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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Cambios en la actividad biológica de un antígeno debido a la temperatura generada durante la electroforesis de poliacrilamida]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of temperature on the biological activity of an antigen during the electrophoresis in non-reducing polyacrylamide gels was evaluated because on occasions the technique precedes electroelution, a method used in the purification of certain proteins. The prostate specific antigen was utilized for the assay. It was purified starting from the semen of voluntary patients. It was precipitated with ammonium sulfate 70 %. The repetitions (3 for each temperature) were made at 4 and 25 °C and at 20 mA. For every tested temperature, the fragments from the gels cut at the expected size for the specific prostatic antigen (33 kDa) were electroeluted at 4 °C. By comparing the protein concentrations using Lowry&#8217;s technique and the radioimmunoenzymatic method, it was quantified the amount of biologically active protein after the electrophoresis. A commercial prostate specific antigen was used as control. The results indicate that at 4 °C the antigen keeps 80 % of its biological activity, which does not occur at 25 °C, where more than 50 % of the protein is biologically inactive.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p class=MsoNormal>Instituto Superior de Ciencias Médicas de Camagüey    <br>     Centro de Inmunología y Productos Biológicos</p>   <h2 class=MsoNormal>Cambios en la actividad biológica de un antígeno debido      a la temperatura generada durante la electroforesis de <span class=SpellE>poliacrilamida</span></h2>       <p class=MsoNormal><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'><i>Dr. Oscar      <span class=SpellE>Hernández</span> Betancourt, <span class=SpellE>Ing</span>. </i></span><i><span class=SpellE>Yadira</span> Falcón Almeida, Lic. Blanca R. Santana Guerra, Dr.      Andrés Pedrosa y <span class=SpellE>Téc</span>. <span class=SpellE>Leyanis</span>      Rodríguez <span class=SpellE>Cardoso</span></i></p>   <h4 class=MsoNormal>Resumen</h4>       <p class=MsoNormal>Se evaluó el efecto que origina la temperatura sobre la actividad      biológica de un antígeno durante la electroforesis en <span class=SpellE>geles</span> no reductores de <span class=SpellE>poliacrilamida</span>,      porque en ocasiones la técnica precede a la <span class=SpellE>electroelusión</span>,      método empleado en la purificación de determinadas proteínas. Se utilizó el      antígeno específico prostático para el ensayo, este se purificó a partir del      semen de pacientes voluntarios, precipitado con sulfato de amonio 70 %. Las      corridas (3 para cada temperatura), se llevaron a cabo a 4 y 25 &deg;<span class=SpellE>C</span>, y se realizaron a 20 <span class=SpellE>mA</span>. Para      cada temperatura ensayada, los fragmentos provenientes de los <span class=SpellE>geles</span> cortados a la talla esperada para el antígeno específico      prostático (33 <span class=SpellE>kDa</span>), se <span class=SpellE>electroeluyeron</span> a 4 <span class=SpellE>&deg;C</span>. Mediante      la comparación de las concentraciones de proteínas empleando la técnica de      <span class=SpellE>Lowry</span> y el método <span class=SpellE>radioinmunoenzimático</span>,      se cuantificó la cantidad de proteína biológicamente activa posterior a la      electroforesis. Se utilizó un antígeno específico prostático comercial como      control. Los resultados indican que el antígeno a 4 <span class=SpellE>&deg;C</span>,      conserva 80 % de su actividad biológica, lo que no sucede a 25 <span class=SpellE>&deg;C</span> donde más de 50 % de la proteína es biológicamente      inactiva.</p>       <p class=MsoNormal><i style='mso-bidi-font-style:normal'>Palabras clave</i>:      ASP, temperatura, electroforesis.</p>       <p class=MsoNormal>&nbsp;</p>       <p class=MsoNormal>Los <span class=SpellE>geles</span> de <span class=SpellE>poliacrilamida</span>      son comúnmente utilizados en los laboratorios con diversos fines, entre los      que se encuentran la separación de <span class=SpellE>biomoléculas</span>      como proteínas y ADN, fundamentada en el peso molecular de estas, así como      en su carga iónica.