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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de anticuerpos IgG contra el ADN de doble cadena mediante ELISA utilizando como recubrimiento ADN xenógeno y alógeno]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Ciencias Básicas y Preclínicas Victoria de Girón Departamento de Inmunología Centro Nacional de Genética Médica]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Obtaining of the xenogenic DNA used as coat of a indirect enzymoimmunoassay, to determine IgG antibodies to double-chain DNA is difficult, and also it is very expensive. Thus, aim of this paper is to valuate usefulness of allogenic DNA as coat antigen to detect these antibodies. As coat we used DNA from calf thymus, and DNA from 6 subjects supposedly healthy. Analysis of presence of antibodies war carried out in sera from 16 individuals with diagnosis of systemic lupus erythematosus. There was a 100% of coincidence in results, as well as a few differences in discrimination ability of method using the two types of DNA. According above mentioned, we conclude that human DNA is useful as coat of this enzymoimmunoassay. Achievement of such antigen is less expensive than that of DNA from calf thymus.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[anticuerpos IgG contra el ADN de doble cadena]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font size="2" face="Verdana"> <strong>TRABAJO ORIGINAL </strong></font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="left"><strong><font size="4" face="Verdana">Determinaci&oacute;n de      anticuerpos IgG contra el ADN de doble cadena mediante ELISA utilizando como      recubrimiento ADN xen&oacute;geno y al&oacute;geno</font></strong> </p> </div>     <P align="left">      <P align="left"><strong><font size="3" face="Verdana">Determination of IgG antibodies    to double-chain DNA by ELISA using the xenogenic and allogenic DNA as coat </font></strong>     <P align="left">&nbsp;     <P align="left">&nbsp;      <P align="left">      <P align="left"><strong><font size="2" face="Verdana">Gipsis Su&aacute;rez Rom&aacute;n;    <SUP>I</SUP> Antonio Mario Gonz&aacute;lez Griego;<SUP> II</SUP> Tammy Fern&aacute;ndez    Romero;<SUP> I</SUP> Victoria Esther Gonz&aacute;lez Ram&iacute;rez. <SUP>I</SUP></font></strong>        ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>     <div align="left">     <p><font size="2" face="Verdana"><SUP>I </SUP>Instituto de Ciencias B&aacute;sicas      y Precl&iacute;nicas &quot;Victoria de Gir&oacute;n&quot; Ciudad de la Habana,      Cuba.    <br>     <SUP>II</SUP> Departamento de Inmunolog&iacute;a. Centro Nacional de Gen&eacute;tica      M&eacute;dica, Ciudad de la Habana, Cuba. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p> </div> <hr> <strong><font size="2" face="Verdana">RESUMEN </font></strong>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">El ADN xen&oacute;geno empleado    como recubrimiento de un inmunoensayo enzim&aacute;tico indirecto, para la determinaci&oacute;n    de anticuerpos IgG contra el ADN de doble cadena, es de dif&iacute;cil obtenci&oacute;n    y muy costoso. Por tal motivo, el objetivo del presente trabajo es evaluar la    utilidad del ADN al&oacute;geno como ant&iacute;geno de recubrimiento para detectar    estos anticuerpos. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se emple&oacute; como recubrimiento    ADN de timo de ternera y ADN de 6 sujetos supuestamente sanos. El an&aacute;lisis    de la presencia de los anticuerpos se realiz&oacute; en suero de 16 individuos    con diagn&oacute;stico de Lupus Eritematoso Sist&eacute;mico. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se obtuvo un 100% de coincidencia    en los resultados, as&iacute; como pocas diferencias en la capacidad de discriminaci&oacute;n    del m&eacute;todo con el empleo de los dos tipos de ADN. Seg&uacute;n lo anterior    se concluye que el ADN humano es &uacute;til como recubrimiento de este enzimoinmunoensayo.    