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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Crecimiento de plántulas de Brachiaria brizantha en respuesta a la aplicación de hongos micorrizógenos y bacterias diazotróficas]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A study was conducted to evaluate the growth of seedlings of Insurgente pasture (Brachiaria brizantha), treated with mycorrhizal fungi and pseudomonads as simple or associated inocula. Under net house conditions the following treatments were evaluated: T1: Glomus mosseae strain 1; T2: G. mosseae strain 2; T3: G. mosseae strain 3; T4: Gigaspora albida strain 4; T5: Gigaspora sp. strain 5; T6: Glomus coremioides strain 6; T7: Rhizophagus intraradices strain INIFAP; T8: bacterial Pseudomonas sp. 2709 INIFAP; T9: mixture of T7 and T8; T10: mixture of T1 to T7; T11: mixture of T1 to T8; T12: control without inoculation and T13: control without inoculation, fertilized with the formula 120-80-00 of NPK. The quantified variables were: total (aerial and root) biomass production per plant (g DM/plant), root volume (cm³/plant), absolute leaf emergence rate (number of leaves week-1), absolute growth rate in height (cm week-1) and root length (cm plant-1). The evaluations were conducted since seedling emergence started until they reached 54,6 cm of average height. The design was completely randomized, with 10 repetitions per treatment. The data were subject to a variance analysis through a general linear model, with bifactorial arrangement 13 (inoculants) x 2 (soil treatments). The plants inoculated with G. mosseae strain 3 and with the mixture of mycorrhizae and Pseudomonas sp. (T11) had higher total biomass production (P<0,05), as compared with B. brizantha Insurgente plants without inoculation and with those that were not inoculated and were treated with double nitrogen-phosphorus fertilization rate. The results showed the inoculum-host specificity in plants of B. brizantha pasture cv. Insurgente and proved the benefits of facultative mutualism for the growth of this forage species.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P align="right"><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">ART&Iacute;CULO  DE INVESTIGACI&Oacute;N</font></strong>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p align="left"><B><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Crecimiento  de pl&aacute;ntulas de <I>Brachiaria brizantha</I> en respuesta a la aplicaci&oacute;n  de hongos micorriz&oacute;genos y bacterias diazotr&oacute;ficas</font></B></p>    <p>&nbsp;</p>    <P><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Growth  of Brachiaria brizantha seedlings in response to the application of mycorrhizal  fungi and diazotrophic bacteria </font> </strong>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>M&oacute;nica  Guadalupe Lozano-Contreras, F. Rivas-Pantoja y J. E. Castillo-Huchim</strong>  </font>     <P> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Instituto  Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </em></font><em><font size="2"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Campo  Experimental Mococh&aacute;, km 25, antigua carretera M&eacute;rida-Motul, Mococh&aacute;,  Yucat&aacute;n, M&eacute;xico    <br> E-mail: <a href="mailto:lozano.monica@inifap.gob.mx">lozano.monica@inifap.gob.mx</a></font></font></em>      <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p><hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESUMEN</B></font></p>    <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  realiz&oacute; un estudio para evaluar el crecimiento de pl&aacute;ntulas de pasto  Insurgente (<I>Brachiaria brizantha</I>), tratadas con hongos micorriz&oacute;genos  y seudomonas como