<sup>1</sup> Es una técnica que presenta un poder resolutivo      superior a otros soportes usados como la celulosa, acetato de celulosa, almidón      y la azarosa,<sup>2</sup> lo cual permite su uso como método de purificación      cuando es seguida de la <span class=SpellE>electroelusión</span> del fragmento      cortado a la talla deseada. Generalmente se lleva a cabo a la temperatura      de laboratorio (25 <span class=SpellE>&deg;C</span>) y en ocasiones se obvia      por parte del investigador el efecto que este factor físico originado por      el campo eléctrico generado, puede tener sobre la actividad biológica de la      molécula de interés. La migración a lo largo del <span class=SpellE>gel</span>      con una temperatura incrementada, genera un gradiente que influye sobre la      desnaturalización de las proteínas, la cual puede llegar a ser irreversible      en algunos casos.<sup>3</sup> Es importante que el antígeno purificado, conserve      la actividad biológica para ser utilizado en los <span class=SpellE>bioensayos</span>      (diagnósticos, terapéuticos u otros) con la finalidad de lograr buenos resultados.      Para los estudios se empleó el antígeno especifico prostático (AEP) proteína      de 33 <span class=SpellE>kDa</span>, considerada un antígeno asociado a tumores (AAT) y sobre      expresada en pacientes con cáncer de próstata a niveles superiores a los 4      <span class=SpellE>ng</span>/<span class=SpellE>mL</span>.<sup>4</sup> Se      presentan en esta molécula varios enlaces <span class=SpellE>disulfuros</span>,      que la hacen de estructura complicada, la cual puede verse afectada por la      temperatura. La sensibilidad a este factor esta relacionada con la forma en      que se encuentra en la sangre; la molécula es más <span class=SpellE>termosensible</span>      cuando se presenta en su estado libre<span class=GramE>,<sup>5</sup></span>      no formando complejo con la <span style='mso-bidi-font-size:12.0pt;font-family: Symbol;mso-bidi-font-family:Symbol'>a</span>–1antiquimiotripsina y la <span style='mso-bidi-font-size:12.0pt;font-family:Symbol;mso-bidi-font-family:Symbol'>b</span>–<span class=SpellE>macroglobulina</span>.</p>       <p class=MsoNormal>El presente trabajo tiene como objetivo mostrar el efecto      del factor temperatura sobre la actividad biológica del ASP durante el proceso      de electroforesis, sugiriendo cambios <span class=SpellE>conformacionales</span>      que afectan la actividad biológica de la molécula. </p>   <h4 class=MsoNormal>Métodos</h4>       <p class=MsoNormal><i style='mso-bidi-font-style:normal'>Fuente</i> <i style='mso-bidi-font-style:normal'>de antígeno</i></p>       <p class=MsoNormal>El antígeno fue obtenido a partir del semen de pacientes      voluntarios y se purificó según el método descrito por <span class=SpellE><i>Wang</i></span>      y otros.<sup>6</sup></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal><i style='mso-bidi-font-style:normal'>Electroforesis de <span class=SpellE>poliacrilamida</span> no reducida </i>(PAGE <i style='mso-bidi-font-style: normal'>discontinuo</i>) <i style='mso-bidi-font-style:normal'>y</i> <span class=SpellE><i style='mso-bidi-font-style:normal'>western</i></span><i style='mso-bidi-font-style:normal'>-<span class=SpellE>blot</span></i></p>       <p class=MsoNormal>La preparación de la muestra así como la electroforesis se      realizaron según el método descrito por <span class=SpellE><i>Sambrook</i></span><i>      </i>y otros.<sup>7</sup> Se empleó una cámara vertical de 16 x 18 <span class=SpellE>cm</span>      para los ensayos. Las corridas (3 para cada temperatura) se efectuaron a 20      <span class=SpellE>mA</span> y se realizaron a 4 y 25 <span class=SpellE>&deg;C</span>.      Una vez terminada la electroforesis, se cortó el <span class=SpellE>gel</span>      en la región correspondiente a la talla esperada para el ASP (33 <span class=SpellE>kDa</span>),      haciendo uso de un marcador de peso molecular conocido. Para la técnica de      <span class=SpellE><i>western</i></span><i>-<span class=SpellE>blot</span></i><sup><span style='font-size:6.0pt'>7</span></sup> se empleó el líquido ascítico de ratones      <span class=SpellE>Balb</span>/c que contenía el anticuerpo monoclonal CMC-H9      diluido 1/20. Se empleó al conjugado <span class=SpellE>anti</span>-ratón      <span class=SpellE>peroxidasa</span> gentilmente donado por los compañeros del Centro      de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica y Biotecnolog&iacute;a de <span class=SpellE>Sancti</span>      <span class=SpellE>Spíritus</span> en una dilución 1/200.</p>       <p class=MsoNormal><span class=SpellE><i style='mso-bidi-font-style:normal'>Electroelusión</i></span></p>       <p class=MsoNormal>Se siguió el procedimiento descrito.