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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización cultural y morfológica e identificación de diez aislamientos de Fusarium procedentes de semillas de Leucaena leucocephala cv. Perú almacenadas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cultural and morphological characterization and identification of ten Fusarium isolates from stored Leucaena leucocephala cv. Peru seeds]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this work was to characterize cultural and morphologically ten Fusarium isolates, obtained from stored Leucaena leucocephala cv. Peru seeds, aiming at their taxonomic classification. Their pure cultures were preserved in Eppendorf tubes with Potato Dextrose Agar (PDA) medium, in cold chamber at 10ºC. Each isolate was planted in three sterilized Petri dishes, of 9 cm diameter; they contained, separately, the PDA and Potato Sucrose Agar (PSA) media, which constituted the replicates; at their center a mycelial disk was placed, of 7 mm diameter, from 10-15-day-old cultures, also planted in such media. Afterwards, the dishes were sealed with wax paper and incubated for ten days at 25ºC, alternating 8 h of light/16 h of darkness, or in constant darkness. The measured cultural variables were: colony color on the obverse and reverse, texture and lineal and aerial growth; and the morphological variables were: size, shape and color of the vegetative and reproductive structures which appeared in the cultures. A completely randomized design was used, and the data were statistically processed through a descriptive analysis. For the fungi identification different taxonomic keys were used. Isolates 10, 18 and 29 were in correspondence with the characteristics described in scientific literature for the species Fusarium oxysporum Schlecht; 17, 28 and 30, to Fusarium sambucinum Fuckel; 27, to Fusarium semitectum Berk & Rav.; 25 and 26, to Fusarium incarnatum (Rob) Sacc, and 31, to Fusarium chlamydosporum Wollenw & Reinking, which allowed the identification of five Fusarium species associated to the stored seeds.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">      <strong>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N </strong></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <P align="justify"> <strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Caracterizaci&oacute;n cultural y morfol&oacute;gica e identificaci&oacute;n de diez aislamientos  de <I>Fusarium</I> procedentes de semillas de <I>Leucaena  leucocephala</I> cv. Per&uacute; almacenadas </font></strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">     <p align="justify">&nbsp;</p>     <P><b>Cultural and morphological characterization and identification of ten    <I>Fusarium</I> isolates from stored <I>Leucaena      leucocephala</I> cv. Peru seeds</b> </font>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="2">J. C. Lezcano&sup1;, B. Mart&iacute;nez&sup2; y O. Alonso&sup1;</font></strong></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <I>&sup1;Estaci&oacute;n Experimental de Pastos y Forrajes &quot;Indio Hatuey&quot;</I></font><font size="2">. <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Central Espa&ntilde;a Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba </i></font>    <br> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>E-mail: <a href="mailto:juan.lezcano@indio.atenas.inf.cu">juan.lezcano@indio.atenas.inf.cu</a></i></font></font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>&sup2;Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria, Mayabeque, Cuba</i>  </font>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESUMEN</B></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El objetivo de este trabajo fue caracterizar cultural y morfol&oacute;gicamente diez aislamientos  de <I>Fusarium,</I> obtenidos de semillas de <I>L.  leucocephala</I> cv. Per&uacute; almacenadas, con vistas a  su clasificaci&oacute;n taxon&oacute;mica. Sus cultivos puros se conservaron en tubos Eppendorf con  medio Agar Papa y Dextrosa (APD), en c&aacute;mara fr&iacute;a a 10&#176;C. La siembra de cada aislamiento  se realiz&oacute; en tres placas Petri, esterilizadas, de 9 cm de