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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[OBTENCIÓN DE CONIDIOS DEL AISLAMIENTO MA-002 DE Metarhizium anisopliae (METSCH.) SOROKIN MEDIANTE UNA ALTERNATIVA DE CULTIVO BIFÁSICO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[CONIDIA PRODUCTION BY THE ISOLATE Ma-002 OF Metarhizium anisopliae (METSCH.) SOROKIN IN AN ALTERNATIVE OF BIPHASIC CULTURE]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The isolate Ma-002 of Metarhizium anisopliae (Metsch) Sorokin, obtained from soils in the locality of Santa Gertrudis in Chihuahua State, Mexico, was used with the objective of mass producing this fungus by a biphasic method. A liquid medium with yeast extract (20 g.L-1), sucrose (20 g.L-1) and tap water were used for the first phase. It was inoculated with a conidia suspension with a concentration of 5 x 10(6) conidia.mL-1 and the formation of propagules by the fungus was evaluated every 12 hours. Whole rice was used for the solid phase, which was inoculated with the mixture of the culture medium and propagules obtained in the liquid phase. The isolate Ma-002 was capable of producing a high yield of propagules (higher than 10(7) propagules.mL-1) in a fermentation process with a liquid medium based on sucrose and yeast extract in 60 hours, obtaining the material to inoculate the solid substrate in the biphasic process. In the solid phase, a yield of 10(9) conidia.g-1 of rice was achieved after 12 days of incubation. These results showed that the conidia production by the isolate Ma-002 of M. anisopliae using the biphasic method can be applied, with a reduction of the total time of the process and the space used.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Metarhizium anisopliae]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[producción masiva]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <b>TRABAJO ORIGINAL</b></font> </div> <H1>&nbsp; </H1> <H1>&nbsp;</H1> <H1><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="4">OBTENCI&Oacute;N    DE CONIDIOS DEL AISLAMIENTO MA-002 DE <I>Metarhizium anisopliae</I> (METSCH.)    SOROKIN MEDIANTE UNA ALTERNATIVA DE CULTIVO BIF&Aacute;SICO</font></B> </font></H1> <H1>&nbsp;</H1> <H1><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">CONIDIA    PRODUCTION BY THE ISOLATE Ma-002 OF <i>Metarhizium anisopliae</i> (METSCH.)    SOROKIN IN AN ALTERNATIVE OF BIPHASIC CULTURE </font></b></font></H1>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>C.G. Barajas*,    E.M. del Pozo**, Irma Garc&iacute;a**, A. M&eacute;ndez**</B> </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>     <P>     <P>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>*Facultad de    Ciencias Agr&iacute;colas y Forestales, Universidad Aut&oacute;noma de Chihuahua,    Carretera a Rosales km. 2&#189;, Cd. Delicias, Chihuahua, M&eacute;xico. C.P.    33000. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:gbarajas@uach.mx">gbarajas@uach.mx</a>;    **Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Agraria de La Habana, Carretera    de Tapaste y Autopista Nacional, San Jos&eacute; de las Lajas, La Habana, Cuba    </I></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este trabajo    se utiliz&oacute; el aislamiento Ma-002 de <I>Metarhizium anisopliae</I> (Metsch.)    Sorokin, aislado de suelos de la localidad Santa Gertrudis en el Estado de Chihuahua,    M&eacute;xico, con el objetivo de producir masivamente dicho hongo por el m&eacute;todo    bif&aacute;sico. Para la primera fase se utiliz&oacute; un medio l&iacute;quido    a base de levadura (20 g.L<SUP>-1</SUP>), sacarosa (20 g.L<SUP>-1</SUP>) y agua    corriente, inoculado con una suspensi&oacute;n de conidios a una concentraci&oacute;n    de 5 x 10<SUP>6</SUP> conidios.mL<SUP>-1</SUP>, evalu&aacute;ndose la din&aacute;mica    de formaci&oacute;n de prop&aacute;galos del hongo a partir de las 12 horas.    