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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Xantina oxidorreductasa, propiedades, funciones y regulación de su expresión genética]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Xanthine oxidoreductase. properties, functions and regulation of its genetic expression]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Ciencias Básicas y Preclínicas Victoria de Girón.  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A review of Xanthine oxidoreductase,which is a molibdoflavoenzyme largely distributed in differents species from bacteria to man, was made. It has been studied for its connection with the production of reactive oxygen species, a phenomenon involved in the oxidative damage present in different pathological states. Its structure, properties, genetics, distribution, main functions, regulation and pathological states, where an increase of its activity has been detected, were dealt with. There is special interest in it due to its low levels of activity as a result of its structural particularities, and to the recent discovery of the participation of DNA binding proteins in the regulation of the expression of its gene, in whose promoter there have been detected binding sites to these proteins. The induction of the synthesis of this enzyme by inflammatory cytokines and the detection of an increase of its activity during the myocardial damage caused by ischemia-reperfusion, and in other tissues, support the hypothesis of its participation in the tissular injury by oxidative stress.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Xantina oxidorreductasa]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p class=MsoNormal>Instituto de Ciencias Básicas y Preclínicas “Victoria de Girón”</p><h2 class=MsoNormal><span lang=ES>Xantina  oxidorreductasa, propiedades, funciones y regulación de su expresión genética</span></h2>    <p class=MsoNormal><i>Dr.  Ulises Mendoza Coussette, Dr. José Carlos García Piñeiro, Dr. Pedro Luis Gastell  y Lic. Armando Amador Armenteros</i></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Resumen</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Se  realizó una revisión acerca de la xantina oxidorreductasa, una molibdoflavoenzima  ampliamente distribuida en diferentes especies desde las bacterias hasta el hombre.  Ha sido estudiada por su relación con la producción de especies reactivas del  oxígeno, fenómeno implicado con el daño oxidativo presente en varios estados patológicos.  Se presentó su estructura, propiedades, genética, distribución, principales funciones,  regulación y estados patológicos donde se ha detectado aumento de su actividad.  Especial interés reviste la xantina oxidorreductasa humana por sus bajos niveles  de actividad debido a sus particularidades estructurales; así como el reciente  hallazgo de la participación de proteínas de unión al ADN en la regulación de  la expresión de su gen, en cuyo promotor se han detectado sitios de unión a estas  proteínas. La inducción de la síntesis de esta enzima por citoquinas inflamatorias,  y la detección de un aumento de su actividad durante el daño por isquemia-reperfusión  miocárdico y en otros tejidos, apoyan la hipótesis de su participación en el daño  tisular por estrés oxidativo. </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES><i>Palabras  clave</i>: Xantina oxidorreductasa, propiedades, funciones, especies reactivas  del oxígeno, daño oxidativo.</span></p>    <p class=MsoNormal>&nbsp;</p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>Generalidades</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>La  xantina oxidorreductasa (XOR) es una molibdoflavoenzima compleja versátil, ampliamente  distribuida en diferentes especies, desde las bacterias hasta el hombre e identificada  dentro de varios tejidos de mamíferos. Esta enzima existe en 2 formas funcionalmente  distintas: xantina deshidrogenasa NAD<sup>+</sup>-dependiente (forma XDH; EC.1.1.1.204)  que produce NADH y urato; y puede ser transformada en xantina oxidasa, oxígeno  dependiente (forma XO; EC.1.2.3.22)<sup>1-7</sup> que origina radical anión superóxido  (O<sub>2</sub><sup>-</sup>) y/o peróxido de hidrógeno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>)  y urato.</span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Propiedades de la XOR <i>purificada</i></span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>Se  trata de una proteína compuesta por su porción apoproteica, de la cual forman  parte 2 cadenas polipeptídicas idénticas, y 8 centros redox. La XOR mejor caracterizada  es la purificada a partir de la leche bovina.<sup>8</sup> </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>La  enzima tiene las características siguientes:</span></p>    <blockquote>     <p><span  lang=ES>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Es un homodímero de 300 Kd de peso molecular aproximadamente.