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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Conjugate vaccines consisting of bacterial polysaccharides linked through a covalent bond to a carrier protein have a major impact on childhood immunization schemes which have dramatically decrease the incidence of bacterial infections. In the case of Streptococcus pneumoniae more than 90 serotypes have been reported, based on the structure of the polysaccharide capsules and at least 23 of them have demonstrated clinical importance. A limited number of 7 or more recently 10 and 13 are included in licensed conjugate vaccines. On the other hand, the increasing need for these vaccines worldwide requires the incorporation of new manufacturers who are facing highly complex technology since the entire conjugation process can not affect the structural features for which the polysaccharide is immunologically recognized. Our paper provides a conjugation procedure for the capsular polysaccharide of Streptococcus pneumoniae serotype 14. The process includes fragmentation, peryodic oxidation and subsequent conjugation to tetanus toxoid or diphtheria toxoid to the polysaccharide, each intermediate was characterized by physico-chemical methods. Yields higher than 50% were obtained in all reactions. The conjugates generated high titers of IgG specific antibodies and immunological memory. In conclusion, the procedure allows immunogenic conjugates of serotype 14.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ART&Iacute;CULO  ORIGINAL </b></font></p>    <p align="left">&nbsp;</p></div>    <p align="left"><strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Caracterizaci&oacute;n  de conjugados inmunog&eacute;nicos de polisac&aacute;rido capsular <i>Streptococcus  pneumoniae</i> serotipo 14</font></strong></p>    <p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Characterization  of capsular polysaccharide immunogenic conjugates from <i>Streptococcus pneumoniae</i>  serotype 14</font></strong></p>    <p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Janoi  Chang,<sup>1</sup>* Yohanna Serrano,<sup>1</sup> Raine Garrido,<sup>1</sup> Jessy  Pedroso,<sup>1</sup> Felix Cardoso,<sup>1</sup> Dagmar Garc&iacute;a,<sup>1</sup>  Domingo Gonz&aacute;lez,<sup>2</sup> Yanelis Herrera,<sup>2 </sup>Darielys Santana,<sup>1</sup>  Yury Vald&eacute;s,<sup>1</sup> Violeta Fern&aacute;ndez,<sup>1&#134;</sup> Vicente  V&eacute;rez<sup>1</sup></strong><sup></sup></font></p>    <p align="justify"> <font size="2" face="Verdana">1Centro  de Qu&iacute;mica Biomol&eacute;cular. Ave. 21 y 200. Atabey, Playa, La Habana,  Cuba.<br /> <sup>2</sup>Instituto Finlay. Centro de Investigaci&oacute;n-Producci&oacute;n  de Vacunas y Sueros. Ave. 27 # 19805 La Lisa. La Habana, Cuba. AP 16017 CP 11600.  <br /> <strong>email:</strong><a href="mailto:janoi.chang@cqb.cu">janoi.chang@cqb.cu</a></font>  <br /> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">* Licenciado  en Ciencias Farmac&eacute;uticas. Jefe del Dpto. de Glicoconjugaci&oacute;n </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">     <p align="justify"> <hr />     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong>RESUMEN</strong></font>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las  vacunas conjugadas que consisten en polisac&aacute;ridos bacterianos unidos a  trav&eacute;s de un enlace covalente a una prote&iacute;na portadora, han tenido  un gran impacto en los esquemas de vacunaci&oacute;n infantil, disminuyendo de  forma dram&aacute;tica la incidencia de infecciones bacterianas. En el caso de  <i>Streptococcus pneumoniae, </i>a pesar de que se han descrito m&aacute;s de  90 serotipos basados en la estructura de las c&aacute;psulas polisacar&iacute;dicas  y que al menos 23 tienen una importancia cl&iacute;nica demostrada, solo un n&uacute;mero  limitado de siete, o m&aacute;s recientemente 10 y 13, est&aacute;n incluidos  en las vacunas conjugadas licenciadas. Por otra parte, la necesidad creciente  de estas vacunas en el mundo requiere la incorporaci&oacute;n de nuevos productores  que se enfrentan a una elevada complejidad tecnol&oacute;gica, pues en todo el  procedimiento de conjugaci&oacute;n no se pueden afectar las caracter&iacute;sticas  estructurales por las que el polisac&aacute;rido es reconocido inmunol&oacute;gicamente.  