di&aacute;metro; estas conten&iacute;an,  separadamente, los medios APD y Agar Papa Sacarosa (APS), que constituyeron las r&eacute;plicas; se coloc&oacute; en  su centro un disco micelial de 7 mm de di&aacute;metro, procedente de cultivos con 10-15 d&iacute;as de  edad, sembrados tambi&eacute;n en dichos medios. Posteriormente, las placas se sellaron con  papel parafinado y se incubaron durante diez d&iacute;as a 25&#176;C, con alternancia de 8 h de luz/16 h  de oscuridad, o a oscuridad constante. Las variables culturales medidas fueron: el color de  la colonia en el anverso y el reverso, la textura y el crecimiento lineal y a&eacute;reo; y como  morfol&oacute;gicas se evaluaron: el tama&ntilde;o, la forma y el color de las estructuras vegetativas y  reproductivas que aparecieron en los cultivos. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente aleatorizado y los  datos se procesaron estad&iacute;sticamente a trav&eacute;s de un an&aacute;lisis descriptivo. Para la identificaci&oacute;n  de los hongos se utilizaron diferentes claves taxon&oacute;micas. Los aislamientos 10, 18 y 29  se correspondieron con las caracter&iacute;sticas descritas en la literatura cient&iacute;fica para la  especie <I>Fusarium oxysporum </I>Schlecht; el 17, el 28 y el 30, con  <I>Fusarium sambucinum </I>Fuckel; el 27, con <I>Fusarium semitectum  </I>Berk &amp; Rav.; el 25 y el 26, con <I>Fusarium  incarnatum</I> (Rob) Sacc, y el 31, con <I>Fusarium  chlamydosporum</I> Wollenw &amp; Reinking, lo que permiti&oacute; la identificaci&oacute;n  de cinco especies de <I>Fusarium</I> asociadas a las simientes almacenadas.</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras clave:</strong> <I>Fusarium</I>, identificaci&oacute;n, <I>Leucaena leucocephala</I> cv. Per&uacute;, semillas.</font> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>ABSTRACT</B></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The objective of this work was to characterize cultural and morphologically ten      <I>Fusarium</I> isolates, obtained from stored <I>Leucaena  leucocephala</I> cv. Peru seeds, aiming at their  taxonomic classification. Their pure cultures were preserved in Eppendorf tubes with Potato  Dextrose Agar (PDA) medium, in cold chamber at 10&#186;C. Each isolate was planted in three  sterilized Petri dishes, of 9 cm diameter; they contained, separately, the PDA and Potato Sucrose  Agar (PSA) media, which constituted the replicates; at their center a mycelial disk was placed, of  7 mm diameter, from 10-15-day-old cultures, also planted in such media. Afterwards, the  dishes were sealed with wax paper and incubated for ten days at 25&#186;C, alternating 8 h of light/16  h of darkness, or in constant darkness. The measured cultural variables were: colony color  on the obverse and reverse, texture and lineal and aerial growth; and the morphological  variables were: size, shape and color of the vegetative and reproductive structures which appeared  in the cultures. A completely randomized design was used, and the data were  statistically processed through a descriptive analysis. For the fungi identification different taxonomic  keys were used. Isolates 10, 18 and 29 were in correspondence with the characteristics  described in scientific literature for the species <I>Fusarium oxysporum</I> Schlecht; 17, 28 and 30, to  <I>Fusarium sambucinum</I> Fuckel; 27, to <I>Fusarium  semitectum</I> Berk &amp; Rav.; 25 and 26, to <I>Fusarium incarnatum</I> (Rob) Sacc, and 31, to  <I>Fusarium chlamydosporum</I> Wollenw &amp; Reinking,  which allowed the identification of five <I>Fusarium</I> species associated to the stored seeds.</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong> <I>Fusarium</I>, identification, <I>Leucaena  leucocephala</I> cv. Peru, seeds.</font> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <P align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Uno de los g&eacute;neros fungosos m&aacute;s investigados por la comunidad cient&iacute;fica internacional  lo constituye <I>Fusarium</I> Link, el cual agrupa numerosas especies de trascendental  importancia para la agricultura, la econom&iacute;a y la salud de los animales y el hombre, debido a su  acci&oacute;n devastadora.