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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Papel del óxido nítrico en la retención de glucosa cerebral post-estimulación de los receptores carotídeos con cianuro de sodio en ratas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[An experimental study in the neuroendocrinology lab of Colima´s University was carried out, with the objective to measure the action of the nitric oxide (NO) in the capture cerebral glucose, after the stimulation with sodium cyanide (NaCN-5µg/100g) of the carotid body receptors (RCC).The experiments were performed with anaesthetized rats (280-310 g), kept with artificial breathing at 25°C of temperature .Protocols were the fallowing: a) control I, perfusion in cisterna magna (CM) of artificial cerebrospinal fluid LCRa(5µL/30s);b) control II,ERC in simultaneous way with the perfusion of LCRa; c)perfusion of a donor of NO (nitroglicerine )(NG-3µg/5µL of LCRa) in CM ;d) ERC in simultaneous way with NG in CM; e) perfusion of a inhibitor of NO ( L-NAME)(250µg/5µL of LCRa );f) ERC in simultaneous way with L-NAME in CM.Results indicated that the combination of NG with ERC do not change the retention of the cerebral glucose, while in the controls, the NG alone in creased the cerebral retention of glucose. On the contrary, the L-NAME in combination with ERC increased the capture of the cerebral glucose, which indicated that nitric oxide played a modulator role in the hyperglycaemic answer in hypoxia stages.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><font size="2">ARTICULOS  ORIGINALES</font></b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Papel del &oacute;xido  n&iacute;trico en la retenci&oacute;n de glucosa cerebral post-estimulaci&oacute;n de los receptores  carot&iacute;deos con cianuro de sodio en ratas</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>The role of the  nitric oxide to retain the cerebral glucose post-stimulation of the carotid receptors  with sodium cyanide in rats</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Dr. Jos&eacute; Lu&iacute;s C&aacute;denas Freixas; Sergio Adri&aacute;n Montero Cruz; Elena  Roces de &Aacute;lvarez Buylla; Dr. Ram&oacute;n &Aacute;lvarez Buylla de Aldana</b></font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Instituto  Superior de Ciencias M&eacute;dicas Carlos J. Finlay. Camag&uuml;ey, Cuba.</font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p> <hr>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se realiz&oacute; un  estudio experimental, con el objetivo de medir la acci&oacute;n del &oacute;xido n&iacute;trico (NO)  en la captaci&oacute;n de glucosa cerebral, despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n con cianuro de  sodio (NaCN-5&micro;g/100g) de los receptores del cuerpo carot&iacute;deo (RCC). Los  experimentos se realizaron en ratas (280-310g) anestesiadas, mantenidas con  respiraci&oacute;n artificial a una temperatura de 25&deg;C. Los protocolos fueron el control I, la perfusi&oacute;n en cisterna magna (CM) de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo artificial-LCRa (5 &micro;L/30 s), el control II, la ERC en forma simult&aacute;nea con la perfusi&oacute;n de LCRa, la perfusi&oacute;n de un donador de NO (nitroglicerina) (NG-3&micro;g/5&micro;L de LCRa) en CM, la ERC en forma simult&aacute;nea con NG en CM, la perfusi&oacute;n de un inhibidor de NO (L-NAME) (250&micro;g/5&micro;L de LCRa), la ERC en forma simult&aacute;nea con L-NAME en CM. Los resultados obtenidos indican que la combinaci&oacute;n de NG con ERC no altera la retenci&oacute;n de glucosa cerebral, mientras que en los controles, la NG sola aument&oacute; la retenci&oacute;n cerebral de glucosa. Por el contrario, el L-NAME en combinaci&oacute;n con ERC aument&oacute; la captaci&oacute;n de glucosa cerebral e indic&oacute; que el &oacute;xido n&iacute;trico desempe&ntilde;a un papel modulador en la respuesta hiperglucemiante en los estados de hipoxia.</font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DeCS</b>: &Oacute;XIDO N&Iacute;TRICO; GLUCOSA OXIDASA; SISTEMA NERVIOSO; CIANURO DE SODIO; RATAS.