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  </span><span  lang=ES style='color:black'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES style='color:black'>Cada subunidad contiene 4 centros  redox: </span></p>    <blockquote>     <p><span  lang=ES style='font-size:8.0pt;font-family:Symbol'>·<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>1 molécula de molibdopterina con un átomo de molibdeno  (Mo) como cofactor    <br> </span><span  lang=ES style='font-size:8.0pt;font-family:Symbol'>·<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>2 centros ferro-sulfurados (Fe<sub>2</sub>-S<sub>2</sub>).    <br>  </span><span  lang=ES style='font-size:8.0pt;font-family:Symbol'>·<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>1 molécula de dinucléotido de flavinadenina (FAD).</span></p></blockquote></blockquote>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Las  2 formas de la enzima (XDH y XO) se pueden interconvertir, excepto en las aves  donde solo existe en la forma XDH. </span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Genética</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>El  gen de la XOR humana (hXOR) está en el brazo corto del cromosoma 2, 2p22,<sup>8  </sup>y su estructura ha sido dilucidada. Presenta 36 exones y su estructura exón-intrón  está altamente conservada respecto a otras especies como el ratón<sup>8</sup>  y difiere significativamente de la estructura del gen en especies menos relacionadas  como la <i>Drosofila</i>, cuya estructura es más compacta con solo 4-5 exones.<sup>8</sup>  La secuencia del cDNA humano ha sido reportada.<sup>8</sup></span></p>    <blockquote>      <p><span lang=ES>a)</span><span lang=ES> En un estudio realizado en el departamento  de medicina, Universidad de UTA el cDNA obtenido codificó un ARNm para XDH de  hígado humano de 4 577 bases con un extremo 5' no traducible de 63 bases, una  región no traducible de 515 bases hacia el extremo 3', un codón TGA de terminación,  y el sitio de poliadenilación AATAAA.<sup>9</sup> </span></p>    <p><span lang=ES style='color:black'>b)</span><span lang=ES  style='color:black'> Se ha detectado, mediante el empleo de pruebas de hibridización  de ARN complementario para la XDH humana, un ARN de 5 100 bases en hígado humano.  Se plantea que este ARN tiene una distribución tejido específica. </span></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><span lang=ES style='color:black'>c)</span><span lang=ES  style='color:black'> Ha sido detectado también un segundo ARN de 4 500 bases en  algunos tejidos, el cual puede proceder a partir de un sitio de terminación de  la transcripción diferente.<sup>10</sup></span></p></blockquote><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Estructura  de la XOR</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>La estructura primaria de  la XOR humana revela una secuencia de 1 335 residuos aminoacídicos y presenta  gran homología, 90 %, con la de otros mamíferos. </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>La  estructura tridimensional ha sido esclarecida a partir de los resultados obtenidos  del análisis de la estructura cristalina de otras enzimas, que a similitud de  la XOR presentan el cofactor molibdeno, como la monóxido de carbono deshidrogenasa  (CODH) de la bacteria aerobia <i>Oligotropha carboxidovorans</i>, cuya estructura  cristalina ha sido reportada.<sup>8</sup>. Esta enzima sirve como modelo para  la xantina oxidasa, pues a similitud de aquella presenta el cofactor molibdopterina  (Mo-co), 2 centros Fe<sub>2</sub>-S<sub>2</sub>, y un grupo FAD como centros redox.  </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>El dominio N-terminal  de la XOR contiene 8 residuos de cisteína fuertemente conservados, que sirven  como ligandos para unir a los centros Fe<sub>2</sub>-S<sub>2</sub>. Cada motivo  de unión está constituido por 4 de estas cisteínas, el último de los cuales, el  más distal al extremo N-terminal, presenta un plegamiento inusual, único de estas  enzimas. Los centros Fe/S son denominados Fe/S I y Fe/S II según la distancia  que los separa del centro Mo-co. El centro Fe/S II está localizado cercano a la  superficie de la enzima ubicado adecuadamente para transferir electrones a su  aceptor electrónico fisiológico, FAD en este caso, a una distancia de 8,7A<sup>º</sup>.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>La  estructura tridimensional de la XOR de leche bovina ha sido recientemente dilucidada.<sup>8</sup>  Cada subunidad está constituida por 3 dominios y 2 segmentos peptídicos conectores  entre estos:</span></p>    <blockquote>     <p><span lang=ES>1. Dominio N-terminal que  incluye los residuos aminoacídicos 1-165 y contiene los sitios de unión para los  centros Fe<sub>2</sub>-S<sub>2</sub>.    <br> </span><span lang=ES>2. Segmento conector  que incluye los residuos 166-225.    <br> </span><span lang=ES>3. Dominio de unión  al FAD con los residuos 226-531.    <br> </span><span lang=ES>4. Segmento conector,  de estructura más desordenada, que incluye a los residuos 532-589.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </span><span lang=ES>5.  Dominio C-terminal para unir al Mo-co, incluye los residuos 590 en lo adelante.</span></p></blockquote>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Los  potenciales redox de los diferentes centros garantizan que la transferencia electrónica  sea termodinámicamente favorable, siendo el sentido de esta transferencia:</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=EN-US style='color:black'>Mo-co</span><span  lang=ES style='font-family:Symbol;color:black'>®</span><span lang=EN-US  style='color:black'>Fe/S I</span><span lang=ES style='font-family:Symbol;  color:black'>®</span><span lang=EN-US style='color:black'>Fe/S II</span><span  lang=ES style='font-family:Symbol;color:black'>®</span><span lang=EN-US  style='color:black'>FAD</span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Formas de  la XOR. Mecanismos de conversión</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Se  han enunciado 2 tipos de mecanismos para la conversión entre la XDH y XO.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES-TRAD>1.  Conversión reversible.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Este mecanismo  se lleva a cabo por oxidación-reducción de grupos sulfhidrilos de la enzima. La  oxidación de estos con formación de puentes disulfuros intrasubunitarios permite  la conversión de XDH en XO, mientras que la reducción de estos enlaces opera en  la conversión contraria.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Con la cromatografía  de exclusión en gel se ha demostrado que la formación de puentes disulfuros reduce  el volumen hidrodinámico de la enzima,<sup>11</sup> y con la electroforesis en  gel bidimensional de la XO digerida con quimiotripsina se demostró la presencia  de significativa heterogeneidad conformacional, mediada por puentes disulfuros  en el tercio amino terminal de las subunidades, pero no mostró evidencia de formación  de este tipo de enlace entre las regiones amino y carboxilo terminales ni intersubunitarios.<sup>11</sup>  </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>2. Conversión irreversible.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Este  mecanismo tiene lugar mediante proteólisis parcial de la XOR.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Ha  sido reportado que ambas formas de la XOR experimentan proteólisis limitada por  tripsina y quimiotripsina.<sup>11</sup> La tripsina escinde ambas formas de la  enzima en la lisina 184 (lys<sup>184</sup>), mientras que la quimiotripsina escinde  la XDH en metionina 181 (met<sup>181</sup>), pero escinde a la XO en (met<sup>181</sup>)<sup>  </sup>y fenilalanina 560, (phe<sup>560</sup>).<sup>41</sup> Se ha demostrado que  la proteólisis quimiotríptica, pero no la tríptica, previene la conversión reductiva  de XO en XDH. Se ha detectado que los residuos met<sup>181</sup> y lys<sup>184</sup>  están incluidos en un fragmento peptídico hidrofílico expuesto al solvente en  ambas formas de la XOR. En contraste, la phe<sup>560</sup> pertenece a una región  hidrofóbica, por lo que ha sido hipotetizado que tenga poco acceso al solvente  en condiciones fisiológicas, y por tanto, baja probabilidad de ser escindida por  la quimiotripsina. La observación de que este sitio comienza a ser accesible a  la quimiotripsina solamente luego de la conversión de XDH en XO, sugiere que la  formación de puentes disulfuros produce cambios conformacionales dentro de la  región que contiene a la phe<sup>560</sup>.<sup>11</sup></span></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal><span lang=ES-TRAD>Los  principales cambios que ocurren durante la conversión irreversible de XDH en XO  involucran al sitio de unión al FAD, lo cual tiene 2 efectos importantes en relación  con el uso del oxígeno molecular como agente oxidante para la XO:<sup>8</sup></span></p>    <blockquote>      <p><span lang=ES>1. El acceso del NAD<sup>+</sup> a la superficie del anillo de  isoaloxacina del FAD queda bloqueado.    <br> </span><span lang=ES>2. El entorno alrededor  del FAD queda más positivamente cargado, debido al reemplazo de la cadena lateral  del aspártico<sup>429</sup>, Asp<sup>429</sup>, desde su sitio de unión al anillo  flavínico por la Arg<sup>426</sup>.<sup>8</sup></span></p></blockquote>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>A  diferencia de estos 2 efectos, la región restante del sitio de unión al FAD donde  puede unirse el O<sub>2</sub> es poco afectada por estos cambios.