1640 suplementado  con 2,5 % de FCS y 0,1 % de azida s&oacute;dica. Luego se incubaron con el primer  anticuerpo anti-ICAM-1 (50 <font face="Symbol">m</font>L/pozo) a temperatura ambiente  durante 60 min. Despu&eacute;s, se lavaron 2 veces con medio RPMI 1640 suplementado  con 2,5 % de FCS y se fijaron con paraformaldeh&iacute;do (3 %) por 15 min a temperatura  ambiente (se mantuvo la placa en la oscuridad). Despu&eacute;s se lavaron 3 veces  (5 min por lavado) con 200 <font face="Symbol">m</font>L/pozo de disoluci&oacute;n  salina tamponada con fosfato (DSTF) y 2,5 % de FCS. El &uacute;ltimo lavado se  realiz&oacute; a temperatura ambiente durante 1 h. Se a&ntilde;adieron 100 <font face="Symbol">m</font>L/pozo  del conjugado anti-mouse-peroxidase (DAKO, Dinamarca) y se incubaron 1 h a temperatura  ambiente. Se lavaron 2 veces con DSTF y 2,5 % de FCS y una vez con DSTF. Posteriormente,  se a&ntilde;adieron 100 <font face="Symbol">m</font>L del crom&oacute;geno (sustrato  ABTS peroxidasa) y se realiz&oacute; la medici&oacute;n de la absorbancia, a una  longitud de onda de 405 nm en un lector de microplacas (PR-521SUMA, Cuba).<span class="superscript">15</span>  Los datos fueron expresados como porcentaje de la expresi&oacute;n de ICAM-1 respecto  al control de 3 experimentos independientes.    <br>     <br> Ensayo de quimiotaxis: el  m&eacute;todo para el an&aacute;lisis de la quimiotaxis fue una modificaci&oacute;n  del empleado por <i>Valentino</i> y otros.<span class="superscript">16</span>  La actividad quimiot&aacute;ctica fue analizada mediante c&aacute;maras quimiot&aacute;cticas  apropiadas (Boyden) que forman parte de un kit comercial (FAR S.R.L., Italia).  Se aislaron los leucocitos polimorfonucleares (LPMN) de donantes adultos sanos  y se emplearon en los ensayos 106 c&eacute;lulas/mL. Posteriormente, fueron a&ntilde;adidos  el agente quimiot&aacute;ctico N-formil-metionil-leucil-fenilalanina (fMLP 10-7  M) y el extracto de <i>M. indica</i> (50-200 <font face="Symbol">m</font>g/mL),  mangiferina (20<font face="Symbol"> m</font>g/mL) o &aacute;cido nordihidroguaiar&eacute;tico  (NDGA, 50 mM) como f&aacute;rmaco o sustancia de referencia de inhibici&oacute;n  de la actividad quimiot&aacute;ctica. Estos fueron incubados durante 1 h a 37  &ordm;C y 5 % de CO<span class="subscript">2</span>.    <br>     <br> Los resultados fueron  expresados como porcentaje de migraci&oacute;n de los LPMN a trav&eacute;s del  filtro de la c&aacute;mara Boyden.    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Marcaje de las c&eacute;lulas HL-60  con MTT: se prepar&oacute; una disoluci&oacute;n patr&oacute;n de 5 mg/mL de 3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)-2,5-difeniltetrazolio  (MTT; Sigma, St. Louis, EE.UU.) en DSTF sin calcio y magnesio y se pas&oacute;  a trav&eacute;s de un filtro de 0,45 <font face="Symbol">m</font>m (Costar, EE.UU.).  Posteriormente, las c&eacute;lulas HL-60 que se mantuvieron en medio RPMI 1640  (Seromed, Berl&iacute;n, Alemania) suplementado con glutamina (2 mM), y penicilina-estreptomicina  (100 <font face="Symbol">m</font>g/mL) y suero fetal bovino 10 %, se incubaron  a 37 &ordm;C por espacio de 1 h con el MTT a un volumen de 1/5 (v/v). Al final  del tiempo de incubaci&oacute;n las c&eacute;lulas HL-60 marcadas con MTT se centrifugaron  a 1 100 rpm por 5 min a temperatura ambiente y posteriormente se lavaron 2 veces  con medio RPMI 1640 (Seromed, Berl&iacute;n, Alemania) suplementado con 10 % de  suero fetal bovino.