</font></p> <hr>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">An experimental study in the neuroendocrinology lab of Colima&acute;s University was carried out, with the objective to measure the action of the nitric oxide (NO) in the capture cerebral glucose, after the stimulation with sodium cyanide (NaCN-5&micro;g/100g) of the carotid body receptors (RCC).The experiments were performed with anaesthetized rats (280-310 g), kept with artificial breathing at 25&deg;C of temperature .Protocols were the fallowing: a) control I, perfusion in cisterna magna (CM) of artificial cerebrospinal fluid LCRa(5&micro;L/30s);b) control II,ERC in simultaneous way with the perfusion of LCRa; c)perfusion of a donor of  NO (nitroglicerine )(NG-3&micro;g/5&micro;L of LCRa) in CM ;d) ERC in simultaneous way with NG in CM; e) perfusion of a inhibitor of NO ( L-NAME)(250&micro;g/5&micro;L of LCRa );f) ERC in simultaneous way with L-NAME in CM.Results indicated that the combination of NG with ERC do not change the retention of the cerebral glucose, while in the controls, the NG alone in creased the cerebral retention of glucose. On the contrary, the L-NAME in combination with ERC increased the capture of the cerebral glucose, which indicated that nitric oxide played a modulator role in the hyperglycaemic answer in hypoxia stages.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DeCS</b>: NITRIC OXIDE; CLUCOSE OXIDASE; NERVOUS SYSTEM; SODIUM CYANIDE; RATS.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El cerebro tiene mecanismos intr&iacute;nsecos que regulan la disponibilidad de sustratos energ&eacute;ticos en correspondencia con las variaciones locales de su actividad funcional. La actividad neuronal tiene lugar dentro de complejos neuronales y la barrera hematoencef&aacute;lica limita la transferencia de mol&eacute;culas desde la sangre. Esta barrera que se desarrolla para proteger al cerebro de sustancias nocivas, condiciona tambi&eacute;n los substratos potenciales para el metabolismo energ&eacute;tico. Debido a estas caracter&iacute;sticas especiales, el sistema nervioso depende casi en su totalidad del metabolismo de la glucosa. <sup>1</sup> En circunstancias especiales, como cetosis y ayuno prolongado, el sistema nervioso utiliza otras fuentes de energ&iacute;a (cuerpos cet&oacute;nicos, etc.). <sup>2</sup> En ausencia de glucosa, durante la hipoglucemia severa (hipoglucemia insul&iacute;nica), la funci&oacute;n cerebral se deteriora y llega hasta la p&eacute;rdida de la conciencia, con aumento del catabolismo de amino&aacute;cidos y componentes estructurales neuronales, liberaci&oacute;n de neurotoxinas y muerte. <sup>3</sup> Aunque el aporte de O2 es tambi&eacute;n importante para mantener la homeostasis cerebral, durante la hipoxia severa tienen lugar mecanismos compensadores (gluc&oacute;lisis anaer&oacute;bica). El sustrato que mantiene este nivel de energ&iacute;a metab&oacute;lica elevado lo constituye, casi en forma exclusiva, la glucosa. <sup>2</sup>    <br>       <br>   Se describe que el NO se produce dentro del cuerpo carot&iacute;deo (CC) como un modulador inhibitorio de la quimiorrecepci&oacute;n hip&oacute;xica. <sup>4-6</sup> En efecto, estudios inmunocitoqu&iacute;micos demuestran un extensa red de fibras NOS positivas en el cuerpo carot&iacute;deo, con dos poblaciones anat&oacute;mica y fisiol&oacute;gicamente distintas: la inervaci&oacute;n de la vasculatura y la del CC. <sup>7, 8</sup>    <br>       <br> En nuestra investigaci&oacute;n se explor&oacute; el efecto del NO en la respuesta hiperglucemiante despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n de los receptores del cuerpo carot&iacute;deo (RCC) con NaCN, se analizaron los efectos de un donador de NO, como es la nitroglicerina (NG) y un inhibidor de la enzima NO sintetasa, como es el N-nitro-L-arginina metil &eacute;ster (L-NAME) en la retenci&oacute;n de glucosa por el cerebro.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>M&Eacute;TODO</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Nuestro estudio  se llev&oacute; a cabo en el laboratorio de neuroendocrinolog&iacute;a del Centro de  Investigaciones Biom&eacute;dicas de la universidad de Colima. Los experimentos se  realizaron en ratas Wistar machos, de    250 a 300g. de peso corporal, en ayuno previo de 18h. Los animales se anestesiaron con pentobarbital s&oacute;dico (anestesal, pfizer), 3mg/100g por v&iacute;a intraperitoneal (i.p.) y se mantuvieron con respiraci&oacute;n artificial por c&aacute;nula endotraqueal, con una frecuencia de 40 respiraciones/min. El nivel de anestesia se mantuvo constante durante todo el experimento, por goteo i.p. cont&iacute;nuo del anest&eacute;sico diluido en soluci&oacute;n salina (63mg/100mL). Se mantuvo la temperatura corporal con una l&aacute;mpara. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estimulaci&oacute;n de los RCC y obtenci&oacute;n de sangre    <br>   Para estimular los RCC con NaCN, el seno carot&iacute;deo izquierdo se aisl&oacute; temporalmente de la circulaci&oacute;n cef&aacute;lica y general, se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de &Aacute;lvarez-Buylla. <sup>9</sup> La estimulaci&oacute;n de los RSCC se realiz&oacute; por inyecci&oacute;n lenta de 5&micro;g/100g de NaCN en 0.1mL de soluci&oacute;n salina. Se colectaron muestras de sangre arterial y venosa de los vasos cateterizados. Las muestras de sangre se mantuvieron en refrigeraci&oacute;n hasta su centrifugaci&oacute;n. La sangre se centrifug&oacute; durante 5min a una velocidad de 3000rpm, se utiliz&oacute; una centr&iacute;fuga refrigerada (Beckman T J-6).