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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Evaluation in animals of the protective effect of an anti Pseudomonas aeruginosa immunoglobulin for therapeutic use Abstract Pseudomonas aeruginosa constitutes one of the opportunistic pathogenic agents with higher frequency of isolation in the different infectious processes; so it is recognized as a great health problem worldwide. As neither a high-effective medicine nor available vaccines exist against this bacterium, a therapy with commercial polyvalent immunoglobulins is used which combined with antibiotics help to eliminate the infection, although preparations available at the market do not contain concentrations of specific antibodies sufficiently high against a certain microorganism. In this work, evaluation of an anti Pseudomonas aeruginosa immunoglobulin for therapeutic use was carried out in an animal model by a challenge assay with a virulent strain. Dose and administration route as well as the prophylactic or therapeutic value of the antibodies were evaluated. This gammaglobulin turned out to be protective in animals showing a survival of about 75%% compared to the non- protected control group. The carrier state can be also eliminated in infected individuals]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div class=Section1>        <p align=center style='text-align:center; '><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:16.0pt;'>Evaluación en animales del efecto protector      de una inmunoglobulina anti <i>Pseudomonas aeruginosa</i> para uso terapéutico</span></b></font></p>       <p align=center style=' text-align:center;line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Bárbara Cedré, Mildrey Fariñas, Adriana      Callicó, Aniel Moya, Dayana Díaz, Elina Parajón, Yolanda Valdés, Sergio Sifontes,      Juan Francisco Infante, Luis Izquierdo, Luis García, Arturo Talavera, Sara      C. Esnard, Rosa L. Solís.</span></font></p>       <p align=center style='text-align:center; line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Instituto      Finlay. Centro de Investigación -Producción de Vacunas. Ave. 27 No.19805.      <st1:PersonName ProductID="La Lisa. A.P." w:st="on">La Lisa. A.P. 1601  C.P.      11600, Ciudad de <st1:PersonName ProductID="La Habana" w:st="on">La Habana, Cuba<b>. </b>E</span><span lang=IT style='font-size:9.0pt;'>-mail: </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'><a href="mailto:bcedre@finlay.edu.cu"><span lang=IT>bcedre@finlay.edu.cu</span></a></span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height:11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><i><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt; '>Pseudomonas aeruginosa</span></i><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'> constituye uno de los agentes patógenos oportunistas      de mayor frecuencia de aislamiento en los diversos procesos infecciosos, por      lo que es reconocido como un gran problema de salud a nivel mundial. Al no      existir un fármaco de alta efectividad ni vacunas disponibles contra esta      bacteria, se emplea una terapia con inmunoglobulinas polivalentes comerciales      que de forma combinada con los antibióticos contribuyen a eliminar la infección,      aunque los preparados disponibles en el mercado no contienen  concentraciones      suficientemente elevadas de anticuerpos específicos contra este microorganismo.      En este trabajo se llevó a cabo la evaluación en un modelo animal de una inmunoglobulina      anti- <i>Pseudomonas<b> </b>aeruginosa</i> para uso terapéutico mediante un      ensayo de reto con una cepa virulenta. Se evaluó dosis y vía de administración      de la misma, así como el valor profiláctico o terapéutico de los anticuerpos.      Esta gammaglobulina resultó ser protectora en animales mostrando una sobreviviencia      cercana a un 75</span><span lang=ES-TRAD style='font-size: 9.0pt;font-family:Symbol;Times New Roman&quot;;Times New Roman&quot;;'>%</span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'> en comparación con el grupo control no      protegido y además se logra eliminar el estado de portador en los individuos      infectados.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height:11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt; '>Palabras clave:</span></b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'> Inmunoglobulina anti-<i>Pseudomonas</i>, protección,      modelo animal.