<span class="superscript">15 </span>    <br>     <br> Ensayo de adherencia  celular: las c&eacute;lulas HUVEC cultivadas en placas de 96 pozos se activaron  por espacio de 24 h con TNF (50 ng/mL) e IL-1<font face="Symbol">b</font> (100  ng/mL), seg&uacute;n metodolog&iacute;a descrita por <i>Miki </i>y otros,<span class="superscript">15</span>  en presencia y ausencia del extracto de <i>M. indica</i> (50, 100 y 200 <font face="Symbol">m</font>g/mL)  y mangiferina (50 <font face="Symbol">m</font>g/mL), respectivamente. Despu&eacute;s,  las c&eacute;lulas HUVEC se lavaron con M199 (Sigma, St. Louis, EE.UU.) suplementado  con 2 % de suero fetal bovino y se incubaron con la suspensi&oacute;n de HL-60  marcadas con MTT (100<font face="Symbol"> m</font>L), previamente ajustadas a  una concentraci&oacute;n de 3 x 10<span class="superscript">6</span> c&eacute;lulas/mL,  en medio de cultivo RPMI 1640 (Seromed, Berl&iacute;n, Alemania) por 30 min a  37 &ordm;C y 5 % de CO<span class="subscript">2</span>. Se realizaron 3 lavados  con medio RPMI 1640 (Seromed, Berl&iacute;n, Alemania) suplementado con 2 % de  suero fetal bovino para remover las c&eacute;lulas no adheridas y se a&ntilde;adieron  100 <font face="Symbol">m</font>L de DMSO a cada pozo para disolver los cristales  de formaz&aacute;n. Finalmente se realiz&oacute; la medici&oacute;n de la absorbancia  a una longitud de onda de 550 nm, en un lector de microplacas (PR-521SUMA, Cuba)  de 3 experimentos independientes.    <br>     <br> An&aacute;lisis estad&iacute;stico:  para comparar las medias de los datos obtenidos en cada ensayo se realiz&oacute;  un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) de clasificaci&oacute;n simple y prueba  de Bonferroni a posteriori. Todos los an&aacute;lisis fueron realizados utilizando  el paquete estad&iacute;stico Statistics sobre Windows (Release 4.0, Statsoft,  Inc. 1993). Valores probabil&iacute;sticos (p) inferiores a 0,05 fueron considerados  estad&iacute;sticamente significativos. An&aacute;lisis de regresi&oacute;n fueron  usados para calcular la concentraci&oacute;n inhibitoria 50 (CI50), definida como  la concentraci&oacute;n de cada droga necesaria para producir 50 % del efecto  esperado. En todos los casos en que se calcul&oacute; el porcentaje de inhibici&oacute;n,  se hizo a trav&eacute;s de la relaci&oacute;n siguiente:    <br>     <br> % inhibici&oacute;n  = 100 - (media valores de la muestra / media valores controles) x 100</p><h4>Resultados</h4>    <p>Los  resultados del ELISA celular demostraron que tanto el extracto acuoso de <i>M.  indica</i> como la mangiferina inhibieron significativamente la expresi&oacute;n  de ICAM-1 en c&eacute;lulas endoteliales activadas con IL-1<font face="Symbol">b</font>.  Las c&eacute;lulas HUVEC, obtenidas a partir de cultivo primario de endotelio  aislado de vena de cord&oacute;n umbilical humano, fueron estimuladas con IL-1<font face="Symbol">b</font>  (1 ng/mL) y simult&aacute;neamente, se a&ntilde;adieron las diferentes concentraciones  del extracto de <i>M. indica </i>y mangiferina (50-100 <font face="Symbol">m</font>g/mL),  despu&eacute;s, se incubaron con anticuerpos anti-ICAM-1 y se realiz&oacute; ELISA  celular de acuerdo con la metodolog&iacute;a descrita en m&eacute;todos. La figura  1 representa los valores de la media &plusmn; e.e.m. (error est&aacute;ndar de  la media) para 3 experimentos independientes. Los porcentajes de inhibici&oacute;n  para el extracto fueron de 23,3 y 30,1 % para las concentraciones de 50 y 100  <font face="Symbol">m</font>g/mL, respectivamente; mientras que para mangiferina  fueron de 36,9 y 48,8 para las concentraciones de 50 y 100 <font face="Symbol">m</font>g/mL,  respectivamente.    <br>     <br> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/ibi/v22n3/f0104303.jpg"><img src="/img/revistas/ibi/v22n3/f0104303.jpg" width="198" height="172" border="0"></a></p>    
<p align="center">*  p <font face="Symbol">&pound;</font> 0,05 respecto al control, seg&uacute;n an&aacute;lisis  estad&iacute;stico realizado (ANOVA y prueba de Bonferroni a posteriori).    <br>      <br> <i>Fig. 1</i>. Efecto inhibitorio del extracto acuoso de <i>M. indica</i>  (Mi) y mangiferina (M) sobre la expresi&oacute;n de ICAM-1 en c&eacute;lulas endoteliales  estimuladas con IL-1.</p>    <p>    <br> Al estudiar el efecto del extracto de<i> M. indica</i>  y de la mangiferina sobre la actividad quimiot&aacute;ctica de los leucocitos  estimulados con fMLP, se pudo comprobar que ambos compuestos, inhibieron esta  actividad con un efecto dependiente de la concentraci&oacute;n. El m&eacute;todo  empleado para el an&aacute;lisis de la quimiotaxis y el aislamiento de los LPMN  fueron realizados seg&uacute;n se describe en m&eacute;todos. Mi (50, 100 y 200  <font face="Symbol">m</font>g/mL), mangiferina (20 <font face="Symbol">m</font>g/mL)  y NDGA (50 <font face="Symbol">m</font>M) fueron incubados con los LPMN durante  1 h a 37 &ordm;C y 5 % de CO<span class="subscript">2</span>. El NDGA fue utilizado  como control positivo de inhibici&oacute;n. La figura 2 representa los valores  de la media &plusmn; e.e.m. para 3 experimentos independientes. Para el extracto  la CI50 fue de 114,0 mg/mL y los porcentajes de inhibici&oacute;n fueron 47,4;  57,7 y 78,9 % para las concentraciones de 50, 100 y 200 <font face="Symbol">m</font>g/mL,  respectivamente. Mangiferina (20 <font face="Symbol">m</font>g/mL) tuvo un porcentaje  de inhibici&oacute;n de 66,5 %, mientras que el f&aacute;rmaco de referencia NDGA  inhibi&oacute; en proceso de quimiotaxis en 98,3 %.    <br>     <br> </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/ibi/v22n3/f0204303.jpg"><img src="/img/revistas/ibi/v22n3/f0204303.jpg" width="195" height="169" border="0"></a></p>    
<p>*p  <font face="Symbol">&pound;</font> 0,05 respecto al control (fMLP), seg&uacute;n  an&aacute;lisis estad&iacute;stico realizado (ANOVA y prueba de Bonferroni a posteriori).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <i>    <br> Fig. 2</i>. Efecto inhibitorio del extracto acuoso de <i>M. indica </i>(Mi)  y la mangiferina (M) sobre la actividad quimiot&aacute;ctica de leucocitos polimorfonucleares  estimulados con fMPL (10-7M).</p>    <p>    <br> Por otra parte, se analiz&oacute; el  efecto del extracto de <i>M. indica </i>y la mangiferina purificada sobre el proceso  de adhesi&oacute;n de una l&iacute;nea celular leucocitaria (HL-60) a c&eacute;lulas  endoteliales activadas con citocinas proinflamatorias. Esta actividad fue inhibida  de forma significativa, con un efecto dependiente de la concentraci&oacute;n utilizada.  