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Las inyecciones en la cisterna magna se realizaron con la t&eacute;cnica descrita por Hudson, Hughes, Bold-Fletcher y Vaden. <sup>10</sup> La inyecci&oacute;n de las sustancias empleadas  L-NAME y NG se hicieron con una bomba de infusi&oacute;n continua (baby bee, BAS) que conten&iacute;a LCRa como veh&iacute;culo, a una velocidad de 5&micro;L/30seg.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Procedimientos bioqu&iacute;micos    <br>   La concentraci&oacute;n de glucosa en plasma se midi&oacute; por el m&eacute;todo de la glucosa oxidasa (autoanalizador beckman) en M&ordf;/dL, en muestras de 10&micro;L de plasma. Se determin&oacute; la concentraci&oacute;n de glucosa a partir de la depleci&oacute;n de O2 en una soluci&oacute;n de glucosa-oxidasa saturada con O2. El nivel de retenci&oacute;n de glucosa por cerebro se determin&oacute; comparando la concentraci&oacute;n de glucosa arterial en la femoral con la concentraci&oacute;n de glucosa venosa en el seno yugular. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Drogas o sustancias aplicadas    <br>   Pentobarbital s&oacute;dico (anestesal, Pfizer), 3mg/100 g: l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo artificial (LCRa) NaCl 145mM, KCL 2, 7mM, MgCl2 1, 0mM, CaCl2 1, 2mM, ascorbato 2mM, NaH2PO4 2mM, pH 7, <sup>3-7, 4 </sup>, 5&micro;L/30s. El LCRa se prepar&oacute; cada 48h y se conserv&oacute; en refrigeraci&oacute;n, soluci&oacute;n salina al 0.9 % (Pisa), 0, 1 Ml; cianuro de sodio (NaCN, Sigma), 5 &micro;g/100 g en 0, 1mL de soluci&oacute;n salina; nitroglicerina (NG, Scherer GMBH Eberbach Baden), 3&micro;g en 5&micro;L de LCRa; N-nitro-L-arginina metil ester (L-NAME, Sigma), 250&micro;g en 5&micro;L de LCRa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>    <br> Las comparaciones  estad&iacute;sticas se realizaron seg&uacute;n la prueba de <i>t</i>, modificada por <i>Cochran</i> y <i>Cox</i>. <sup>12</sup> Se us&oacute; la prueba<i> t</i> de <i>Student </i>para hacer las comparaciones entre los valores basales y los  experimentales. El nivel de significancia se fij&oacute; en forma arbitraria a dos  rangos *P&lt;0, 05 (significativo), y ***P&lt;0, 01 (altamente significativo).  En todas las gr&aacute;ficas los valores son medias aritm&eacute;ticas y las l&iacute;neas  verticales representan los valores de error est&aacute;ndar. Las probabilidades (valor  de P) entre los datos reportados con respecto a su basal, se calcularon como  muestras pareadas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Protocolo experimental</b>    <br>   Se realizaron los  siguientes experimentos:    <br>   a) Primer grupo  control: infusi&oacute;n continua de LCRa en la   CM y simult&aacute;neamente con la inyecci&oacute;n de soluci&oacute;n salina en  el seno carot&iacute;deo.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   b) Segundo grupo  control: infusi&oacute;n continua de LCRa en la   CM y&nbsp; estimulaci&oacute;n de  los RCC con NaCN en el seno carot&iacute;deo.    <br>   c) Primer grupo  experimental: infusi&oacute;n continua de NG en la CM, simult&aacute;neamente con la inyecci&oacute;n de soluci&oacute;n  salina en el seno carot&iacute;deo.    <br>   d) Segundo grupo  experimental: infusi&oacute;n continua de NG en la CM, simult&aacute;neamente con la estimulaci&oacute;n de los RCC  en el seno carot&iacute;deo; tercer grupo experimental: infusi&oacute;n continua de L-NAME en  la CM,  simult&aacute;neamente con la inyecci&oacute;n de soluci&oacute;n salina en el seno carot&iacute;deo.    <br>   e) Cuarto grupo  experimental: infusi&oacute;n continua de L-NAME en la CM, simult&aacute;neamente con la estimulaci&oacute;n de los  RCC con NaCN en el seno. En todos los grupos se tomaron cinco muestras de  sangre de la arteria femoral y del seno yugular, durante un per&iacute;odo de 20min;&nbsp; las muestras t = -4 y t = -2 correspondieron  a las basales. Las infusiones de LCRa, NG y L-NAME en la CM, as&iacute; como las&nbsp; inyecciones de soluci&oacute;n salina y NaCN en el  SC circulatoriamente aislado, se hicieron a t = 0, a dos minutos de la segunda  muestra basal. Despu&eacute;s de las inyecciones e infusiones de dichas drogas, se  tomaron tres muestras de sangre a t = 4, t =8 y t =16 min. La cantidad de  sangre obtenida para cada tiempo fue de 0.1mL de sangre arterial y 0, 1mL de  sangre venosa, colectando un volumen total de 1mL (% de volumen total). Para  compensar el volumen de l&iacute;quido, despu&eacute;s de cada toma se inyect&oacute; igual volumen  de soluci&oacute;n salina al 0, 9 %.