</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">No obstante, desde el punto de vista ben&eacute;fico, existen algunas cepas antagonistas  (por ejemplo, de la especie <I>Fusarium oxysporum  </I>Schlecht), que se han utilizado como agentes  de control biol&oacute;gico (Arbel&aacute;ez, 2000) y micoherbicidas (Magani <I>et al.</I>, 2011). Un n&uacute;mero mayor de especies se reconoce como toxicog&eacute;nicas y fitopat&oacute;genas, y al informarlas se  relacionan con diversas enfermedades en diferentes cultivos, tales como: la marchitez de las plantas,  las manchas y los a&ntilde;ublos foliares; el aborto de las flores y la pudrici&oacute;n de las ra&iacute;ces, los  tallos, los frutos y los granos (L&oacute;pez <I>et  al.</I>, 2004; Formiga y Paz, 2009; P&eacute;rez <I>et al.</I>, 2009; Ocom <I>et al.,</I> 2011).</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la leguminosa arb&oacute;rea <I>Leucaena  leucocephala</I> importante arbustiva  multipro-p&oacute;sito para la ganader&iacute;a en Cuba y sus cultivares tambi&eacute;n se han observado los efectos  devastadores de estos agentes, principalmente asociados a la pudrici&oacute;n de sus simientes o la  disminuci&oacute;n de su poder germinativo (hasta un 50%), al retardo del desarrollo y la supervivencia de  las pl&aacute;ntulas emergidas en condiciones de campo, o a su pudrici&oacute;n (Moreno <I>et al.,</I> 1988; Delgado <I>et al.,</I> 1989; Pupo y Heredia, 1998; Lezcano  <I>et al</I>., 2007; Borges y Urdaneta, 2010). De  ah&iacute; que el objetivo de este trabajo fuera conocer qu&eacute; especies del g&eacute;nero <I>Fusarium </I>estaban asociadas a las semillas de leucaena almacenadas, cuya identificaci&oacute;n se realiz&oacute; a trav&eacute;s  de su caracterizaci&oacute;n cultural y morfol&oacute;gica.</font>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</B></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Localizaci&oacute;n. </I>Las investigaciones se desarrollaron en el laboratorio de micolog&iacute;a vegetal  del Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA), en Mayabeque, y el de protecci&oacute;n  de plantas de la Estaci&oacute;n Experimental &quot;Indio Hatuey&quot;, en Matanzas, Cuba.</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Material vegetal. </I>Los aislamientos se hicieron de semillas  de<I> L. leucocephala </I>cv. Per&uacute; con seis y 18 meses de almacenamiento al ambiente, procedentes del almac&eacute;n de la finca  de semillas &quot;La Rioja&quot;, que pertenece a la Empresa Pecuaria &quot;Jos&eacute; Mart&iacute;&quot; en la provincia  de Matanzas, Cuba.</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Prueba de patolog&iacute;a</I>. Se aplic&oacute; a las semillas el test de c&aacute;mara h&uacute;meda (ISTA, 1999).</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Aislamientos de Fusarium</I>. Se utilizaron diez aislamientos puros de      <I>Fusarium </I>(No. 10, No. 17, No. 18, No. 25, No. 26, No. 27, No. 28, No. 29, No. 30 y No.  31), conservados en tubos Eppendorf con medio Agar Papa y Dextrosa (APD).</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Siembra de los aislamientos. </I>La siembra se realiz&oacute; en tres placas Petri de cristal,  esterilizadas, de 9 cm de di&aacute;metro, que constituyeron las r&eacute;plicas, las cuales conten&iacute;an los medios  de cultivos APD y Agar Papa Sacarosa (APS); para ello se coloc&oacute; en su centro un disco micelial  de 7 mm de di&aacute;metro, procedente de cultivos con 10-15 d&iacute;as de edad, sembrados tambi&eacute;n  en dichos medios. Posteriormente, las placas se sellaron con papel parafinado (parafilm) y  se incubaron durante 10 d&iacute;as a 25&#176;C, con alternancia de 8 h de luz/16 h de oscuridad, o  a oscuridad constante, seg&uacute;n lo requerido para cada aislamiento. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Caracterizaci&oacute;n cultural.</I> Los caracteres cualitativos y cuantitativos evaluados  fueron: color de la colonia en el anverso y el reverso (mediante la tabla de colores  de Rayner, 1970), textura, pigmentaci&oacute;n del medio  (por apreciaci&oacute;n visual del pigmento producido y  su intensidad), crecimiento lineal (di&aacute;metro de la colonia expresado en cent&iacute;metros por  d&iacute;a, obtenido en dos mediciones diarias a las 8:00 a.m. y a las 4:00 p.m. hasta el d&eacute;cimo d&iacute;a)  y crecimiento a&eacute;reo.