</span></font></p> </div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      <div class=Section2>        <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:11.0pt'>Introducción</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><i><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Pseudomonas aeruginosa</span></i><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>      es un microorganismo gramnegativo que constituye uno de los agentes patógenos      oportunistas de mayor frecuencia de aislamiento en los diversos procesos infecciosos,      por lo que es reconocido como un gran problema de salud a nivel mundial (1,      2). Es considerada una de las de más amplia distribución en la naturaleza      junto a <i>Escherichia coli, Staphylococus aureus y Klebsiella pneumoniae      </i>(3,4).<b> </b>La infección por <i>P. aeruginosa </i>requiere en la mayoría      de los casos de una disminución de la inmunidad del hospedero, y de ahí que      la respuesta ante la infección bacteriana sea muy débil (5).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><i><span style='font-size:9.0pt'>P. aeruginosa</span></i><span style='font-size:9.0pt'>      es un patógeno oportunista que causa infecciones del tracto urinario, infecciones      en el sistema respiratorio, dermatitis, bacteremia y una variedad de infecciones      sistémicas, particularmente en pacientes con quemaduras severas, con cáncer      y pacientes con SIDA que se encuentran inmunocomprometidos. Existe un grupo      poblacional especialmente vulnerable a las infecciones por <i>P. aeruginosa</i>      constituido por los enfermos de fibrosis quística en la que esta bacteria      es la responsable de la muerte prematura de estos pacientes (6,7). </span></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>En      nuestro país esta bacteria se ha mantenido entre los tres primeros lugares      como causa de sepsis en los diferentes servicios hospitalarios de alto riesgo,      teniendo una elevada significación en la tasa de letalidad.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>El      empeño por lograr  terapias  alternativas para combatir las infecciones producidas      por <i>P. aeruginosa</i>  ha ocupado a investigadores de todo el mundo desde      la segunda mitad del siglo pasado y se ha visto incentivado ante el creciente      desarrollo de resistencia de este microorganismo frente a antibióticos de      nueva generación. Actualmente, no existe una terapia completamente efectiva      con gammas hiperinmunes comerciales que de forma combinada con los antibióticos      contribuyen a eliminar la infección (8).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Con      este propósito se han preparado y evaluado en modelos animales varias vacunas      experimentales para la prevención de este microorganismo (9, 10, 11).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><i><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>P. aeruginosa</span></i><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'> es una bacteria resistente a una gran variedad      de agentes físicos y químicos, lo cual influye en la alta frecuencia de aislamiento      observada y en que sea considerado un patógeno nosocomial primario. </span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Al      no existir un fármaco de alta efectividad, ni vacunas disponibles contra este      patógeno, se mantiene una terapia con inmunoglobulinas polivalentes comerciales      que de forma combinada con los antibióticos contribuyen a eliminar la infección,      aunque los preparados disponibles en el mercado no contienen  concentraciones      suficientemente elevadas de anticuerpos específicos contra un microorganismo      determinado (12).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>En      Cuba no existe ningún preparado de inmunoglobulina que sea específico contra      <i>P. aeruginosa</i> pero se ha usado el Intacglobin obteniéndose buenos resultados      en un alto porcentaje de los casos tratados (8). Por lo que sería de gran      utilidad contar en nuestro país con un preparado hiperinmune específico para      el control de las infecciones nosocomiales en los servicios de Caumatología,      Politraumatizados y Unidades de Cuidados Intensivos.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:11.0pt; '>Materiales y Métodos</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Obtención de la gammaglobulina</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Las      donaciones de plasma y suero de donantes sanos fueron suministradas por el      laboratorio de Control de <st1:PersonName ProductID="la Calidad" w:st="on">la      Calidad del Banco de Sangre de Marianao, luego de su liberación. Por ser <i>Pseudomonas      aeruginosa</i> un microorganismo ubicuo que se encuentra ampliamente diseminado      en la naturaleza, la mayoría de la población sana presenta títulos de anticuerpos      contra esta bacteria por haber estado en contacto con la misma sin que hayan      padecido la infección debido a que este microorganismo es un patógeno oportunista      que solo causa enfermedad en aquellos individuos con inmunidad deficiente.