in&oacute;culos simples o asociados. En condiciones de casa-sombra  se evaluaron los siguientes tratamientos: T1: <I>Glomus mosseae</I> cepa 1; T2:  <I>G. mosseae</I> cepa 2; T3: <I>G. mosseae</I> cepa 3; T4: <I>Gigaspora albida</I>  cepa 4; T5: <I>Gigaspora</I> sp. cepa 5; T6: <I>Glomus coremioides</I> cepa 6;  T7: <I>Rhizophagus intraradices </I>cepa INIFAP; T8: <I>Pseudomonas</I> sp. bacteriano  2709 INIFAP; T9: mezcla de T7 y T8; T10: mezcla del T1 al T7; T11: mezcla del  T1 al T8; T12: testigo sin inocular; y T13: testigo sin inocular, fertilizado  con la f&oacute;rmula 120-80-00 de NPK. Las variables cuantificadas fueron: producci&oacute;n  total de biomasa (a&eacute;rea y ra&iacute;z) por planta (g MS/planta), volumen  radical (cm<SUP>3</SUP>/planta), tasa absoluta de emergencia de hojas (n&uacute;mero  de hojas semana<SUP>-1</SUP>), tasa absoluta de crecimiento en altura (cm semana<SUP>-1</SUP>)  y longitud de la ra&iacute;z (cm planta<SUP>-1</SUP>). Las evaluaciones se efectuaron  desde que comenz&oacute; la emergencia de las pl&aacute;ntulas hasta que alcanzaron  54,6 cm de altura promedio. El dise&ntilde;o fue de bloques completos al azar,  con 10 repeticiones por tratamiento. Los datos se sometieron a un an&aacute;lisis  de varianza mediante un modelo general lineal, con arreglo bifactorial 13 (inoculantes)  x 2 (tratamientos de suelo). Las plantas inoculadas con <I>G. mosseae</I> cepa  3 y con la mezcla de micorrizas y <I>Pseudomonas</I> sp. (T11) tuvieron una mayor  producci&oacute;n total de biomasa (P&lt;0,05), si se compara con plantas de pasto  Insurgente sin inocular y con aquellas que no se inocularon y fueron tratadas  con el doble de fertilizaci&oacute;n nitro-fosforada. Los resultados evidenciaron  la especificidad in&oacute;culo-hospedero en plantas de pasto <I>B. brizantha</I>  cv. Insurgente y demostraron los beneficios del mutualismo facultativo para el  crecimiento de esta especie forrajera. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras  clave</strong>: <I>Brachiaria brizantha</I>, micorrizas, <I>Pseudomonas</I>. </font>  <hr>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>ABSTRACT</B></font>      <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A  study was conducted to evaluate the growth of seedlings of Insurgente pasture  (<I>Brachiaria brizantha</I>), treated with mycorrhizal fungi and pseudomonads  as simple or associated inocula. Under net house conditions the following treatments  were evaluated: T1: <I>Glomus mosseae</I> strain 1; T2: <I>G. mosseae</I> strain  2; T3: <I>G. mosseae </I>strain 3; T4: <I>Gigaspora albida</I> strain 4; T5: <I>Gigaspora</I>  sp. strain 5; T6: <I>Glomus coremioides</I> strain 6; T7: <I>Rhizophagus intraradices  </I>strain INIFAP; T8: bacterial <I>Pseudomonas</I> sp. 2709 INIFAP; T9: mixture  of T7 and T8; T10: mixture of T1 to T7; T11: mixture of T1 to T8; T12: control  without inoculation and T13: control without inoculation, fertilized with the  formula 120-80-00 of NPK. The quantified variables were: total (aerial and root)  biomass production per plant (g DM/plant), root volume (cm<SUP>3</SUP>/plant),  absolute leaf emergence rate (number of leaves week<SUP>-1</SUP>), absolute growth  rate in height (cm week<SUP>-1</SUP>) and root length (cm plant<SUP>-1</SUP>).  The evaluations were conducted since seedling emergence started until they reached  54,6 cm of average height. The design was completely randomized, with 10 repetitions  per treatment. The data were subject to a variance analysis through a general  linear model, with bifactorial arrangement 13 (inoculants) x 2 (soil treatments).  