<sup>7</sup> Se realizaron      3 <span class=SpellE>electroelusiones</span> para cada temperatura ensayada      en la corrida <span class=SpellE>electroforética</span> (4 y 25 <span class=SpellE>&deg;C</span>).      Todas (6 en total) se efectuaron a 30 <span class=SpellE>mA</span> y 4 <span class=SpellE>&deg;C</span> de temperatura. Concluida      esta, se procedió a dializar la muestra en PBS 1X durante 24 h. Posteriormente      la muestra final de cada <span class=SpellE>electroelusión</span> se concentró      hasta el volumen deseado (1-1,5mL) para su posterior cuantificación.</p>       <p class=MsoNormal><i style='mso-bidi-font-style:normal'>Cuantificación del</i>      ASP <i style='mso-bidi-font-style:normal'>y determinación de la actividad</i>      <i style='mso-bidi-font-style:normal'>biológica</i></p>       <p class=MsoNormal>Las muestras provenientes de las <span class=SpellE>electroelusiones</span>      (6 en total) fueron cuantificadas utilizando el método de proteínas totales      de <span class=SpellE><i>Lowry</i></span>.<sup>7</sup> Para cuantificar la actividad biológica      específica basada en el reconocimiento antígeno anticuerpo, se empleó un <span class=SpellE>radioinmunoensayo</span>      (RIA) comercializado por el CENTIS (CIS-BIO), empleado en el seguimiento de      los pacientes con cáncer de próstata. Se utilizó un antígeno comercial como      control.</p>       <p class=MsoNormal><i style='mso-bidi-font-style:normal'>Estudios estadísticos</i></p>       <p class=MsoNormal>Se presentan los resultados con las medias y las desviaciones      estándar para cada ensayo realizado (<span class=SpellE>n=</span> 3)</p>   <h4 class=MsoNormal>Resultados</h4>       <p class=MsoNormal>En la figura 1 se muestra el efecto de la temperatura sobre      el reconocimiento de la molécula de AEP por parte de los anticuerpos monoclonales      utilizados en el ensayo de cuantificación específico para este antígeno (RIA-CISBIO).      El empleo de 2 métodos de cuantificación de proteínas, uno inespecífico (<span class=SpellE><i>Lowry</i></span>)      y otro específico para el AEP (RIA), permitieron evidenciar daños en la molécula      de AEP que afectan el reconocimiento de esta por los anticuerpos monoclonales.    </p>       <p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><a href="/img/revistas/ibi/v25n3/f0106306.gif"><img src="/img/revistas/ibi/v25n3/f0106306.gif" width="406" height="218" border="0"></a></p>       
]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><i><span style='font-size:10.0pt'>Fig. 1.</span></i><span style='font-size:10.0pt'> Diagrama      de barra que compara la concentración de proteínas (AEP) obtenidas con un      método de cuantificación inespecífico (<span class=SpellE><i>Lowry</i></span>)      y un método específico para este antígeno (RIA-CISBIO) a diferentes temperaturas      (4 y 25 <span class=SpellE>&deg;C</span>) se compara empleando un antígeno comercial      de la firma CISBIO. Se muestran los valores medios para <span class=SpellE>n=3</span> con sus desviaciones estándar.</span></p>       <p class=MsoNormal>Se evidencia el efecto negativo que tiene la temperatura      cuando el ensayo (electroforesis) se realizó a 25 <span class=SpellE>&deg;C</span>,      donde más de 50 % de la molécula muestra una pérdida de la actividad biológica.      Este se comparó con los resultados obtenidos a 4 <span class=SpellE>&deg;C</span>,      donde además se utilizó un antígeno comercial de la firma CISBIO. Sin embargo      cuando la corrida de proteínas se llevó a cabo a<span style='mso-spacerun:yes'>  </span>4<span class=SpellE>&deg;C</span>, se detectó actividad      en casi 80 % del antígeno purificado.</p>       <p class=MsoNormal>Con el objetivo de detectar cambios moleculares en el antígeno      específico prostático (AEP) se procedió a realizar un <span class=SpellE><i>western</i></span><i>-<span class=SpellE>blot</span></i> en condiciones      no reductoras a la muestra proveniente del experimento de 25 <span class=SpellE>&deg;C</span> posterior al proceso de <span class=SpellE>electroelusión</span>.      En la figura 2 se observan poblaciones moleculares del antígeno que no son      reconocidas por el anticuerpo monoclonal específico CMC-H9. </p>       <p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><a href="/img/revistas/ibi/v25n3/f0206306.jpg"><img src="/img/revistas/ibi/v25n3/f0206306.jpg" width="232" height="253" border="0"></a></p>       