Para la fase s&oacute;lida se utiliz&oacute; arroz, se inocul&oacute; con la    mezcla de medio de cultivo y prop&aacute;gulos del hongo obtenida en la fase    l&iacute;quida. Se demostr&oacute; que el aislamiento Ma-002 es capaz de producir    grandes cantidades de prop&aacute;gulos (superiores a 10<SUP>7</SUP> prop&aacute;gulos.mL<SUP>-1</SUP>)    en un proceso de fermentaci&oacute;n sumergida con un medio l&iacute;quido basado    en sacarosa y extracto de levadura, en 60 h, garantizando as&iacute; el material    necesario para la inoculaci&oacute;n del sustrato s&oacute;lido en el proceso    bif&aacute;sico. En la fase s&oacute;lida, a los 12 d&iacute;as de incubaci&oacute;n    se logr&oacute; un rendimiento superior a los 10<SUP>9</SUP> conidios.g<SUP>-1</SUP>    de arroz colonizado por el hongo. Lo anterior confirma que la producci&oacute;n    de conidios del aislamiento Ma-002 de <I>M. anisopliae</I> por el m&eacute;todo    bif&aacute;sico es factible, con una reducci&oacute;n del tiempo total del proceso,    por lo que tambi&eacute;n se logra economizar espacio. </font></p>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave:</b>    Metarhizium anisopliae; producci&oacute;n masiva; cultivo bif&aacute;sico </font> <hr noshade size="1">     <P>     <P><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">ABSTRACT</font></b>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">The isolate Ma-002    of <I>Metarhizium anisopliae </I>(Metsch) Sorokin, obtained from soils in the    locality of Santa Gertrudis in Chihuahua State, Mexico, was used with the objective    of mass producing this fungus by a biphasic method. A liquid medium with yeast    extract (20 g.L<SUP>-1</SUP>), sucrose (20 g.L<SUP>-1</SUP>) and tap water were    used for the first phase. It was inoculated with a conidia suspension with a    concentration of 5 x 10<SUP>6</SUP> conidia.mL<SUP>-1 </SUP>and the formation    of propagules by the fungus was evaluated every 12 hours. Whole rice was used    for the solid phase, which was inoculated with the mixture of the culture medium    and propagules obtained in the liquid phase. The isolate Ma-002 was capable    of producing a high yield of propagules (higher than 10<SUP>7</SUP> propagules.mL<SUP>-1</SUP>)    in a fermentation process with a liquid medium based on sucrose and yeast extract    in 60 hours, obtaining the material to inoculate the solid substrate in the    biphasic process. In the solid phase, a yield of 10<SUP>9</SUP> conidia.g<SUP>-1</SUP>    of rice was achieved after 12 days of incubation. These results showed that    the conidia production by the isolate Ma-002 of <I>M. anisopliae</I> using the    biphasic method can be applied, with a reduction of the total time of the process    and the space used.</font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key words:</b>    Metarhizium anisopliae; mass production; biphasic culture </font>     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <p>      <p>      <p>      <p>      <p>      <p>      <p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>(Recibido 28-5-2010;    Aceptado 14-10-2010)</b> </font>  <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <BR>   </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font>     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Metarhizium    anisopliae</I> (Metsch.) Sorokin (Ascomycetes: Hypocreales) (1) es uno de los    hongos entomopat&oacute;genos m&aacute;s conocidos, siendo la primera especie    que se evalu&oacute; en condiciones de campo para el control de un insecto fit&oacute;fago,    lo cual aconteci&oacute; en Rusia, en el a&ntilde;o 1888 (2). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Esta especie presenta    un alto potencial de uso en la regulaci&oacute;n de plagas en todos los agroecosistemas    del mundo, tanto en aplicaciones inundativas, como en estrategias de conservaci&oacute;n    (3,4,5). Ha sido recomendado contra una gran diversidad de insectos fit&oacute;fagos,    de diferentes &oacute;rdenes y familias, as&iacute; como de &aacute;caros, en    muchos cultivos, y regiones diferentes (6,7), lo que puede ser explicado por    su car&aacute;cter cosmopolita y su gran diversidad gen&eacute;tica (8,9), adem&aacute;s    de ser un agente seguro, con m&iacute;nimos riesgos para el hombre, los vertebrados    y el medio ambiente (10,11). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Especialmente,    se ha enfatizado en la importancia de <I>M. anisopliae</I> como agente de control    biol&oacute;gico de loc&uacute;stidos y saltamontes en diversas regiones del    mundo (12,13,14,15), y se ha demostrado que puede provocar epizootias tempranas    a partir del in&oacute;culo aplicado el a&ntilde;o anterior (transmisi&oacute;n    vertical) (16) y que el hongo presenta una alta persistencia cuando es aplicado    al suelo (17). En tratamientos a&eacute;reos, en China, se logr&oacute; un 90%    de mortalidad de la langosta migratoria, <I>Locusta migratoria</I> <I>manilensis</I>    (Meyen), en 11-15 d&iacute;as (18). En el estado de Chihuahua, M&eacute;xico,    recientemente se ha informado la obtenci&oacute;n de aislamientos aut&oacute;ctonos    de <I>M. anisopliae</I>, con potencialidad como agentes de control biol&oacute;gico    de <I>Brachystola magna</I> Girard (Orthoptera: Romaleidae), una importante    plaga del frijol (<I>Phaseolus vulgaris</I> L.) y otros cultivos (19). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>M. anisopliae</I>    es una de las especies de hongos entomopat&oacute;genos con las que m&aacute;s    se ha trabajado en todo el mundo en relaci&oacute;n con su producci&oacute;n    masiva y comercializaci&oacute;n como bioplaguicida (3,20). La producci&oacute;n    de conidios en gran escala se puede realizar sobre diferentes sustratos de origen    vegetal, como papa, trigo, soya, arroz y el salvado en diferentes formas (21,22).    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La composici&oacute;n    del medio de cultivo, as&iacute; como el &#171;estr&eacute;s h&iacute;drico&#187;    y el &#171;estr&eacute;s osm&oacute;tico&#187; tienen un marcado efecto sobre    la germinaci&oacute;n, crecimiento, virulencia, caracter&iacute;sticas de la    superficie de los prop&aacute;gulos y otras propiedades de <I>M. anisopliae</I>    (23,24,25). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los medios de cultivo    l&iacute;quidos pueden elaborarse a partir de sustratos relativamente baratos    y de f&aacute;cil obtenci&oacute;n, que combinen una fuente de carbono, una    de nitr&oacute;geno y algunos microelementos (21,26,27,28). En el cultivo sumergido    generalmente se producen blastosporas que, aunque no son apropiadas para ser    aplicadas en campo, son de mucha utilidad para la producci&oacute;n bif&aacute;sica    (29,30). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La selecci&oacute;n    del sustrato depende de un n&uacute;mero de factores, incluyendo la disponibilidad    local, los costos, y la preferencia del hongo a cultivar (27). Por otro lado,    el contenido de humedad del sustrato s&oacute;lido afecta sensiblemente el proceso    de esporulaci&oacute;n de <I>M. anisopliae</I>, ubic&aacute;ndose el &oacute;ptimo    entre 57 y 58% (31). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para obviar las    desventajas que presenta la producci&oacute;n masiva de hongos entomopat&oacute;genos    en cultivo sumergido o sobre un sustrato s&oacute;lido, con frecuencia se recurre    a un proceso de producci&oacute;n en dos fases (cultivo bif&aacute;sico), en    el que los cultivos sumergidos son usados para producir una gran cantidad de    biomasa, la cual se inocula sobre un sustrato s&oacute;lido para obtener los    conidios necesarios (29). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El presente trabajo    se realiz&oacute; con el objetivo de evaluar alternativas para la producci&oacute;n    masiva de un aislamiento de <I>M. anisopliae </I>mediante el cultivo bif&aacute;sico.    </font>     <P>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS </font></B></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Din&aacute;mica    de producci&oacute;n de prop&aacute;gulos en un medio l&iacute;quido</b></font></p> <B></B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este ensayo    se utiliz&oacute; el aislamiento fungoso Ma-002, de <I>M. anisopliae</I>, obtenido    a partir de muestras de suelo y conservado en el Centro de Investigaci&oacute;n,    Conservaci&oacute;n y Reproducci&oacute;n de Organismos Ben&eacute;ficos (CICROB),    de la Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas y Forestales de la Universidad Aut&oacute;noma    de Chihuahua, en Ciudad Delicias, Chihuahua, M&eacute;xico. Se seleccion&oacute;    un medio l&iacute;quido que ha sido ampliamente utilizado en procesos de producci&oacute;n    masiva de diferentes hongos, incluyendo la especie <I>M. anisopliae</I> (26,27),    el cual tiene la siguiente composici&oacute;n: levadura, 20 g.L<SUP>-1</SUP>;    sacarosa comercial, 20 g.L<SUP>-1</SUP> y agua corriente, ajust&aacute;ndose    a pH 6.5 con soluciones de NaOH 0,1N &oacute; HCl 0,1N (32). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para el ensayo    se dise&ntilde;&oacute; un sistema de aireaci&oacute;n utilizando un compresor    que, con los filtros correspondientes, permiti&oacute; alimentar una l&iacute;nea    de suministro de aire est&eacute;ril a las unidades de reproducci&oacute;n.    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Una vez preparado    el medio de cultivo se vertieron 750 mL del mismo en frascos erlenmeyers de    1 L de capacidad, y se procedi&oacute; a la esterilizaci&oacute;n en autoclave,    a 121&#186;C durante 25 minutos. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Cuando el medio    de cultivo se enfri&oacute; se realiz&oacute; la inoculaci&oacute;n con 10 mL    de una suspensi&oacute;n de conidios en agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s    Tween 80 al 0,05%, con una concentraci&oacute;n de 5 x 10<SUP>6</SUP> conidios.mL<SUP>-1</SUP>,    preparada a partir de una colonia del hongo de 14 d&iacute;as de edad sobre    Sabouraud Dextrosa Agar + Extracto de Levadura (SDAY). Una vez inoculados, los    frascos se conectaron al sistema de aireaci&oacute;n, el cual se regul&oacute;    para suministrar, aproximadamente, 1 VVM (volumen de aire por volumen de medio    de cultivo, por minuto) de aire est&eacute;ril. Como tratamientos se consideraron    los diferentes momentos de evaluaci&oacute;n (6), cada 12 h a partir del momento    de la inoculaci&oacute;n, con cuatro repeticiones. La temperatura ambiente en    el laboratorio fue de 24,9 &#177; 1,2&#186;C. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para la evaluaci&oacute;n,    se extrajeron 10 mL del caldo de cultivo y se vertieron en frascos erlenmeyers    de 200 mL que conten&iacute;an 90 mL de agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s    Tween 80 al 0,05%. Con esta suspensi&oacute;n se realiz&oacute; el conteo de    los prop&aacute;gulos del hongo (fundamentalmente blastosporas) utilizando la    c&aacute;mara de Neubauer. Los resultados se expresaron como n&uacute;mero de    prop&aacute;gulos.mL<SUP>-1</SUP> de caldo de cultivo. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los datos obtenidos    se transformaron seg&uacute;n la expresi&oacute;n log<SUB>10</SUB> (x), y procesados    mediante un an&aacute;lisis de varianza de clasificaci&oacute;n simple, comparando    las medias mediante la Prueba de Tukey al 5% (33). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Din&aacute;mica    de producci&oacute;n de conidios en un sustrato s&oacute;lido</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El in&oacute;culo    (mezcla del medio l&iacute;quido y prop&aacute;gulos del hongo) se obtuvo siguiendo    el procedimiento derivado del ensayo anterior, con 60 h de incubaci&oacute;n,    cuando la concentraci&oacute;n fue superior a 10<SUP>7</SUP> prop&aacute;gulos.mL<SUP>-1</SUP>.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Como sustrato s&oacute;lido    se utiliz&oacute; arroz entero, el cual fue remojado con agua corriente durante    2 h, y se dej&oacute; escurrir por 1 h, despu&eacute;s de lo cual se coloc&oacute;    el equivalente a 100 g del mismo en bolsas de polipropileno, y se procedi&oacute;    a la esterilizaci&oacute;n en autoclave, a 121&#186;C durante 30 minutos. Pasadas    24 h, las bolsas con arroz se inocularon con 15 mL del in&oacute;culo l&iacute;quido    y se incubaron a una temperatura de 27 &#177; 1&#186;C y una humedad relativa    del 70 &#177; 5%, con fotoperiodo natural en el laboratorio. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se utiliz&oacute;    un dise&ntilde;o completamente aleatorizado, con cuatro repeticiones. Como tratamientos    se consideraron los diferentes momentos de evaluaci&oacute;n (9), cada 2 d&iacute;as,    a partir del cuarto d&iacute;a despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n del sustrato.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para la evaluaci&oacute;n,    de cada bolsa se extrajo 1 g del sustrato cubierto por el hongo, el cual se    suspendi&oacute; en 100 mL de agua destilada est&eacute;ril m&aacute;s Tween    80 al 0,05%, en un frasco erlenmeyer de 200 mL de capacidad, el cual se agit&oacute;    fuertemente durante 1 minuto. Con esta suspensi&oacute;n se realiz&oacute; el    conteo de conidios del hongo (haciendo diluciones cuando fue necesario) en la    c&aacute;mara de Neubauer, expresando los resultados como n&uacute;mero de conidios.g<SUP>-1</SUP>    de sustrato. Los datos obtenidos se transformaron seg&uacute;n la expresi&oacute;n    log<SUB>10</SUB> (x), y procesados mediante un an&aacute;lisis de varianza de    clasificaci&oacute;n simple, comparando las medias mediante la Prueba de Tukey    al 5% (33). </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N </font></B></font></p> <B>    <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Din&aacute;mica    de producci&oacute;n de prop&aacute;gulos en un medio l&iacute;quido </font> </B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El an&aacute;lisis    estad&iacute;stico realizado mostr&oacute; que existen diferencias altamente    significativas entre los tratamientos, para la producci&oacute;n de prop&aacute;gulos    del aislamiento Ma-002 de <I>M. anisopliae</I>. Como puede observarse en la    <a href="/img/revistas/rpv/v25n3/f0105310.gif">Figura 1</a>, a partir del    primer momento de evaluaci&oacute;n (12 h) la concentraci&oacute;n de prop&aacute;gulos    aument&oacute; muy poco hasta las 24 h, no existiendo diferencias significativas    entre estos dos momentos. </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A partir de las    24 horas comienza la fase de crecimiento exponencial de la curva, obteni&eacute;ndose    valores de concentraci&oacute;n de prop&aacute;gulos para las 36, 48 y 60 h    que difieren estad&iacute;sticamente entre s&iacute;. La concentraci&oacute;n    de prop&aacute;gulos obtenida a las 72 h es similar estad&iacute;sticamente    a la lograda a las 60 h, por lo que a partir de este &uacute;ltimo momento comienza    la llamada &#171;fase de meseta&#187; de la curva de crecimiento. Es de destacar    que ya a partir de las 48 h de incubaci&oacute;n la concentraci&oacute;n en    el medio l&iacute;quido es superior a 10<SUP>7</SUP> prop&aacute;gulos.mL<SUP>-1</SUP>.    