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La estimulaci&oacute;n de los quimiorreceptores del cuerpo  carot&iacute;deo con NaCN, produjo incrementos significativos en la captaci&oacute;n de  glucosa por cerebro, as&iacute; como en la glucemia arterial y venosa encef&aacute;lica. La  concentraci&oacute;n de glucosa en sangre arterial aument&oacute; de 140, 0&plusmn;8, 8mg/dL en t = -4min a 228, 6&plusmn;16, 0mg/dL en t = 16min despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n de NaCN, (p&lt;0,  01); mientras que en la sangre venosa el aumento de la glucosa fue de 121, 0&plusmn;6, 6mg/dL en t = -4min a 180, 2&plusmn;11, 6mg/dL en t = 16min despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n de NaCN,  (p&lt;0, 01).    <br>       <br>   El aumento en la concentraci&oacute;n de glucosa fue mayor en la sangre  arterial que en la venosa, dando como resultado un aumento significativo en la  diferencia arterio-venosa de glucosa cerebral de 18, 4&plusmn;2, 5mg/dL en t = -4min a 32, 6&plusmn;2, 0 en t = 4min  (P&lt;0, 001) y 48, 8&plusmn;9, 8mg/dL en t = 8min despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n de NaCN,  (p&lt;0, 01). En los experimentos control, la infusi&oacute;n de LCRa en la CM, 5&micro;L en 30seg m&aacute;s la  inyecci&oacute;n de soluci&oacute;n salina en el SC, no produjo incrementos significativos en la glucemia arterial y venosa  encef&aacute;licas (sangre del seno venoso yugular), ni en la retenci&oacute;n de glucosa  cerebral.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    La concentraci&oacute;n de glucosa a los 4min antes de la infusi&oacute;n de LCRa  en la CM fue de  133, 2&plusmn;5, 7mg/dL en la sangre arterial y de  116&plusmn;4, 8mg/dL en la sangre venosa. La  concentraci&oacute;n de glucosa a los 16min despu&eacute;s de la infusi&oacute;n del LCRa en la CM&nbsp; fue de 151, 2&plusmn;15,  6mg/dL y de 134, 2&plusmn;15, 1mg/dL en la sangre  arterial y venosa respectivamente. Los valores basales en la captaci&oacute;n de  glucosa por el cerebro (diferencias arterio-venosas de sangre encef&aacute;lica)  fueron de 17, 2&plusmn;1, 6mg/dL en t = -4min hasta 16, 8&plusmn;1, 7mg/dL a los 16min.    <br>       <br> En los experimentos  control, se analiz&oacute; si el NO es el mediador qu&iacute;mico en el reflejo  hiperglucemiante y en el aumento en la retenci&oacute;n de glucosa por cerebro  observados despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n de los receptores del CC con NaCN en  ratas. Infundimos NG (donador de NO) en la CM sin estimular los RSCC con NaCN, y se observ&oacute;  que la infusi&oacute;n de NG sola (3&micro;&#61472;g/ en 5&micro;L de  LCRa), produjo un aumento significativo en la glucemia arterial a los cuatro y  ocho minutos postinfusi&oacute;n (p&lt; 0, 025 y p&lt;0, 01) respectivamente), en  cambio, en la glucemia venosa solo se observ&oacute; un aumento significativo (p&lt;0,  05) en el minuto ocho postinfusi&oacute;n. Del mismo modo, la retenci&oacute;n de glucosa  cerebral aument&oacute; desde t= -4min de 16, 2<u>+</u>3, 2mg/dL hasta 28, 6&plusmn;5, 9mg/dL  a los 4min (p&lt;0, 05) y 25, 2 &plusmn; 4, 1mg/dL a los 8min (p &lt;0.05).    <br>     <br> La  estimulaci&oacute;n de RCC con NaCN inyectado en el seno carot&iacute;deo de ratas, m&aacute;s  L-NAME en la CM  produjo incrementos significativos en la captaci&oacute;n de glucosa por cerebro, as&iacute;  como en la glucemia arterial y venosa encef&aacute;licas. La concentraci&oacute;n de&nbsp; glucosa en sangre arterial aument&oacute; de 158, 6&plusmn;6,  7mg/dL en t = -4min a 182, 6&plusmn;5, 5mg/dL en t = 8min despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n de  NaCN en el SC (p&lt;0, 01); mientras que en la sangre venosa el aumento de la  glucosa fue de 142.8&plusmn;6.8mg/dL en t = -4min a 151.4&plusmn;6.1mg/dL en t = 8min despu&eacute;s  de la inyecci&oacute;n de NaCN en el SC (P&lt;0, 01), estos incrementos fueron  significativos.Cuando se analizaron las retenciones de glucosa encef&aacute;lica, se  observ&oacute; un aumento significativo en la diferencia arterio-venosa de glucosa  cerebral de 15, 6&plusmn;2.9mg/dL en t = -4min a 23, 0&plusmn;3, 4 en t = 4min (P&lt;0, 001)  y 31, 2&plusmn;1.0mg/dL en t = 8min despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n de NaCN (p&lt;0, 01).    <br>     <br> En  los experimentos control, se valor&oacute; si el L-NAME (inhibidor de NO) por s&iacute; solo,  produce cambios en la retenci&oacute;n de glucosa por el cerebro como los observados  despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n de RCC con NaCN en ratas. Se infundi&oacute; L-NAME en la CM sin estimular los RCC con  NaCN, y se observ&oacute; que la infusi&oacute;n de L-NAME s&oacute;lo (250&micro;L en 5&micro;L de LCRa) no  produjo cambios significativos en la glucemia arterial y venosa, ni en la  retenci&oacute;n de glucosa encef&aacute;lica en los tiempos estudiados postinyecci&oacute;n (<a href="#Tabla1">Tabla 1</a>).</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v10n5/t01110506.gif" alt="Tabla 1" width="448" height="150" longdesc="../img/t01110506.gif"><a name="Tabla1"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">N&uacute;meros  entre par&eacute;ntesis, n&uacute;mero de animales por experimento; LCRa, l&iacute;quido  cefalorraqu&iacute;deo artificial; salina, soluci&oacute;n salina; NaCN, cianuro de sodio;  NG, nitroglicerina; L-NAME, N-nitro-L-arginina metil &eacute;ster. Los valores son  medias aritm&eacute;ticas &plusmn; error est&aacute;ndar *P&lt;0, 05, **P&lt;0, 025 y ***P&lt;0, 01. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La infusi&oacute;n de nitroglicerina (3&micro;g/ en 5&micro;L de LCRa)  en la CM m&aacute;s NaCN  no produjo aumento significativo en las glucemias arterial y venosa. Sin  embargo, en la retenci&oacute;n de glucosa cerebral se produjo un aumento  significativo desde t= -4min, de 1, 0&plusmn;6, 3mg/dL  hasta 25, 2&plusmn;6, 3mg/dL (P&lt; 0, 005) a t=16min  (<a href="#Figura1">Fig. 1A y 1B</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v10n5/f01110506.gif" alt="Figura 1" width="479" height="484" longdesc="../img/f01110506.gif"><a name="Figura1"></a></p>     
<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados del segundo grupo control, en el que se estimularon  los RCC con la inyecci&oacute;n de NaCN en el seno carot&iacute;deo, pudieran sugerir la  participaci&oacute;n de estos receptores en la homeostasis de la glucosa. <sup>13</sup> En  efecto, la estimulaci&oacute;n quimiorreceptora con microdosis de NaCN, en el SC,  simult&aacute;neamente con la infusi&oacute;n de&nbsp; LCRa  en la CM, aument&oacute;  la concentraci&oacute;n de glucosa arterial por encima de los niveles alcanzados en la  sangre venosa encef&aacute;lica, elevando significativamente la diferencia A-V de  glucosa cerebral. Cuando se compararon estos resultados con los obtenidos en el  primer grupo control, se observ&oacute; que en este caso, la infusi&oacute;n de salina al SC  acompa&ntilde;ada de LCRa en la CM,  no produjo hiperglucemia refleja ni aumento en la retenci&oacute;n de glucosa por  cerebro. Se asumi&oacute; que las microdosis de NaCN, utilizadas en este trabajo, no estimulan  los barorreceptores, el efecto estimulador de esta droga, se observ&oacute; que en las  ratas controles se debe atribuir a la actividad quimiorreceptora.<sup>14</sup> <i>&Aacute;lvarez-Buylla</i> <sup>10</sup> demuestra  que los RCC son sensibles a cambios en la glucosa local, y responden al  est&iacute;mulo an&oacute;xico con un reflejo hipergluc&eacute;mico de corta latencia. Estos  experimentos muestran que el SNC participa en el aumento r&aacute;pido y transitorio  de la glucosa sangu&iacute;nea en respuesta a la estimulaci&oacute;n de los RCC en ratas  anestesiadas.    <br>       <br>   Se propuso que la  excitaci&oacute;n quimiosensorial del cuerpo carot&iacute;deo inducida por hipoxia puede ser  el resultado de una disponibilidad disminuida de un mensajero qu&iacute;mico  inhibitorio tal como el NO.<sup>15</sup> Es posible que la actividad  quimiosensorial incrementada inducida por hipoxia sea el resultado de una  reducci&oacute;n en los niveles de &oacute;xido n&iacute;trico.    <br>       <br>   No se conoce a&uacute;n  qu&eacute; mediador participa en la captaci&oacute;n de glucosa por cerebro, algunos autores  se&ntilde;alan a la insulina como la hormona que pudiera estar involucrada en este mecanismo,  <sup>16</sup> <i>Seaquie</i>st, <i>Damberg</i>, <i>Tkac</i> y&nbsp; <i>Gruetter</i>, <sup>17</sup><i>&Aacute;lvarez-Buylla</i>, <i>Huberman, Montero, Lemus, Valles y  &Aacute;lvarez-Buylla E</i>, <sup>18</sup> encuentran un aumento en la captaci&oacute;n de  glucosa por el cerebro en ratas y perros a los cuales se les infundi&oacute; LCR en la CM proveniente de perros  despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n del CC con NaCN, proponiendo la existencia de una  sustancia activa en el LCR involucrada en el metabolismo cerebral. Nos planteamos la posibilidad que el NO pudiera ser la sustancia activa  que participa en el aumento en la captaci&oacute;n de glucosa por