La obtenci&oacute;n de dicho ant&iacute;geno es menos costosa que la del ADN    de timo de ternera. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left">      <P align="left"><strong><font size="2" face="Verdana">Palabras clave:</font></strong><font size="2" face="Verdana">    enzimoinmunoensayo, anticuerpos IgG contra el ADN de doble cadena, ADN xen&oacute;geno,    ADN al&oacute;geno. </font>  <hr>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana"><strong>ABSTRACT</strong> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Obtaining of the xenogenic DNA used    as coat of a indirect enzymoimmunoassay, to determine IgG antibodies to double-chain    DNA is difficult, and also it is very expensive. Thus, aim of this paper is    to valuate usefulness of allogenic DNA as coat antigen to detect these antibodies.    As coat we used DNA from calf thymus, and DNA from 6 subjects supposedly healthy.    Analysis of presence of antibodies war carried out in sera from 16 individuals    with diagnosis of systemic lupus erythematosus. There was a 100% of coincidence    in results, as well as a few differences in discrimination ability of method    using the two types of DNA. According above mentioned, we conclude that human    DNA is useful as coat of this enzymoimmunoassay. Achievement of such antigen    is less expensive than that of DNA from calf thymus. </font>     <P align="left">      <P align="left"><strong><font size="2" face="Verdana">Key words:</font></strong><font size="2" face="Verdana">    Enzymoimmunoassay, Igantibodies to double-chain DNA, xenogenic DNA, allogenic    DNA </font> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P align="left">      <P align="left">      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><strong><font size="3" face="Verdana">INTRODUCCION </font></strong>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Los anticuerpos contra el ADN de    doble cadena (anti-ADNdc) fueron descubiertos en 1957. La presencia de estos    anticuerpos constituye uno de los criterios diagn&oacute;sticos de la Asociaci&oacute;n    Americana de Reumatolog&iacute;a para el Lupus Eritematoso Sist&eacute;mico    (LES) <SUP>1, 2, 3</SUP>. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Numerosas pruebas para la determinaci&oacute;n    de anti-ADNdc han sido ideadas. Entre ellas se encuentran el Radioinmunoan&aacute;lisis    (RIA), la inmunofluorescencia Indirecta con Crithidia luciliae (CLIF), el ELISA    (<I>Enzyme Linked Immunosorbent Assay </I>), el EliA (<I>Fluorescence Enzyme    Linked Immunoassay</I>) y la Citometr&iacute;a de Flujo <SUP>1, 2, 3</SUP>.    </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">La detecci&oacute;n de anti-ADNdc    mediante ELISA est&aacute; ampliamente difundida en los laboratorios cl&iacute;nicos    por las ventajas que esta t&eacute;cnica posee: la relativa sencillez, la rapidez    de ejecuci&oacute;n, el bajo costo del equipamiento, la posibilidad de automatizaci&oacute;n    y el procesamiento de gran n&uacute;mero de muestras a la vez. Adem&aacute;s    emplea peque&ntilde;as cantidades de muestras y reactivos y presenta elevada    precisi&oacute;n, sensibilidad, especificidad y detectabilidad. <SUP>4, 5, 6</SUP>.    </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Existen juegos diagn&oacute;sticos    comerciales disponibles que utilizan como recubrimiento ADN plasm&iacute;dico,    ADN bacteriano, ADN de timo de ternera y ADN humano recombinante, los cuales    son muy costosos. A esto se adiciona que estos ant&iacute;genos son dif&iacute;ciles    de obtener <SUP>1, 7, 8, 9</SUP>. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Para que el diagn&oacute;stico del    LES se haga en condiciones que se acerquen m&aacute;s al concepto de autoinmunidad    y lograr una mayor especificidad, as&iacute; como disponer de un ant&iacute;geno    obtenido en nuestros propios laboratorios por un m&eacute;todo f&aacute;cil,    sencillo y menos costoso, este trabajo tiene el objetivo de evaluar la utilidad    del ADN gen&oacute;mico humano (al&oacute;geno) como recubrimiento del enzimoinmunoensayo    para la determinaci&oacute;n de IgG anti-ADNdc. </font>     <P align="left">      <P align="left">     <div align="left"><font size="3" face="Verdana"><B>M&Eacute;TODOS </B></font>  </div>     <P align="left">      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><b><font size="2" face="Verdana">Muestras</font></b>      <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se recogi&oacute; suero de 16 pacientes    con diagn&oacute;stico de LES, seg&uacute;n criterios de la Asociaci&oacute;n    Americana de Reumatolog&iacute;a modificados en 1982 y revisados en 1997. Se    obtuvo sangre total fresca de 6 individuos supuestamente sanos destinados a    la obtenci&oacute;n del ant&iacute;geno. Se emple&oacute; suero de personas    supuestamente sanas como control negativo en los ensayos, procedente del banco    de sangre ubicado en el municipio Marianao. Se utiliz&oacute; suero de individuos    enfermos con m&aacute;s de 100 DS (desviaciones est&aacute;ndar) o unidades    de positividad como control positivo. </font>     <P align="left">      <P align="left"><font size="2" face="Verdana"><B>Obtenci&oacute;n del ant&iacute;geno</B></font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico    humano. Diez mL de sangre fresca se mezclan con 250 &#181;L de EDTA (56mg/mL)    como anticoagulante en tubo corning de 50mL. Se a&ntilde;ade soluci&oacute;n    reguladora fosfato salino (PBS1x) hasta completar los 50 mL, se homogeniza suavemente    y se centrifuga a 4000rpm durante 15 minutos a 4&#176;C, luego de lo cual se    desecha el sobrenadante. Se resuspende el pellet con soluci&oacute;n de lisis    celular (TLB) y se coloca durante 30 minutos a 4&#176;C. Se centrifuga a 4000rpm    durante 15 minutos y se desecha el sobrenadante. Se le a&ntilde;ade al pellet    3 mL de soluci&oacute;n de lisis nuclear (NLB), 230 &#181;L de SDS al 10% y    60 &#181;L de proteinasa K y se incuba 1 hora a 55&#176;C y luego a 37&#176;C    durante toda la noche. Se le a&ntilde;ade 1 ml de NaCl 6M y 5 mL de cloroformo-    alcohol isoamilico, se precipita el ADN con 2-propanol y se lava con etanol    al 70%. El pellet se disuelve en Tris EDTA. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">La concentraci&oacute;n del ADN    extra&iacute;do fue medida espectrofotom&eacute;tricamente a 260 nm y la pureza    fue confirmada mediante la raz&oacute;n A<SUB>260</SUB>/A<SUB>280</SUB>. </font>     <P align="left">      <P align="left"><font size="2" face="Verdana"><B>Determinaci&oacute;n de IgG anti-ADNdc    mediante ELISA indirecto</B> </font>      <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se utiliz&oacute; como ant&iacute;geno    ADN gen&oacute;mico de 6 personas supuestamente sanas (al&oacute;geno) y ADN    de timo de ternera (xen&oacute;geno), obtenido comercialmente (Merck). Las condiciones    empleadas con ambos tipos de ant&iacute;genos fueron las siguientes: las placas    de microtitulaci&oacute;n de polivinil cloruro (PVC) fueron irradiadas con luz    ultravioleta durante 16 horas. Luego fueron cubiertas con ADN xen&oacute;geno    y tres ADN al&oacute;genos disueltos en PBS1x, pH 7.2 a concentraci&oacute;n    de 10 &#181;g/mL. Despu&eacute;s de incubaci&oacute;n en c&aacute;mara h&uacute;meda    a 4&#176;C durante toda la noche, las placas fueron lavadas con PBS 1x. Las    muestras y los controles diluidos en PBS-Tween +BSA al 2% fueron a&ntilde;adidos    a una diluci&oacute;n 1:100 e incubados en c&aacute;mara h&uacute;meda a 37&#176;C    durante 1hora. Se realiz&oacute; lavado con PBS-Tween al 0.05% y se a&ntilde;adi&oacute;    IgG anti-humana conjugada con peroxidasa de r&aacute;bano picante diluido 1:4000    en PBS-Tween +BSA al 2%. Se incub&oacute; en c&aacute;mara h&uacute;meda a 37&#176;C    durante 1hora, se efectu&oacute; lavado con PBS-Tween al 0.05% y se a&ntilde;adi&oacute;    sustrato (o-fenilendiamina, Merck). Se incub&oacute; en la oscuridad a temperatura    ambiente durante 30 minutos, deteni&eacute;ndose la reacci&oacute;n con H<SUB>2</SUB>SO<SUB>4</SUB>    3M. Los valores de absorbancia fueron medidos a 492 nm mediante lector de micro    ELISA (Organontechnika). </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">En cada placa se corri&oacute; un    control negativo, un control positivo y cuatro muestras. Cada placa se consider&oacute;    un ensayo. Se efectuaron un total de cuatro ensayos (1 al 4). En el primer ensayo    se utilizaron tres ADN al&oacute;genos diferentes a los empleados en el segundo,    tercero y cuarto. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left">      <P align="left"><font size="2" face="Verdana"><B>Estudios de precisi&oacute;n:    repetibilidad intraensayo e interensayos</B></font>      <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se montaron 4 r&eacute;plicas de    las muestras y de los controles positivo y negativo para evaluar repetibilidad    intraensayo. Cada ensayo se repiti&oacute; dos veces, en d&iacute;as diferentes,    pero manteniendo las mismas condiciones para evaluar la reproducibilidad de    los mismos. </font>     <P align="left">      <P align="left"><font size="2" face="Verdana"><B>An&aacute;lisis de los resultados</B>    </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Los coeficientes de variaci&oacute;n    (CV) se determinaron seg&uacute;n los m&eacute;todos est&aacute;ndares. Se calcul&oacute;    la capacidad de discriminaci&oacute;n (K) para cada ant&iacute;geno. Esta es    una variable cuantitativa continua, la cual se refiere a la capacidad de diferenciar    entre los valores positivos y los negativos. A mayor valor de K mejor es el    poder discriminatorio. Es adimensional. </font>     <blockquote>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">K= X<SUB>C</SUB>+ / X<SUB>C</SUB>-      </font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">X<SUB>C</SUB>+ Densidad &oacute;ptica      media del control positivo. </font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">X<SUB>C</SUB>- Densidad &oacute;ptica      media del control negativo. </font></p> </blockquote>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><font size="2" face="Verdana">La cuantificaci&oacute;n de anticuerpos    IgG anti-ADNdc (CA) se determin&oacute; mediante la aplicaci&oacute;n de la    siguiente f&oacute;rmula: </font>     <blockquote>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">CA=X<SUB>m </SUB>- X<SUB>c</SUB>-      / DS<SUB>c</SUB>- </font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">X<SUB>m </SUB> Densidad &oacute;ptica      media de la muestra. </font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">X<SUB>c</SUB>- Densidad &oacute;ptica      media del control negativo. </font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">DS<SUB>c</SUB>- Desviaci&oacute;n      est&aacute;ndar del control negativo. </font></p> </blockquote>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">La CA es una variable cuantitativa    continua que se expresa en desviaciones est&aacute;ndar (unidades de positividad).    Informa la cantidad de veces que est&aacute; contenida la desviaci&oacute;n    est&aacute;ndar del control negativo en la muestra. La desviaci&oacute;n est&aacute;ndar    usualmente es empleada para establecer un valor de corte que permite emitir    un criterio cualitativo, o sea, la presencia o no de una sustancia o metabolito    en un determinado fluido biol&oacute;gico. Nuestro laboratorio emplea la desviaci&oacute;n    est&aacute;ndar para dar un criterio cuantitativo, lo cual desde el punto de    vista m&eacute;dico tiene gran importancia. Esto posibilita la individualizaci&oacute;n    de la terap&eacute;utica de los pacientes l&uacute;picos. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Los criterios con los que se trabaj&oacute;    para un 99.9% de confianza fueron los siguientes: se tom&oacute; como valor    negativo de referencia cuando CAd&quot;3 DS (unidades de positividad). Se consider&oacute;    ideal si Ke&quot;10, aceptable si 5d&quot;K&lt;10 y desfavorable si K&lt;5.    