</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Caracterizaci&oacute;n    morfol&oacute;gica</I>. Se tuvo en cuenta: la presencia o ausencia de los    macroconidios y los microconidios, las clamidosporas y los esporodoquios; as&iacute; como la forma y el tama&ntilde;o    de los dos primeros, el tama&ntilde;o y la posici&oacute;n de las segundas, y la coloraci&oacute;n de los terceros. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A cada una de estas estructuras, presentes en las preparaciones microsc&oacute;picas, se    les hicieron 50 mediciones, para lo cual se us&oacute; una escala    microm&eacute;trica acoplada a un microscopio &oacute;ptico Zeiss    Estandar 25 (con lentes oculares 10-100 x), con el objetivo de corroborar  la clasificaci&oacute;n de la especie de <em>Fusarium</em>.</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <P><font size="2"><em>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis      estad&iacute;stico</em>. Se emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente      aleatorizado y los datos se procesaron      estad&iacute;sticamente a partir de un an&aacute;lisis descriptivo. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2"><I>Clave taxon&oacute;mica. </I>Para la identificaci&oacute;n de las especies de <I>Fusarium </I>se utilizaron las claves propuestas por Booth (1969), Booth (1977), Singh      <I>et al</I>. (1991) y L&oacute;pez (2003). Tambi&eacute;n      se consideraron algunos criterios relacionados con la taxonom&iacute;a del g&eacute;nero <I>Fusarium</I>, expuestos por Gerlach y Nirenberg (1982), Nelson    <I>et al.</I> (1983) y L&oacute;pez <I>et al.</I> (1999).     </font>     <p align="justify">&nbsp;</p> </font>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</B>   </font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En cuanto a la caracterizaci&oacute;n cultural de los aislamientos No. 10, No. 18 y N</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">o. 29,    se observaron colonias de crecimiento r&aacute;pido (con 64 mm como promedio al s&eacute;ptimo d&iacute;a    de incubaci&oacute;n), cuando se cultivaron en APD a 25&#176;C. Adem&aacute;s, presentaron un micelio    a&eacute;reo abundante y algodonoso, a veces afelpado, de color blanquecino, con tonalidades rosa    viol&aacute;ceo      y p&uacute;rpura, fundamentalmente en el centro de la colonia (<a href="/img/revistas/pyf/v35n2/f0106212.gif">fig. 1a</a>); y una    pigmentaci&oacute;n variable, con predominio de los colores rosa viol&aacute;ceo y p&uacute;rpura en el anverso de la placa, y    azul gris&aacute;ceo-verdoso en el reverso de esta. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Desde el punto de vista morfol&oacute;gico, los aislamientos se    caracterizaron por presentar conidi&oacute;foros que surgieron lateralmente de las hifas en el micelio a&eacute;reo, simples y    ramificados; esporodoquios ausentes,c&eacute;lulas conidi&oacute;genas monolocales y subcil&iacute;ndricas;    macroconidios hialinos, de semicurvos o casi rectos (falcados) a curvados, puntiagudos en sus    extremos, con tres a cinco septos de 26,10-36,74 x 3,0-4,54 &#181;m (<a href="/img/revistas/pyf/v35n2/f0106212.gif">fig. 1b</a>) y c&eacute;lula basal en forma de    pie; microconidios (<a href="/img/revistas/pyf/v35n2/f0106212.gif">fig. 1c</a>) hialinos formados en falsas cabezas y    abundantes, de forma oval a el&iacute;ptica, con uno o dos septos de 3,58-4,06 x 2,06-3,02 &#181;m; y    clamidosporas de 6,6-10,19 &#181;m de tama&ntilde;o, abundantes, esf&eacute;ricas (globosas), subglobosas, de paredes lisas,    terminales o intercalares y dispuestas individualmente o en pares a lo largo de la hifa. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En APS a 25&#176;C, dichos aislamientos mostraron colonias blanquecinas con tonalidades    violetas (<a href="#f2">fig. 2</a>), de crecimiento abundante (superior a 40 y 60 mm al cuarto y s&eacute;ptimo d&iacute;a    de incubaci&oacute;n); pigmentaci&oacute;n variable, con predominio de los colores crema blancuzco con    alguna tonalidad violeta vin&aacute;cea en el anverso de la placa y azul viol&aacute;ceo a p&aacute;lido por su    reverso; c&eacute;lulas conidi&oacute;genas monolocales, subcil&iacute;ndricas; microconidios ovales, elipsoidales, rectos    y curvados, formados en falsas cabezas de 4-10 x 2,5-3,5 &#181;m, producidos en fialides    laterales simples y cortas; macroconidios falciformes, generalmente de tres a cinco septos, de 26,5    a 58,3 x 2,8-4,1 &#181;m, atenuados hacia ambos extremos con la c&eacute;lula apical aguda y    ligeramente encorvada y la c&eacute;lula basal en forma de pie; y clamidosporas abundantes formadas en    hifas, globosas, simples o en pares, intercalares o terminales. </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v35n2/f0206212.gif" width="245" height="319">      <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Resultados similares fueron informados por Booth (1969), Booth (1977), Nelson    <I>et al.</I> (1983), Singh <I>et al</I>. (1991), L&oacute;pez <I>et al.</I> (1999), L&oacute;pez (2003), Due&ntilde;as <I>et al</I>. (2007) y Pierobom y Del Ponte (2011), los cuales coinciden con las caracter&iacute;sticas del hongo <I>Fusarium oxysporum </I>Schlecht, cuya fase teleomorfa no se conoce.   </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los aislamientos No. 17, No. 28 y No. 30 se caracterizaron culturalmente por    presentar colonias de crecimiento r&aacute;pido (de 60-78 mm de di&aacute;metro como promedio a los 10 d&iacute;as    de incubaci&oacute;n, a 25&#176;C sobre APD);    micelio a&eacute;reo abundante, algodonoso, de color blanquecino    y salm&oacute;n; pigmentaci&oacute;n variable, con predominio del color salm&oacute;n por el anverso de la placa,    lo cual corrobora lo planteado por L&oacute;pez (2003). Los resultados en cuanto a la ausencia    de esporodoquios coinciden con los hallados por este autor, a pesar de que los estudios    morfol&oacute;gicos no se hicieron en el mismo medio de cultivo (Agar agua hojas de clavel). Los    conidi&oacute;foros tambi&eacute;n se observaron sobre las hifas en el micelio a&eacute;reo, inicialmente eran simples y    despu&eacute;s ramificados; adem&aacute;s, coincidi&oacute; la presencia de c&eacute;lulas conidi&oacute;genas monolocales,    aunque escasamente presentes en los cultivos estudiados. Otros resultados similares fueron:    los macroconidios se observaron falciformes, con tres a cinco septos de 9,5-50 x 2,6-7 &#181;m,    con la c&eacute;lula apical abruptamente inclinada y aguda y la c&eacute;lula basal pedicelada; los    microconidios ausentes y las clamidosporas simples o dispuestas en grupos, terminales, globosas    a subglobosas de 4,5-10,7 &#181;m, y de paredes lisas. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el medio APS se obtuvieron colonias de crecimiento r&aacute;pido (de 55 &#181;m al s&eacute;ptimo d&iacute;a    de la incubaci&oacute;n a 25&#176;C), cuya coloraci&oacute;n vari&oacute; de melocot&oacute;n a naranja. Por otra parte,    se observ&oacute; un micelio a&eacute;reo abundante y algodonoso; los macroconidios se produjeron    solamente en la parte dorso ventral, con c&eacute;lula apical puntiaguda, de tres a cinco septos, 30-50 x    3,8-5,1 &#181;m (<a href="#f3">fig. 3</a>); los microconidios ausentes y las clamidosporas globosas de 5,7-10,3 &#181;m    de di&aacute;metro, de paredes lisas, simples o algunas dispuestas en cadenas. Estas    caracter&iacute;sticas coinciden con las citadas por Booth (1977) y Pierobom y Del Ponte (2011) para la    especie <I>Fusarium sambucinum</I> Fuckel (fase teleomorfa:    <I>Gibberella pulicaris</I> (Fr.) Sacc).   </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v35n2/f0306212.gif" width="291" height="351">     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con respecto al aislamiento No. 27 en APD, las colonias presentaron un crecimiento    r&aacute;pido cuando se incubaron durante10 d&iacute;as a 25&#176;C (de 90 mm de di&aacute;metro como promedio).    