Los niveles de adhesi&oacute;n en las c&eacute;lulas estimuladas con IL-1 y TNF  fueron superiores (63,5 %) a los niveles alcanzados en el caso de las c&eacute;lulas  no estimuladas. Sin embargo, el pretratamiento de las c&eacute;lulas endoteliales  con el extracto de M. indica y la mangiferina mantuvieron valores similares a  los controles sin est&iacute;mulo. Las c&eacute;lulas HUVEC se activaron durante  24 h con TNF (50 ng/mL) e IL-1 (100 ng/mL) en presencia o no del extracto (50,  100 y 200 <font face="Symbol">m</font>g/mL) o mangiferina (100 <font face="Symbol">m</font>g/mL),  seg&uacute;n se describe en m&eacute;todos. Posteriormente se a&ntilde;adi&oacute;  una suspensi&oacute;n de c&eacute;lulas HL-60 marcadas con MTT (3 x 106 c&eacute;lulas/mL)  por 30 min a 37 oC y se realiz&oacute; la medici&oacute;n de la absorbancia a  550 nm. La figura 3 representa los valores de la media &plusmn; e.e.m. para 3  experimentos independientes. Los porcentajes de inhibici&oacute;n para el extracto  fueron de 9,1; 16,0 y 21,2 % para las concentraciones de 50, 100 y 200 mg/mL,  respectivamente; mientras que para mangiferina (100 <font face="Symbol">m</font>g/mL)  fue de 27,5 %.    <br>     <br> </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/ibi/v22n3/f0304303.jpg"><img src="/img/revistas/ibi/v22n3/f0304303.jpg" width="179" height="148" border="0"></a></p>    
<p align="center">*  p &lt; 0,05 respecto al control (IL-1-TNF), seg&uacute;n an&aacute;lisis estad&iacute;stico  realizado (ANOVA y prueba de Bonferroni a posteriori).    <br> <i>    <br> Fig. 3</i>.  Efecto del extracto acuoso de M. indica (Mi) y la mangiferina (M) sobre la adhesi&oacute;n  de c&eacute;lulas HL-60 a las c&eacute;lulas endoteliales estimuladas con IL-1-TNF.</p><h4>Discusi&oacute;n</h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En  el presente estudio se aplicaron diferentes ensayos in vitro para la evaluaci&oacute;n  de la acci&oacute;n anti-inflamatoria del extracto de <i>M. indica</i>. Adem&aacute;s,  se evalu&oacute; la posible implicaci&oacute;n de su componente mayoritario, la  mangiferina, en los estudios realizados. Este extracto, obtenido de la corteza  de variedades seleccionadas de la especie <i>Mangifera indica</i> L. y que se  comercializa en Cuba bajo la marca registrada VIMANG<font face="Symbol">&Ograve;</font>,  contiene una mezcla estandarizada de polifenoles, terpenoides, esteroides, &aacute;cidos  grasos y microelementos.<span class="superscript">4 </span>    <br>     <br> Estudios  previos han demostrado que el extracto de <i>M. indica</i> presenta una poderosa  actividad secuestradora de radicales hidroxilos y &aacute;cido hipocloroso, un  significativo efecto inhibitorio sobre la peroxidaci&oacute;n de fosfol&iacute;pidos  de cerebro de rata e inhibe el da&ntilde;o al ADN inducido por bleomicina o el  sistema cobre-fenantrolina y la producci&oacute;n de H<span class="subscript">2</span>O<span class="subscript">2</span>  en macr&oacute;fagos peritoneales estimulados in vivo con TPA.<span class="superscript">5,6</span>  Mangiferina (que se encuentra en el extracto aproximadamente en 20 %) ha sido  evaluada in vitro por sus propiedades antioxidante,<span class="superscript">17</span>  inmunoestimulante y antiviral.<span class="superscript">18</span> Su aglicona  (noratiriol) ha sido evaluada in vitro como inhibidor del estallido respiratorio  inducido por fMLP en neutr&oacute;filos de rata.