Este trabajo implement&oacute; un procedimiento de conjugaci&oacute;n para el  polisac&aacute;rido de la c&aacute;psula de <i>Streptococcus pneumoniae</i> serotipo  14. El procedimiento comprendi&oacute; la fragmentaci&oacute;n, oxidaci&oacute;n  pery&oacute;dica y posterior conjugaci&oacute;n del polisac&aacute;rido a anatoxina  tet&aacute;nica o dift&eacute;rica. Cada intermedio fue caracterizado por m&eacute;todos  f&iacute;sico-qu&iacute;micos. En todas las reacciones se obtuvieron rendimientos  superiores al 50%. Los conjugados generaron altos t&iacute;tulos de anticuerpos  espec&iacute;ficos de tipo IgG y memoria inmunol&oacute;gica. Se concluy&oacute;  que el procedimiento permiti&oacute; la obtenci&oacute;n de conjugados inmunog&eacute;nicos  de serotipo 14. </font>    <br>     <p align="justify"><font size="2"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Palabras  clave:</font></b> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Streptococcus  pneumoniae, vacunas conjugadas, </i>inmunogenicidad. </font></font> <hr align="JUSTIFY" />      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Conjugate  vaccines consisting of bacterial polysaccharides linked through a covalent bond  to a carrier protein have a major impact on childhood immunization schemes which  have dramatically decrease the incidence of bacterial infections. In the case  of <i>Streptococcus pneumoniae</i> more than 90 serotypes have been reported,  based on the structure of the polysaccharide capsules and at least 23 of them  have demonstrated clinical importance. A limited number of 7 or more recently  10 and 13 are included in licensed conjugate vaccines. On the other hand, the  increasing need for these vaccines worldwide requires the incorporation of new  manufacturers who are facing highly complex technology since the entire conjugation  process can not affect the structural features for which the polysaccharide is  immunologically recognized. Our paper provides a conjugation procedure for the  capsular polysaccharide of <i>Streptococcus pneumoniae</i> serotype 14. The process  includes fragmentation, peryodic oxidation and subsequent conjugation to tetanus  toxoid or diphtheria toxoid to the polysaccharide, each intermediate was characterized  by physico-chemical methods. Yields higher than 50% were obtained in all reactions.  The conjugates generated high titers of IgG specific antibodies and immunological  memory. In conclusion, the procedure allows immunogenic conjugates of serotype  14. </font>     <p align="justify"><font size="2"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Key  words</font></b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">: <i>Streptococcus  pneumoniae</i>, conjugate vaccines, immunogenicity. </font></font> <hr />     <p align="justify">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">     <p align="justify">&nbsp;    <p align="justify">&nbsp;    <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las  vacunas conjugadas han significado un paso de avance con respecto a las vacunas  de polisac&aacute;ridos, pues gracias a un enlace covalente entre el polisac&aacute;rido  bacteriano y una prote&iacute;na portadora, las mismas logran inducir respuesta  protectora antipolisac&aacute;rido en la poblaci&oacute;n infantil y memoria inmunol&oacute;gica  (1). </font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  el dise&ntilde;o del m&eacute;todo para obtener una vacuna conjugada es importante  tener en cuenta un grupo de par&aacute;metros como la talla del polisac&aacute;rido,  la selecci&oacute;n de la prote&iacute;na portadora, el m&eacute;todo de conjugaci&oacute;n  y las propiedades del conjugado que influyen y en algunos casos determinan la  inmunogenicidad del producto. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  desarrollo de un procedimiento de conjugaci&oacute;n es complejo en la medida  en que debe decidirse una combinaci&oacute;n propia de cada uno de los elementos  anteriores. El rango en que estos par&aacute;metros pueden moverse es muy amplio.  Por ejemplo, en el caso de <i>Haemophilus influenzae</i> tipo b se puede utilizar  desde un polisac&aacute;rido de alto peso molecular hasta un oligosac&aacute;rido  obtenido por s&iacute;ntesis qu&iacute;mica (2, 3), cada uno con sus ventajas  y desventajas. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  el caso de las vacunas conjugadas contra <i>S. pneumoniae</i> la complejidad adicional  viene dada por la necesidad de incluir un n&uacute;mero elevado de serotipos en  la formulaci&oacute;n. De ah&iacute; la tendencia de los productores a simplificar  los procesos para la obtenci&oacute;n de cada uno de los conjugados. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  la actualidad existen tres vacunas conjugadas licenciadas contra <i>S. pneumoniae</i>  que incluye a los serotipos 1, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9V, 14, 18C, 19A, 19F y 23F.  Las mismas han disminuido la incidencia de la enfermedad en muchos pa&iacute;ses  que las han insertado en sus sistemas de vacunaci&oacute;n infantil (4-6), pero  la necesidad potencial de m&aacute;s de 300 millones de dosis anuales sigue ampliamente  insatisfecha. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para  suplir esa demanda, la UNICEF ha pedido la incorporaci&oacute;n de un mayor n&uacute;mero  de productores (7), por lo que en Cuba se est&aacute; trabajando desde hace a&ntilde;os  en un proyecto conjunto entre el Centro de Qu&iacute;mica Biomolecular y el Instituto  Finlay, para la obtenci&oacute;n de una vacuna conjugada polivalente contra <i>S.  pneumoniae</i>. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  el presente trabajo describimos el proceso de laboratorio para la obtenci&oacute;n  y caracterizaci&oacute;n de conjugados del serotipo 14 que servir&aacute; de base  al desarrollo del proceso industrial. </font></p>    <p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  polisac&aacute;rido capsular de <i>S. pneumoniae </i>serotipo 14 (PS-14), lote  806, y las prote&iacute;nas portadoras anatoxina tet&aacute;nica (TT), lote 6017,  y anatoxina dift&eacute;rica (DT), lote 6013, empleadas en la obtenci&oacute;n  de los conjugados, fueron suministradas por el Instituto Finlay, Centro de Investigaci&oacute;n-Producci&oacute;n  de Vacunas. Se utiliz&oacute; como material de referencia PS-14 purificado, proveniente  de ATCC. El suero est&aacute;ndar internacional de conejo espec&iacute;fico contra  <i>S. pneumoniae</i> serotipo 14 fue suministrado por Statens Serum Institute,  Copenhagen. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>T&eacute;cnicas  anal&iacute;ticas.</b> Los m&eacute;todos colorim&eacute;tricos empleados fueron:  determinaci&oacute;n de carbohidratos totales por orcinol-sulf&uacute;rico (8),  contenido de prote&iacute;na por Lowry (9), concentraci&oacute;n de grupos carbonilos  por el m&eacute;todo modificado de Park Jhonson (10). </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  an&aacute;lisis estructural del PS-14 se complement&oacute; por t&eacute;cnicas  de resonancia magn&eacute;tica nuclear (RMN). Las muestras se prepararon disolviendo  10 mg del producto en 0,6 mL de agua deuterada. Despu&eacute;s de la total disoluci&oacute;n  se liofilizaron y luego se disolvieron nuevamente en agua deuterada para el an&aacute;lisis.  </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  determinaci&oacute;n de la constante de distribuci&oacute;n de la talla molecular  (K<sub>D</sub>) se realiz&oacute; por cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n  molecular en una columna TSK 5000 PW con NaCl 0,9%, como fase m&oacute;vil y detecci&oacute;n  por &iacute;ndice de refracci&oacute;n para el polisac&aacute;rido capsular, fragmentado  y activado, o detecci&oacute;n ultravioleta (206 nm) para los conjugados. Los  datos y an&aacute;lisis se realizaron utilizando el software ClarityChrom. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Preparaci&oacute;n  y caracterizaci&oacute;n de los conjugados </strong></font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Fragmentaci&oacute;n  del PS-14 a tallas entre 30-10 kDa:</strong> Se disolvieron 10 mg de polisac&aacute;rido  en 2 mL de agua destilada. A esta disoluci&oacute;n se le adicion&oacute; la cantidad  de &aacute;cido trifluoroac&eacute;tico necesaria para alcanzar la concentraci&oacute;n  definida en el intervalo 250-25 mM. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  mezcla se mantuvo con agitaci&oacute;n a 70 <sup>o</sup>C entre 1,5_2,5 h. Transcurrido  este tiempo la reacci&oacute;n se neutraliz&oacute; utilizando una disoluci&oacute;n  de hidr&oacute;xido de sodio 0,1 M. Se purific&oacute; por membranas de celulosa  regenerada de 30 y 10 kDa de porosidad. Se ultrafiltr&oacute; contra agua destilada  hasta no detectar presencia de carbohidrato en el filtrado. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  eficiencia de la reacci&oacute;n se determin&oacute; de acuerdo con el contenido  de carbohidrato recobrado en la fracci&oacute;n entre 10 y 30 kDa. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Activaci&oacute;n  del polisac&aacute;rido capsular de serotipo 14 fragmentado (PS-14-frag)</b>.  