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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Obtención de un anticuerpo monoclonal murino que reconoce al polisacárido capsular Vi de Salmonella Typhi]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The conventional hybridoma technology has enabled the development of monoclonal antibodies (Mabs) against many antigens. Mabs have several applications in the field of basic research, diagnosis, immunotherapy and vaccine manufacturing processes. Mabs&#45;producing hybridomas against the capsular polysaccharide from <i&gt;Salmonella</i&gt; Typhi were obtained, after intraperitoneal immunization of BALB/c mice with 10 &micro;g of capsular polysaccharide Vi conjugated to diphtheria toxoid, and subsequent fusion of lymphocytes isolated of the spleen and myeloma cells SP2/O. A Mab was selected, partially characterized, and named as 4G3E11. The isotype of this Mab was IgG1. It was proved by means of a sandwich ELISA that the 4G3E11 Mab reacts with different concentrations of polysaccharide in samples of the vax&#45;TyVi&reg; vaccine. The Mab obtained in this research could be useful as reagent for the detection and quantitation of polysaccharide Vi in typhoid vaccines.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <body bgcolor="#FFFFFF" link=blue vlink=purple class="Normal" lang=ES>     <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> 	    <p> <b><font face="verdana" size="4">Obtenci&oacute;n de un anticuerpo monoclonal murino que reconoce al polisac&aacute;rido capsular Vi de <i>Salmonella</i> Typhi</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><span lang=EN-US>Generation of a murine monoclonal antibody to capsular polysaccharide Vi from <i>Salmonella</i> Typhi</span></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nevis Amin&#45;Blanco,* F&aacute;tima Reyes&#45;L&oacute;pez, Frank Camacho&#45;Casanova, Oscar Otero&#45;Alfaro, Maribel Cuello&#45;P&eacute;rez, Darcy N&uacute;&ntilde;ez&#45;Mart&iacute;nez, Sonsire Fern&aacute;ndez&#45;Castillo, Luis Guillermo Garc&iacute;a&#45;Im&iacute;a</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Instituto Finlay, Centro de Investigaci&oacute;n y Producci&oacute;n de Vacunas. Ave. 27, No 19805, La Lisa, AP 16017 Cod. 11600 La Habana. Cuba</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>email</b>: <a href="mailto:namin@finlay.edu.cu">namin@finlay.edu.cu</a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">*Dra en Ciencias M&eacute;dicas, Especialista de Segundo Grado de Microbiolog&iacute;a, Investigador Auxiliar.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr align="left" />     <p><font face="Verdana"><strong><font size="2">RESUMEN</font></strong></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tecnolog&iacute;a cl&aacute;sica del hibridoma permiti&oacute; el desarrollo de anticuerpos monoclonales (AcM) contra una inmensa variedad de ant&iacute;genos, los cuales tienen diversas aplicaciones en el campo de la investigaci&oacute;n b&aacute;sica, diagn&oacute;stico, inmunoterapia y en los procesos industriales de vacunas. En este trabajo se generaron hibridomas productores de AcM espec&iacute;ficos contra el polisac&aacute;rido capsular Vi de <i>Salmonella</i> Typhi, para lo cual se realiz&oacute; la inmunizaci&oacute;n intraperitoneal de ratones BALB/c con 10 &micro;g de polisac&aacute;rido capsular Vi conjugado a Toxoide Dift&eacute;rico y la subsiguiente fusi&oacute;n entre los linfocitos aislados del bazo y c&eacute;lulas de mieloma SP2/O. Se seleccion&oacute; y caracteriz&oacute; un AcM que se denomin&oacute; 4G3E11. El isotipo del AcM result&oacute; IgG1. Se demostr&oacute; que AcM 4G3E11 reconoce diferentes valores de concentraci&oacute;n del polisac&aacute;rido en muestras de vacunas vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup>, mediante un ELISA tipo s&aacute;ndwich. El AcM obtenido como parte de este estudio permitir&aacute; la identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n del polisac&aacute;rido Vi en vacunas anti&#45;tifo&iacute;dicas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras claves:</b> polisac&aacute;rido Vi, <i>Salmonella</i> Typhi, hibridoma, anticuerpos monoclonales, fiebre tifoidea.