<span class="superscript">19</span>  Noratiriol tambi&eacute;n ha sido ensayada en un modelo de pleures&iacute;a y  algesia inducidas en ratones por el ion&oacute;foro de calcio A23187.<span class="superscript">20</span>  Estos autores demostraron que la aglicona inhib&iacute;a los metabolitos del &aacute;cido  araquid&oacute;nico como prostaglandinas y leucotrienos y que esta acci&oacute;n  probablemente ser&iacute;a la responsable, al menos en parte, de los efectos analg&eacute;sico  y antiinflamatorio de este compuesto.     <br>     <br> Por otra parte, se han comprobado  los efectos del extracto estandarizado de M. indica como antioxidante in vitro,  sobre la generaci&oacute;n de radicales libres en leucocitos polimorfonucleares  (neutr&oacute;filos) estimulados con PMA y zimos&aacute;n<span class="superscript">13  </span>y efecto antiinflamatorio en ratones, ratas y cobayos en un modelo de edema  plantar inducido por formalina o carragenano;<span class="superscript">12</span>  as&iacute; como en los modelos de inducci&oacute;n de edema en la oreja del rat&oacute;n  por agentes irritantes.<span class="superscript">13</span>    <br>     <br> Estos antecedentes  sirvieron de base para que en el presente estudio se identificara una nueva acci&oacute;n  del extracto de <i>M. indica</i>, que contribuye a su mecanismo de acci&oacute;n  antiinflamatoria; el cual fue capaz de interferir en una de las etapas iniciales  de la reacci&oacute;n inflamatoria aguda al inhibir la expresi&oacute;n de ICAM-1,  una de las glicoprote&iacute;nas m&aacute;s significativas de los procesos de  reconocimiento celular y que median las interacciones entre el endotelio vascular  y los leucocitos. Esta prote&iacute;na es una de las mol&eacute;culas de adhesi&oacute;n  intercelular miembro de la superfamilia de las mol&eacute;culas de adhesi&oacute;n,  perteneciente a las inmunoglobulinas que son inducidas despu&eacute;s de una estimulaci&oacute;n  (por ejemplo: LPS, IL-1, TNF<font face="Symbol">a</font>, etc.) de los leucocitos  y las c&eacute;lulas endoteliales. Estas mol&eacute;culas de adhesi&oacute;n modulan,  en parte, las interacciones leucocito-leucocito y leucocito-c&eacute;lula endotelial.<span class="superscript">21</span>  La inhibici&oacute;n encontrada estuvo en estrecha relaci&oacute;n con las concentraciones  empleadas tanto para el extracto de<i> M. indica</i> como para la mangiferina.  Este efecto inhibitorio sobre la expresi&oacute;n de ICAM-1 (fig. 1), corroborado  tanto en el ELISA celular como en los experimentos de adhesi&oacute;n de la l&iacute;nea  celular HL-60 a las c&eacute;lulas endoteliales estimuladas con IL-1 y TNF (fig.  3), pudiera estar regulado al nivel transcripcional.<span class="superscript">22</span>  Existen evidencias in vitro de que una serie de flavonoides extra&iacute;dos de  plantas utilizadas en el tratamiento de varias enfermedades, son capaces de inhibir  la expresi&oacute;n de genes relacionados con prote&iacute;nas de adhesi&oacute;n  celular que son expresadas en las c&eacute;lulas endoteliales despu&eacute;s de  la estimulaci&oacute;n con citocinas.