<p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><i><span style='font-size:10.0pt'>Fig. 2</span></i><span style='font-size:10.0pt'>. Electroforesis      de proteína realizada a la muestra del experimento de 25 <span class=SpellE>&deg;C</span> posterior a la <span class=SpellE>electroelusión</span>,      empleando <span class=SpellE>geles</span> de <span class=SpellE>poliacrilamida</span>      no reducidos (carril 1) y <span class=SpellE><i>western</i></span><i>-<span class=SpellE>blot</span></i> (carril 2) utilizando un anticuerpo monoclonal específico      para el AEP (H9). Se empleó un conjugado <span class=SpellE>anti</span>-ratón      <span class=SpellE>peroxidasa</span> 1/200. La flecha en el carril 2 indica      el peso molecular del AEP (33 <span class=SpellE>kDa</span>). Las flechas      en el carril 1 indican las poblaciones moleculares no reconocidas por el <span class=SpellE>AcM.</span></span></p>   <h4 class=MsoNormal>Discusión</h4>       <p class=MsoNormal>Las técnicas empleadas en el <span class=SpellE>inmunodiagnóstico</span>      <i>in <span class=SpellE>vitro</span></i> de múltiples enfermedades, requieren      de moléculas que conserven su estructura o conformación nativa, lo cual permite      preservar su actividad biológica y asegurar por consiguiente la eficiencia      del ensayo en términos de especificidad, sensibilidad y precisión entre otros.    </p>       <p class=MsoNormal>El cáncer de próstata constituye una enfermedad estudiada      en muchos laboratorios del mundo. En Cuba algunos laboratorios dedican su      atención a tan penosa enfermedad, dirigiendo sus estudios bien al tratamiento      o al diagnóstico precoz de esta. </p>       <p class=MsoNormal>En el presente trabajo la proteína de interés estudiada se      encuentra relacionada con este tipo de cáncer porque circulan a muy bajas      concentraciones (inferiores a 4 <span class=SpellE>ng</span>/<span class=SpellE>mL</span>) en los fluidos corporales (sangre y semen) de personas      sanas del sexo masculino,<sup>1</sup> pero se exacerba en presencia de una      lesión de la próstata. Se conoce que esta molécula se encuentra en forma libre      o asociada a otras proteínas formando complejos<sup>8</sup> y que su forma      libre es <span class=SpellE>termosensible<sup>5</sup></span> en contradicción      con otros autores que en ensayos de estabilidad de sueros de pacientes a altas      temperaturas, plantean que el complejo es más sensible a este factor que su      forma libre.<sup>9</sup> Es esta forma libre de 33 <span class=SpellE>kDa</span>      la que frecuentemente es manipulada en el laboratorio para establecer los      sistemas de detección como patrones positivos en curvas controles.</p>       <p class=MsoNormal>Dada la demanda de la molécula como patrón en los sistemas      de detección (ELISA, RIA) y el interés de su obtención mediante el empleo      de un método sencillo, poco costoso y con un alto poder resolutivo como es      la <span class=SpellE>electroelusión</span> de proteínas, se decidió realizar un estudio      que evidenciara cambios moleculares de esta. Estos resultados serían de gran      utilidad para otros investigadores que emplean la <span class=SpellE>electroelusión</span>      como una alternativa conveniente de purificación por las ventajas antes mencionadas      y donde se puede incurrir en errores al realizar comúnmente las electroforesis      a temperaturas del laboratorio (25 <span class=SpellE>&deg;C</span>). </p>       <p class=MsoNormal>El trabajo aquí mostrado evidenció la pérdida de la actividad      biológica del AEP debido a un cambio <span class=SpellE>conformacional</span>      que impidió el reconocimiento por los anticuerpos utilizados en el RIA (<span class=SpellE>fig.</span>1) y en el <span class=SpellE><i>western</i></span><i>-<span class=SpellE>blot</span></i> (<span class=SpellE>fig.</span> 2), y se mostró que      este cambio en la actividad ocurrió de forma marcada a 25 <span class=SpellE>&deg;C</span> donde solo pudo detectarse 40 % de la molécula, no siendo      así cuando el ensayo se efectuó a 4 <span class=SpellE>&deg;C</span> donde se      cuantificó 80 % del AEP empleando el mismo juego diagnóstico mencionado antes.      Este resultado coincide con datos publicados anteriormente, donde los autores      plantean que la mayor estabilidad de la molécula de AEP reside a 4 <span class=SpellE>&deg;C</span>.