</span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Distribución</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>En  tejidos de mamíferos los mayores niveles encontrados se localizan en hígado e  intestino.<sup>42</sup> Existe, sin embargo, considerable variación interespecie  según indica el amplio rango encontrado en sangre y corazón.<sup>8</sup> </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Muchos  autores han obtenido evidencias de la localización tisular de la enzima mediante  el empleo de técnicas inmunológicas usando anticuerpo anti-XOR.<sup> 8</sup> De  esta forma se ha detectado XO humana en hepatocitos, sobre todo en región periportal,  y células de Kuffer en el hígado;<sup>8</sup> enterocitos y células globet de  yeyuno;<sup>8</sup> glándulas mamarias;<sup>8</sup> células endoteliales de músculo  esquelético y riñón;<sup>42-31</sup> macrófagos y células cebadas;<sup>8</sup>  y células epiteliales del tracto biliar, lo que sugiere secreción de XOR hacia  la bilis.<sup>8</sup></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Localización  subcelular</span><span lang=ES>:</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES-TRAD style='color:black'>Estudios  de células endoteliales humanas en cultivo, usando anticuerpo anti-XOR de leche  humana policlonal fluorescente purificado, mostraron que la enzima se encuentra  ubicada tanto en el citosol como en la superficie externa de membrana celular,  con predominio en las regiones de contacto intercelular en esta última localización.<sup>8</sup>  Se ha sugerido, a partir del uso de anticuerpo monoclonal de ratón en células  endoteliales y epiteliales humanas, la localización intravesicular de la XOR intracelularmente,  lo cual se ha planteado que pudiera constituir una etapa de almacenamiento previo  a su secreción.</span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Funciones de la xantina  oxidorreductasa</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES-TRAD style='color:black'>a</span><span  lang=ES style='color:black'>) Cataliza la hidroxilación de una serie de sustratos.  Los más específicos son: hipoxantina, que transforma en xantina, y esta a su vez  en ácido úrico. Los otros productos serán dinucleótido de nicotinaminadenina reducido  (NADH.H<sup>+</sup>) o O<sub>2</sub><sup>-</sup> y/o H<sub>2</sub>O<sub>2,</sub>  según haya actuado el NAD<sup>+</sup> o el O<sub>2 </sub>como agente reductor  para la enzima respectivamente. Es en esta capacidad generadora de especies reactivas  del oxígeno (ERO) que descansa el interés de estudios clínicos sobre la XO. Otros  sustratos lo constituyen una serie de N-heterociclos y aldehídos.</span></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>Ambas  formas de la enzima pueden reducir al O<sub>2 </sub>pero, la unión del NAD<sup>+</sup>  a la XDH inhibe la unión del O<sub>2. </sub></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>b)  Puede también actuar como una NADH oxidasa.<sup>8</sup> El NADH dona sus electrones  directamente al FAD.<sup>8</sup></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>c)  Recientemente se ha demostrado la capacidad de la enzima para catalizar la reducción  de nitratos a nitritos, y de nitritos a óxido-nítrico (NO). En estas transformaciones  se ha demostrado que los nitratos son reducidos por el cofactor molibdeno, mientras  que los nitritos son reducidos por el FAD.</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>d)  Liberación del hierro de la ferritina, que puede ocurrir por 2 mecanismos:</span></p>    <blockquote>      <p><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Mecanismo O<sub>2</sub><sup>-</sup> dependiente, responsable  de 80 % de esta separación.    <br> </span><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Mecanismo O<sub>2</sub><sup>-</sup> independiente.  </span></p></blockquote>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Este efecto de la XO  adquiere importancia en el estudio de los tejidos dañados, por la acción de las  especies reactivas del oxígeno, pues si bien el radical superóxido es comparativamente  inocuo por sí solo, su toxicidad se incrementa mucho en presencia de hierro libre  (descompartimentalizado), ya sea por la formación de radical hidroxilo (OH<sup>.</sup>),  radicales ferrilos o radicales perferrilos.<sup>8</sup> </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Formas  funcionales de la xantina oxidorreductasa</span>:</p>    <p class=MsoNormal><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Forma activa: XDH XO.</span></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal><i><span lang=ES>Xantina  deshidrogenasa</span></i><span  lang=ES>: representa 80 % de la XOR funcional <i>in vivo</i>.    <br> </span><i><span lang=ES>Xantina  oxidasa</span></i><span lang=ES> (XO): constituye 20 % restante de la XOR funcional  normalmente.</span></p>    <p class=MsoNormal><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Forma inactiva: desulfo, demolibdo, y deflavo</span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Se  plantea que 60 % de la XOR purificada de leche bovina se encuentra en forma inactiva<sup>8</sup>  y existe en 2 formas:</span></p>    <p class=MsoNormal><i><span lang=ES>Demolibdo</span></i><span lang=ES>:  carece de molibdeno, posiblemente de la molécula de molibdopterina, y comúnmente  constituye 40 % de la enzima inactiva<span style='color:black'>.</span></span></p><i>Desulfo</i><span lang=ES>:  constituye 30-40 % restante de la enzima que contiene molibdeno. Existen evidencias  de la existencia de esta forma de la enzima en hígado de rata, y pollo.<sup>55</sup>  </span> <h4 class=MsoNormal><span lang=ES>XOR humana</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Ha  sido caracterizada la XOR obtenida a partir de la leche de glándulas mamarias  humana<sup>8</sup> y se ha demostrado que tiene<span  style='color:black'>:</span></span></p>    <blockquote>     <p><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Baja actividad sobre sus sustratos reductores convencionales.  De esta forma su actividad sobre la xantina es solo 5 % de la de XOR de leche  bovina.<sup>8    <br> </sup></span><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Contiene 95 % de la enzima en forma demolibdo.<sup>8    <br>  </sup></span><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>La carencia de molibdeno está acompañada de deficiencias  de los centros Fe<sub>2</sub>-S<sub>2</sub>, principalmente del centro Fe/S I,  que en parte, es reemplazado por un nuevo centro, Fe/S III.<sup>8    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </sup></span><span  lang=ES style='font-family:Symbol;color:black'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>La carencia de molibdeno se supone que resulte de  la falta de incorporación de molibdopterina. Se ha planteado que el déficit del  cofactor debe conducir a<span style='color:black'> cambios conformacionales en  la apoproteína y consecuentemente en el entorno de los grupos Fe<sub>2</sub>-S<sub>2</sub>.    <br>  </span></span><span  lang=ES style='font-family:Symbol'>-<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Se conoce que la actividad es relativamente elevada  en hígado e intestino, pero baja en otros tejidos,<sup>8</sup> un efecto que pudiera  reflejar diferencias de actividad en diferentes enfermedades, según el tejido  afectado. Existen evidencias de bajos niveles de actividad de XOR en corazón humano<sup>8</sup>  y en cultivo de células epiteliales de mama.<sup>8</sup></span></p></blockquote><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>XOR  circulante</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>La presencia de XOR circulante  en mamíferos ha sido reconocida desde hace tiempo, y se han desarrollado diferentes  métodos para su determinación, principalmente en humanos<span style='color:black'>:</span></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>A.  Métodos que miden actividad <i>enzimática</i>, calculando la velocidad de formación  de productos, entre los cuales están la radioactividad, que mide formación de  xantina o urato;<sup>8</sup> fluorescencia, que mide formación de isoxantoterina;<sup>8</sup>  quimioluminiscencia, que mide formación de O<sub>2</sub><sup>.-</sup>;<sup>8</sup>  y espectrofotometría ultravioleta (UV)-Visible.<sup>8</sup></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>B.  Ensayos que miden niveles de la proteína directamente, dentro de los que se encuentra  el ELISA, que tiene la característica de detectar niveles de XOR inactiva disponible.  </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Teniendo en cuenta la variedad de  técnicas empleadas los niveles de actividad o concentraciones de XOR reportados  a partir de sujetos sanos varían ampliamente, 0-4 200 miliunidades por litro (mU/L).<sup>8</sup>  El consenso general, particularmente a partir de los métodos más sensitivos, es  que las concentraciones de XOR en el suero humano normal son muy bajas.<i><u>  </u></i></span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES style='color:black'>Regulación  de la actividad de XOR</span></h4>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>La actividad  de hXOR está sujeta a diferentes niveles de control. El análisis de la actividad  del promotor de su gen en diferentes tipos celulares mostró la presencia de regiones  de unión a activadores e inhibidores que regulan la actividad del promotor, involucrando  interacción de elementos similares a la caja TATA y E con estos, lo cual ha sido  empleado como modelo para explicar la expresión reprimida del gen.