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Se      desarrolló para cada lote un procedimiento de fraccionamiento alcohólico modificado      por Cádiz en 1998 (8)<b> </b>y se determinó la concentración de proteínas      por la técnica de Lowry (13).</span></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Determinación de la concentración de IgG</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>A      los lotes obtenidos se les determinó el título de anticuerpos IgG mediante      un ELISA indirecto<b> </b>cualitativo<b> </b>(14)<b> </b>anti LPS de serotipo      O11 por constituir este serotipo el de mayor frecuencia de aislamiento entre      la población cubana (15).<b> </b></span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Se      recubrieron placas de poliestireno de 96 pozos (MaxiSorp, NUnc, Dinamarca)      con 100 </span><span style="font-family: Symbol; font-size: 9.0pt;">ml </span><span lang=ES-TRAD style='font-size: 9.0pt;'> de LPS O11 a una concentración de 2 </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol;Times New Roman&quot;;Times New Roman&quot;;'>m</span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>g/mL con incubación toda la noche a 4 <sup>o</sup>C.      Se añadió      100 </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol;Times New Roman&quot;; Times New Roman&quot;;'>m</span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>L de las muestras a evaluar, empleándose como control      positivo un suero de paciente convaleciente de una quemadura con aislamiento      del serotipo O11 y como control negativo un suero absorbido de anticuerpos      anti LPS.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Las      muestras cuya DO sea superior al valor de corte establecido para el ensayo      (0,29) se considerarán positivas (14).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Ensayo de protección en modelos animales</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>De      los lotes obtenidos se escogió el IV por ser el de mayor título para evaluar      la protección generada por la administración pasiva de estos anticuerpos en      animales.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Se      realizó un ensayo preliminar en ratones Balb/c adultos para determinar vía      y dosis de administración de la inmunoglobulina<b>,</b> así como el valor      profiláctico o terapéutico de la misma.</span></font></p>       <p class=MsoBodyText style=' line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-MX style='font-size:9.0pt; font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Los animales, suministrados </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Times New Roman&quot;;'>por      el Centro Nacional de Producción de Animales de Laboratorio (CENPALAB), con      sus correspondientes certificados de salud, f</span><span lang=ES-MX style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Times New Roman&quot;'>ueron      mantenidos antes y durante los ensayos, siguiendo las instrucciones que aparecen      en <st1:PersonName ProductID="la Gu&#65517;a" w:st="on">la <i>Guía</i><i>      para el cuidado y uso de animales de experimentación</i> (16). El protocolo      de experimento y las condiciones de los animales fueron sometidos a <st1:PersonName ProductID="la Comisi&#65523;n" w:st="on">la Comisión de Ética de  <st1:PersonName ProductID="la Direcci&#65523;n" w:st="on">la Dirección de Modelos Animales del Instituto Finlay. </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Times New Roman&quot;; '>Los animales se agruparon en cajas T3 en número de 10.  Los grupos I y II recibieron      10 mg de IgG por vía intraperitoneal e intravenosa respectivamente, seguido      2 h después de un reto con 25DL50% de la cepa clínica 5FQ aislada de un paciente      fibroquístico, perteneciente al serotipo O9. Los grupos III y IV se usaron      para evaluar el efecto terapéutico de la gamma, aplicando primero el reto      y luego <st1:PersonName ProductID="la IgG" w:st="on">la IgG, en el primer caso se aplicaron dos dosis,      30 min y dos h después de la infección experimental y en el segundo caso una      dosis única 2 h posteriores al reto. El grupo V funcionó como control y solo      recibió la cepa de reto. El reto en todos los casos se administró por vía      intraperitoneal mezclado con 0,4 mL de mucina gástrica de cerda al 8% como      factor estimulante de la virulencia.