<span class="superscript">22 </span>    <br>      <br> El extracto de <i>M. indica</i> tambi&eacute;n inhibi&oacute; significativamente  la quimiotaxis de neutr&oacute;filos activados (fig. 2), uno de los procesos que  est&aacute; mediado igualmente por la expresi&oacute;n de ICAM-1. De este modo,  el extracto pudiera ofrecer un importante potencial terap&eacute;utico para una  variedad de enfermedades inflamatorias, en las que la adhesi&oacute;n y la migraci&oacute;n  de leucocitos desempe&ntilde;a un papel trascendental.    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Se concluye que  estos resultados representan una importante contribuci&oacute;n para la elucidaci&oacute;n  de los mecanismos por los que el extracto de <i>M. indica</i> desarrolla su actividad  antiinflamatoria; y permite comprobar que, no solo inhibe la adhesi&oacute;n de  leucocitos al endotelio vascular en condiciones de inflamaci&oacute;n, sino que  tambi&eacute;n bloquea la migraci&oacute;n de las c&eacute;lulas inflamatorias  al tejido y la expresi&oacute;n en el endotelio de uno de los receptores (ICAM-1)  que participan en el proceso de adhesi&oacute;n leucocitaria.</p><h4>Agradecimientos</h4>    <p>Este  trabajo fue parcialmente financiado por el Ministerio de Ciencia, Tecnolog&iacute;a  y Medio Ambiente (Proyecto CITMA No. 00403238).</p><h4>Summary</h4>    <p>It was proved  that VIMANG<font face="Symbol">&Ograve;</font> (aqueous extract of the cortex  of <i>Mangifera indica</i> L.) has antioxidant, immunologic adjuvants and antiinflammatory  actions. In the present paper it was demonstrated that VIMANG<font face="Symbol">&Ograve;</font>  and the mangiferin isolated from it inhibited the expression of the ICAM-1 adhesion  molecule. Studies of adhesion in endothelial cells with a leucocytic cellular  line (HL-60) allowed to show the inhibition on the expression of the ICAM-1 receptor,  on proving that the pretreatment of the endothelial cells with the extract of  <i>M. indica</i> and mangiferin had values similar to the controls without stimulus.  Both products inhibited the chemotactic activity (mediated by ICAM-1) of polymorphonuclear  leucocytes stimulated with N-formyl-methyonil-leucyl-phenylalanine. These studies  allowed to know new aspects connected with the mechanisms of the antiinflammatory  action of the aqueous extract of <i>Mangifera inidca</i> L., which shows the therapeutic  potential of this extract for treating a variety of inflammatory diseases including  cellular adhesion and the leucocytes traffic. </p>    <p><i>Subject headings</i>:  MANGIFERA INDICA; CELL ADHESION MOLECULES; PHARMACODYNAMIC ACTION OF HOMEOPATHIC  DRUGS.</p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>     <!-- ref --><li> Korthuis RJ, Anderson  DC, Granger DN. Role of neutrophil-endothelial cell adhesion in inflammatory disorders.  J Crit Care 1994;9:47-7.</li>    <!-- ref --><li> Panes J, Granger DN. Leukocyte-endothelial cells  interactions: molecular mechanisms and implications in gastrointestinal disease.  Gastroenterol 1998;114:1066-90.</li>    <!-- ref --><li> Panes J, Perry MA, Anderson DC, Manning  A, et al. Regional differences in constitutive and induced ICAM-1 expressions  in vivo. Am J Physiol 1995;269:H1955-H64. </li>    <!-- ref --><li> N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s  A, V&eacute;lez-Castro H, Ag&uuml;ero-Ag&uuml;ero J, Gonz&aacute;lez-Gonz&aacute;lez  J, Naddeo F, De Simone F, et al. Isolation and quantitative analysis of phenolic  constituents, free sugars, fatty acids and polyols from mango (Mangifera indica  L.) stem bark aqueous decoction used in Cuba as nutritional supplement. J Agric  Food Chem 2002;50:762-66.