Al mismo tiempo se pudo apreciar la presencia de micelios a&eacute;reos abundantes, algodonosos,    de coloraci&oacute;n variable, de blanquecina con tonalidades coral claro a pardo naranja    claro; macroconidios fusiformes, formados sobre el micelio    a&eacute;reo en los conidi&oacute;foros    ramificados, con tres (de 12-38 x 2,3-4,6 &#181;m) a cinco septos (20-37 x 3,2-4,01 &#181;m) y con c&eacute;lula basal    en forma de cu&ntilde;a y apical puntiaguda (<a href="#f4">fig. 4</a>) y    clamidosporas pardas, globosas,    intercalares, dispuestas en solitario o en cadena, de 8 a 13 &#181;m. De igual forma se observ&oacute; la ausencia    de microconidios, lo que coincide con lo se&ntilde;alado por Booth (1977), L&oacute;pez <I>et al</I>. (1999) y Pierobom y Del Ponte (2011) para la especie    <I>Fusarium semitectum </I>Berk. &amp; Rav (sinonimia: <I>F. pallidoroseum</I>) (estado teleomorfo: no se conoce).      </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v35n2/f0406212.gif" width="267" height="382">     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los aislamientos No. 25 y No. 26 se observaron colonias de crecimiento    r&aacute;pido (de 56-77 mm de di&aacute;metro como promedio) sobre APD al s&eacute;ptimo d&iacute;a de incubaci&oacute;n a 25&#176;C.    Los micelios a&eacute;reos se caracterizaron por su relativa abundancia y apariencia algodonosa,    de color blanquecino en los cultivos j&oacute;venes, y ocre y miel en los de mayor edad. La    pigmentaci&oacute;n del medio present&oacute; una coloraci&oacute;n naranja claro a salm&oacute;n y se torn&oacute; algo pardusca    finalmente (con un tono caf&eacute;). L&oacute;pez    y L&oacute;pez (2004) obtuvieron un resultado similar con el empleo de    los medios de cultivos Agar Papa Sacarosa No. 1 y No. 3, donde tambi&eacute;n apreciaron esta    misma coloraci&oacute;n naranja salm&oacute;n cerca del centro de la colonia, seguida de un tono caf&eacute; m&aacute;s intenso. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En cuanto a los caracteres morfol&oacute;gicos que m&aacute;s distinguieron estos aislamientos,    se destacaron: la ausencia de esporodoquios y microconidios, y que los conidi&oacute;foros que    surgieron lateralmente de las hifas en el micelio a&eacute;reo, al principio se presentaron simples y m&aacute;s    tarde ramificados. Los macroconidios se caracterizaron por ser lanceolados, con tres a cinco    septos generalmente, de 6,7-48 x 1,9-5,6 &#181;m, atenuados hacia ambos extremos, con una    c&eacute;lula apical recta y muy atenuada, y una basal ligeramente papilada; las clamidosporas    estaban esparcidas, aunque generalmente se encontraron intercaladas entre las hifas, solitarias y    en pares, de globosas a subglobosas, con una pared lisa y un tama&ntilde;o que oscil&oacute; desde 5,5    hasta 9,5 &#181;m. De manera general, estos caracteres corroboran,    en gran medida, los informados por L&oacute;pez (2003) para la especie <I>Fusarium incarnatum </I>(Rob.) Sacc. (estado teleomorfo: no    se conoce).   </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las colonias del aislamiento No. 31 sobre APS fueron de    textura flocosa y presentaron una coloraci&oacute;n blanca inicialmente, la cual se torn&oacute; de color rojo intenso en cultivos    envejecidos. En el anverso de la placa se pudo observar una pigmentaci&oacute;n de color amarillo cremoso, y    en el reverso esta fue rojo brillante, rojo vino o rojo carne, lo cual coincide con lo citado por    Sing <I>et al.</I> (1991). Por otra parte, en APD se observ&oacute; un crecimiento    r&aacute;pido de las colonias (de 71-74 mm de di&aacute;metro como promedio), cuando se incubaron durante siete d&iacute;as a 25&#176;C.    El micelio a&eacute;reo fue abundante, afelpado, polvoriento, de color blanco, el cual pas&oacute; por    rosa hasta rojo carm&iacute;n y formaba halos conc&eacute;ntricos (<a href="#f5">fig. 5</a>); la pigmentaci&oacute;n del medio fue    de color rojo carm&iacute;n y a veces rojo vino. No se observaron los esporodoquios. Los    conidi&oacute;foros primarios surgieron lateralmente de las hifas en el micelio a&eacute;reo, en ocasiones variaron    desde simples hasta ramificados; los secundarios se presentaron en menor cuant&iacute;a y estaban    muy ramificados. Los microconidios estaban formados en falsas cabezuelas, fusiformes, con    un septo, y med&iacute;an 4,0-16,3 x 1,7-3,7 &#181;m. Los macroconidios eran falciformes, de tres a    cinco septos, algo curvados, y med&iacute;an 4,8-46,5 x 1,6-4,3&#181;m. Las clamidosporas eran    abundantes, de globosas a subglobosas, de paredes lisas, algunas con ornamentos, de 6,8-16,3 &#181;m;    unas estaban en posici&oacute;n terminal o intercaladas, otras formaban cadenas; esta descripci&oacute;n    se corresponde con lo se&ntilde;alado por L&oacute;pez (2003) para la especie <I>Fusarium chlamy-dosporum</I> Wollenw &amp; Reinking (estado teoleomorfo: no se conoce). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v35n2/f0506212.gif" width="269" height="385">      <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se concluye que la caracterizaci&oacute;n cultural y morfol&oacute;gica de los diez aislamien</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">tos en    estudio permiti&oacute; la identificaci&oacute;n de cinco especies de <I>Fusarium</I> asociadas a las semillas    almacenadas de <I>L. leucocephala </I>cv. Per&uacute;, entre las que se citan: <I>F. oxysporum</I>, <I>F. sambucinum</I>, <I>F.      semitectum</I>, <I>F. incarnatum</I> y <I>F.        chlamydosporum</I>, de acuerdo con los caracteres    evaluados. Adem&aacute;s, es importante se&ntilde;alar que la segunda y la cuarta especie se informan por    primera vez para esta leguminosa, y el resto para el cultivar Per&uacute;.</font>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <P align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1.     Arbel&aacute;ez, G. Algunos aspectos de los hongos del g&eacute;nero Fusarium y de la especie <I>Fusarium oxysporum</I>. <I>Agronom&iacute;a  colombiana</I>. 17:11. 2000</font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2.     Booth, C. <I>Fusarium oxysporum</I>. In: Descriptions of pathogenic fungi and  bacteria. Commonwealth Mycological Institute (CAB) (Set 22). Kew, Surrey, England. No.  211. s/p. 1969</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3.     Booth, C. Fusarium: laboratory guide to the identification of the major  species. Commonwealth Mycological Institute  (CAB)<I>,</I> Ferry Land, Kew, Surrey, England.  58 p. 1977</font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4.     Booth, C. <I>Fusarium semitectum</I>.    In: Descriptions of pathogenic fungi and  bacteria. Commonwealth Mycological Institute (CAB). Kew, Surrey, England. No. 573. s/p. 1978</font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5.     Borges, J. &amp; Urdaneta, July. Efecto de <I>Fusarium </I>sp. en la germinaci&oacute;n, fenolog&iacute;a  y supervivencia de pl&aacute;ntulas de <I>Leucaena  leucocephala</I> (Lam.) de Wit. <I>Agronom&iacute;a  Tropical</I>. 60 (2):155. 2010</font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6.     Delgado, A. <I>et al</I>. Estudio de la gomosis bacteriana en legumbres de      <I>Leucaena leucocephala</I> (Lam) de Wit. <I>Pastos y  Forrajes</I>. 12:127. 1989</font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7.     Due&ntilde;as, J.M. <I>et al</I>. 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<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22.     Pupo, Elsie &amp; Heredia, Irma. Lista de hongos asociados a las semillas de <I>Leucaena leucocephala</I>. <I>Bolet&iacute;n  t&eacute;cnico</I> (Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal,  Cuba). No. 1, p. 26. 1998</font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23.     Rayner, R.W. A mycological colour chart. Commonwealth Mycological  Institute. Kew, Surrey, England. 1970</font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">24.     Singh, K. <I>et al</I>. An Illustrated manual on identification of some  seed-borne <I>Aspergilli, Fusaria, Penicillia</I> and their mycotoxins. Danish Goverment Institute of  Seed Pathology for Developing Countries, Denmark. 133 p. 1991</font>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido el 22 de noviembre del 2011</font>       <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado el 11 de abril del 2012</font>     <P align="justify"><font size="2"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font> </FONT>     ]]></body><back>
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