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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la temperatura y el pH en la producción de biomasa de Azospirillum brasilense C16 aislada de pasto guinea]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of the study was to evaluate the effect of temperature and pH on the cell viability of the strain Azospirillum brasilense C16. Five temperatures (between 28 and 36 ºC) and five pH values (from 4,5 to 8,5) were studied. The effect of temperature was evaluated by measuring the radial growth (mm) of the strain, on a filter paper in sweet potato agar. In the case of pH to quantify the growth rate, biomass production and time of duplication of the strain a Rushton-type turbine-agitated fermenter was used; the fermentation conditions were: 400 rpm, 1 Lpm and 30 ºC, during 24 hours. The pH and temperature significantly influenced (p< 0,05) the production of A. brasilense C16. The temperature of 30 ºC was the most favorable for the strain to be multiplied, with 23,21 mm of radial growth; while the temperature higher than or equal to 34 ºC inhibited its growth. The best results were obtained with a pH value of 6,8, with significant differences (p< 0,05) compared with the others. Under this condition the highest growth rate values (1,79 h-1) and biomass production (8,65 log10 CFU mL-1), and the lowest value of the duplication time (1,09 h-1), were obtained. These results have biotechnological applicability, and are very important at the moment of defining and controlling the conditions of massive biomass production of A. brasilense C16 for future formulations in diverse crops of interest in Colombia.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Bacteria]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Efecto de la temperatura y el pH en la producci&oacute;n de biomasa de <em>Azospirillum brasilense</em> C16    aislada de pasto guinea </font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <P><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Effect of temperature and pH on the biomass production    </font>     <font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">of <em>Azospirillum brasilense</em> C16 isolated from Guinea grass  </font> </strong>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>F. Romero-Perdomo<SUP>1</SUP>, M. Camelo-Rusinque<SUP>1</SUP>, Paola Criollo-Campos<SUP>1</SUP> y Ruth Bonilla-Buitrago<SUP>1</SUP>*   </strong></font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><SUP>1</SUP>Laboratorio de Microbiolog&iacute;a de Suelos, Centro de Investigaci&oacute;n Tibaitat&aacute;, Corporaci&oacute;n    Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria-Corpoica, kil&oacute;metro 14 v&iacute;a Mosquera, Cundinamarca, Colombia    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">* Autor para correspondencia: <a href="mailto:rbonilla@corpoica.org.co">rbonilla@corpoica.org.co</a>  </font>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESUMEN</B> </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El objetivo del estudio fue evaluar el efecto de la temperatura y el pH en la    viabilidad celular de la cepa Azospirillum brasilense C16. Se estudiaron cinco temperaturas (entre 28 y 36&#176;C)    y cinco pH (de 4,5 a 8,5). El efecto de la temperatura se evalu&oacute; mediante la medici&oacute;n del    crecimiento radial (mm) de la cepa, sobre un papel de filtro en medio batata. En el caso del pH se utiliz&oacute;    un fermentador de tanque agitado -con una configuraci&oacute;n tipo Rushton- para cuantificar la velocidad    de crecimiento, la producci&oacute;n de biomasa y el tiempo de duplicaci&oacute;n de la cepa; las condiciones de    fermentaci&oacute;n fueron: 400 rpm, 1 Lpm y 30&#176;C, durante 24 horas. El pH y la temperatura    influyeron significativamente (p &lt; 0,05) en la producci&oacute;n de A. brasilense C16. La temperatura de 30&#176;C fue    la m&aacute;s favorable para que se multiplicara la cepa, con 23,21 mm de crecimiento radial; mientras que    la mayor o igual a 34&#176;C inhibi&oacute; su crecimiento. Los mejores resultados se obtuvieron con un pH de    6,8, con diferencias significativas (p &lt; 0,05) respecto al resto. Con esta condici&oacute;n se obtuvieron los    valores m&aacute;s altos de velocidad de crecimiento (1,79 h<sup>-1</sup>) y producci&oacute;n de biomasa (8,65 log10 UFC mL<sup>-1</sup>),    y el valor m&aacute;s bajo del tiempo de duplicaci&oacute;n (1,09 h<sup>-1</sup>). Estos resultados poseen    aplicabilidad biotecnol&oacute;gica, y son de gran importancia en el momento de definir y controlar las condiciones    de producci&oacute;n masiva de biomasa de A. brasilense C16 para futuras formulaciones como biofertilizante    en diversos cultivos de inter&eacute;s en Colombia. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras clave</strong>: Bacteria, gram&iacute;nea, inoculaci&oacute;n. </font> <hr>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>ABSTRACT</B> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> The objective of the study was to evaluate the effect of temperature and pH on the    cell viability of the strain Azospirillum brasilense C16. Five temperatures (between 28 and 36 &#186;C) and    five pH values (from 4,5 to 8,5) were studied. The effect of temperature was evaluated by measuring    the radial growth (mm) of the strain, on a filter paper in sweet potato agar. In the case of pH to quantify    the growth rate, biomass production and time of duplication of the strain a Rushton-type    turbine-agitated fermenter was used; the fermentation conditions were: 400 rpm, 1 Lpm and 30 &#186;C, during 24    hours. The pH and temperature significantly influenced (p&lt; 0,05) the production of A. brasilense C16.    The temperature of 30 &#186;C was the most favorable for the strain to be multiplied, with 23,21 mm of    radial growth; while the temperature higher than or equal to 34 &#186;C inhibited its growth. The best results    were obtained with a pH value of 6,8, with significant differences (p&lt; 0,05) compared with the others.    Under this condition the highest growth rate values (1,79 h<sup>-1</sup>) and biomass production (8,65 log10 CFU    mL<sup>-1</sup>), and the lowest value of the duplication time (1,09 h<sup>-1</sup>), were obtained. These results    have biotechnological applicability, and are very important at the moment of defining and controlling    the conditions of massive biomass production of A. brasilense C16 for future formulations in diverse    crops of interest in Colombia. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Keywords</strong>: Bacterium, grass, inoculation.   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>INTRODUCCI&Oacute;N </B> </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El uso de bacterias promotoras del crecimiento vegetal (BPCV) para la formulaci&oacute;n de    biofertilizantes se ha convertido en una de las tecnolog&iacute;as limpias m&aacute;s promisorias para el desarrollo de la    agricultura sostenible (Bashan et al., 2013). Entre las BPCV que m&aacute;s se destacan se encuentran las del    g&eacute;nero Azospirillum, que tiene la capacidad de fijar nitr&oacute;geno; solubilizar f&oacute;sforo; producir    citoquininas, giberelinas e indoles; reducir nitratos; as&iacute; como formar diferentes clases de asociaciones con las    plantas para mejorar el desarrollo de las ra&iacute;ces e incrementar la tasa de absorci&oacute;n de agua y minerales    (Fibach-Paldi et al., 2012). Debido a estas capacidades Azospirillum sp. se ha aplicado en cultivos de    ma&iacute;z, arroz y trigo, a nivel mundial (D&iacute;az-Zorita y Fern&aacute;ndez-Canigia, 2009; Bashan y De Bashan,    2010).     <BR>   C&aacute;rdenas <em>et al</em>. (2014) demostraron la eficiencia de la cepa Azospirillum brasilense C16 para    promover el crecimiento del pasto guinea (Megathyrsus maximus (Jacq.) B. K. Simon &amp; S. W. L. Jacobs    var. Tanzania), en el municipio Agust&iacute;n Codazzi (Cesar, Colombia). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con el fin de potenciar la actividad microbiana de los biofertilizantes es necesario definir los    par&aacute;metros de crecimiento celular de las cepas que los conforman, m&aacute;xime para un prop&oacute;sito espec&iacute;fico como    la producci&oacute;n de enzimas o de biomasa (Bhattacharyya y Jha, 2012). Aunque se han realizado    investigaciones relacionadas con la optimizaci&oacute;n de las condiciones para la s&iacute;ntesis de &aacute;cido gluc&oacute;nico    y polihidroxialcanoatos por especies del g&eacute;nero Azospirillum, existen pocos estudios sobre el efecto    de las condiciones fisicoqu&iacute;micas en su multiplicaci&oacute;n masiva (Rodr&iacute;guez et al., 2004; Moreno-Galv&aacute;n    et al., 2012). Por tanto, el objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de factores    fisicoqu&iacute;micos, como la temperatura y el pH, en el crecimiento de la cepa <em>A. brasilense</em> C16. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P align="justify"> <font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</B></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Microorganismo y condiciones de cultivo. Se emple&oacute; la cepa C16, identificada molecularmente    como A. brasilense (C&aacute;rdenas et al., 2010). Esta se aisl&oacute;, a partir de suelos cultivados con    gram&iacute;neas forrajeras en Codazzi (Cesar, Colombia), y se seleccion&oacute; por su potencial como biofertilizante    del pasto guinea (M. maximus var. Tanzania), de acuerdo con lo informado por C&aacute;rdenas et al. (2014).    A. brasilense C16 se reactiv&oacute; en medio batata (D&ouml;bereiner et al., 1995), a 30 &#177; 2&#176;C, durante 48 horas. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Efecto de la temperatura. Se evalu&oacute; el efecto de cinco temperaturas (28, 30, 32, 34 y 36&#176;C) en    el crecimiento de A. brasilense C16, con un dise&ntilde;o completamente al azar por triplicado. Se prepar&oacute;    una suspensi&oacute;n bacteriana en una soluci&oacute;n de NaCl al 0,85 %, de la cual se tomaron 20 &#181;l para inocular    un disco de papel de filtro, que se coloc&oacute; sobre el medio de cultivo batata contenido en una placa    Petri, para cuantificar el crecimiento de la bacteria (mm) durante cinco d&iacute;as. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Influencia del pH. Se emple&oacute; un fermentador (MINIFORS, modelo INF-30174), con 3,5 L de    volumen efectivo de trabajo. La estandarizaci&oacute;n del in&oacute;culo de la cepa se realiz&oacute; en medio Azosp<sup>-1</sup>  (Rivera et al., 2012), con el empleo del 10 % (v/v) de una suspensi&oacute;n bacteriana. Se evaluaron cinco pH    (4,5; 5,5; 6,8; 7,5 y 8,5) y el dise&ntilde;o fue completamente al azar, con tres repeticiones. Los pH fueron    controlados con NaOH (1N) y HCl (1N). Las condiciones de fermentaci&oacute;n fueron: 400 rpm, 1 Lpm, a    30&#176;C ?temperatura que m&aacute;s favoreci&oacute; el crecimiento de la cepa?, durante 24 horas. La variable de    respuesta fue la viabilidad celular, que se expres&oacute; como log10 UFC mL<sup>-1</sup>, en medio batata, mediante la    t&eacute;cnica de microgota y diluciones seriadas (Doyle et al., 2001). Se cuantific&oacute; la viabilidad cada dos horas, y    se defini&oacute; la curva de crecimiento para cada pH; a cada curva se le determin&oacute; la velocidad m&aacute;xima    de crecimiento (&#181;x) y el tiempo de duplicaci&oacute;n. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">An&aacute;lisis estad&iacute;stico. La normalidad y la homogeneidad de la varianza de los resultados se    determinaron mediante las pruebas de Shapiro Wilk y Bartlett, respectivamente. Una vez demostrados estos    principios, se aplic&oacute; un ANOVA y la prueba de comparaci&oacute;n de medias de Tukey. El procesamiento de    los datos se realiz&oacute; con el paquete estad&iacute;stico SPSS 17 (Analytical Software, Florida, EE. UU.), con un    95 % de nivel de confianza. </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </strong></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El pH y la temperatura influyeron significativamente (p &lt; 0,05) en la producci&oacute;n de <em>A. brasilense</em>  C16. La temperatura de 30&#176;C favoreci&oacute; m&aacute;s el crecimiento de la cepa (<a href="/img/revistas/pyf/v38n3/f0103315.gif">fig. 1</a>), y se hallaron halos de    23,21 mm a los cinco d&iacute;as de incubaci&oacute;n. Despu&eacute;s, se encontraron halos de tama&ntilde;o inferior a los 32 y    28&#176;C (10 y 25 % por debajo de ese valor, respectivamente). Mientras tanto, a los 34 y 36&#176;C se    inhibi&oacute; totalmente el crecimiento de C16 desde las 24 horas. Por tanto, la producci&oacute;n &oacute;ptima de C16    ocurri&oacute; entre 30 y 32&#176;C. En este sentido, Kaushik <em>et al</em>. (2002) afirmaron que temperaturas sub&oacute;ptimas,    como 22&#176;C, generaron disminuci&oacute;n en la biomasa y en la producci&oacute;n de sustancias promotoras del    crecimiento vegetal en A. brasilense CDJA y A40. Resultados similares fueron encontrados por <em>Garc&iacute;a et    al</em>. (2007) y Molina-Favero <em>et al</em>. (2008), quienes sugirieron el uso de temperaturas entre 29 y 32&#176;C    para la producci&oacute;n de biomasa, auxinas y &oacute;xido n&iacute;trico en bacterias pertenecientes al g&eacute;nero <em>Azospirillum</em>. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por otra parte, se observaron dr&aacute;sticas disminuciones de la biomasa en los cinco pH evaluados.    El valor 6,8 favoreci&oacute; m&aacute;s la producci&oacute;n de biomasa de la cepa, y difiri&oacute; significativamente (p &lt; 0,05)    del    resto; con este pH se cuantificaron 8,65 log10 UFC mL<sup>-1</sup> a las 24 horas de crecimiento (<a href="/img/revistas/pyf/v38n3/f0203315.gif">fig. 2</a>). Adem&aacute;s, se encontr&oacute; el valor m&aacute;s alto de velocidad de crecimiento y el m&aacute;s bajo de tiempo de    duplicaci&oacute;n: 1,79 h<sup>-1</sup> y 1,09 h<sup>-1</sup>, respectivamente (<a href="/img/revistas/pyf/v38n3/f0303315.gif">fig. 3</a>). Steenhoudt y Vanderleyden (2000) se&ntilde;alaron que    el rango ideal de pH para la producci&oacute;n de biofertilizantes a base de Azospirillum var&iacute;a entre 6,5 y 7,0;    lo que se corrobora con lo obtenido en este estudio. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En comparaci&oacute;n con el pH 6,8, en 5,5 y 7,5 se cuantificaron valores de producci&oacute;n de biomasa    por debajo de una y tres unidades logar&iacute;tmicas, a las 24 horas de crecimiento. Por tanto, los valores de    los dos par&aacute;metros de la cin&eacute;tica de crecimiento presentaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p    &lt; 0,05). Es de se&ntilde;alar que 5,5 favoreci&oacute; m&aacute;s la producci&oacute;n que 7,5. Estos resultados indican que los    pH levemente &aacute;cidos, cercanos a la neutralidad, favorecen m&aacute;s la producci&oacute;n de biomasa de A.    brasilense C16 que los alcalinos. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sivasakthivelan y Saranraj (2013) informaron que los pH superiores a la neutralidad tienen    m&aacute;s aplicabilidad para la producci&oacute;n de compuestos y metabolitos de inter&eacute;s industrial que para la    producci&oacute;n de biomasa celular, en el g&eacute;nero Azospirillum sp. En este sentido, Dahm <em>et al</em>. (1993) sugirieron    el uso de pH superiores a 7,5 para potenciar la s&iacute;ntesis de vitaminas del grupo B como la riboflavina. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Respecto a los dos pH m&aacute;s extremos a la neutralidad (4,5 y 8,5), se infiri&oacute; que estos afectan el    metabolismo de <em>A. brasilense</em> C16. En la <a href="/img/revistas/pyf/v38n3/f0203315.gif">figura 2</a> se muestra que desde la hora 6 hubo un descenso    progresivo de la viabilidad a trav&eacute;s del tiempo, al punto de no existir inicio de fase exponencial. Tan solo    una peque&ntilde;a fase de adaptaci&oacute;n, con un incremento de la hora 4 a la hora 6, se observ&oacute; en el pH 4,5.    Por ende, la velocidad de crecimiento en estos dos pH fue menor, y el tiempo de duplicaci&oacute;n fue dos    veces superior respecto a los dem&aacute;s pH (<a href="/img/revistas/pyf/v38n3/f0303315.gif">fig. 3</a>). </font>     <p>&nbsp;</p>      <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>CONCLUSIONES   </strong></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La temperatura y el pH influyeron significativamente (p &lt; 0,05) en la viabilidad de A. brasilense    C16. La producci&oacute;n m&aacute;xima se obtuvo a los 30&#176;C y a un pH de 6,8. Los resultados del presente    estudio poseen aplicabilidad biotecnol&oacute;gica, y son de gran importancia en el momento de definir y controlar    las condiciones de producci&oacute;n masiva de biomasa de A. brasilense C16 para futuras formulaciones    como biofertilizante en diversos cultivos de inter&eacute;s en Colombia.</font>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1.     Bashan, Y.; Bashan, L.E.; Prabhu, S.R. &amp; Hernandez, J.P. Advances in plant    growth-promoting bacterial inoculant technology: formulations and practical perspectives (1998-2013). Plant and    Soil. 378 (1-2): 1-33, 2013 </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2.     Bashan, Y. &amp; de-Bashan, L.E. How the plant growth-promoting bacterium    Azospirillum promotes plant growth-a critical assessment. Adv Agron. 108:77-136, 2010.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3.     Bhattacharyya, P.N. &amp; Jha D.K. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): emergence    in agriculture. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 28 (4): 1327-1350, 2012.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4.     