</li>    <!-- ref --><li> Mart&iacute;nez G, Delgado R, P&eacute;rez  G, Garrido G, N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s AJ, Le&oacute;n OS. Evaluation  of the in vitro antioxidant activity of Mangifera indica L. extract (VIMANG).  Phytother Res 2000;14:424-7.</li>    <!-- ref --><li> S&aacute;nchez GM, Re L, Giuliani A, N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s  AJ, Davison GP, Le&oacute;n-Fern&aacute;ndez OS. Protective effects of Mangifera  indica L. extract, mangiferin and selected antioxidants against TPA-induced biomolecules  oxidation and peritoneal macrophage activation in mice. Pharmacol Res 2000;42:565-73.</li>    <!-- ref --><li>  Mart&iacute;nez G, Giuliani A, Le&oacute;n OS, P&eacute;rez G, N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s  AJ. Effect of Mangifera indica L extract (VIMANG) on proteins and hepatic microsomes  peroxidation. Phytother Res 2001;15:581-5.</li>    <!-- ref --><li> Mart&iacute;nez G, Candelario-Jalil  E, Giuliani A, Le&oacute;n OS, Sam S, Delgado R, N&uacute;&ntilde;ez AJ. Mangifera  indica L. extract (VIMANG) reduces ischaemia-induced neuronal loss and oxidative  damage in the Gerbil brain. Free Rad Res 2001;35:465-73.</li>    <!-- ref --><li> Mart&iacute;nez  G, Rodr&iacute;guez HMA, Giuliani A, N&uacute;&ntilde;ez Selles AJ, Pons Rodr&iacute;guez  N, Fern&aacute;ndez OS, Re L. Protective effect of Mangifera indica L. extract  (VIMANG) on the injury associated to hepatic ischemia reperfusion. Phytother Res  2003.</li>    <!-- ref --><li> Garc&iacute;a D, Delgado R, Ubeira FM, Leiro J. Modulator effeccts  of rat macrophages function by Mangifera indica L. extract (Vimang) and mangiferin.  Intern Immunopharmacol 2002;2:797-806.</li>    <!-- ref --><li> Cancino-Badias L, Leyva-Gonz&aacute;lez  A, Garrido-Garrido G, Cossio-Ayala M, Prieto-Gonz&aacute;lez E. Vimang: Los efectos  antigenot&oacute;xico y modulador de las enzimas glutati&oacute;n peroxidasa y  glutati&oacute;n S-transferasa. Rev Cubana Invest Biomed 2001;20:48-53.</li>    <!-- ref --><li>  Garrido G, Gonz&aacute;lez D, Delporte C, Backhouse N, Quintero G, N&uacute;&ntilde;ez  AJ,et al. Analgesic and anti-inflammatory effects of Mangifera indica L. extract  (VIMANG). 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Cosmetic or Pharmaceutical compositions  containing, as active ingredient, Mangiferine or its derivatives, in pure form  or in plant extracts. United State Patent. Patent Number: 5,824,320, 1998.</li>    <!-- ref --><li>  Guha S, Ghosal S, Chattopadhyay U. Antitumor, immunomodulatory and anti-HIV effect  of mangiferin, a naturally occurring glucosylxanthone. Chemother 1996;42:443-51.  </li>    <!-- ref --><li> Hsu MF, Raung SL, Tsao LT, Lin CN, Wang JP. Examination of the inhibitory  effect of norathyriol in formylmethionyl-leucyl-phenylalanine-induced respiratory  burst in rat neutrophils. Free Rad Biol Med 1997;23:1035-45.</li>    <!-- ref --><li> Wang JP,  Ho TF, Lin CN, Teng CM. Effect of norathyriol, isolated from Tripterospermum lanceolatum,  on A23187-induced pleurisy and analgesia in mice. Naungn Schmiedeberg's Arch Pharmacol  1994;350:90-5. </li>    <!-- ref --><li> Henninger DD, Panes J, Eppihimer M, Russell J, Gerritsen  M, Anderson DC and Granger DN. 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