el cerebro despu&eacute;s  de la estimulaci&oacute;n RCC con NaCN. El NO  es una sustancia biol&oacute;gica regulatoria y un importante mensajero intracelular  que act&uacute;a como un mediador espec&iacute;fico de varios trastornos neurol&oacute;gicos  secundarios a isquemia/hipoxia. <sup>19</sup> En los resultados se  encontr&oacute; que la NG  (donador de NO), infundida en la CM  de ratas no estimuladas con NaCN, produjo un aumento significativo en la  captaci&oacute;n de glucosa por cerebro similar al aumento presentado en las ratas con  estimulaci&oacute;n de los RCC con NaCN y sin infusi&oacute;n de NG en la CM. Estas observaciones sugieren un papel crucial para el NO  sobre la quimiorrecepci&oacute;n hip&oacute;xica. Trabajos anteriores muestran que la  inyecci&oacute;n ICV de un donador de NO produce un incremento de vasopresina en  plasma con elevaci&oacute;n de los niveles de glucosa por glucogenolisis hep&aacute;tica. <sup>20</sup>  El aumento en la retenci&oacute;n de glucosa por el cerebro producido por el  donador de NO (nitroglicerina) puede explicarse en base al conocimiento de que  este gas aumenta la gluc&oacute;lisis a trav&eacute;s de un mecanismo independiente de la  glucogenolisis en astrocitos. Es decir, la glucosa utilizada por las  neuronas es la que se obtiene del medio extracelular a trav&eacute;s de  transportadores, y no la que se encuentra almacenada como gluc&oacute;geno en los  astrocitos. <sup>21</sup>    <br>       <br>   Los  estudios de esta serie experimental parecen confirmar la participaci&oacute;n &nbsp;del NO  en la captaci&oacute;n de glucosa por el cerebro. Pero, no se puede hacer una relaci&oacute;n  directa de la participaci&oacute;n del NO en el reflejo hiperglucemiante despu&eacute;s de la  estimulaci&oacute;n de los RCC. Es posible que las concentraciones de NO liberado  por donadores del NO en nuestros experimentos (100nM) puedan alterar la cadena  de transporte de electrones y la fosforilaci&oacute;n oxidativa de las mitocondrias de  las c&eacute;lulas del cerebro en las c&eacute;lulas del glomus. En  la primera parte de esta serie experimental se encontr&oacute; que la NG en la CM, acompa&ntilde;ada de la  estimulaci&oacute;n de los&nbsp; RCC no produce  efectos sobre los niveles de glucemia arterial y venosa ni en la retenci&oacute;n de  glucosa cerebral lo que sugiere que el efecto del NO antagoniza al efecto del  NaCN (Fig.  1).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   La administraci&oacute;n  de donadores de NO como la NG  y NPS en el CC in vitro reduce  la respuesta quimiosensorial a la hipoxia, indicando que el NO act&uacute;a como un  inhibidor, predominantemente, durante la hipoxia. No  se sabe si la inhibici&oacute;n del NO es un efecto&nbsp;  fisiol&oacute;gico o farmacol&oacute;gico debido que los niveles del NO en el cerebro son  desconocidos. El mecanismo fundamental para explicar estos resultados no ha  sido identificado, pero los posibles blancos para la acci&oacute;n del NO son la  guanilato ciclasa soluble y la citocromo oxidasa, debido a que estas enzimas son  altamente sensibles al NO. <sup>22</sup> La inyecci&oacute;n de NG en  nuestros experimentos podr&iacute;a tambi&eacute;n producir hipoxia con una retenci&oacute;n  compensadora de glucosa por el cerebro.    <br>       <br>   La infusi&oacute;n de  L-NAME en la CM  acompa&ntilde;ada de la inyecci&oacute;n de NaCN en el SC increment&oacute; significativamente la  retenci&oacute;n de glucosa por el cerebro, as&iacute; como los niveles de glucemia arterial  y venosa. Al inhibir la producci&oacute;n de NO con L-NAME se estar&iacute;a bloqueando el  efecto inhibitorio del NO sobre la actividad neuronal, con el consecuente  aumento de actividad neuronal producido por el NaCN. La actividad neuronal, por  si misma, provocar&iacute;a un aumento de la captaci&oacute;n de glucosa por cerebro por  aumento del metabolismo. En este trabajo, se encuentra un efecto a los a los 4min  despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n de L-NAME, probablemente debido a que se utiliz&oacute; una  v&iacute;a m&aacute;s directa (CM). Los niveles de  gluc&oacute;geno en cerebro de ratas tratadas por v&iacute;a i.p. con L-NAME disminuyeron durante  la activaci&oacute;n funcional del metabolismo. <sup>23</sup>    <br>       <br>   Cuando se perfundi&oacute; la CM con L-NAME, sin estimular los RCC no se  observaron cambios significativos en los par&aacute;metros estudiados en el  metabolismo de &nbsp;la glucosa. El L-NAME, al  ser un bloqueador de la sintetiza del &oacute;xido n&iacute;trico, inhibe los efectos del NO  sobre los niveles de glucosa en SNC.    <br>       <br>   En base a estos resultados se confirm&oacute; la hip&oacute;tesis  de que el NO es un mediador en la respuesta hiperglucemiante y en el aumento de  la captaci&oacute;n de glucosa por el&nbsp; cerebro  despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n de los RCC con NaCN. Todos los componentes  del sistema renina-angiotensina y prostanoides est&aacute;n presentes en el cerebro y  hay evidencias de que el NO interact&uacute;a con ellos para modificar la acci&oacute;n de la  angiotensina II en el sistema neurohormonal (sistema nerviosos aut&oacute;nomo y AVP).  <sup>24</sup>    <br>       <br>   En este trabajo se encontr&oacute; que la NG en la CM, por s&iacute; sola elev&oacute; los  niveles de glucosa en sangre arterial y venosa aumentando la retenci&oacute;n de  glucosa encef&aacute;lica. Sin embargo, la administraci&oacute;n de NG acompa&ntilde;ada de  estimulaci&oacute;n de los RCC, no produjo cambios en la glucemia. Estos  resultados indicaron que la NG  bloquea los efectos hiperglucemiantes y de aumento en la retenci&oacute;n de glucosa  por cerebro producidos por la inyecci&oacute;n de NaCN en el seno carot&iacute;deo en ratas Por otra parte, el L-NAME en la CM, sin estimulaci&oacute;n de los RCC  no provoc&oacute; cambios significativos en los niveles de glucosa en plasma, ni en la  retenci&oacute;n de glucosa encef&aacute;lica. Mientras que, el L-NAME acompa&ntilde;ada de  estimulaci&oacute;n de los RCC con NaCN, provoc&oacute; hiperglucemia arterial y venosa con  retenci&oacute;n de glucosa por el cerebro.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   El efecto de la NG en la   CM aument&oacute; la retenci&oacute;n de glucosa por cerebro se explica  porque el NO aumenta el n&uacute;mero de transportadores a la glucosa en cerebro. Este  mecanismo se corrobora por estos mismos autores al encontrar que el NO induce  la expresi&oacute;n del transportadores a la glucosa GLUT <sup>1, 3, 4 </sup>. Esto explicar&iacute;a, as&iacute;  mismo, el efecto neuroprotector del NO en condiciones de hipoglucemia por isquemia  cerebral. <sup>25</sup> Sin embargo, la NG en CM con la estimulaci&oacute;n de  los RCC no produjo aumento en la retenci&oacute;n de glucosa por cerebro, debido a que  el NO antagoniza este efecto al actuar sobre los quimiorreceptores inhibiendo  la descarga quimiosensorial por su efecto vasodilatador. Por otro lado, el  efecto del L-NAME en la CM  disminuye la retenci&oacute;n de glucosa por el cerebro, esto se explica por la NOS y por consiguiente de la  s&iacute;ntesis de NO. Sin embargo, el L-NAME en CM con la estimulaci&oacute;n de los RCC  produjo un aumento en la retenci&oacute;n de glucosa por cerebro, debido a que la  inhibici&oacute;n del NO sinergiza el efecto hip&oacute;xico del cianuro por su acci&oacute;n  vasoconstrictora y por la inhibici&oacute;n del efecto inhibidor del NO.    <br>       <br> Estos resultados indican que el NO constituye un  importante neurotransmisor y regulador de la homeostasis de la glucosa, en  particular en el reflejo hiperglucemiante con retenci&oacute;n de glucosa por cerebro  despu&eacute;s de estimular los RSCC con NaCN.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Sokoloff L. Mapping local functional activity by  measurement of local cerebral glucose utilization in the central nervous system  of animals and man. New York.  TheHarvey Lectures; 1994.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Sokoloff L. Measurement of local cerebral glucose  utilization and its relation to local functional activity in the brain. En: Vranic  M, editor. Fuel Homeostasis and the  Nervous System. New York: Plenum Press; 1991. p. 21-42.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. Kety SS,  Polis BD, Nadler CS, Schmidt CF. Blood flow and oxygen consumption of the human  brain in diabetic acidosis. Journal of Clinical Investigation. 1948;27:500-10.     </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Prabhakar NR, Kumar GK, Chang CH, Agani FH, Haxhiu  MA. Nitric oxide in the sensory function of the carotid body. Brain Research.  1993;625:16-22.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Chugh DK,  Katayama M, Mokashi A, Debout DE, Ray DK, Lahiri S. Nitric oxide-related  inhibition of carotid chemosensory activity in the cat. Respiratory Physiology. 1994;97:147-52.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Trzebski A, Sato  Y, Susuki A, Sato A. Inhibition of nitric oxide synthesis potentates the  responsiveness of carotid chemoreceptor to systemic hypoxia in the rat.  Neuroscience Letters. 1995;190:29-33.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Grimes PA, Lahiri S, Stone  R, Mokashi A, Chug D. Nitric oxide syntheses occurs in eurons and nerve fibers  of the carotid body Advances. Neuroscience. 