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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Interleucina-12 exógena evita disminución de actividad de mieloperoxidasa de macrófagos en gérbiles con esporotricosis]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: interleukin-12 is an immunoregulatory cytokine with multiple biologic functions, including macrophage activation. Myeloperoxidase is an enzyme that plays an important role in the antimicrobial function of activated phagocytes. In the presence of hydrogen peroxide, myeloperoxidase catalyzes chloride oxidation to produce hypochlorous acid, a powerful microbicidal agent. Objective: determine the stimulating effect of murine recombinant interleukin-12 on myeloperoxidase activity in peritoneal macrophages of gerbils experimentally infected with Sporothrix schenckii yeasts. Methods: 500 ng murine recombinant interleukin-12 were administered intraperitoneally on a daily basis on 5 consecutive days to male gerbils. On the sixth day the gerbils were inoculated subcutaneously on the left posterior plantar pad with 6x10(6) S. schenckii yeasts. Seven days after infection, macrophages were obtained from the peritoneal cavity. Myeloperoxidase activity was determined by Kaplow's method and expressed as percentage of peritoneal macrophage activity. Results are expressed as the average percentage of myeloperoxidase activity ± standard deviation from 3 independent experiments. Statistical differences between groups were evaluated by Student's t test. A value of p < 0.05 was considered significant. Results: administration of murine recombinant interleukin-12 to gerbils following infection with S. schenckii significantly increased the myeloperoxidase activity of peritoneal macrophages (p = 0.0001) in comparison with healthy controls. Macrophages of untreated infected gerbils, however, showed significantly reduced myeloperoxidase activity in comparison with healthy controls (p= 0.001), suggesting poor macrophage activation. Conclusions: in vivo administration of murine recombinant interleukin-12 before infection with S. schenckii induces macrophage activation evidenced by an increase in myeloperoxidase activity, enhancing the organism's defense against that infectious agent via the myeloperoxidase-dependent oxidative system.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana"> <b>ART&#205;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>    <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b><font size="4">Interleucina-12  ex&#243;gena evita disminuci&#243;n de actividad de mieloperoxidasa de macr&#243;fagos  en g&#233;rbiles    <br> con esporotricosis </font></b></font></p>    <p align="left">&nbsp;</p>    <p>  <font size="2" face="Verdana"><font size="3"><b>Exogenous interleukin-12 prevents  the decrease in myeloperoxidase activity of macrophages in gerbils with sporotrichosis</b></font>  </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana"> <b>Dr. Aurelio Flores-Garc&#237;a,  MSc. Rogelio S&#225;nchez-Guti&#233;rrez, Dr. C.M. Raymundo Velasco-Rodr&#237;guez,  Dr. Alejandro Zambrano-Parra, MSc. Salvador Ruiz-Bern&#233;s, Dr. Cecilio Paredes  Estrada </b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">Universidad Aut&#243;noma  de Nayarit. Tepic, Nayarit, M&#233;xico. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p><hr size="1" noshade>      <p><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN </b> </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Introducci&#243;n:</b>  la interleucina-12 es una citosina inmunorreguladora con m&#250;ltiples funciones  biol&#243;gicas, incluyendo la activaci&#243;n de macr&#243;fagos. La mieloperoxidasa  es una enzima que desempe&#241;a un papel importante en la funci&#243;n antimicrobiana  de fagocitos activados. En presencia de per&#243;xido de hidr&#243;geno, esta  cataliza la oxidaci&#243;n de cloruro para generar &#225;cido hipocloroso, potente  agente microbicida. <br/> <b>Objetivo:</b> determinar el efecto estimulador de  interleucina-12 recombinante murina sobre la actividad de mieloperoxidasa en macr&#243;fagos  peritoneales en g&#233;rbiles infectados experimentalmente con levaduras de <i>Sporothrix  schenckii</i>.    <br> <b>M&#233;todos:</b> 500 ng de interleucina-12 recombinante  murina fueron suministrados diariamente por v&#237;a intraperitoneal durante 5  d&#237;as consecutivos a g&#233;rbiles machos, los cuales al sexto d&#237;a fueron  inoculados por v&#237;a subcut&#225;nea en el cojinete plantar posterior izquierdo  con 6x10<sup>6 </sup>levaduras de <i>S. schenckii</i>. siete d&#237;as despu&#233;s  de la infecci&#243;n los macr&#243;fagos fueron obtenidos de la cavidad peritoneal  y la actividad de su mieloperoxidasa fue determinada mediante el m&#233;todo de  Kaplow, expres&#225;ndose como porcentaje de actividad de macr&#243;fagos peritoneales.  Los resultados son expresados como el promedio del por ciento de actividad de  mieloperoxidasa &#177; desviaci&#243;n est&#225;ndar de 3 experimentos independientes.  Las diferencias estad&#237;sticas entre grupos fueron evaluadas por medio de <i>t  </i>de <i>Student </i>y un valor de <i>p </i>&lt; 0,05 fue considerado significativo.  <br/> <b>Resultados:</b> la administraci&#243;n de interleucina-12 recombinante  murina a g&#233;rbiles previa infecci&#243;n con <i>S. schenckii </i> aument&#243;  significativamente la actividad de mieloperoxidasa de macr&#243;fagos peritoneales  (p = 0,0001) comparada con los controles sanos. En contraste, macr&#243;fagos  de g&#233;rbiles infectados no tratados mostraron actividad de mieloperoxidasa  significativamente disminuida comparada con los controles sanos (p= 0,001), lo  cual sugiere activaci&#243;n deteriorada de macr&#243;fagos.    <br> </font><font size="2" face="Verdana"><b>Conclusiones:</b>  la administraci&#243;n <i>in vivo</i> de interleucina-12 recombinante murina antes  de la infecci&#243;n con <i>S. schenckii, </i>induce activaci&#243;n de macr&#243;fagos  evidenciada por un aumento en la actividad de mieloperoxidasa, lo que contribuir&#237;a  a la defensa del organismo contra este agente infeccioso v&#237;a sistema oxidativo  dependiente de mieloperoxidasa. </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Palabras  clave:</b> interleucina-12, macr&#243;fagos, <i>Sporothrix schenckii,</i> mieloperoxidasa<i>.</i>  </font> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b>  </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Introduction: </b>interleukin-12  is an immunoregulatory cytokine with multiple biologic functions, including macrophage  activation. Myeloperoxidase is an enzyme that plays an important role in the antimicrobial  function of activated phagocytes. In the presence of hydrogen peroxide, myeloperoxidase  catalyzes chloride oxidation to produce hypochlorous acid, a powerful microbicidal  agent.    <br> <b>Objective:</b> determine the stimulating effect of murine recombinant  interleukin-12 on myeloperoxidase activity in peritoneal macrophages of gerbils  experimentally infected with <i>Sporothrix schenckii</i> yeasts.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Methods:</b>  500 ng murine recombinant interleukin-12 were administered intraperitoneally on  a daily basis on 5 consecutive days to male gerbils. On the sixth day the gerbils  were inoculated subcutaneously on the left posterior plantar pad with 6x10<sup>6  </sup><i>S. schenckii</i> yeasts. Seven days after infection, macrophages were  obtained from the peritoneal cavity. Myeloperoxidase activity was determined by  Kaplow's method and expressed as percentage of peritoneal macrophage activity.  Results are expressed as the average percentage of myeloperoxidase activity &#177;  standard deviation from 3 independent experiments. Statistical differences between  groups were evaluated by Student's t test. A value of <i>p </i>&lt; 0.05 was considered  significant.    <br> <b>Results:</b> administration of murine recombinant interleukin-12  to gerbils following infection with <i>S. schenckii</i> significantly increased  the myeloperoxidase activity of peritoneal macrophages (p = 0.0001) in comparison  with healthy controls. Macrophages of untreated infected gerbils, however, showed  significantly reduced myeloperoxidase activity in comparison with healthy controls  (p= 0.001), suggesting poor macrophage activation.    <br> <b>Conclusions:</b> <i>in  vivo</i> administration of murine recombinant interleukin-12 before infection  with <i>S. schenckii</i> induces macrophage activation evidenced by an increase  in myeloperoxidase activity, enhancing the organism's defense against that infectious  agent via the myeloperoxidase-dependent oxidative system. </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Key  words:</b> interleukin-12, macrophages, <i>Sporothrix schenckii,</i> myeloperoxidase.</font>  <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp; </p><font size="2" face="Verdana"><b> </b> </font>      <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">INTRODUCCI&#211;N</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"><i>Sporothrix </i> <i>schenckii</i>  es un hongo termodim&#243;rfico ampliamente distribuido en la naturaleza, que<b>  </b>causa una infecci&#243;n granulomatosa cr&#243;nica llamada esporotricosis.  Se adquiere generalmente<b> </b>por implantaci&#243;n traum&#225;tica en la piel  y raramente por inhalaci&#243;n de esporas lo que puede causar una infecci&#243;n  pulmonar. Esta micosis presenta diferentes formas cl&#237;nicas, de las cuales  las m&#225;s frecuentes son la linfocut&#225;nea y la cut&#225;nea fija.<sup>1</sup>  Sin embargo, un aumento de formas cut&#225;neas diseminadas y/o formas viscerales  ha sido descrito principalmente en pacientes inmunodeprimidos, particularmente  aquellos con s&#237;ndrome de inmunodeficiencia adquirida (SIDA), en quienes la  infecci&#243;n es potencialmente fatal.<sup>2</sup> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  En los mecanismos de defensa contra <i>S. schenckii</i>, la resistencia innata  y la inmunidad mediada por c&#233;lulas desempe&#241;an un papel importante.<sup>3-6</sup>  Como parte del sistema inmune innato, los macr&#243;fagos tienen un papel clave  en la eliminaci&#243;n de este hongo a trav&#233;s de la fagocitosis y subsecuente  activaci&#243;n de procesos oxidativos.<sup>7,8</sup> Asimismo, se ha establecido  que la interleucina 12 (IL-12) es una citosina proinflamatoria de 70 kDa, crucial  en la regulaci&#243;n de la resistencia innata y la inmunidad adquirida, la cual  es producida primariamente por fagocitos y c&#233;lulas presentadoras de ant&#237;genos.<sup>9</sup>  IL-12 induce la producci&#243;n de interfer&#243;n gamma (IFN- <font face="Symbol">g</font>)  por c&#233;lulas T y asesinas naturales e induce la diferenciaci&#243;n de c&#233;lulas  T CD4+ nativas a c&#233;lulas T cooperadoras 1 (Th1 por sus siglas en ingl&#233;s),  las cuales son grandes productoras de IFN- <font face="Symbol">g</font>.<sup>9,10</sup>  Esto proporciona una fuente de IFN- <font face="Symbol">g</font>, que a su vez  induce la activaci&#243;n de macr&#243;fagos para aumentar sus actividades microbicidas  entre las que se incluyen la fagocitosis y el metabolismo oxidativo.<sup>11</sup>  Adem&#225;s, se ha reportado que la IL-12 puede activar directamente mecanismos  microbicidas de macr&#243;fagos.<sup>12</sup> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Dentro de los mecanismos oxidativos que desempe&#241;an un papel importante en  la actividad microbicida de los fagocitos se encuentra el sistema mieloperoxidasa-per&#243;xido  de hidr&#243;geno-cloruro. La mieloperoxidasa (MPO) es una enzima que en presencia  de per&#243;xido de hidr&#243;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>), cataliza la oxidaci&#243;n  de cloruro para producir &#225;cido hipocloroso, el cual es un potente agente  microbicida.<sup>13,14</sup> La MPO se encuentra principalmente en leucocitos  polimorfonucleares neutr&#243;filos y en menor grado en monocitos. Los macr&#243;fagos  carecen de MPO, sin embargo, macr&#243;fagos activados internalizan la MPO liberada  por los neutr&#243;filos al medio extracelular.<sup>15</sup> </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">  Un n&#250;mero importante de estudios desarrollados con modelos infecciosos experimentales  en ratones deficientes en MPO, han demostrado <i>in vivo</i>, que el sistema oxidativo  dependiente de MPO es un importante mecanismo de defensa del hospedero contra  diversos pat&#243;genos infecciosos, entre los que se incluyen <i>Candida albicans,  Aspergillus fumigatus </i>y <i>Cryptococcus neoformans.