</font></p> <hr align="left" />     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="2">ABSTRACT</font></strong></font> 	    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><span lang=EN-US>The conventional hybridoma technology has enabled the development of monoclonal antibodies (Mabs) against many antigens. Mabs have several applications in the field of basic research, diagnosis, immunotherapy and vaccine manufacturing processes. Mabs&amp;#45;producing hybridomas against the capsular polysaccharide from &lt;i&gt;Salmonella&lt;/i&gt; Typhi were obtained, after intraperitoneal immunization of BALB/c mice with 10 &amp;micro;g of capsular polysaccharide Vi conjugated to diphtheria toxoid, and subsequent fusion of lymphocytes isolated of the spleen and myeloma cells SP2/O. A Mab was selected, partially characterized, and named as 4G3E11. The isotype of this Mab was IgG1. It was proved by means of a sandwich ELISA that the 4G3E11 Mab reacts with different concentrations of polysaccharide in samples of the vax&amp;#45;TyVi&amp;reg; vaccine. The Mab obtained in this research could be useful as reagent for the detection and quantitation of polysaccharide Vi in typhoid vaccines.</span></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><span lang=EN-US>Keywords: </span></b><span lang=EN-US></span></font><font face="verdana" size="2">polysaccharide Vi, <i>Salmonella</i> Typhi, hybridoma, monoclonal antibodies, typhoid fever.</font></p> <hr align="left" />     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La fiebre tifoidea (FT) es una enfermedad bacteriana sist&eacute;mica cuyo agente infeccioso es <i>Salmonella ent&eacute;rica</i> serovar Typhi (<i>S</i>. Typhi), la cual tiene como su &uacute;nico hospedero a los humanos. Su distribuci&oacute;n es mundial con una mayor prevalencia en pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo, principalmente en Asia, &Aacute;frica y Am&eacute;rica Latina, donde constituye un reto a las autoridades en salud p&uacute;blica (1).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En Cuba existe una tendencia descendiente de la morbilidad por FT, con una tasa de incidencia de 0,1 por 100.000 habitantes en el a&ntilde;o 2014 y no se declaran casos desde ese a&ntilde;o (2).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Este logro se alcanz&oacute; gracias a la implementaci&oacute;n de medidas encaminadas a la mejora de las condiciones del ambiente, un control higi&eacute;nico de los alimentos, uso de agua potable, educaci&oacute;n de la poblaci&oacute;n, as&iacute; como la inclusi&oacute;n en el programa nacional de vacunaci&oacute;n de una vacuna eficaz y segura (3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La vacuna antitifo&iacute;dica cubana vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup>, es una vacuna constituida por el polisac&aacute;rido capsular Vi purificado a partir de <i>S.</i> Typhi, que tiene entre sus numerosas ventajas: baja reactogenicidad, elevada inmunogenicidad y eficacia consistente, comparables con otras vacunas existentes en el mercado (3). Esta vacuna se suministra a la poblaci&oacute;n seg&uacute;n el esquema vigente en el pa&iacute;s (4).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las pruebas para evaluar los requisitos m&iacute;nimos de calidad del lote final de una vacuna pueden clasificarse en: pruebas microbiol&oacute;gicas, biol&oacute;gicas y fisicoqu&iacute;micas. Dentro de las pruebas fisicoqu&iacute;micas se incluyen las dirigidas a verificar la identidad y el contenido antig&eacute;nico de los diferentes componentes de una vacuna (5). Las pruebas inmunoqu&iacute;micas, como la inmunotransferencia, la aglutinaci&oacute;n en l&aacute;tex, la inmunoprecipitaci&oacute;n y los ensayos inmunoenzim&aacute;ticos en fase s&oacute;lida (ELISA), son &uacute;tiles para evaluar los ant&iacute;genos incorporados en las vacunas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los anticuerpos monoclonales (AcM) y antisueros espec&iacute;ficos a un determinado ant&iacute;geno, se utilizan en diferentes t&eacute;cnicas inmunoqu&iacute;micas con el objetivo de detectarlo. Los antisueros policlonales son f&aacute;ciles de producir; sin embargo, durante su obtenci&oacute;n tienen como principales desventajas las diferentes afinidades y afectaciones en la reproducibilidad.