El tiempo en que se alcanza la m&aacute;xima producci&oacute;n de prop&aacute;gulos    de <I>M. anisopliae</I> en el presente trabajo es muy inferior a lo informado    por otros autores, que lo lograron a las 169 h (32). Con los aislamientos del    g&eacute;nero <I>Metarhizium</I>, en general, se obtienen altas cantidades de    prop&aacute;gulos en sustratos l&iacute;quidos (34, 35), destac&aacute;ndose    aquellos resultados donde la concentraci&oacute;n de carbono fue de 36 g.L<SUP>-1</SUP>    y la relaci&oacute;n C:N de 10:1 (36). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los resultados    presentados en este ensayo, con las condiciones nutritivas y el volumen de ox&iacute;geno    utilizado, demuestran las potencialidades del aislamiento Ma-002 de <I>M. anisopliae</I>    para ser reproducido masivamente mediante un proceso de fermentaci&oacute;n    sumergida. La modificaci&oacute;n de la relaci&oacute;n carbono-nitr&oacute;geno    en el proceso de producci&oacute;n masiva de <I>M.</I> <I>anisopliae</I> puede    alterar morfol&oacute;gica y fisiol&oacute;gicamente de forma favorable la producci&oacute;n    de prop&aacute;gulos, y con peque&ntilde;os ajustes lograr, incluso, un producto    apropiado para su aplicaci&oacute;n directa en el campo (22,37), capaz de lograr    buenos resultados en el control de ninfas del segundo instar de <I>Schistocerca    gregaria </I>Forskal (36). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este experimento    se demostr&oacute; que el aislamiento Ma-002 es capaz de producir grandes cantidades    de prop&aacute;gulos en un medio l&iacute;quido basado en sacarosa y extracto    de levadura, insumos estos de f&aacute;cil adquisici&oacute;n y bajo costo,    en un proceso de fermentaci&oacute;n sumergida que en 60 h puede garantizar    el material necesario para la inoculaci&oacute;n del sustrato s&oacute;lido    en un proceso bif&aacute;sico. </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Din&aacute;mica    de producci&oacute;n de conidios en un sustrato s&oacute;lido</b> </font>     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este ensayo,    el an&aacute;lisis estad&iacute;stico mostr&oacute; que existen diferencias    altamente significativas entre los tratamientos. Como se aprecia en la <a href="/img/revistas/rpv/v25n3/f0205310.gif">Figura    2</a>, a los cuatro d&iacute;as de la inoculaci&oacute;n del sustrato s&oacute;lido    con el material obtenido en el cultivo sumergido, se observ&oacute; una apreciable    cantidad de conidios, superior a 10<sup>7</sup> conidios.g<sup>-1</sup> de arroz    colonizado, y a partir de ese momento se manifest&oacute; un r&aacute;pido crecimiento    del rendimiento, expresado en los valores obtenidos para cada momento de evaluaci&oacute;n,    hasta el d&iacute;a 12, que difirieron estad&iacute;sticamente entre s&iacute;.    </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la evaluaci&oacute;n    del d&iacute;a 12, el rendimiento mostr&oacute; valores superiores a 10<sup>9</sup>    conidios.g<sup>-1</sup>, y a partir de ese momento se alcanz&oacute; la &#171;fase    de meseta&#187; de la curva, en la que los valores obtenidos fueron estad&iacute;sticamente    similares. Los rendimientos logrados, superiores a los alcanzados en estudios    similares (27), indican que el arroz resulta un sustrato adecuado para la fase    s&oacute;lida del proceso de producci&oacute;n bif&aacute;sica, tal y como lo    han informado varios autores (21,38). Al parecer, el arroz con 2 h de remojado    alcanza el contenido de humedad inicial requerido para lograr una alta producci&oacute;n    de conidios de <i>M. anisopliae</i> (31,39). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los resultados    del ensayo indican que a los 12 d&iacute;as se puede detener la fase de fermentaci&oacute;n    s&oacute;lida, lo cual resulta un periodo de tiempo inferior a lo establecido    para esta misma especie fungosa en el proyecto Lubilosa (40). En otros estudios    se ha sugerido un periodo de hasta 21 d&iacute;as para obtener la mayor producci&oacute;n    de conidios en procesos de producci&oacute;n masiva con hongos entomopat&oacute;genos    (3). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Lo anterior confirma    que la producci&oacute;n de prop&aacute;gulos mediante fermentaci&oacute;n sumergida    puede ser integrada a un m&eacute;todo bif&aacute;sico de producci&oacute;n    masiva de hongos entomopat&oacute;genos, con lo cual se logra reducir el tiempo    de colonizaci&oacute;n del sustrato s&oacute;lido, con producci&oacute;n de    conidios a&eacute;reos en un menor tiempo, y en un menor espacio (22,36). Con    ello, pueden disminuir tambi&eacute;n los gastos en el proceso de producci&oacute;n    masiva, lo cual es un requerimiento para que un entomopat&oacute;geno pueda    utilizarse como bioplaguicida (41). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <BR>   </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En resumen, se    demostr&oacute; que el aislamiento Ma-002 de <I>M. anisopliae </I>pudo ser reproducido    mediante el m&eacute;todo bif&aacute;sico, donde se utiliz&oacute; un medio    l&iacute;quido basado en levadura y sacarosa y un sustrato s&oacute;lido a base    de arroz, logr&aacute;ndose un producto con una alta concentraci&oacute;n de    conidios, en un tiempo menor que el requerido para el proceso convencional sobre    un sustrato s&oacute;lido. Los resultados obtenidos constituyen aportes a futuras    metodolog&iacute;as para la producci&oacute;n masiva y formulaci&oacute;n de    este aislamiento. </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B>    </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Sung GH, Hywel-Jones    NL, Sung JM, Luangsa JJ, Shrestha B, Spatafora, JW. Phylogenetic classification    of <I>Cordyceps</I> and the<I> </I>clavicipitaceous fungi. Studies in Mycology.    2007;57(1):5-59. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Lord JC. From    Metchnikoff to Monsanto and beyond: the path of microbial control. J Invertebr    Pathol. 2005;89:19-29. </font>    <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Faria M, Wraight    SP. Mycoinsecticides and Mycoacaricides: A comprehensive list with worldwide    coverage and international classification     <BR>   of formulation types. Biol. Control. 2007;43:237-256. </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Meyling NV,    Eilenberg J. Ecology of the entomopathogenic fungi <I>Beauveria bassiana</I>    and <I>Metarhizium</I> <I>anisopliae</I> in temperate agroecosystems: Potential    for conservation biological control. Biol Control. 2007;43(2):145-155. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Jabbour R, Barbercheck    M. Soil management effects on entomopathogenic fungi during the transition to    organic agriculture in a feed grain rotation. Biol Control. 2009;51(3):435-443.    </font>    <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Copping LG.    The Manual of Biocontrol Agents. Third Edition. The British Crop Protection    Council, Aston, UK. 2004. </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7. Shi WB, Zhang    LL, Feng MG. Field trials of four formulations of <I>Beauveria</I> <I>bassiana</I>    and <I>Metarhizium</I> <I>anisoplae</I> for control of cotton spider mites (Acari:    Tetranychidae) in the Tarim Basin of China. Biol. Control. 2008;45(1):48-55.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8. CAB International.    Crop Protection Compendium. Wallingford, UK, CAB International. 2006. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Inglis GD, Duke    GM, Goettel MS, Kabaluk JT. Genetic diversity of <I>Metarhizium</I> <I>anisopliae</I>    var. <I>anisopliae</I> in southwestern British Columbia. J Invertebr Pathol.    2008;98(1):101-113. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.Zimmermann G.    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