The plants inoculated with <I>G. mosseae</I> strain 3 and with the mixture of  mycorrhizae and <I>Pseudomonas</I> sp. (T11) had higher total biomass production  (P&lt;0,05), as compared with <I>B. brizantha</I> Insurgente plants without inoculation  and with those that were not inoculated and were treated with double nitrogen-phosphorus  fertilization rate. The results showed the inoculum-host specificity in plants  of <I>B. brizantha</I> pasture cv. Insurgente and proved the benefits of facultative  mutualism for the growth of this forage species. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key  words</strong>: <I>Brachiaria brizantha</I>, mycorrhizae, <I>Pseudomonas.</I></font>  <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N  </font></B></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  Yucat&aacute;n, M&eacute;xico, la mayor&iacute;a de los suelos tropicales dedicados  a la ganader&iacute;a presentan limitaciones de fertilidad para el &oacute;ptimo  desarrollo de los pastos (Pech, Santos y Montes, 2002). Unido a lo anterior, los  productores de ganado que manejan los pastizales de una manera extensiva y sin  tecnificaci&oacute;n ocasionan un da&ntilde;o severo, debido al sobrepastoreo  y a la quema de potreros; lo cual ocasiona la erosi&oacute;n, la lixiviaci&oacute;n  de nutrientes, la compactaci&oacute;n del suelo y la desertificaci&oacute;n. Finalmente,  la p&eacute;rdida acelerada de la fertilidad del suelo repercute de forma desfavorable  en la disponibilidad de biomasa para la alimentaci&oacute;n del ganado (S&aacute;nchez,  Hern&aacute;ndez y Ruz, 2011). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Una  opci&oacute;n tecnol&oacute;gica para aminorar el impacto de la pobreza de los  suelos es el uso de biofertilizantes, conocidos tambi&eacute;n como organismos  promotores de crecimiento vegetal. Las bacterias diazotr&oacute;ficas (cepas bacterianas  del suelo capaces de colonizar las ra&iacute;ces y el entorno rizosf&eacute;rico)  y los hongos micorr&iacute;zicos arbusculares (HMA) desempe&ntilde;an funciones  que benefician el suelo y el crecimiento de las plantas, ya que fijan nitr&oacute;geno,  solubilizan minerales, producen estimuladores del crecimiento vegetal, biocontrolan  pat&oacute;genos y fitorremedian suelos contaminados, entre otras (Javot, Pumplin  y Harrison, 2007; Saldajeno, Chandanie, Kubota y Hyakumachi, 2008; Maldonado,  Rivera, Izquierdo y Palma, 2010; Kelemu <I>et al</I>., 2011; Mena <I>et al</I>.,  2011; B&eacute;cquer <I>et al</I>., 2012). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  las gram&iacute;neas forrajeras tropicales, la especificidad de la cepa, el tipo  de planta hospedera y las condiciones del suelo parecen ser factores cr&iacute;ticos  que determinan la respuesta de las plantas. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Garrido,  C&aacute;rdenas, Bonilla y Baldani (2010) se&ntilde;alan que, en condiciones de  estr&eacute;s h&iacute;drico, aumentar la poblaci&oacute;n de bacterias diazotr&oacute;ficas  en ambientes donde se cultivan pastos del g&eacute;nero <I>Brachiaria</I> podr&iacute;a  ser &uacute;til para la supervivencia y la productividad de estas gram&iacute;neas.  Adem&aacute;s, sugieren realizar estudios que involucren bacterias y cepas de  HMA como requisito indispensable para identificar in&oacute;culos que permitan  que las plantas expresen su m&aacute;ximo potencial productivo. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  objetivo del presente trabajo fue evaluar el crecimiento de pl&aacute;ntulas de  pasto Insurgente (<I>Brachiaria brizantha</I>) en respuesta a la aplicaci&oacute;n  de HMA y Pseudomonas sp., como in&oacute;culos simples o asociados. </font>     <p>&nbsp;</p>    <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</B></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  estudio tuvo una duraci&oacute;n de cinco meses (septiembre de 2010 a enero de  2011) y se condujo en condiciones de casa-sombra en terrenos del campo experimental  Mococh&aacute;-INIFAP, Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. Las semillas de pasto Insurgente  (<I>B. brizantha</I>) fueron inoculadas y distribuidas en los siguientes tratamientos:  T1: <I>Glomus mosseae</I> cepa 1, T2: <I>G. mosseae</I> cepa 2, T3: <I>G. mosseae</I>  cepa 3, T4: <I>Gigaspora albida</I> cepa 4, T5: <I>Gigaspora</I> sp. cepa 5, T6:  <I>G. coremioides </I>cepa 6, T7: <I>Rhizophagus intraradices</I> cepa INIFAP,  T8: <I>Pseudomonas</I> sp. bacteriano 2709 INIFAP, T9: mezcla de T7 y T8, T10:  mezcla del T1 al T7, T11: mezcla del T1 al T8, T12: testigo sin inocular y T13:  testigo sin inocular fertilizado con 120-80-00 de NPK kg ha<SUP>-1</SUP>. Las  cepas de micorrizas fueron proporcionadas por la Dra. Mar&iacute;a de los &Aacute;ngeles  Pe&ntilde;a-R&iacute;o, investigadora del Instituto Nacional de Investigaciones  Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). Dichas cepas forman parte del  proyecto de colecci&oacute;n nacional de biofertilizantes de M&eacute;xico, la  cual se localiza en el C. E. Baj&iacute;o-INIFAP, en Celaya, Guanajuato. </font>      <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las  semillas inoculadas se sembraron en bolsas de polietileno negro; estas conten&iacute;an  5 kg de suelo natural (Cambisol calc&aacute;rico de textura media, con pH 7,8  y 26 % de materia org&aacute;nica) sin desinfectar (SD) y 5 kg de suelo natural  desinfectado (D) qu&iacute;micamente con metam-sodio (N-metilditiocarbamato s&oacute;dico).  En el momento de la emergencia se realiz&oacute; una selecci&oacute;n y se dej&oacute;  una planta por bolsa. Con excepci&oacute;n del T13, el resto recibi&oacute; 60-40-0  kg de NPK ha<SUP>-1</SUP>. La fertilizaci&oacute;n nitro-fosforada se efectu&oacute;  a las 10 semanas postsiembra. Las variables cuantificadas fueron: producci&oacute;n  total de biomasa (a&eacute;rea y ra&iacute;z) de la planta (g MS/planta), volumen  radical (cm<SUP>3</SUP>/planta), tasa absoluta de emergencia de hojas (n&uacute;mero  de hojas semana<SUP>-1</SUP>), tasa absoluta de crecimiento en altura (cm semana<SUP>-1</SUP>)  y longitud de la ra&iacute;z (cm planta<SUP>-1</SUP>). Las evaluaciones se efectuaron  desde la emergencia de las pl&aacute;ntulas hasta que alcanzaron 54,6 cm de altura  promedio. Los datos expresados en peso de la planta se transformaron para su an&aacute;lisis  a log + 1 (Lentner y Bishop, 1993), y se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza  mediante el modelo general lineal, con arreglo bifactorial 13 (inoculantes) x  2 (tratamientos de suelo), en un dise&ntilde;o de bloques completos al azar con  10 repeticiones por tratamiento. Las medias de m&iacute;nimo cuadrado se compararon  a trav&eacute;s de pruebas de t pareadas, al 0,05 de probabilidad; ambos an&aacute;lisis  se efectuaron con el software del SAS (2012) versi&oacute;n 9.2. </font>     <p>&nbsp;</p>    <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N</B></font></p>    <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Producci&oacute;n  total de biomasa</I>. La biomasa de la materia seca a&eacute;rea y de la ra&iacute;z  respondi&oacute; a la interacci&oacute;n entre los in&oacute;culos y al manejo  de desinfecci&oacute;n del suelo. A las 22 semanas de la siembra, las plantas  en suelo sin desinfectar crecieron de manera similar (P&gt;0,05), indistintamente  del tratamiento administrado. En contraste, en los suelos desinfectados, el pasto  tratado con <I>G. mosseae</I> cepa 3 (T3) y con la mezcla de hongos y bacterias  (T11) tuvo una significativa acumulaci&oacute;n (P&lt;0,05) de biomasa, la cual  fue superior a la del testigo sin inocular y la de las plantas que recibieron  el doble de fertilizaci&oacute;n nitro-fosforada (<a href="/img/revistas/pyf/v36n2/t017213.gif">tabla  1</a>). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  el suelo desinfectado, la ausencia de colonizaci&oacute;n nativa permiti&oacute;  identificar, al menos, a <I>G. mosseae</I> cepa 3 (T3) como un in&oacute;culo  con alta especificidad mutual&iacute;stica para el pasto Insurgente. Adem&aacute;s,  es probable que esta cepa haya contribuido de manera importante a que el T11 propiciara  una alta producci&oacute;n de biomasa total. No obstante, la naturaleza de la  m&uacute;ltiple asociaci&oacute;n de hongos y bacterias del T11 no permiti&oacute;  discernir el grado de participaci&oacute;n de cada uno de sus componentes en la  simbiosis. La colonizaci&oacute;n nativa de microbiota en los suelos sin desinfectar  (Nogales, 2005; Sivila y Angulo, 2006) puede explicar los similares rendimientos  de forraje en dicho pasto (P&gt;0,05), que se observaron a trav&eacute;s de los  in&oacute;culos aplicados. Esta colonizaci&oacute;n permiti&oacute; el aprovechamiento  de los recursos minerales, ya que la acumulaci&oacute;n de materia seca en las  plantas dosificadas con 60 y 40 kg/ha de nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo fue  similar a la de las tratadas con el doble de fertilizaci&oacute;n. Salamanca (1999)  observ&oacute; que las cepas nativas de micorrizas presentaron una mayor afinidad  y eficiencia en los pastos <I>Brachiaria decumbens</I> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">y  <I>B. dictyoneura</I> que las registradas con cepas introducidas. Tambi&eacute;n  indic&oacute; que estas dos especies forrajeras respondieron mejor a la inoculaci&oacute;n  que el pasto <I>Panicum maximum</I>, y que el g&eacute;nero <I>Glomus</I> se destac&oacute;  entre las micorrizas debido a su afinidad con ambas especies de <I>Brachiaria</I>.  </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Volumen  y longitud radical.</I> El volumen radical de las plantas de Insurgente mostr&oacute;  interacci&oacute;n entre los in&oacute;culos y el manejo del suelo, mientras que  la longitud radical no tuvo cambios importantes como respuesta a estos tratamientos  (<a href="/img/revistas/pyf/v36n2/t027213.gif">tabla 2</a>). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  el suelo sin desinfectar, la aplicaci&oacute;n artificial de in&oacute;culos en  la gram&iacute;nea no gener&oacute; (P&gt;0,05) una respuesta positiva en el desarrollo  del volumen radical, lo cual significa quiz&aacute;s que la microbiota ind&iacute;gena  permiti&oacute; un eficaz aprovechamiento de los recursos minerales del sustrato  utilizado en las plantas con estos tratamientos. Rajan, Reddy y Bagyaraj (2000)  reportaron que las plantas micorrizadas se desarrollan mejor que las no micorrizadas  en suelos no est&eacute;riles, debido a un incremento en la nutrici&oacute;n mineral  a trav&eacute;s de las hifas, las cuales ayudan a explorar un mayor volumen de  suelo. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  contraste, en suelos desinfectados se observ&oacute; que la inoculaci&oacute;n  con micorrizas y bacterias (T11) promovi&oacute; incrementos de volumen radical  en 258 % y 767 % por encima del registrado en plantas sin inocular y en aquellas  sin inocular pero con el doble de fertilizaci&oacute;n nitro-fosforada, respectivamente.  Este mismo tratamiento (T11) estimul&oacute; en m&aacute;s del doble el volumen  radical (28,6 cm<SUP>3</SUP>) del pasto Insurgente comparado con su hom&oacute;logo  en suelos sin desinfectar (12,5 cm<SUP>3</SUP>). Por otra parte, la inoculaci&oacute;n  con <I>Pseudomonas</I> sp. en el pasto cultivado en suelos sin desinfectar ocasion&oacute;  un importante aumento (P&lt;0,05) en el volumen radical (14,8 <I>vs</I>. 