</i><sup>16-19<b> </b></sup>Por  otra parte, en un estudio previo realizado por nuestro grupo de investigaci&#243;n  se demostr&#243; que en g&#233;rbiles inoculados en el cojinete plantar con levaduras  de <i>S. schenckii</i> e inmediatamente inyectados diariamente v&#237;a intraperitoneal  (i.p.) con 500 ng de IL-12 recombinante murina (rIL-12) durante 5 d&#237;as consecutivos,  sus macr&#243;fagos peritoneales mostraron un aumento significativo en la actividad  de su MPO.<sup>20</sup> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> El objetivo  del presente trabajo fue conocer m&#225;s acerca del papel de la rIL-12 sobre  el metabolismo oxidativo de macr&#243;fagos peritoneales (MP) mediante la cuantificaci&#243;n  de la actividad de la MPO en g&#233;rbiles machos inoculados con <i>S. schenckii</i>  24 horas despu&#233;s de haberles administrado rIL-12 previamente y durante 5  d&#237;as consecutivos. </font></p><font size="2" face="Verdana"><b> <br clear="all"/>  </b> </font>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">M&#201;TODOS</font></b>  </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Animales </b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  G&#233;rbiles machos de 3 meses de edad con peso de 65-70 g fueron facilitados  por el laboratorio animal del Centro de Investigaci&#243;n Biom&#233;dica de Occidente  (CIBO) en Guadalajara, Jalisco, M&#233;xico. Los animales fueron alojados en un  ambiente libre de pat&#243;genos y con acceso libre a comida y agua. El experimento  fue aprobado por el comit&#233; de &#233;tica para experimentos con animales del  Centro de Investigaci&#243;n Biol&#243;gico de Occidente (CIBO) y se apeg&#243;  a los requerimientos de la NOM-062-ZOO-1999 que determina la producci&#243;n,  cuidado y manejo de animales de laboratorio.<sup>21</sup> </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><i>  S. schenckii</i></b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Las c&#233;lulas  de <i>S. schenckii </i>fueron obtenidas de una cepa mantenida en el laboratorio  de inmunolog&#237;a del CIBO. La fase de levaduras de este hongo se obtuvo por  subcultivo en infusi&#243;n cerebro-coraz&#243;n (ICC) como ha sido previamente  descrito.<sup>7</sup> Las c&#233;lulas obtenidas del medio de cultivo fueron &gt;95  % diferenciadas hacia la forma de levaduras, las cuales fueron lavadas 3 veces  con soluci&#243;n salina balanceada de Hanks (SSBH) y pH 7,4. El n&#250;mero de  c&#233;lulas fue determinado en una c&#225;mara de Neubauer y ajustado a una concentraci&#243;n  de 1,2 x 10<sup>7</sup> c&#233;lulas de levadura/mL. </font></p>    <p>    <br> <font size="2" face="Verdana"><b>Infecci&#243;n  experimental</b></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Dos grupos de g&#233;rbiles  machos (n=5 por grupo) fueron inoculados en el cojinete plantar posterior izquierdo  con 6x10<sup>6</sup> c&#233;lulas de levaduras de<i> S. schenckii</i> suspendidas  en 0,5 mL de soluci&#243;n buffer de fosfatos (SBF 7,4). Un grupo control (n=  5), de g&#233;rbiles no infectados, fueron inyectados solo con PBS de la misma  manera.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font><font size="2" face="Verdana"><b>    <br> </b> </font> </p>    <p>  <font size="2" face="Verdana"><b>Tratamiento con IL-12 recombinante murina (rmIL-12)</b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> G&#233;rbiles no inoculados con <i>S.  schenckii</i> (n=5) fueron inyectados i.p. con 500 ng de rmIL-12 diluida en 0,3  mL soluci&#243;n buffer de fosfatos (SBF), diariamente por 5 d&#237;as consecutivos.  Veinticuatro horas despu&#233;s del tratamiento con rIL-12, los g&#233;rbiles  fueron inoculados en el cojinete plantar posterior izquierdo con 6x10<sup>6</sup>  c&#233;lulas de levaduras de<i> S. schenckii</i> suspendidas en 0,05 mL de soluci&#243;n  est&#233;ril de NaCl al 0,15 M iniciando al s&#233;ptimo d&#237;a de la inoculaci&#243;n,  mientras los otros 5 g&#233;rbiles infectados recibieron solamente SBF. Los animales  del grupo control (n=5) tambi&#233;n recibieron SBF solamente.     <br>     <br> </font></p>    <p>  <font size="2" face="Verdana"><b>Macr&#243;fagos peritoneales</b></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Siete y 13 d&#237;as despu&#233;s de la infecci&#243;n, macr&#243;fagos activados  con tioglicolato fueron cosechados de los g&#233;rbiles por medio de lavado peritoneal  usando 10 mL de SBF est&#233;ril (pH 7,4). Las c&#233;lulas peritoneales fueron  lavadas 2 veces por centrifugaci&#243;n a 200 g por 5 minutos y resuspendidas  en medio de cultivo RPMI - 1640 (<i>Sigma St Louis, MO</i>). La viabilidad de  c&#233;lulas fue valorada con tinci&#243;n de azul Trypano. Ordinariamente, m&#225;s  del 95 % de c&#233;lulas colectadas fueron viables. </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>    <br>  Valoraci&#243;n de la actividad de mieloperoxidasa</b> </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">  La actividad de MPO de macr&#243;fagos peritoneales se determin&#243; en frotis  con suspensi&#243;n de estas c&#233;lulas fagoc&#237;ticas usando el m&#233;todo  de Kaplow, como ha sido previamente descrito,<sup>22</sup> y se realiz&#243; de  la siguiente manera: los frotis se dejaron secar a temperatura ambiente y se fijaron  con formol-alcohol (10 %) durante 1 minuto. Despu&#233;s se lavaron gentilmente  con agua corriente y posteriormente los frotis fueron cubiertos con soluci&#243;n  de peroxidasa de bencidina compuesta por alcohol et&#237;lico (30 %) 100 mL, dihidrocloruro  de bencidina 0,3 g, soluci&#243;n de sulfato de zinc (1 %) 1 mL, hidr&#243;xido  de sodio (1,0) N) 1,5 mL y safranina O 0,2 g) dej&#225;ndose reaccionar por 30  s. Se lavaron con agua corriente y se dejaron secar al aire a temperatura ambiente.  Los frotis fueron observados en microscopio de luz con el objetivo 100x con aceite  de inmersi&#243;n. Los gr&#225;nulos de MPO en macr&#243;fagos fueron te&#241;idos  de azul p&#225;lido. 300 macr&#243;fagos peritoneales fueron contados y se report&#243;  como 0, 1, 2, 3, o 4+ de actividad de MPO y los resultados expresados como el  por ciento de un m&#225;ximo de 1 200 puntos que podr&#237;a ser alcanzado. </font></p>    <p>  <font size="2" face="Verdana"><b>    <br> An&#225;lisis estad&#237;stico</b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Los resultados son expresados como el promedio del por ciento de actividad de  MPO &#177; DE de tres experimentos independientes. Los resultados fueron procesados  con el uso del <i>Statistical Program for Social Sciences</i> (SPSS v16.0) for  Windows medical pack (<i>SPSS, Chicago, IL). </i>La diferencia estad&#237;stica  entre los grupos fue evaluada con la prueba t de Student no pareada y un valor  de<i> </i>p&lt; 0,05 fue considerado significativo. </font></p><font size="2" face="Verdana"><b>  <br clear="all"/> </b> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Actividad de MPO</b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Los resultados de este trabajo muestran que la actividad de la mieloperoxidasa  de macr&#243;fagos peritoneales de g&#233;rbiles infectados, fue significativamente  m&#225;s baja (p= 0,001), cuando se compar&#243; con la actividad de MPO de los  macr&#243;fagos del grupo control saludables (<a href="#tab1">tabla 1</a>). </font></p>    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">  <img SRC="/img/revistas/ibi/v33n1/t0106114.gif" width="554" height="216"><a name="tab1"></a></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Lo contrario fue observado cuando los macr&#243;fagos peritoneales de los g&#233;rbiles  infectados y tratados 1 d&#237;a despu&#233;s de terminada la administraci&#243;n  de rIL-12, expresaron una actividad a la mieloperoxidasa significativamente m&#225;s  alta (p= 0,0001) comparada con los macr&#243;fagos peritoneales del grupo de g&#233;rbiles  infectados no tratado (<a href="#tab2">tabla 2</a>). </font></p>    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">  <img SRC="/img/revistas/ibi/v33n1/t0206114.gif" width="552" height="225"><a name="tab2"></a></font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">DISCUSI&#211;N </font></b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Numerosos estudios han demostrado que la administraci&#243;n de rIL-12 puede promover  una respuesta inmune Th1 protectora contra diversos agentes pat&#243;genos entre  los que se incluyen <i>Coccidiodes immitis,</i><sup>23</sup> <i>Histoplasma capsulatum</i><sup>24</sup><i>  </i>and <i>Cryptococcus neoformans.</i><sup>25</sup> La respuesta Th1 se caracteriza  por producci&#243;n de IFN-<font face="Symbol">g</font>, entre otras <font color="#000000">citosinas</font>,  y se ha establecido que IFN- <font face="Symbol">g</font> aumenta las actividades  antimicrobiales de fagocitos, incluyendo fagocitosis y metabolismo oxidativo.