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Se      realizó un segundo ensayo donde la vía de inoculación empleada fue la endovenosa      y la dosis de reto fue de 400 DL50%. Los animales se agruparon en número de      30. En este ensayo se utilizó el Intacglobin como punto de referencia y un      grupo control no inmunizado. </span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>También      se llevó a cabo otro experimento para determinar si <st1:PersonName ProductID="la IgG" w:st="on">la IgG anti-<i>Pseudomonas</i> era capaz de eliminar      el estado de portador en los animales infectados mediante el aislamiento de      bacterias en hemocultivo. Para esto los animales se infectaron con una dosis      subletal de la cepa virulenta 5FQ y se extrajo sangre del plexo retrorbital      a partir de las 4 h y hasta las 72 h de aplicado el reto.</span></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Los      tubos de hemocultivo se incubaron de 24-48 h a 37 <sup>o</sup>C y luego se      sembró 100 </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol; Times New Roman&quot;;Times New Roman&quot;; '>m</span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>L en placas de agar Cetrimide que es un      medio de diferenciación de <i>P. aeruginosa</i> por la producción de pigmentos.      Se asignaron valores arbitrarios de 0 para la negatividad y 1 para la positividad.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:11.0pt;'>Resultados y Discusión</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Obtención de la gammaglobulina</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>En      <st1:PersonName ProductID="la Tabla" w:st="on">la Tabla 1 se muestran los      resultados del fraccionamiento alcohólico de cada lote obtenido.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Tabla 1. Resultados del fraccionamiento alcohólico</span></b></font></p>   <font size="2" face="Tahoma"><img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0103107.jpg" width="323" height="142">    </font><font face="Tahoma">        
<p style=' text-align:justify;line-height:12.0pt'><font size="2"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Los lotes I-IV fueron obtenidos a partir de plasma sanguíneo      y los lotes V-VIII  a partir de suero completo. De los 8 lotes obtenidos,      el II, III, IV, VIII presentaron los valores más altos de concentración de      proteínas totales como se puede apreciar en Tabla 1. </span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Los títulos      de anticuerpos específicos anti-LPS de <i>P. aeruginosa</i> se muestran en      <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura 1.</span></font></p>   </font></div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto; '> </font>      <div class=Section3>        <p style=' text-align:justify;line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma">&nbsp; <img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0203107.jpg" width="366" height="233"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>&nbsp;</span></font></p>       
<p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"> Figura 1. Títulos de anticuerpos IgG anti LPS O11 de P. aeruginosa      determinado por ELISA. </font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify;line-height:11.0pt'><font size="2" face="Tahoma">En el caso de los lotes II y VIII existe      una correspondencia entre los valores de proteínas totales y el título de      IgG., estos junto con el lote IV mostraron los títulos más altos de anticuerpos,      lo que sirvió de criterio de selección para su evaluación en modelos animales<b>.      </b>De estos se escogió el lote IV para los primeros estudios por contar con      mayor volumen que nos permitiera reproducir los experimentos.</font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>Ensayo de protección en modelos animales</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'>En      las Figura 2 se muestran los resultados del ensayo preliminar realizado para      establecer los parámetros definitivos del experimento, tales como discernir      cual era la vía de administración más ventajosa y cuantas dosis eran necesarias      para lograr  protección y en <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura 3 se plasman los niveles de protección      mostrados por los anticuerpos IgG anti-LPS de <i>Pseudomonas,</i> administrados      de manera pasiva por vía endovenosa a los ratones. La vía de administración      de <st1:PersonName ProductID="la IgG" w:st="on">la IgG no mostró diferencias significativas, ambas      confirieron un elevado nivel de protección frente al reto. Lo mismo ocurrió      cuando se aplicó una o dos dosis de inmunoglobulina, los niveles de protección      fueron elevados comparados con el control no protegido donde murieron más      de la mitad de los animales.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0303107.jpg" width="405" height="225">      <span style='font-size:9.0pt'> &nbsp;</span></font></p>   <table cellpadding=0 cellspacing=0 align=left>     <tr>        <td width=0 height=8 class="Normal"></td>     </tr>     <tr>        <td class="Normal"></td>       <td class="Normal"><font size="2" face="Tahoma"><img width=429 height=267 src="/img/revistas/vac/v16n1/f0403107.jpg" v:shapes="_x0000_s1035 _x0000_s1047 _x0000_s1049"></font></td>     </tr>   </table>   <font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>&nbsp;</span>        