Se disolvieron 10 mg del PS-14-frag del paso anterior en 2 mL de disoluci&oacute;n  tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,0 y se adicionaron 0,2 mL de disoluci&oacute;n  de </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">peryodato  de sodio (NaIO<sub>4</sub>) 20 mM. La reacci&oacute;n se mantuvo con agitaci&oacute;n  en ausencia de luz durante 2 h; luego se detuvo adicionando 0,01 mL de glicerol.  Posterior a una incubaci&oacute;n de 30 min la mezcla se purific&oacute; por ultrafiltraci&oacute;n,  utilizando membrana de 10 kDa como valor de corte, de forma similar a como se  describi&oacute;. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conjugaci&oacute;n  a prote&iacute;nas portadoras.</b> Se liofiliz&oacute; a sequedad una mezcla de  7,5 mg del fragmento oxidado (PS-14-ox) y 5 mg de prote&iacute;na portadora en  disoluci&oacute;n tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,0. Posteriormente se a&ntilde;adi&oacute;  una disoluci&oacute;n de cianoborohidruro de sodio de 10 mg/mL. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  reacci&oacute;n se mantuvo con agitaci&oacute;n a temperatura ambiente por 72  h. El conjugado resultante se purific&oacute; por ultrafiltraci&oacute;n, utilizando  una membrana de 100 kDa. El porcentaje de prote&iacute;na no conjugada se calcul&oacute;  por cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n molecular en una columna Superosa  12, con disoluci&oacute;n tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,0 como fase m&oacute;vil  a un flujo de 0,5 mL/min y utilizando un detector UV a una longitud de onda de  206 nm. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Inmunogenicidad  de los conjugados</b> </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  estos experimentos se utilizaron ratones hembras Balb/c de 5 a 6 semanas de edad  y conejos blancos Nueva Zelanda de 4 semanas de edad y de sexo femenino, proporcionados  por el Centro Nacional para la Producci&oacute;n de Animales de Laboratorio (CENPALAB),  adaptados durante 7 d&iacute;as a las condiciones del laboratorio. Los ratones  se colocaron en cajas de Macrolon (Panlab, Espa&ntilde;a), se mantuvieron con  humedad y temperatura controlada entre 22-24 &#186;C, con sistema de 12 h de luz  y 12 de oscuridad. En el caso de los conejos fueron mantenidos en un local abierto  en condiciones ambientales. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Todo  el trabajo estuvo sujeto al m&aacute;s estricto cumplimiento de las normas &eacute;ticas  en la experimentaci&oacute;n animal, regidas por gu&iacute;as &eacute;ticas para  la investigaci&oacute;n con animales de laboratorio. Los protocolos experimentales  fueron aprobados por el Comit&eacute; de &Eacute;tica y el Departamento de Calidad  del Centro de Qu&iacute;mica Biomolecular, de La Habana. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Grupos  de 10 ratones Balb/c y de 5 conejos blancos Nueva Zelanda se inmunizaron a los  0, 14 y 28 d&iacute;as por v&iacute;a subcut&aacute;nea y se tomaron muestras  de sangre 7 d&iacute;as despu&eacute;s de cada inmunizaci&oacute;n. Las dosis  (contenido de carbohidrato) fueron de 2 &#181;g y 5 &#181;g, respectivamente.  </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  uno y otro dise&ntilde;o se incluyeron como controles: un grupo inmunizado con  25 &#181;g de PS-14 y otro con suero fisiol&oacute;gico. Adem&aacute;s, los conejos  recibieron una dosis de refuerzo de 25 &#181;g de PS-14 a los 120 d&iacute;as  despu&eacute;s de la primera inmunizaci&oacute;n; luego se realiz&oacute; la extracci&oacute;n  seg&uacute;n fue descrito. Los sueros fueron separados por centrifugaci&oacute;n  y almacenados a -20 &#176;C para la titulaci&oacute;n del contenido de anticuerpos  (Ac) isotipo IgG antipolisac&aacute;rido serotipo 14. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>T&iacute;tulos  de Ac isotipo IgG contra el PS-14 mediante ELISA </b> </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  recubrieron placas de 96 pocillos de poliestireno (Maxisorp) con 50 &#181;L/pocillo  de una disoluci&oacute;n de PS-14 (10 &#181;g/mL) en disoluci&oacute;n tamp&oacute;n  fosfato salina pH 7 y se incubaron durante toda la noche a 37 &#186;C. Se bloque&oacute;  adicionando 100 &#181;L/pocillo de disoluci&oacute;n de alb&uacute;mina de suero  bovino al 1%. Despu&eacute;s de incubar a 37 &#186;C durante 30 min se adicionaron  diluciones seriadas 1/2 de los sueros comenzando por 1/100 en disoluci&oacute;n  tamponada fosfato salina pH 7,2 (BSA 1%; EDTA 0,01 M, Tween-20 0,3%) y se incub&oacute;  durante 90 min a temperatura ambiente. Luego se adicion&oacute; el correspondiente  anti-IgG conjugado a la enzima peroxidasa utilizando una diluci&oacute;n de trabajo  de 1:15 000 para ratones y 1:10 000 para conejo y se incub&oacute; durante 90  min a temperatura ambiente. Se adicion&oacute; 100 &#181;L/pocillo de orto-fenilendiamina  0,5 mg/mL en disoluci&oacute;n citrato (Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 52 mM y  &aacute;cido c&iacute;trico 25 mM, pH 5,6) y se mantuvo la placa en la oscuridad  durante 20 min. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  detuvo la reacci&oacute;n adicionando HCl 3 M, se ley&oacute; la densidad &oacute;ptica  (DO) a una longitud de onda de 492 nm en un lector de ELISA. Al final de cada  incubaci&oacute;n se realiz&oacute; el lavado de las placas con disoluci&oacute;n  tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,2, Tween 20 al 0,05%. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  c&aacute;lculo del t&iacute;tulo de Ac isotipo IgG se realiz&oacute; mediante  un an&aacute;lisis de regresi&oacute;n entre los valores de DO y el logaritmo  en base a 10 del rec&iacute;proco de la diluci&oacute;n del suero. Se consider&oacute;  como criterio de selecci&oacute;n de los animales respondedores un incremento  mayor del doble del valor de DO, con respecto al valor del preinmune (t=0). </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ELISA  de inhibici&oacute;n para especificidad </b> </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por  otro lado, se evalu&oacute; la especificidad de los Ac isotipo IgG generados por  los conjugados en los modelos animales. Los sueros obtenidos, luego de la tercera  dosis, se preincubaron durante toda la noche a 4 <sup>o</sup>C con concentraciones  conocidas de PS-14. El procedimiento se realiz&oacute; igual al descrito anteriormente.  Los resultados se muestran como porcentaje de inhibici&oacute;n, el cual se calcul&oacute;  seg&uacute;n la siguiente f&oacute;rmula: [DO (sin inhibidor)-DO (con inhibidor)]  /DO (sin inhibidor) X 100. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Antigenicidad  por m&eacute;todo ELISA </b> </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  suero est&aacute;ndar internacional contra el PS-14 (1:6400) se preincub&oacute;  con diferentes concentraciones del PS-14-frag y PS-14-ox en un rango de 500 &#181;g/mL  hasta 0,05 &#181;g/mL durante toda la noche, a 4 &#186;C. Luego en placas recubiertas  con PS-14 se desarroll&oacute; el ELISA. El procedimiento y los resultados se  realizaron como ya fue descrito. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  el caso de la evaluaci&oacute;n de la antigenicidad en los conjugados, las placas  se recubrieron con 50 &#181;L de los conjugados (PS-14-TT y PS-14-TD) en disoluci&oacute;n  tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,0, a una concentraci&oacute;n de 1 &#181;g/mL  y el PS-14 a 10 &#181;g/mL como control y se incubaron durante toda la noche a  37 &#186;C. El procedimiento continu&oacute; como se describi&oacute; para medir  el t&iacute;tulo de anticuerpos IgG anti PS-14, pero utilizando el suero est&aacute;ndar  internacional contra el PS-14 (1:6400). </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>An&aacute;lisis  estad&iacute;stico </b> </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las  diferencias en la respuesta de Ac isotipo IgG anti PS-14 entre los distintos grupos  experimentales fueron evaluadas utilizando la prueba de Kruskal Wallis y la prueba  de Dunn&#180;s. Las diferencias se consideraron significativas para p = 0,05.  El procesamiento estad&iacute;stico de los datos de todos los experimentos se  realiz&oacute; con el programa GraphPad Prism, versi&oacute;n 4.00. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Fragmentaci&oacute;n  del PS-14 </strong></font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  primer paso de nuestro trabajo consisti&oacute; en la confirmaci&oacute;n de la  identidad por RMN, utilizando como referencia un PS-14 (proveniente de una cepa  ATCC). En el espectro se identificaron las se&ntilde;ales correspondientes a los  cuatro protones anom&eacute;ricos de la unidad repetitiva (UR) en d 4,62 ppm,  d 4,46 ppm, d 4,35 ppm, d 4,19 ppm y la correspondiente al CH<sub>3</sub> del  grupo N-acetamido en d 1,94 ppm, coincidiendo con lo reportado por Lindberg y  col, 1977 (11). Este espectro sirvi&oacute; como referencia para evaluar la conservaci&oacute;n  de la estructura en las diferentes etapas de modificaci&oacute;n del PS-14. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  disminuci&oacute;n de la talla molecular de los polisac&aacute;ridos se utiliza  como estrategia para reducir los problemas de solubilidad de los polisac&aacute;ridos  de alto peso molecular y, adem&aacute;s, para facilitar la purificaci&oacute;n  del producto final durante el procedimiento de conjugaci&oacute;n (12, 13). Como  norma los productos finales para los cuales se emplea un fragmento del polisac&aacute;rido  son m&aacute;s definidos molecularmente (14). Entre los procesos de fragmentaci&oacute;n,  la hidr&oacute;lisis &aacute;cida es un m&eacute;todo muy empleado, pues tiene  como ventaja ser reproducible y barato. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  estudi&oacute; la hidr&oacute;lisis con &aacute;cido trifluoroac&eacute;tico y  se encontr&oacute; que 25 mM mostr&oacute; el mayor recobrado de carbohidrato  (95%) en la fracci&oacute;n 30-10 kDa (<a href="t1">Tabla 1</a>). Estas condiciones  se repitieron y mostraron consistencia, promediando un recobrado de 91% y similar  K<sub>D</sub> en todos los casos (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/t0204113.jpg">Tabla  2</a>). </font></p>    
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  espectro del producto PS-14-frag se caracteriz&oacute; por se&ntilde;ales con  mayor resoluci&oacute;n, lo cual es de esperar al reducirse la talla del PS-14.  Por otra parte, el espectro coincidi&oacute; con el del PS-14 de referencia y  se corrobor&oacute; que no hubo afectaci&oacute;n de la estructura de la UR (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0104113.jpg">Fig.  1 A, B </a>y<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0104113.jpg"> C</a>). Estos  fragmentos inhibieron al 100% un suero est&aacute;ndar internacional de conejo  contra PS-14, mostrando curvas de inhibici&oacute;n similares a la </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">obtenida  contra el PS-14, lo que confirma la conservaci&oacute;n de la antigenicidad del  PS (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0204113.jpg">Fig. 2</a>). La conclusi&oacute;n  de este an&aacute;lisis fue que los fragmentos obtenidos por este procedimiento  pueden utilizarse como ant&iacute;genos para obtener conjugados inmunog&eacute;nicos.  </font></p>    
<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/vac/v22n1/t0104113.jpg" width="245" height="55" /></font><a name="t1" id="t1"></a>      
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Oxidaci&oacute;n  del PS-14-frag con peryodato de sodio</b> </font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  oxidaci&oacute;n de PS-14-frag con NaIO<sub>4</sub> gener&oacute; entre 0,12-0,16  mol de carbonilo por mol de unidad repetitiva, con rendimientos de recobrado de  carbohidrato luego de la purificaci&oacute;n, superiores al 80% (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/t0304113.jpg">Tabla  3</a>). La K<sub>D</sub> determinada en columna TSK 5000 del PS-14-frag de partida  y el PS-14-ox fueron de 0,40 y 0,42, lo que indica que no hay una afectaci&oacute;n  significativa de la talla molecular. El sitio m&aacute;s probable a ser oxidado  con peryodato en la estructura de la UR de PS-14 es la ramificaci&oacute;n b-D-Gal,  seg&uacute;n lo reportado por Kim y col (15). Este sustituyente es esencial porque  forma parte del ep&iacute;tope del PS-14 (16), por lo que la oxidaci&oacute;n  debe ser controlada para no afectar la densidad de ep&iacute;topes. La conservaci&oacute;n  de la antigenicidad de los productos oxidados </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">a  trav&eacute;s de un ELISA de inhibici&oacute;n no mostr&oacute; diferencias entre  las curvas de inhibici&oacute;n obtenidas para el PS-14-ox, PS-14-frag y PS-14  (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0204113.jpg">Fig. 2</a>), lo que indica  que el PS-14-ox mantiene suficientes residuos laterales b-D-Gal intactos para  conservar su antigenicidad. </font></p>    
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conjugaci&oacute;n  de los PS-14-ox a las prote&iacute;nas TT y TD</b> </font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  reacci&oacute;n de conjugaci&oacute;n ocurre entre los grupos aldeh&iacute;dos  generados en el PS-14-ox y los grupos &aring; aminos de las lisinas presentes  en la prote&iacute;na. Los conjugados obtenidos, tanto a la anatoxina tet&aacute;nica  (PS-14-TT) como dift&eacute;rica (PS-14-DT), presentaron incorporaci&oacute;n  de carbohidrato de 73% para DT y 94% para TT, lo que resulta superior a los reportados  en la literatura (17) (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/t0404113.jpg">Tabla  4</a>). </font></p>    