1,6 cm<SUP>3</SUP>),  el cual se pudo originar por una interacci&oacute;n sin&eacute;rgica de este in&oacute;culo  con la microbiota ind&iacute;gena. En ciertas plantas, la inoculaci&oacute;n con  <I>Pseudomonas</I> en presencia de micorrizas en la rizosfera ha ocasionado sustanciales  incrementos en el volumen radical de las especies estudiadas (Wilson y Hartnett,  1998). Estudios realizados por Garrido <I>et al</I>. (2010) se&ntilde;alan que  las bacterias diazotr&oacute;ficas, como es el caso de <I>Pseudomonas</I> sp.,  pueden presentar selectividad al cultivo e inclusive a variedades dentro de una  misma especie y al tipo de suelo. Estimular en el pasto Insurgente un mayor volumen  radical es fundamental, ya que este presenta una elevada y positiva correlaci&oacute;n  (r = 0,93) con la producci&oacute;n forrajera de las plantas (<a href="/img/revistas/pyf/v36n2/t037213.gif">tabla  3</a>). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  longitud radical del pasto no respondi&oacute; en este caso a los tratamientos  aplicados (<a href="/img/revistas/pyf/v36n2/t027213.gif">tabla 2</a>); sin embargo,  es posible que esto se deba a restricciones de espacio vertical para la libre  elongaci&oacute;n subterr&aacute;nea, ya que algunas especies del g&eacute;nero  <I>Brachiaria</I> se caracterizan por tener ra&iacute;ces profundas que les permiten  sobrevivir durante largos per&iacute;odos de sequ&iacute;a (Olivera, Machado y  Pozo, 2006). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Tasa  absoluta de emergencia de hojas y altura</I>. La tasa de emergencia de hojas en  el pasto Insurgente vari&oacute; significativamente entre los in&oacute;culos  aplicados (<a href="/img/revistas/pyf/v36n2/t047213.gif">tabla 4</a>). </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De todos los tratamientos  evaluados, los in&oacute;culos de <I>G. mosseae</I> cepa 3 (T3) y la mezcla de  hongos y bacterias (T11) fueron los &uacute;nicos que se destacaron, ya que originaron  una mayor (P&lt;0,05) emergencia semanal de hojas (1,4 hojas semana<SUP>-1</SUP>)  comparados con T6, T7, T8, T9, T10 y T13, los cuales registraron entre 0,7 y 0,9  hojas semana<SUP>-1</SUP>. Algunas micorrizas del g&eacute;nero <I>Glomus</I>  han sobresalido por sus efectos beneficiosos en el desarrollo de distintas especies  vegetales (Roveda y Polo, 2007; Ba&ntilde;os <I>et al</I>., 2008; D&iacute;az,  Aguirre y D&iacute;az, 2013); no obstante, todos los tratamientos tuvieron una  producci&oacute;n semanal de hojas similar a la registrada en el testigo sin inocular  (T12). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  tasa de crecimiento en altura no fue afectada significativamente (P&gt;0,05) por  los tratamientos aplicados. Parada, Ja&eacute;n, Becerril y Garc&iacute;a (2001)  reportaron que la inoculaci&oacute;n con <I>G. mosseae</I> y la fertilizaci&oacute;n  en plantas de Chicozapote (<I>Manilkara sapota</I> L.) no ocasionaron incrementos  significativos en la altura de las plantas; sin embargo, el peso seco total aument&oacute;  de manera importante, lo cual fue similar a lo registrado en el pasto Insurgente.  </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  concluye que el HMA de <I>G. mosseae</I> cepa 3 (T3), en ausencia de competencia  de microbiota ind&iacute;gena, promueve en <I>Brachiaria brizantha </I>cv. Insurgente  un mayor rendimiento de forraje comparado con aquellas plantas sin inoculaci&oacute;n  artificial o que reciben el doble de fertilizaci&oacute;n nitro-fosforada.</font>      <p>&nbsp;</p>    <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B></font></p>    <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1.  