<p></p>   </font>    <table cellpadding=0 cellspacing=0 align=left>     <tr>        <td width=0 height=6 class="Normal"></td>     </tr>     <tr>        <td class="Normal"></td>       <td class="Normal">&nbsp;</td>     </tr>   </table>   <font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt;'>&nbsp;</span>        <p></p>   </font>        <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt;'>&nbsp;<img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0503107.jpg" width="429" height="267"></span></font></p>   <font size="2" face="Tahoma"><br clear=ALL>   </font>        
<p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt;'>IgG anti <i>Pseudomonas</i>      y el Intacglobin se aprecia que no existen diferencias en cuanto al grado      de protección conferidos por ellos. El Intacglobin es un preparado </span><span style='font-size:9.0pt'>de      inmunoglobulinas inespecífico, con el que se han obtenido resultados positivos      en las unidades de cuidados intensivos fundamentalmente en pacientes con sepsis      grave por <i>P. aeruginosa</i> (17).</span> </font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt;'>Como es de      notar la dosis de reto en el segundo ensayo fue 16 veces superior a la aplicada      en el primer ensayo. </span><span style='font-size:9.0pt;color:black'>La suspensión      celular de la cepa 5FQ para el reto de los animales se prepara a partir de      un cultivo hasta la fase exponencial del crecimiento, se centrifuga, se elimina      el medio de cultivo y la biomasa se restituye en una solución salina. A esta      suspensión se le realizan diluciones seriadas para hacer conteo de viables      en placa con incubación por 24 h. Al cabo de este tiempo es que se conoce      la cantidad exacta de células que se inoculó en el experimento el día anterior.      Generalmente, el conteo bajo las mismas condiciones da en un mismo orden logarítmico      que es como ocurre el crecimiento bacteriano, pero el número de células totales      no es exactamente igual, de ahí la variación en el número de células que se      administran en el ensayo de reto, </span><span style='font-size: 9.0pt;'>aunque esta diferencia no es en ningún modo significativa.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>La aplicación      tanto de 5 como de 10 mg de IgG por vía endovenosa logra impedir la colonización      o diseminación de la bacteria por el torrente sanguíneo, como se observa en      <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura 4.  A las    4 h, después de haber inoculado      por vía intraperitoneal una cepa viva virulenta de <i>Pseudomonas</i>, no      se observó bacteremia en un periodo de tres días. Sin embargo, cuando se produce      la infección y después se aplica la inmunoglobulina de manera terapéutica,      se encontró bacterias en sangre desde las 4 hasta las 12 h, pero se demostró      su total eliminación a las 24 h de ocurrida la infección, lo que muestra el      valor de la gamma obtenida tanto en el tratamiento profiláctico como para      erradicar la infección una vez instaurada. Para el reto se seleccionó una      cepa clínica que mostró ser altamente virulenta con valores de DL 50% de 1,5x10<sup>2      </sup>ufc. Esta cepa pertenece a un serotipo diferente al de la cepa de donde      se obtuvo el LPS que sirvió para seleccionar los plasmas con altos títulos      de anticuerpos. La cepa 5FQ pertenece al serotipo O9, pero al mismo serogrupo      que la cepa O11, por lo que comparten determinantes antigénicos, lo que cual      le confiere una alta reactividad cruzada.