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Esto  puede ser atribuido a la coliofilizaci&oacute;n de la mezcla PS-14-ox y la prote&iacute;na  que favorece la primera etapa de formaci&oacute;n de la imina (18) y a que los  grupos carbonilos generados en el residuo lateral b-D-Gal est&aacute;n menos impedidos  est&eacute;ricamente. </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los  conjugados mostraron perfiles con picos homog&eacute;neos en ambos casos, con  relaciones carbohidrato: prote&iacute;na y K<sub>D</sub> t&iacute;picas de los  conjugados (especies de mayor talla molecular) en correspondencia con la prote&iacute;na  empleada en cada caso <a href="/img/revistas/vac/v22n1/t0404113.jpg">(Tabla  4</a>). Adicionalmente, el por ciento de prote&iacute;na no enlazada fue menor  al 5% en ambos casos. </font></p>    
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por  otro lado, ambos conjugados son reconocidos por el suero est&aacute;ndar internacional  anti-PS-14 (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0304113.jpg">Fig 3</a>), lo  cual indica que el proceso de conjugaci&oacute;n no afect&oacute; la antigenicidad  del mismo. </font></p>    
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Respuesta  inmune en ratones y conejos</b> </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con  el objetivo de evaluar la capacidad de los conjugados de inducir anticuerpos espec&iacute;ficos  al PS-14 se inmunizaron ratones y conejos. Los t&iacute;tulos de IgG contra PS-14  en ratones Balb/c aument&oacute; significativamente luego de la segunda inmunizaci&oacute;n  (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0404113.jpg">Fig 4</a>) y se mantuvo hasta  la tercera dosis, con un 100% de animales respondedores. Adem&aacute;s, estos  t&iacute;tulos de IgG fueron superiores significativamente a los medidos </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">para  el grupo control inmunizado con PS-14. En el modelo de conejo, donde solo se evalu&oacute;  el conjugado PS-14-TT, se encontraron altos t&iacute;tulos de IgG contra el PS-14  desde la primera dosis, los cuales aumentaron con cada inmunizaci&oacute;n (p&lt;0,05).  Adem&aacute;s, los t&iacute;tulos de IgG siempre fueron superiores a los obtenidos  en el grupo control (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0504113.jpg">Fig.  5</a>). Los t&iacute;tulos de anticuerpos generados disminuyeron hasta alcanzar  los niveles del grupo control a los 4 meses (<a href="/img/revistas/vac/v22n1/f0504113.jpg">Fig.  5</a>). En ese momento se inmuniz&oacute; una dosis de PS-14 que hab&iacute;a  demostrado ser poco inmunog&eacute;nico, seg&uacute;n los resultados obtenidos  para el grupo control. </font></p>    
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  incremento sustancial de los t&iacute;tulos provocados con esta inmunizaci&oacute;n  con PS-14, sugieren la existencia de memoria </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">inmunol&oacute;gica  contra el PS-14 inducida por los conjugados. </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los  Ac isotipo IgG obtenidos, luego de la tercera dosis en ambos modelos, mostraron  ser espec&iacute;ficos por el PS-14 evaluado en un ELISA de inhibici&oacute;n  (<a href="f6">Fig. 6 A y B</a>). </font></p>    <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/vac/v22n1/f0604113.jpg" width="448" height="189" /></font><a name="f6" id="f6"></a></p>    
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como  conclusi&oacute;n, se puede afirmar que por este procedimiento es posible preparar  candidatos vacunales para <i>S. pneumoniae</i> serotipo 14, que tienen la capacidad  de generar una potente respuesta T-dependiente, la cual se caracteriza por Ac  isotipo IgG contra el PS-14 en ratones y conejos. Esta se corresponde con lo reportado  para otros conjugados carbohidrato-prote&iacute;na (19). Adem&aacute;s, nuestro  procedimiento puede servir como plataforma para la obtenci&oacute;n de otros candidatos  necesarios para la formulaci&oacute;n multivalente contra <i>Streptococcus pneumoniae</i>.  </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS</strong></font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1.  Greenberg DP, Vadheim CM, Partridge S, Chang SJ, Chiu CY, Ward JI. Immunogenicity  of <i>Haemophilus influenzae</i> Type b Tetanus Toxoid Conjugate Vaccine in Young  Infants. J Infect Dis 1994;170(1):76-81.