<sup>11,12</sup></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>En  este modelo, la región comprendida desde –138 hasta –1 provee un sitio para la  formación de un complejo multiproteico que contiene al factor de transcripción  general II D, TFIID. </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Recién ha sido  demostrado, mediante estudios de purificación de proteínas de unión al ADN, ensayo  de cambio en la movilidad electroforética (EMSA) usando anticuerpos específicos  contra TFIID y AREB6, un factor represivo de la transcripción, y estudios de mutaciones  directas sobre las secuencias consenso de unión a proteínas nucleares, la participación  de otras proteínas de unión al ADN en la regulación de la transcripción del gen  de la hXOR.<sup>12</sup> Entre estas se incluyen: 2 proteínas relacionadas con  AREB6 que se unen a la caja E y 3 proteínas que constituyen el trímero proteína  kinasa dependiente de ADN, DNA PK, las cuales se unen a un sitio adyacente el  cual sirve como sitio de reconocimiento para Ku86, una de las subunidades reguladoras  de la DNA PK.<sup>12</sup> La subunidad catalítica de la DNA PK, DNA PKcs, puede  regular la actividad de varios factores de transcripción implicados en este mecanismo  de regulación mediante la fosforilación de estos, para mantener reprimida la transcripción  del gen. </span></p>    <p class=MsoNormal style='text-align:justify;line-height:200%'><span lang=ES  style='line-height:200%'>La hXOR, al igual que la de otros mamíferos, se activa  bajo diferentes condiciones<span style='color:black'>:</span></span></p><ol start=1 type=1>  <li class=MsoNormal><span lang=ES>Inducción de su síntesis por IL-1, IL-6, TNF-</span><span lang=ES style='font-family:Symbol'>a</span><span lang=ES>,  INF-</span><span lang=ES style='font-family:Symbol'>g</span><span lang=ES>, factor  nuclear Y,<sup>13</sup> NF-Y, y factor inducible por la hipoxia.<sup>8</sup> Estos  hallazgos han sido confirmados por la presencia de elementos de respuesta a estos  factores en el promotor del gen de la hXOR.<sup>8</sup> </span></li><li class=MsoNormal><span lang=ES>Entre  los posibles mecanismos postraduccionales de control de la actividad de la XOR  se citan varios:</span>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><span  lang=ES>a)<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><i><span lang=ES>Interconversión de las formas sulfo-desulfo de  la</span></i><span lang=ES> XOR: proceso catalizado enzimáticamente en el cual  se sulfura el cofactor molibdeno, MO-co, lo cual permite convertir la forma desulfo  en sulfa.<sup>8    <br> </sup></span><span  lang=ES>b)<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><i><span lang=ES>Incorporación de la molibdopterina a la </span></i><span  lang=ES>apoXOR <i>bajo catálisis enzimática</i>: en relación con este aspecto  se plantea que la menor incorporación de molibdeno en la dieta humana respecto  a la bovina puede explicar la diferencia de actividad interespecie.    <br> </span><span  lang=ES>c)<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Activación por fosforilación: en respuesta a la hipoxia,  mecanismo en el que han sido implicadas las kinasas p38 y caseína kinasa II.<sup>8    <br>  </sup></span><span  lang=ES>d)<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Niveles de la relación NAD<sup>+</sup>/NADH.H<sup>+</sup>:  ambas formas de la XOR presentan actividad de NADH oxidasa. Ha sido argumentado  que los elevados niveles de NADH inhiben a la XDH, predominando la actividad de  la XO con el consecuente incremento de la formación de ERO.<sup>8    <br> </sup></span><span  lang=ES>e)<span style='font:7.0pt "Times New Roman"'>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  </span></span><span lang=ES>Proteólisis parcial: que está implicada en la conversión  irreversible de XDH en XO. Por este mecanismo se convierte, en condiciones fisiológicas,  20 % de XDH intracelular en XO. Se ha notificado que casi toda la XOR circulante  existe en la forma XO, como resultado de la conversión de XDH en XO por proteasas  séricas.<sup>8</sup> Este mecanismo cobra especial importancia durante el daño  por I/R como ha sido demostrado por varios investigadores.</span></p></li>    </ol>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>La  actividad de hXOR es 100 veces menor que en especies no primates incluidos ratas  y ratones.<sup>14</sup> Los mecanismos postraduccionales parecen explicar la baja  actividad de XOR solo parcialmente.<sup>14</sup> Las concentraciones de urato  sanguíneo son aproximadamente 10 veces mayores en humanos y primates superiores  respecto a otros mamíferos, debido a la pérdida evolutiva de la uricasa.