<sup>10,11</sup> Este es un factor importante, si se tiene      en cuenta que la utilidad clínica del ensayo puede verse comprometida por      la pérdida de la actividad del antígeno, comprometiendo variables claves del      método diagnóstico. </p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal>Con el objetivo de evidenciar los cambios moleculares que      ocurrieron a 25 <span class=SpellE>&deg;C</span> durante la electroforesis de      proteína, se procedió a realizar el <span class=SpellE><i>western</i></span><i>-<span class=SpellE>blot</span></i>, donde se empleó un <span class=SpellE>AcM</span>      (CMC-H9) obtenido contra esta molécula de AEP en nuestro laboratorio. Se observaron      cambios de conformación que coincidieron con los cambios moleculares descritos      por <span class=SpellE><i>Thatcher</i></span> y otros.<sup>3</sup> Esos autores      mostraron además que estos cambios pueden llegar a ser irreversibles, citando      como ejemplos las enzimas <i>alcohol <span class=SpellE>deshidrogenasa</span></i>      y la <i>ácido láctico <span class=SpellE>deshidrogenasa</span></i> de <span class=SpellE><i>Drosophila</i></span><i>      <span class=SpellE>melanogaster</span></i>, debido a las temperaturas generadas      durante el ensayo, en cambio mostraron que proteínas como la <span style='mso-bidi-font-size:12.0pt;font-family:Symbol;mso-bidi-font-family:Symbol'>b</span>-<span class=SpellE>lactamasa</span> recuperaron su actividad biológica posterior a la      corrida y observaron diferentes estados de transición entre la forma nativa      y la desnaturalizada, coincidiendo la presencia de estos estados de transición      con nuestros resultados. Varios trabajos informan sobre el efecto del factor      temperatura en los procesos biológicos, como cambios en estructuras moleculares      al nivel de células<span class=GramE>,<sup>12-14</sup></span> así como de      mecanismos celulares como la <span class=SpellE>transcripción</span>.<sup>15</sup>      Este trabajo confirma la importancia que tiene para el investigador, comprobar      la estabilidad térmica de la proteína de interés, y ajustar las condiciones      óptimas de sus experimentos que en ocasiones se realizan de forma rutinaria      según los protocolos generales descritos.</p>   <h2 class=MsoNormal><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Changes      in the biological activity of an antigen due to the temperature generated      during the <span class=SpellE>polyacrylamide</span> electrophoresis</span></h2>   <h4 class=MsoNormal><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Summary</span></h4>       <p class=MsoNormal><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>The effect      of temperature on the biological activity of an antigen during the electrophoresis      in non-reducing <span class=SpellE>polyacrylamide</span> gels was evaluated      because on occasions the technique precedes <span class=SpellE>electroelution</span>,      a method used in the purification of certain proteins. The prostate specific      antigen was utilized for the assay. It was purified starting from the semen      of voluntary patients. It was precipitated with ammonium sulfate 70 %. The      repetitions (3 for each temperature) were made at 4 and 25 &deg;C and at 20 <span class=SpellE>mA</span>. For every tested temperature, the fragments from the gels      cut at the expected size for the specific <span class=SpellE>prostatic</span>      antigen (33 <span class=SpellE>kDa</span>) were <span class=SpellE>electroeluted</span>      at 4 &deg;C. By comparing the protein concentrations using Lowry’s technique and      the <span class=SpellE>radioimmunoenzymatic</span> method, it was quantified      the amount of biologically active protein after the electrophoresis. A commercial      prostate specific antigen was used as control. The results indicate that at      4 &deg;C the antigen keeps 80 % of its biological activity, which does not occur      at 25 &deg;C, where more than 50 % of the protein is biologically inactive. </span></p>       <p class=MsoNormal><i style='mso-bidi-font-style:normal'><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Key words</span></i><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>: PSA, temperature, electrophoresis.</span></p>   <h4 class=MsoNormal>Referencias bibliográficas</h4>       <!-- ref --><p>1. Experimental <span class=SpellE>Biosciences</span>.      <span class=SpellE>Sample</span> <span      class=SpellE>preparation</span> <span class=SpellE>for</span> <span      class=SpellE>electrophoresis</span> <span class=SpellE>of</span> <span      class=SpellE>proteins</span> (<span class=SpellE>on</span> <span      class=SpellE>line</span>) 3 de febrero 2004. 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