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2.  Schneerson R, Barrera O, Sutton A, Robbins JB. Preparation, characterization,  and immunogenicity of <i>Haemophilus influenzae</i> type b polysaccharide-protein  conjugates. J Exp Med 1980;152(2):361-76.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3.  V&eacute;rez-Bencomo V, Fern&aacute;ndez-Santana V, Hardy E, Toledo ME, Rodr&iacute;guez  A, Baly A, et al. A synthetic conjugate polysaccharide vaccine against <i>Haemophilus  influenzae</i> type b. Science 2004;305:522_5.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4.  Garc&iacute;a S, Levine OS, Cherian T, Gabastou JM, Andrus J, Working Group members.  Pneumococcal disease and vaccination in the Americas: an agenda for accelerated  vaccine introduction. Rev Panam Salud P&uacute;blica 2006;19(5):340_8.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5.  Vestrheim DF, H&oslash;iby EA, Aaberge, Caugant DA. Impact of a Pneumococcal Conjugate  Vaccination Program on Carriage among Children in Norway. Clin. Vaccine Immunol  2010;17(3):325-34. </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6.  Kellner JD. Canadian Paediatric Society, Infectious Diseases and Immunization  Committee. Update on the success of the pneumococcal conjugate vaccine. Paediatr  Child Health 2011;16(4):233-6.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7.  WHO. Target Product Profile (TPP) for the Advance Market Commitment (AMC) for  Pneumococcal Conjugate Vaccines. Geneva: WHO; 2008.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8.  Bruckner J. Estimation of monosaccharides by the orcinol-sulfuric acid reaction.  Biochemical Journal 1995;60:200-5.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9.  Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. J Biol Chem 1951;193:265-75.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10.  Porro M, Vitti S, Antoni G, Neri P. Modifications of Park-Johnson ferricyanide  submicromethod for the assay of reducing groups in carbohydrates. Anal Biochem  1981;118:301-6.     </font></p>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11.  Lidenberg BJ, Lonngren D and Powell A. Structural studies on the specific type  14 pneumococcal polysaccharide. Carbohydr Res 1977;58:177-86. </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12.  Craig A, Ramesh K, Muys JM, Francis M, Harold J. Streptococcus pneumoniae Type  14 Polysaccharide-Conjugate Vaccines: Length Stabilization of Opsonophagocytic  Conformational Polysaccaride Epitopes. Infect Immu 1998;66:2441-6.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13.  Biemans RL, Garcon NM, Hermand PV, Poolman J, Van Mechelen MP. Pneumococcal polysaccharide  conjugates vaccine. Patent 12,097,303. 2009 june 15.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14.  Wang JY, Chang AH, Guttormsen HK, Rosas A, Kasper D. Construction of designer  glycoconjugate vaccines with size-specific oligosaccharide antigens and site-controlled  coupling. Vaccine 2003;21:1112-7.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15.  Kim JS, Laskowich ER, Michon F, Kaiser RE, Arumugham RG. Monitoring activation  sites on polysaccharides by GC_MS. Anal Biochem 2006;358(1):136-42.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16.  Safari D, Dekker HAT, Joosten JAF, Michalik D, Carvalho de Souza A, Adamo R, et  al. Identification of the Smallest Structure Capable of Evoking Opsonophagocytic  Antibodies against Streptococcus pneumonia Type 14. Infect Immun 2008;76:4615_23.      </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17.  Che-Hung RL, Frasch CE. Polysaccharide-Protein Conjugate Vaccine. US patent 10,  566,899. 2007 jun 21.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18.  Guo Z, Jennings H. Protein-Polysaccharide Conjugation. In: Pollard AJ, Maiden  MCJ, eds. Meningococcal Vaccines. Methods and Protocols. Totowa, NJ: Human Press  Inc; 2001. p. 49-54.     </font></p>    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19.  Moreno RL, Sampson JS, Romero-Steiner S, Wong B, Johnson SE, Ades E, et al. A  murine model for the study of immune memory in response to pneumococcal conjugate  vaccination. Vaccine 2004;22:3069-79.     </font></p>    <p align="justify">&nbsp;</p>    <p align="justify">&nbsp;</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido:  Agosto de 2012 <br /> Aceptado: Septiembre de 2012 </font><br /> </p>      ]]></body><back>
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