<sup>14</sup>  Esta compleja red que regula la actividad de XOR, en especial la expresión reprimida  de su gen como ha sido puesto reci&eacute;n en evidencia,<sup>44</sup> garantiza  mantener bajo control la formación potencialmente deletérea de cristales de urato.  </span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=ES>Estados patológicos donde se han  encontrado aumento en los niveles de XO circulante</span></h4>    <p class=MsoNormal>Hepatitis  viral, especialmente al inicio de la fase aguda.<sup>8</sup> En estos casos se  han reportado valores de hasta 1 000 veces superiores a los normales; íctero obstructivo,  hepatitis crónica, y cirrosis, donde se han encontrado menores aumentos que en  la hepatitis viral aguda;<sup>8</sup> artritis reumatoide; escleroderma;<sup>8</sup>  aterosclerosis;<sup>8</sup> injuria por isquemia-reperfusión.</p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>Muchos  estudios han confirmado el papel propuesto por esta hipótesis para la XO en el  daño por I/R en varios tejidos como: intestino,<sup>8</sup> hígado<sup>8</sup>  y riñón.<sup>8</sup> A pesar de ello, existe controversia entre los resultados  obtenidos, y la escala de tiempo de la conversión XDH</span><span lang=ES style='font-family:Symbol'>®</span><span  lang=ES>XO en tejidos isquémicos, particularmente en hígado, ha sido sometida  a debate. En este sentido, algunos autores han planteado, que a pesar de que ocurre  conversión de XDH en XO, esta ocurre lentamente para desempeñar un papel significativo  en el proceso de injuria por I/R.<sup>8</sup></span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=ES>El  papel de la XOR en la injuria por I/R en corazón ha sido especialmente debatido,  sobre todo debido a los niveles tan bajos de XOR detectados en corazón de conejos,  y en particular en corazón humano.<sup>8</sup> A pesar de esto, se ha encontrado  aumento en los niveles séricos de actividad de XO en pacientes infartados. En  cerebro se han encontrado evidencias tanto a favor<sup>15,16</sup> como en contra  de la participación de la XOR en la injuria por I/R.<sup>8</sup></span></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal><span lang=ES>Los  mecanismos de regulación de la actividad de hXOR que han sido revelados recientemente,  sustentan la hipótesis de la participación de esta enzima en la fisiopatología  de varias enfermedades que evolucionan con respuesta inflamatoria y estrés oxidativo.  La inducción de la síntesis de hXOR en respuesta a citoquinas inflamatorias liberadas  en estas enfermedades sugiere el posible monitoreo de este indicador de estrés  oxidativo no solo en los momentos iniciales, primeras 6-12 h, sino también en  las etapas más avanzadas de su evolución. </span></p><h2 class=MsoNormal>&nbsp;</h2><h2 class=MsoNormal><span lang=EN-US>Xanthine  oxidoreductase. properties, functions and regulation of its genetic expression  </span></h2><h4 class=MsoNormal>Summary</h4>    <p class=MsoNormal><span lang=EN-US>A  review of Xanthine oxidoreductase,which  is a molibdoflavoenzyme largely distributed  in differents species from  bacteria to man, was made. It has been studied for  its connection with the production of reactive oxygen species, a phenomenon involved  in the oxidative damage present in different pathological states. Its structure,  properties, genetics, distribution, main functions, regulation and pathological  states,  where an increase of its activity  has been detected, were dealt with.   There is special interest in it due to its low levels of activity as a result  of  its structural particularities, and to  the recent discovery of the participation  of DNA binding proteins in the regulation of the expression of its gene, in whose  promoter there  have been detected binding sites to these proteins. The induction  of the synthesis of this enzyme by inflammatory cytokines and the detection of  an increase of its activity during the myocardial damage caused by ischemia-reperfusion,  and in other tissues, support the hypothesis of its participation in the tissular  injury by oxidative stress. </span></p>    <p class=MsoNormal><span lang=EN-US><i>Key  words</i>: Xanthine oxidoreductase, properties, functions, reactive  oxígen species,  oxidative damage.</span></p><h4 class=MsoNormal><span lang=EN-GB style='color:black'>Referencias  bibliográficas</span></h4>    <!-- ref --><P><span lang=EN-GB>1. Della Corte E, Stirpe F. Regulation  of xanthine oxidase in rat liver: modifications of the enzyme activity of rat  liver supernatant on storege at - 20 ºC. Biochem J 1968;108:349-51. </span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>2.  Della Corte E, Stirpe F. The regulation of rat liver xanthine oxidase: activation  by proteolytic enzymes.FEBS Lett 1968;2:83-4. </span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>3.  