</span></font></p> </div> <font size="2" face="Tahoma"><b><i><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </i></b> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div class=Section4>        <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Las preparaciones      de inmunoglobulinas intravenosa generalmente se realizan a partir de plasmas      con alto título de anticuerpos, los cuales se obtienen por inmunización activa      de individuos sanos con antígenos relevantes de la bacteria o por la recolección      de sueros de personas que hayan sido infectadas (12). Las inmunoglobulinas      comerciales contienen generalmente anticuerpos contra un grupo de patógenos      comúnmente observados en una población donante dada, entre ellos                    <i>P. aeruginosa </i>(8). Los resultados obtenidos con el Intacglobin permitió      pensar en la posibilidad de obtener una concentración significativamente mayor      de anticuerpos contra <i>P. aeruginosa</i>, lo que permitiría disminuir las      cantidades de anticuerpos administrados.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>La inmunoglobulina      obtenida mostró una alta protección en modelos animales tanto cuando se aplica      para prevenir la infección o una vez instaurada. Así mismo logra eliminar      el estado de portador en individuos infectados, pero sería de gran utilidad      contar en nuestro país con un preparado hiperinmune específico para el control      de las infecciones nosocomiales, lo cual podría lograrse una vez obtenida      una vacuna contra <i>P.</i> <i>aeruginosa</i> con lo cual aumentarían considerablemente      los títulos específicos contra este patógeno en los individuos vacunados.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt;color:black'>Por      último, se debe tener en consideración que cada lote de Intacglobin está integrado      por más de 1000 donaciones de sangre, lo cual es una muestra poblacional grande      que da un título medio de la población en el momento en que se realiza el      ensayo y la calidad del lote empleado, por lo que sería interesante comparar      varios lotes de Intacglobin; aunque consideramos por nuestra experiencia que      la mayoría mostrará resultados similares a los de este ensayo, que con una      mejor </span><span style='font-size:9.0pt'>selección de plasma dará resultados positivos, por lo      que <span style='color:black'>en estos momentos nos encontramos trabajando      en colectar y  titular un número superior de plasmas y usar como recubrimiento      células enteras y proteínas de membrana externa que al ser estructuras expuestas      en la bacteria y muy inmunogénicas nos permitirá obtener plasmas con títulos      elevados de anticuerpos específicos.</span></span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:11.0pt'>Referencias</span></b></font></p>       <!-- ref --><p style='text-align:justify;'><font size="2" face="Tahoma"> &nbsp;1. Jones      AM, Webb AK. Recent advances in cross-infection in cystic fibrosis: Burkholderia      cepacia complex, Pseudomonas aeruginosa, MRSA, and Pandorae spp. J R Soc Med.      96 Suppl 2003; 43:66-72.</font><!-- ref --><p> <font size="2" face="Tahoma">2. Ajayi T, Allmond LR, Sawa T, Wiener-Kronish JP. Single      Nucleotide Polymorphism Mapping of the Pseudomonas aeruginosa type III Secretion      Toxins for Development of a Diagnostic Multiplex PCR System. J Clin Microbiol      2003; 41(8):3526-31. </font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 3. Adewoye LO, Worobec EA. Identification and characterizationof      the gltK gene encoding a membrane associated glucose transport protein of      Pseudomonas aeruginosa. Gene 2002;53:323-330.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 4. Lesman-Movshovich E, Gilboa Garber N. Pseudomonas aeruginosa      lectin PA IIL as a powerful probe for human and bovin milk analysis. J Dairy      Sci 2003;86(7):2276-82.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 5. Rashid MH, Rumbaugh K, Passador L, Davies DG, Hamood AN,      Iglewski BH, KOmberg A. Polyphosphate kinase is essential for biofilm development,      quorum sensing and virulence of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci      USA 2002; 97(17):9636-9641.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 6. Smith EE, Buckely DG, Wu Z, Saenphimmachak C, Hoffman      LR, D’Argenio DA, Miller SI, Ramsey BW, Speert DP, Moskowitz SM, Burnns JL,      Kaul R, Olson MV. Genetic adaptation by Pseudomonas aeruginosa to the airways      of cystic fribrosis patients. Proc Natl Acad Sci USA 2006;103(22):8487-8492.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 7. Finnan S, Morrisey JP, O’Gara F, Boydd EF. Genome diversity      of Pseudomonas aeruginosa isolates from cystic fibrosis patients and the hospital      environment. J. Clin Microbiol 2004; 42(12):5783-5792.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 8. C&aacute;diz A., Hern&aacute;ndez J., Joo L., Moya A.      Introducci&oacute;n al m&eacute;todo de fraccionamiento alcoh&oacute;lico      empleado en Cuba para la producci&oacute;n de inmunoglobulinas de uso intravenoso.      