<sup>10,11,26,27</sup></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Los resultados de este estudio indican que rIL-12 administrada i.p. antes de la  inoculaci&#243;n con <i>S. schenckii</i>, induce activaci&#243;n del metabolismo  oxidativo de macr&#243;fagos, como se evidenci&#243; por un aumento significativo  de la actividad de MPO en los MP de g&#233;rbiles infectados con <i>S. schenckii</i>,  comparado con controles infectados no tratados con rIL-12. Asimismo, se observ&#243;  que rIL-12 influenci&#243; favorablemente la evoluci&#243;n de las lesiones cut&#225;neas  desarrolladas en la pata inoculada, ya que estos animales desarrollaron &#250;nicamente  inflamaci&#243;n de la pata inoculada una semana despu&#233;s de la inoculaci&#243;n.  En contraste, g&#233;rbiles no tratados exhibieron inflamaci&#243;n y ulceraci&#243;n  en ese mismo lapso lo cual indica una fase m&#225;s severa de la enfermedad (<i>resultados  no mostrados</i>). </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Estos datos sugieren  que rmL-12 al estimular MP podr&#237;a contribuir en la defensa del hu&#233;sped  contra <i>S. schenckii</i>, v&#237;a el sistema oxidativo dependiente de MPO,  al aumentar la actividad de esta enzima. Esto basado en la informaci&#243;n de  que la MPO, a partir de per&#243;xido de hidr&#243;geno y cloruro cataliza la  formaci&#243;n de &#225;cido hipocloroso, el cual es un potente agente microbicida.<sup>13,14</sup></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  La relevancia del sistema oxidativo dependiente de MPO en la defensa contra agentes  infecciosos ha sido evidenciada <i>in vitro</i>, observ&#225;ndose que fagocitos  desprovistos de esta enzima expresan una deficiencia marcada en su actividad fungicida  contra <i>Candida albicans.</i><sup>28</sup> Asimismo, se ha demostrado en modelos  de infecciones experimentales en ratones deficientes en MPO, que el sistema oxidativo  dependiente de MPO es importante <i>in vivo</i> en las defensas del hospedero  contra diversos pat&#243;genos, entre los que se incluyen <i>C. albicans </i>y  <i> Aspergillus fumigatus.</i><sup>16-18</sup> Adem&#225;s, resultados de un estudio  m&#225;s reciente, en un modelo en ratones deficientes en MPO, sugieren que esta  enzima juega un papel principal en la defensa contra <i>Cryptococcus neoformans.</i><sup>22</sup><i>  </i> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Por otra parte, en un estudio  reciente realizado con g&#233;rbiles inoculados experimentalmente en el cojinete  plantar con <i>S. schenckii</i> e inmediatamente inyectados i.p. con rIL-12, se  observ&#243; un aumento de la actividad de MPO en sus macr&#243;fagos peritoneales.<sup>20</sup>  Los resultados de este trabajo son concordantes con ese estudio ya que rIL-12  tambi&#233;n aument&#243; la actividad de MPO, sin embargo, se debe enfatizar  que el aumento de actividad de esta enzima fue menor a la observada cuando la  inoculaci&#243;n de <i>S. schenckii </i>y la administraci&#243;n de rIL-12 se  realizaron al mismo tiempo. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Con base  en nuestros resultados, sugerimos que la administraci&#243;n de mrIL-12 favorece  la estimulaci&#243;n de los MP lo que podr&#237;a contribuir a la defensa del  hu&#233;sped contra <i>S. schenckii</i>, v&#237;a el sistema oxidativo dependiente  de MPO. Esta informaci&#243;n ayuda a un mejor entendimiento de los mecanismos  de defensa del hospedero contra este pat&#243;geno f&#250;ngico. Sin embargo,  se requiere de investigaci&#243;n adicional para conocer los mecanismos precisos  involucrados en este proceso. </font></p>    <p>&nbsp; </p>    <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">CONFLICTO  DE INTERESES</font></b> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> El presente  trabajo no tiene conflicto de inter&#233;s de car&aacute;cter financiero o con  alguna instituci&#243;n. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp; </p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Los autores del presente trabajo  agradecen las observaciones y comentarios realizados por los &#225;rbitros y revisores  de Revista Cubana de Investigaciones Biom&#233;dicas la cuales, sin duda alguna  contribuir&#225;n a enriquecer la investigaci&#243;n aqu&#237; presentada. </font></p>    <p>&nbsp;  </p>    <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">REFERENCIAS BIBLIOGR&#193;FICAS</font></b>  </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 1. Morris-Jones R. Sporotrichosis.  Clin Dermatol. 2002;27:427-31.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 2.  Silva-Vergara ML, Maneira FR, De Oliveira RM, Santos CT, Etchebehere RM, Adad  SJ. Multifocal sporotrichosis with meningeal involvement in a patient with AIDS.  Med Mycol. 2005;43(2):187-90.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 3.  Carlos IZ, Sgarbi DB, Angluster J, Alviano CS, Silva CL. Detection of cellular  immunity with the soluble antigen of the fungus <i>Sporothrix schenckii</i> in  the systemic form of the disease. Mycopathologia. 1992;117(3):139-44.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  4. Shirashi A, Nakagaki K, Arait T. Role of cell-mediated immunity in the resistance  to experimental sporotrichosis. Mycopathologia. 1992;120(1):15-21.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  5. Carlos IZ, Sass&#225; MF, Sgarbi DBG, Placeres MCP, Maia DC. Current research  on the immune response to experimental Sporotrichosis. Mycopathologia. 2009;168:1-10.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 6. Tachibana T, Matsuyama T, Mitsuyama  E. Involvement of CD4+ T cells and macrophages in acquired protection against  infection with <i>Sporothrix schenckii</i> in mice. Med Mycol. 1999;37:397-404.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 7. Fernandez KSS, Coelho AL, Lopez-Becerra  LM, Barja-Fidalgo C. Virulence of <i>Sporothrix schenckii</i> conidia and yeast  cells, and their susceptibility to nitric oxide. Immunology. 2000;101:563-9.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  8. Kajiwara H, Saito M, Ohga S, Uenotsuchi T, Yoshida A. Impaired host defense  against <i>Sporothrix schenckii</i> in mice with chronic granulomatous disease.  Infect Immun. 2004;72(9):5073-9.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  9. Trinchiery G. Interleukin-12 and the regulation of innate resistance and adaptive  immunity. Nat Rev Immunol. 2003;3(2):133-46.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  10. O'Garra A, Murphy KM. From IL-10 to IL-12: how pathogens and their products  stimulate APCs to induce TH1 development. Nat Immunol. 2009;10(9):929-32.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  11. Gattoni A, Parlato A, Vangieri B, Bresciani M, Derna R. Interferon-gamma:  biologic functions and HCV therapy (type I/II) (1 of 2 parts). Clin Ter. 2006;157(4):377-86.      </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">12. Puddu P, Fantuzzi L, Borghi P,  Varano B, Rainaldi G, Guillemard E, et al.<b> </b>IL-12 induces IFN-gamma expression  and secretion in mouse peritoneal macrophages. J Immunol. 1997;159(7):3490-7.      </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">13<i>. </i>Klebanoff SJ<i>. </i>Myeloperoxidase:  friend and foe. J Leukoc Biol. 2005;77(5):598-625.     </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">14.  Hansson M, Olsson I, Nauseef WM<i>.</i> Biosynthesis, processing, and sorting  of human myeloperoxidase. Arch Biochem Biophys. 2006;445:214-24.    </font></p>    <!-- ref --><p>  <font size="2" face="Verdana">15. Marcinkiewicz J. Neutrophil chloramines: missing  links between innate and acquired immunity. Immunol Today. 1997;18(12):577-80.      </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">16<i>. </i>Aratani Y, Koyama H, Nyui  S, Suzuki K, Kura F, Maeda N. Severe impairment in early host defense against  <i>Candida albicans</i> in mice deficient in myeloperoxidase. Infect Immun. 1999;67(4):1828-36.      </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">17. Aratani Y, Kura F, Watanabe H,  Akagawa H, Takano Y, Suzuki K, et al. Differential host susceptibility to pulmonary  infections with bacteria and fungi in mice deficient in myeloperoxidase<cite>.  </cite> J Infect Dis. 2000;182(4):1276-9.    </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">18<i>.  </i>Aratani Y, Kura F, Watanabe H, Akagawa H, Takano Y, Suzuki K, et al. Relative  contributions of myeloperoxidase and NADPH-oxidase to the early host defense against  pulmonary infections with <i>Candida albicans</i> and <i>Aspergillus fumigatus</i>.  Med Mycol. 2002;40(6):557-63.     </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">19.  Aratani Y, Kura F, Watanabe H, Akagawa H, Takano Y, Ishida-Okawara A, et al. Contribution  of the myeloperoxidase-dependent oxidative system to host defense against <i>Cryptococcus  neoformans</i>. J Med Microbiol. 2006;55(9):1291-9.    </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  20. Flores-Garc&#237;a A, Velarde-F&#233;lix JS, Aguilar-Garc&#237;a P, S&#225;nchez-Guti&#233;rrez  R, Flores-Garc&#237;a EB, Cancino Marentes ME, et al. Interleucina-12 aumenta  la actividad de la mieloperoxidasa de macr&#243;fagos en g&#233;rbiles infectados  experimentalmente con <i>Sporothrix schenckii. </i>Rev Fuente. 2011;8:95-101.      </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 21. Norma Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999,    especificaciones t&#233;cnicas para la producci&#243;n, cuidado y manejo de    animales de laboratorio. [ Citado: 2 de junio de 2013]. Disponible en: <u><a href="http://www.fmvz.unam.mx/fmvz/principal/archivos/062ZOO.PDF%5D" target="_blank">http://www.fmvz.unam.mx/fmvz/principal/archivos/062ZOO.PDF</a></u></font><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 22. Ramos-Zepeda R, Gonzalez-Mendoza  A. Metabolic activity of phagocytes in experimental sporotrichosis. Mycopathologia.  1986;93(2):109-12.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 23. Magee DM,  Cox RA. Interleukin-12 regulation of host defenses against <i>Coccidioides immitis</i>.  Infect Immun. 1996;64(9):3609-13.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  24. Zhoou P, Sieve MC, Bennett J, Kwon-Chung KJ, Tewari RP. IL-12 prevents mortality  in mice infected with <i>Histoplasma capsulatum</i> through induction of IFN-<font face="Symbol">g</font>.  J Immunol. 1995;155:785-95.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 25. Kawakami  K, Tohyama M, Xie Q, Saito A. IL-12 protects mice against pulmonary and disseminated  infection caused by <i>Cryptococcus neoformans</i>. Clin Exp Immunol. 1996;104:208-14.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 26. Murray HW. Gamma interferon,  cytokine-induced macrophage activation, and antimicrobial host defense. In vitro,  in animal models, and in humans. Diagn Microbiol Infect Dis. 1990;13(5):411-21.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 27. Schoroeder K, Hertzog PJ, Ravasi  T, Hume DA. Interferon-<font face="Symbol">g</font> an overview of signals, mechanisms  and functions. J Leukoc Biol. 2004;75:163-89.     </font></p>    <!-- ref --><p> <font size="2" face="Verdana">28.  Diamond RD, Clark RA, Haudenschild CC. Damage to Candida albicans hyphae and pseudohyphae  by the myeloperoxidase system and oxidative products of neutrophil metabolism  <i>in vitro</i>. J Clin Invest. 1980;66(5):908-17.    </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp; </p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana">Recibido:  20 de septiembre de 2013.    <br> </font><font size="2" face="Verdana">Aprobado: 6  de octubre de 2013. </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp; </p>    <p><font size="2" face="Verdana">Dr.  <i>Raymundo Velasco Rodr&#237;guez</i>. Universidad de Colima, Facultad de Enfermer&#237;a,  Av. Universidad 333, Colonia Las v&#237;boras; CP 28040, Colima, Colima, M&#233;xico.  </font><font size="2" face="Verdana">Tel&#233;fono: 013123161069, 013123120018.  Fax: 3161069, <i><a href="mailto:%20rayvel@ucol.mx">rayvel@ucol.mx</a></i> con  copia a Dr. Aurelio Flores-Garc&#237;a <i><a href="mailto:Afflores@gmail.com">Afflores@gmail.com</a></i></font></p>      ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<surname><![CDATA[Morris-Jones]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Sporotrichosis]]></article-title>
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<year>2002</year>
<volume>27</volume>
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<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
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