1994;61:286-93.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Wang ZZ, Stensaas LJ, Bredt DS, Dinger BG, Fidone SJ. Localization and actions of nitric oxide in the cat  carotid body. Neuroscience. 1994;60:275-86.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Prabhakar NR. NO  and CO as second messengers in oxygen sensing in the carotid body. Respitory  Physiology. 1999;115:161-68.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. &Aacute;lvarez Buylla R, &Aacute;lvarez Buylla E. Carotid sinus receptors participate in glucose  homeostasis. Respiratory Physiology. 1998;72:347-60.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. Hudson LC, Hughes CS, Bold Fletcher NO, Vaden  SL. Cerebrospinal fluid collection in rats: modification of a previous  technique. Laboratory Animal Science. 1994;44:358-61.     </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. Cochran WG, Cox GM. Experimental Designs in Staticsties. USA: Wiley Public; 1962.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. Álvarez-Buylla R, Álvarez Buylla E. Carotid sinus receptors participate in glucose homeostasis. En: Eyzaguirre SJ, Fidone RS, Fitzgerald S, Lahiri DM, McDonald O. Arterial chemoreception. New York: Springer-Verlag; 1990. p. 330-36.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. Acker H. Oxygen sensing in the carotid body: ideas and models. Advances  in experimental. Medicine and Biology. 1994;360:21-7.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. Prabhakar NR. NO  and CO as second messengers in oxygen sensing in the carotid body. Respitory  Physiology. 1999;115:161-8.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. Bingham EM,  Hopkins D, Smith D, Pernet A, Hallett W, Reed L, Marsden PK, Amiel SA. The role  of insulin in human brain glucose metabolism: an 18-fluoro-deoxyglucose  positron emission tomography study. Diabetes. 2002;51:3384-89.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. Seaquiest IE, Damberg I, Tkac R. Gruetter GS. The  effect of insulin on in vivo cerebral glucose concentration and rates of  glucose/metabolism in humans. Diabetes. 2001;50:2203-09.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. &Aacute;lvarez-Buylla R,  Huberman A, Montero S, Lemus M, Valles V, Roces de &Aacute;lvarez-Buylla E. Induction  of brain glucose uptake by a factor secreted into cerebrospinal fluid. Brain  Research. 2003;994:124-33.     </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. Rodrigo J, Fern&aacute;ndez AP,  Alonso D, Serrano J, Fern&aacute;ndez Vizarra P, Martinez Murillo R, et al. Nitric  oxide in the rat cerebellum after hypoxia/ischemia. Journal of Nuclear Medicine.  2005;46:365-70.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20. Yamaguchi K, Hama  HA. Study on the mechanism by which sodium nitroprusside, a nitric oxide donor,  applied to the anteroventral third ventricular region provokes facilitation of  vasopressin secretion in conscious rats. Brain Research. 2003;968:35-43.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21. Almeida A, Cidad P, Bolanos JP. Nitric oxide  accounts for an increased glycolytic rate in activated astrocytes through a  glycogenolysis-independent mechanism. Brain Research. 2002;945:131-4.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22 Clementi E, Brown GC, Foxwell N, Moncada S. On the  mechanism by which vascular endothelial cells regulate their oxygen consumption.  Proceedings of the National Academy of  Sciences (USA). 1999;96:1559-62.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23. Cruz N, Dienel G. High glycogen levels in brains of rats with minimal environmental  stimuli: Implications for metabolic contributions of working astrocytes.  Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 2002;22:1476-89.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">24. Kadekaro M, Terrell ML, Liu H, Bui V, Summy-Long  JY. Indomethacin prevents the L-NAME-induced increase in plasma levels of  oxytocin in dehydrated rats. Brain Research. 2000;877:371-3.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">25. Cidad P, Garcia-Nogales P, Almeida A. Expression of glucose transporter GLUT3 by endotoxin  in cultured rat astrocytes: the role of nitric oxide. Journal of Neurochemistry.  2001;79:17-24.    </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: 7 de  diciembre de 2005.    <br>   Aceptado: 16 de  enero de 2006.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Dr. Jos&eacute; Luis  Cadenas Freixas. </i>Especialista de II Grado en Ciencias Fisiol&oacute;gicas.  Profesor Asistente.</font></p>      ]]></body><back>
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