Vaccimonitor 1998; (7)5:2-7</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 9. Tanweer S, Priebe G, Pier G. A live attenuated Pseudomonas      aeruginosa vaccine elicits outer membrana proteins specific active and passive      protection against corneal infection. Infect Immun 2006;74:975.983.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 10. Cripps A, Peek K, Dunkley M, Vento K, Marjasov J, McIntyre      M, Sizer P. Safety and Immunogenicity of an oral inactivated whole cell Pseudomonas      aeruginosa vaccine administered to healthy human subject. Infect Immun 2006;74:968-974.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 11. Hertle R, Mrsny R, Fitzgerald D. Dual-Function vaccine      for Pseudomonas aeruginosa: characterization of chimerci Exotoxin A-Pilin      Proteins. Infect Immun 2001; 69:6962-6969.</font><p><font size="2" face="Tahoma"> 12. Moya A, Joo L., Rodr&iacute;guez A., Hern&aacute;ndez      J., Hern&aacute;ndez J., Almerares JF., Berrios D., Rodr&iacute;guez Z., C&aacute;diz      A., Esnard SC. Preparado de inmunoglobulina contra LPS de P. aeruginosa serotipo      O11. Vaccimonitor 2002;11(1).</font></p>       <p><font size="2" face="Tahoma"> 13. Lowry, O.H. A protein measurement with the folin-phenol      reagent. Biol. Chem. 1951;193:265-275.</font></p>       <!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 14. Valmaseda T., Alba L., Ochoa R., Moya A., Pino Y. y Esnard      S.C. Determinaci&oacute;n de las condiciones de ensayo &oacute;ptimas en un      ELISA para la detecci&oacute;n de anticuerpos s&eacute;ricos IgG anti-LPS      de Pseudomonas aeruginosa O11. VacciMonitor 2004;13(3):18-25.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 15. Esnard, SC. Empleo de sueros diagn&oacute;sticos producidos      en la Rep&uacute;blica Popular China para la serotipificaci&oacute;n de Pseudomonas      aeruginosa. Rev. Cubana Farm. 1997;31(2):107-112.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 16. Olfert ED, Cross B.M. and McWilliam A.A Guide to the      care and use of experimental animals. Vol. 1. 2nd ed. Canadian Council on      Animal Care; 1993.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="Tahoma"> 17. Casta&ntilde;eda L., Castellano F., Castellano ME., C&aacute;diz      A. Utilizaci&oacute;n del Intacglobin en sepsis grave en una unidad de cuidados      intensivos. Rev. Cienc. Med. 1994;3(12).</font><p></p> </div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto; '> </font>      <div class=Section5>        <p style='text-align:justify;'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=EN-US>Evaluation      in animals of the protective effect of an anti <i>Pseudomonas aeruginosa</i>      immunoglobulin for therapeutic use</span></b></font></p>       <p style=' text-align:justify;line-height:11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt; '>Abstract</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><i><span lang=EN-US style='font-size:9.0pt;'>Pseudomonas aeruginosa</span></i><span lang=EN-US style='font-size:9.0pt;'>      constitutes one of the opportunistic pathogenic agents with higher frequency      of isolation in the different infectious processes; so it is recognized as      a great health problem worldwide. As neither a high-effective medicine nor      available vaccines exist against this bacterium, a therapy with commercial      polyvalent immunoglobulins is used which combined with antibiotics help to      eliminate the infection, although preparations available at the market do      not contain concentrations of specific antibodies sufficiently high against      a certain microorganism. In this work, evaluation of an anti <i>Pseudomonas<b>      </b>aeruginosa </i>immunoglobulin for therapeutic use was carried out in an      animal model by a challenge assay with a virulent strain. Dose and administration      route as well as the prophylactic or therapeutic value of the antibodies were      evaluated. This gammaglobulin turned out to be protective in animals showing      a survival of about 75&#61477;% compared to the non- protected control group.      The carrier state can be also eliminated in infected individuals.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 9.0pt;'><font size="2" face="Tahoma"><b><span lang=EN-GB style='font-size:9.0pt;'>Keywords</span></b><span lang=EN-GB style='font-size:9.0pt;'>: Anti-<i>Pseudomonas</i> Immunoglobulin,      protection, animal model.</span></font></p>       <p class=MsoBodyText3 align=right style='text-align:right'><font size="2" face="Tahoma">Recibido: Diciembre de 2007    Aprobado: Abril  de 2007</font></p> </div>      ]]></body><back>
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