Stirpe F, Della Corte E. The regulation of rat liver xanthine oxidase. Conversion  in vitro of the activity from dehydrogenase(Type D) to oxidase(Type O). J Biol  Chem 1969;244:3855-63.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>4. Della Corte E, Stirpe  F. The regulation of xanthine oxidase. Inhibition by reduced nicotinamide-adenine  dinucleotide of rat liver xanthine oxidase type D and of chicken liver xanthine  dehydrogenase. Biochem J 1970;117:97-100. </span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>5. Della  Corte E, Stirpe F. The regulation of rat liver xanthine oxidase. Involvement of  thiol groups in the conversion of the enzyme activity from dehydrogenase(type  D) into oxidase(type O) and purification of the enzyme. Biochem J 1972;126:739-45.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>6.  Batelli MG, Della Corte E, Stirpe F. Xanthine oxidase type D(dehydrogenase) in  the intestine and other organs. Biochem J 1972;126:747-9.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>7.  Engerson TD, Mckelvey TG, Rhyne DB. Conversión of xanthine dehydrogenase to oxidase  in ischemic rat tissues. J Clin Invest 1987;79:1564-70. </span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>8.  Harrison R. Structure and Function of Xanthine Oxidoreductase: Where are we now?  Free Radical Biol<span       style='layout-grid-mode:line'> Med 2002;33(6):774-97.</span></span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>9.  Xu, P., Huecksteadt, T. P., Harrison R., Hoidal, J. R. Molecular cloning, tissue  expression of human xanthine dehydrogenase. Biochem Biophys Res Commun<i> </i>1994;199:998-1004.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>10.  Wright RM, Vaitaitis GM, Wilson CM, Repine TB, Terada LS, Repine JE. cDNA cloning,  gharacterization, and tissue-specific expression of human xanthine dehydrogenase/xanthine  oxidase. Proc Natl Acad Sci U S A 1993</span><span lang=EN-GB       style='font-family:Symbol'>;</span><span lang=EN-GB>90(22)</span><span       lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>:</span><span lang=EN-GB>10690-4.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-US>11.  McManaman JL, David LB. </span><span       lang=EN-GB>Structural and conformational analysis of the oxidase to dehydrogenase  conversion of xanthine oxidoreductase. J Biol Chem 2002</span><span       lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>;</span><span lang=EN-GB>277</span><span       lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>:</span><span lang=EN-GB>21261-8.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-US>12.  Xu P, La Vallee PA, Lin JJ, John HR. </span><span       lang=EN-GB>Characterization of Proteins Binding to E-box/Ku86 in transcriptional  Regulation of the human xanthine oxidoreductase gene. J Biol </span><span lang=ES-TRAD>Chem  2004;279:16057-63. </span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>13. Martelin E, Palvimo JJ,  Lapatto R, Raivio KO. Nuclear factor Y activates the human xanthine oxidoreductase  gene promoter. FBES Lett 2000</span><span lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>;</span><span       lang=EN-GB>480(2-3)</span><span lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>:</span><span       lang=EN-GB>84-8.</span><!-- ref --><P>14. Xu P, La Vallee P, Hoidal JR. <span lang=EN-GB>Repressed  expression of the human xanthine oxidoreductase gene E-box and TATA-like elements  restrict ground state transcriptional activity. J Biol Chem 2000</span><span       lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>;</span><span lang=EN-GB>275</span><span       lang=EN-GB style='font-family:Symbol'>:</span><span lang=EN-GB>5918-26.</span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>15.  Phillis JW, Sen S, Cao X. Amflutizole, a xanthine oxidase inhibitor, inhibits  free radical generation in the ischemic/reperfused rat cerebral cortex. Neurosci  Lett<i> </i>1994;169:188-90. </span><!-- ref --><P><span lang=EN-GB>16. Beetsch JW, Park  TS, Dugan LL, </span><span         lang=EN-GB>Shah</span><span lang=EN-GB> </span><span lang=EN-GB>AR</span><span       lang=EN-GB>, Gidday JM. Xanthine oxidase-derived superoxide causes reoxygenation  injury of ischemic cerebral endothelial cells. Brain Res<i> </i>1998;786:89-95.</span><p class=MsoNormal><span lang=ES-TRAD>Recibido:  10 de diciembre de 2004.  Aprobado: 4 de enero de 2005.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </span>Dr. <i>Ulises  Mendoza Coussette</i>. Instituto de Ciencias Básicas y Preclínicas “Victoria de  Girón”. Avenida 146. No 3102 esquina a 31, reparto Cubanacán, municipio Playa.  Ciudad de La Habana, Cuba. CP 11600. Teléf: 2084877.</p>       ]]></body><back>
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