Ba&ntilde;os, R. <I>et al</I>. Efecto del uso del humus de lombriz y los hongos  micorr&iacute;zicos arbusculares en rendimientos de gram&iacute;neas. <I>Ciencia  y Tecnolog&iacute;a Ganadera</I>. 2 (2):87. 2008.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2.  B&eacute;cquer, C.J. <I>et al</I>. Efecto de la inoculaci&oacute;n con rizobios  procedentes de Sancti Sp&iacute;ritus, Cuba, en sorgo (<I>Sorghum bicolor</I>  L. Moench), bajo condiciones de campo. <I>Pastos y Forrajes</I>. 35:57. 2012.      </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. D&iacute;az,  B.G.; Aguirre, J.F. &amp; D&iacute;az, V.H. Rendimiento de <I>Jatropha curcas</I>  L. inoculada con micorriza y aplicaci&oacute;n de composta de ca&ntilde;a. <I>Revista  Mexicana de Ciencias Agr&iacute;colas</I>. 4 (4):599. 2013.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4.  Garrido, M.F.; C&aacute;rdenas, D.M.; Bonilla, R.R. &amp; Baldani, V.L. Efecto  de los factores edafoclim&aacute;ticos y la especie de pasto en la diversidad  de bacterias diazotr&oacute;ficas. <I>Pastos y Forrajes</I>. 33:403. 2010.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Javot, H.; Pumplin,  N. &amp; Harrison, M.J. Phosphate in the arbuscular mycorrhizal symbiosis: transport  properties and regulatory roles. <I>Plant Cell and Environment</I>. 30 (3):310.  2007.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6.  Kelemu, S. <I>et al</I>. Detecting bacterial endophytes in tropical grasses of  the <I>Brachiaria</I> genus and determining their role in improving plant growth.  <I>African Journal of Biotechnology</I>. 10 (6):965. 2011.     </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7.  Lentner, M. &amp; Bishop, T. Experimental design and analysis. Valley Book Company.  Blacksburg, USA. 585 p. 1993. </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8.  Maldonado, E.; Rivera, M.C.; Izquierdo, F. &amp; Palma, D.J. 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Rajan, S.K.; Reddy, B.J.B.; &amp; Bagyaraj, D.J. Screening of arbuscular mycorrhizal  fungi for their symbiotic efficiency with <I>Tectona grandis. Forest. Ecol. Manage</I>.  126:91. 2000.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15.  Roveda, G. &amp; Polo, C. Mecanismos de adaptaci&oacute;n de ma&iacute;z asociado  a <I>Glomus</I> spp. en suelos con bajo f&oacute;sforo disponible. <I>Agronom&iacute;a  Colombiana</I>. 25 (2):349. 2007.     </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16.  Saldajeno, M.G.B.; Chandanie, W.A.; Kubota, M. &amp; Hyakumachi, M. Effects of  interactions of arbuscular mycorrhizal fungi and beneficial saprophytic mycoflora  on plant growth and disease protection. In: <I>Mycorrhizae</I>: sustainable agriculture  and forestry. (Eds. Z.A. Siddiqui, A.M. Sayeed and F. Kazuyoshi). 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<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19.  SAS. SAS Software v. 9.2. Sas Institute Inc.. Cary, NC, USA. 2012. </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20.  Sivila, C.R. &amp; Angulo, W. Efecto del descanso agr&iacute;cola sobre la microbiota  del suelo (Patarani-Altiplano Central boliviano). <I>Ecolog&iacute;a en Bolivia</I>.  41 (3):103. 2006.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21.  Wilson, G.W.T. &amp; Hartnett, D.C. Interspecific variation in plant responses  to mycorrhizal colonization in tallgrass prairie. <I>American Journal of Botany</I>.  85 (12):1732. 1998.     </font>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido  el 8 de febrero de 2012</font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado  el 10 de abril del 2013</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font>       ]]></body><back>
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