La obtenci&oacute;n de un CV<SUB>K</SUB> d&quot;10% indicar&iacute;a la no existencia    de diferencias notables en los resultados, un 10%&lt;CV<SUB>K</SUB>d&quot;20%    significar&iacute;a la existencia de diferencias poco notables en los resultados    y si CV<SUB>K</SUB>&gt;20% implicar&iacute;a la existencia de diferencias notables.    Se tom&oacute; un CV intraensayo e interensayo como ideal si CVd&quot;10%, aceptable    si 10%&lt;CVd&quot;20% y desfavorable si CV&gt;20%. </font>     <P align="left">      <P align="left"><strong><font size="3" face="Verdana">RESULTADOS </font></strong>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><font size="2" face="Verdana">El grado de pureza de los dos tipos    de ADN empleados en el estudio se encontr&oacute; dentro del rango aceptado    como ideal (1.6-2.0). Esto indica que el ADN no estaba contaminado con prote&iacute;nas    (<a href="t0107208.gif" target="_blank">Tabla 1</a>). </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Un total de 16 muestras s&eacute;ricas    de individuos con diagn&oacute;stico de LES fueron analizadas. Hubo un 100%    de concordancia en cuanto a los resultados obtenidos con los diferentes ant&iacute;genos    empleados. En las tablas <a href="t0207208.gif" target="_blank">2</a> y <a href="t0307208.gif" target="_blank">3</a>    se puede observar que 15 de las 16 muestras fueron positivas y s&oacute;lo una    negativa con el empleo del ADN xen&oacute;geno y de los diferentes ADN al&oacute;genos.    </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">En el primer ensayo las capacidades    de discriminaci&oacute;n (K) del m&eacute;todo con el uso de ADN xen&oacute;geno    y con los ADN al&oacute;genos 1, 2 y 3 resultaron aceptables (8.1, 9.3, 8.8    y 7.0 respectivamente). Las K obtenidas en los ensayos 2 y 3 fueron las siguientes:    5.7, 4.9, 5.2 y 4.5; 6.4, 5.0, 5.4 y 4.4 respectivamente. Con el empleo del    ADN al&oacute;geno 6 en los ensayos 2 y 3 el m&eacute;todo mostr&oacute; una    capacidad de discriminaci&oacute;n desfavorable, al igual que con el al&oacute;geno    4 en el ensayo 2. En el ensayo 4 se obtuvieron valores de K aceptables tanto    con el ADN xen&oacute;geno como con los ADN al&oacute;genos 4, 5 y 6 (6.9, 5.5,    5.5 y 5.3) (<a href="f0107208.gif" target="_blank">Figura 1</a>). </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">En los ensayos 2, 3 y 4 la K con    el ADN xen&oacute;geno fue superior a la obtenida con los ADN al&oacute;genos,    ocurriendo lo contrario con dos de los al&oacute;genos en el primer ensayo realizado    (<a href="f0107208.gif" target="_blank">Figura 1</a>). </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">El coeficiente de variaci&oacute;n    entre las capacidades de discriminaci&oacute;n (CV<SUB>K</SUB>) con el empleo    de cada ant&iacute;geno se mantuvo por debajo del 10% en el ensayo 2. En los    ensayos 1, 3 y 4 el CV<SUB>K</SUB> tom&oacute; valores entre el 10% y el 20%    (<a href="f0107208.gif" target="_blank">Figura 1</a>). </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">La mayor&iacute;a de los coeficientes    de variaci&oacute;n de los controles negativos y de las muestras estuvieron    por debajo del 10% y una minor&iacute;a est&aacute; comprendida en el rango    aceptable. Cuando se evalu&oacute; la reproducibilidad algunas muestras (M<SUB>2</SUB>    con el ADN xen&oacute;geno, M<SUB>3</SUB> con el ADN al&oacute;geno 2, M<SUB>4</SUB>    con el ADN al&oacute;geno 4 y M<SUB>7</SUB> con el ADN al&oacute;geno 6) alcanzaron    coeficientes de variaci&oacute;n desfavorables (Tablas <a href="t0407208.gif" target="_blank">4</a>    y <a href="t0507208.gif" target="_blank">5</a>). </font>     <P align="left">      <P align="left"><strong><font size="3" face="Verdana">DISCUSION </font></strong>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">La l&iacute;nea que se ha trazado    Cuba, como pa&iacute;s en v&iacute;as de desarrollo, es la de producir, en la    medida de las posibilidades, los productos biol&oacute;gicos que se requieren    en las t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas. Este principio es el que llev&oacute;    a evaluar la utilidad del empleo del ADN gen&oacute;mico humano (al&oacute;geno)    como recubrimiento del ELISA para detectar anticuerpos anti-ADNdc en el diagn&oacute;stico    del LES. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">En este estudio s&oacute;lo se determinaron    anticuerpos anti-ADNdc de tipo IgG ya que son m&aacute;s espec&iacute;ficos    para el LES que los de tipo IgM. <SUP>3, 8</SUP> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se obtuvo un 100% de coincidencia    en los resultados con el uso de los dos tipos de ADN, lo cual indica que cualquiera    de ellos puede emplearse como recubrimiento en el m&eacute;todo ELISA. En la    literatura se reporta que los anticuerpos anti-ADNdc reaccionan contra ep&iacute;topes    conformacionales del eje pentosa-fosfato que es com&uacute;n a todos los ADN.    <SUP>3</SUP><FONT COLOR="#ff0000"> </FONT>Hay autores que plantean que los anti-ADNdc    reaccionan espec&iacute;ficamente contra secuencias telom&eacute;ricas del ADN,    las cuales son caracter&iacute;sticas de cada especie. A pesar de esto las secuencias    telom&eacute;ricas en mam&iacute;feros superiores no muestran muchas diferencias.    <SUP>10</SUP> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">La otra variable que se tuvo en    cuenta en este estudio fue la capacidad de discriminaci&oacute;n del m&eacute;todo.    En su mayor&iacute;a, las K obtenidas con cada tipo de ant&iacute;geno en los    6 ensayos llevados a cabo fueron aceptables. En esto influye si se utilizan    sustancias antes del recubrimiento, si los reactivos est&aacute;n en buen estado,    la pureza del ant&iacute;geno y su grado de polimerizaci&oacute;n, si el ant&iacute;geno    es modificado, la calidad de las soluciones empleadas, etc. <SUP>1, 6, 11, 12,    13 </SUP> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">En el ELISA llevado a cabo no se    emplea ninguna sustancia pre-recubrimiento como sulfato de protamina, polihistidina    o polilisina, que pueden conllevar a la aparici&oacute;n de falsos positivos.    <SUP>1, 11, 12</SUP> Adem&aacute;s, el ADN se utiliza en su forma intacta, o    sea, no es fragmentado. Cuando el ant&iacute;geno es fragmentado se pueden producir    reacciones no espec&iacute;ficas con dichos fragmentos que conducen a resultados    falsos positivos. <SUP>12, 13</SUP> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Las soluciones reguladoras o amortiguadoras    usadas fueron preparadas y almacenadas cuidadosamente para evitar su contaminaci&oacute;n    bacteriana, ya que las que contienen fosfato y Tris constituyen un medio excelente    para sapr&oacute;fitos, bacterias, etc. No se adicionaron a las soluciones amortiguadoras    ning&uacute;n agente antimicrobiano como azida o mercurio pues los mismos tienen    un efecto devastador sobre la actividad enzim&aacute;tica en sistemas, que como    este, usan peroxidasa. <SUP>1, 12</SUP> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Tanto el ADN xen&oacute;geno como    el ADN gen&oacute;mico al&oacute;geno pose&iacute;an grados de pureza adecuados.    A mayor grado de pureza mayor cantidad de ADN se adhiere al pocillo, el riesgo    de interferencias disminuye y se produce una mejor se&ntilde;al. Ello contribuye    a lograr una buena capacidad de discriminaci&oacute;n del m&eacute;todo. Precisamente,    la utilizaci&oacute;n de un ant&iacute;geno altamente purificado constituye    uno de los requisitos a tener en cuenta a la hora de realizar un enzimoinmunoensayo.    <SUP>1, 4, 6</SUP> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">El<FONT COLOR="#ff0000"> </FONT>ADN    de timo de ternera present&oacute; un grado de pureza (1.86) mayor al de los    ADN al&oacute;genos 4, 5, 6 (1.75, 1.65 y 1.71 respectivamente). Basado en lo    expuesto en el p&aacute;rrafo anterior se explica que en los ensayos 2, 3 y    4 la K del m&eacute;todo con el empleo del ADN xen&oacute;geno fuera mayor a    la K con cada ADN al&oacute;geno utilizado. Aunque el ADN xen&oacute;geno y    los ADN al&oacute;genos 1, 2 y 3 utilizados en el ensayo 1 pose&iacute;an grados    de pureza similares, se observa como la K obtenida usando el ADN al&oacute;geno    1 y 2 fue superior a la K mostrada con el ADN xen&oacute;geno (<a href="t0107208.gif" target="_blank">Tabla    1</a>) (<a href="f0107208.gif">Figura 1</a>). </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">El grado de polimerizaci&oacute;n    del ant&iacute;geno influye notablemente sobre la K. A mayor grado de polimerizaci&oacute;n    se incrementa la posibilidad de que no se pierdan los ep&iacute;topes conformacionales    contra los que se supone reaccionan los anti-ADNdc. <SUP>1, 4, 6</SUP> Se conoce    que el ADN de timo de ternera posee un elevado grado de polimerizaci&oacute;n    (seg&uacute;n Directorio Linscott de reactivos inmunol&oacute;gicos y biol&oacute;gicos),    el cual no fue determinado en los ADN al&oacute;genos usados. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">A pesar de estas diferencias los    coeficientes de variaci&oacute;n entre la capacidad de discriminaci&oacute;n    del m&eacute;todo con los ant&iacute;genos empleados en cada ensayo demostraron    que estas no son importantes. Ello se explica por lo expuesto anteriormente    al hacer referencia al grado de coincidencia en los resultados. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">El costo estimado de una extracci&oacute;n    de ADN gen&oacute;mico humano por el m&eacute;todo empleado es aproximadamente    3 USD. Este c&aacute;lculo est&aacute; basado en el costo de los reactivos,    el tiempo de funcionamiento de los equipos, el tiempo empleado por los t&eacute;cnicos    para la realizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica, etc. No se incluyen la cristaler&iacute;a,    ni el costo de los equipos. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Teniendo en cuenta que el volumen    m&iacute;nimo que se puede obtener en una extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico    humano es de 150&#181;L, se estima que el costo de 1mL ser&iacute;a de 20 USD.    Si el costo de 1mL de ADN de timo de ternera es de 200 USD, se ahorrar&iacute;an    180 USD. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><font size="2" face="Verdana">De manera general se logr&oacute;    una buena precisi&oacute;n de los resultados. Algunas muestras presentaron coeficientes    de variaci&oacute;n desfavorables, atribuible a posible contaminaci&oacute;n    de las mismas. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Se concluye que el ADN al&oacute;geno    es un ant&iacute;geno tan &uacute;til como el ADN xen&oacute;geno para la detecci&oacute;n    de anticuerpos IgG anti-ADNdc mediante ELISA. El ADN al&oacute;geno puede ser    obtenido en nuestros laboratorios por un m&eacute;todo sencillo y menos costoso    que los ant&iacute;genos comerciales. </font>     <P align="left">&nbsp;     <P align="left">      <P align="left"><strong><font size="3" face="Verdana">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS    </font></strong>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">1. Rose N R, Hamilton R G, Detrick    B. Editores. Manual of Clinical Laboratory Immunology. 6th ed. Washington: Editorial    ASM Press; 2002. </font>      <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">2. Oldchowka N. Methods for detection    of anti-dsDNA autoantibodies. Elias Journal 2002; 1: 7-8. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">3. Hahn BH. Antibodies to DNA. N    Engl J of Med 1998; 338(19): 1359-1368. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">4. Ochoa F. Bases metodol&oacute;gicas    para la evaluaci&oacute;n de anticuerpos en ensayos cl&iacute;nicos de vacunas    mediante t&eacute;cnicas inmunoenzim&aacute;ticas. La Habana: Finlay Ediciones;    2004. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">5. Roitt I, Brostoff J, Male D.    Inmunolog&iacute;a. 5a ed. Madrid: Harcourt; 2001. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">6. Reina M. ELISA. [en l&iacute;nea]    2003 [fecha de acceso Enero de 2005]. URL disponible en: <FONT COLOR="#0000ff">http://www.ub.es/biocel/wbc/tecnicas/elisa.htm</FONT></font>      <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">7. Gonzalez C, Guevara P, Garcia-Berrocal    B, Navajo J, Gonzalez-Buitrago J. Clinical evaluation of cobas core anti-dsDNA    EIA quant. J Clin Lab Anal 2004;18(3):200-205. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">8. Janyapoon K, Jivakanont P, Surbrsing    R, Siriprapapan W, Tachawuttiwat T, Korbsrisate S. Detection of anti-dsDNA by    ELISA using different sources of antigen. Pathology 2005 Feb; 37(1):63-68. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">9. Wigand R, Gottschalk R, Falkenbach    A, Matthias T, Kaltwasser JP, Hoelzer D. Detection of dsDNA antibodies in diagnosis    of systemic lupus erythematosuscomparative studies of diagnostic effectiveness    of 3 ELISA methods with different antigens and a Crithidia luciliae immunofluorescence    test. Z Rheumatol 1997; 56 (2): 53-62. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">10. Wallace DJ, Salonen EM, Avaniss-Aghajani    E, Morris R, Metzger AL, Pashinian N. Anti-telomere antibodies in systemic lupus    erythematosus: a new ELISA test for anti-DNA with potential pathogenetic implications.    Lupus 2000; 9(5):328-332. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">11. Kroubouzos G, Tosca A, Konstadoulakis    M, Varelzidis A. Poly-L-lysine causes false results in ELISA methods detecting    anti-dsDNA antibodies. J Immunol Methods 1992; 148: 261-263. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">12. Janyapoon K, Siriprapapun W,    Techawuttiwat T, Jivaganon P. Evaluation of optimal conditions for dsDNA coating    on microtiter plates for anti-dsDNA detection by ELISA. Bull Health Sci Tech    2003; 6: 31-38. </font>     <!-- ref --><P align="left"><font size="2" face="Verdana">13. Pitsetsky D, Gonz&aacute;lez    T. The influence of DNA size on the binding of antibodies to DNA in the sera    of normal human subjets and patient with systemic lupus erythematosus (SLE).    Clin Exp Immunol 1999; 116: 334-339. </font>     <P align="left">&nbsp;     <P align="left">&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left">     <P align="left">      <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Recibido: Diciembre 2007    <br>   </font><font size="2" face="Verdana">Aprobado: Febrero 2008 </font>     <P align="left">&nbsp;     <P align="left">&nbsp;      <P align="left">      <P align="left">      <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Gipsis Su&aacute;rez Rom&aacute;n<SUP>;    </SUP>Doctora en Medicina. Especialista de 1<SUP>er</SUP> Grado en Bioqu&iacute;mica    cl&iacute;nica. Instructor. Email: <U><FONT  COLOR="#0000ff">gipsis@giron.sld.cu</FONT></U> </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Antonio Mario Gonz&aacute;lez Griego;    Dr. En Medicina. Dr.CM. Especialita de 2<SUP>do </SUP>Grado en Inmunolog&iacute;a.    Profesor Acad&eacute;mico y Titular. Departamento de Inmunolog&iacute;a. Centro    Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="left"><font size="2" face="Verdana">Tammy Fern&aacute;ndez Romero; Dra.    En Medicina. Especialista de 1<SUP>er</SUP> grado en Bioqu&iacute;mica Cl&iacute;nica.    Instructor. Departamento de Bioqu&iacute;mica. ICBP &#168; Victoria de Gir&oacute;n    &#168;. </font>     <P align="left"><font size="2" face="Verdana">Victoria Esther Gonz&aacute;lez    Ram&iacute;rez; Dra. En Medicina. Especialista de 2<SUP>do</SUP> Grado en Inmunolog&iacute;a.    Profesor Auxiliar. Departamento de Inmunolog&iacute;a. Centro Nacional de Gen&eacute;tica    M&eacute;dica. </font>      ]]></body><back>
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