C&aacute;rdenas, D.M.; Garrido, Ma.F.; Roncallo, B. &amp; Bonilla, R. Inoculaci&oacute;n con Azospirillum spp    y Enterobacter aglomerans en Pasto Guinea (Megathyrsus maximus Jacq.) en el Departamento de    Cesar (Colombia). Rev.Fac.Nal.Agr.Medell&iacute;n. 67 (2): 7271-7280, 2014.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5.     C&aacute;rdenas, D.M.; Garrido, Ma.F.; Bonilla, R. &amp; Baldani, V.L. Aislamiento e identificaci&oacute;n    de cepas de Azospirillum sp. en pasto guinea (Megathyrsus maximus Jacq.) del Valle del Cesar. Pastos    y Forrajes. 33:285-300, 2010.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6.     Dahm, H.; R&oacute;zycki, H.; Strzelczyk, E. &amp; Li, C.Y. Production of B-group vitamins    by Azospirillum spp. Grown in media of different pH at different temperaturas. Zentralblatt    f&uuml;r Mikrobiologie. 148 (3):195_203, 1993.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7.     D&iacute;az-Zorita, M. &amp; Fern&aacute;ndez-Canigia, M.V. Field performance of a liquid formulation    of Azospirillum brasilense on dryland wheat productivity. Eur J Soil Biol. 45:3-11, 2009.     </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8.     D&ouml;bereiner, J.; Baldani, V.L.D. &amp; Baldani, J.I. Como isolar e identificar bact&eacute;rias    diazotr&oacute;ficas de plantas &ntilde;ao leguminosas. Bras&iacute;lia: EMBRAPA-SPI. Itagua&iacute;, Brasil. p. 11-60, 1995. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9.     Doyle, M.; Beuchat, L. &amp; Montville, T. Microorganismos indicadores y criterios    microbiol&oacute;gicos. En: Microbiolog&iacute;a de los alimentos fundamentos y fronteras. 1 ed. Espa&ntilde;a: Acribia. p. 816, 2001.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10.     Fibach-Paldi, S.; Burdman, S. &amp; Okon Y. Key physiological properties contributing    to rhizosphere adaptation and plant growth promotion abilities of Azospirillum brasilense. FEMS    Microbiol Lett. 326: 99_108, 2012.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11.     Garc&iacute;a, J.G.; Moreno, V.R.; Rodr&iacute;guez, I.C.; Mendoza, A. &amp; Mayek, N. Efecto de cepas    de Azospirillum brasilense en el crecimiento y rendimiento de grano del ma&iacute;z. Revista Fitotecnia    Mexicana. 30(3): 305-310, 2007.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12.     Kaushik, R.; Saxena, A. &amp; Tilak, K. Can Azospirillum strains capable of growing at a    sub-optimal temperature perform better in field-grown-wheat rhizosphere. Biology and Fertility of Soils.    35 (2): 92-95, 2002.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13.     Molina-Favero, C.; Creus, C.M.; Simontacchi, M.; Puntarulo, S. &amp; Lamattina, L. Aerobic    nitric oxide production by Azospirillum brasilense Sp245 and its influence on root architecture in    tomato. Mol. Plant Microbe Interact. 21: 1001_1009, 2008.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14.     Moreno-Galv&aacute;n, A; Rojas-Tapias, D. &amp; Bonilla, R. Development and evaluation of an    alternative culture medium for mass cultivation of Azospirillum brasilense C16 using sequential statistical    designs. Revista Corpoica - Ciencia y Tecnolog&iacute;a Agropecuaria. 13 (2): 201-206, 2012.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15.     Rivera, D.; Obando, M. &amp; Bonilla, R. Estandarizaci&oacute;n de un medio de cultivo a partir de    fuentes agroindustriales para la multiplicaci&oacute;n de Azospirillum brasilense. Revista de la    UNIVERSIDAD FRANCISCO DE PAULA SANTANDER. 2 (2): 31-38, 2012.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16.     Rodr&iacute;guez, H.; Gonzalez, T.; Goire, I. &amp; Bashan, Y. Gluconic acid production and    phosphate solubilization by the plant growth-promoting bacterium Azospirillum spp. Naturwissenschaften. 91:    552-555, 2004.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17.     Sivasakthivelan, P. &amp; Saranraj, P. Azospirillum and its formulations: A Review.    International Journal of Microbiological Research. 4 (3): 275-287, 2013.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18.     Steenhoudt, O. &amp; Vanderleyden, J. Azospirillum, a free-living nitrogen-fixing bacterium    closely associated with grasses: genetic, biochemical and ecological aspects. FEMS Microbiology Reviews.    24 (4): 487-506, 2000.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido el 8 de mayo de 2015   </font>       <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado el 17 de junio de 2015</font>      ]]></body><back>
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