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los AcM tienen propiedades que resuelven estas desventajas: son espec&iacute;ficos para un ep&iacute;topo determinado e id&eacute;nticos entre s&iacute;, constituyen una poblaci&oacute;n homog&eacute;nea y adem&aacute;s, constituyen una fuente inagotable (6).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Actualmente, se emplea en el Instituto Finlay, (La Habana, Cuba), un suero hiperinmune que se obtiene en conejos, contra el polisac&aacute;rido Vi de <i>S.</i> Typhi en la determinaci&oacute;n de la identidad (7), as&iacute; como de la concentraci&oacute;n del polisac&aacute;rido en la vacuna antitifo&iacute;dica vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup> (8).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El presente trabajo tuvo como objetivo obtener un AcM espec&iacute;fico al polisac&aacute;rido capsular Vi, el cual pudiera potencialmente desplazar al suero policlonal en los ensayos actuales, dirigidos a la identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de este ant&iacute;geno.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><strong><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></strong></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ant&iacute;genos y muestras</b></font></p>         <p><font face="verdana" size="2">&#45; Polisac&aacute;rido capsular de <i>S.</i> Typhi (Poli Vi) conjugado a Toxoide Dift&eacute;rico (Poli Vi&#45;TD). El conjugado fue suministrado por el Laboratorio de Glicoconjugaci&oacute;n del Centro de Qu&iacute;mica Biomolecular (CQB) de La Habana, Cuba.</font></p>         <p><font face="verdana" size="2">&#45; Como material de recubrimiento de la fase s&oacute;lida del ELISA se utiliz&oacute; el Lote 6014 de la vacuna vax&#45; TyVi<sup>&reg;</sup>.</font></p>         <p><font face="verdana" size="2">&#45; Como muestras del ensayo ELISA y para la preparaci&oacute;n de una curva de calibraci&oacute;n se utiliz&oacute; el Lote 9006 de la vacuna vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup>.       Los lotes de vacuna vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup> y TD fueron producidos por el Instituto Finlay, La Habana, Cuba, bajo condiciones de Buenas Pr&aacute;cticas de Fabricaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de hibridomas productores de anticuerpos monoclonales</b></font></p> 	    <p align="justify"><em><font face="verdana" size="2">Animales</font></em></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron ratones BALB/c hembras con un peso corporal entre 18 y 20 g, suministrados por el Centro Nacional para la Producci&oacute;n de Animales de Laboratorio (CENPALAB) de La Habana, Cuba.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>Esquema de inmunizaci&oacute;n</em></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A los ratones se les realiz&oacute; tres inmunizaciones por v&iacute;a intraperitoneal con intervalos de 20 d&iacute;as. Las dosis inoculadas por rat&oacute;n fueron de 10 &micro;g de Poli Vi&#45;TD en soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos (SSTF). Tres d&iacute;as antes de la eutanasia se inocularon con una dosis de refuerzo de 10 &micro;g de Poli Vi&#45;TD en SSTF por v&iacute;a intravenosa.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>ELISA de tipo indirecto para la titulaci&oacute;n de anticuerpos</em></font> <em><font face="verdana" size="2">IgG anti&#45;polisac&aacute;rido Vi</font></em><font face="verdana" size="2"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar los t&iacute;tulos de anticuerpos anti&#45;polisac&aacute;rido Vi en el suero de los animales inmunizados, se realiz&oacute; un ELISA indirecto, seg&uacute;n lo descrito por Ram&iacute;rez y col 2006 (9) con algunas modificaciones. En el paso de las muestras se a&ntilde;adieron a los pozos 100 &micro;L de los sueros de los animales inmunizados en las diluciones entre 1:500 y 1:10.000. En el paso de reconocimiento de anticuerpo anti&#45;Vi unido al ant&iacute;geno de la placa, se emple&oacute; un conjugado anti&#45;IgG de rat&oacute;n&#45;peroxidasa de r&aacute;bano picante (Sigma, USA). Como crom&oacute;geno se emple&oacute; ortofenilendiamina (OPD). Se incubaron las placas por espacio de 20 a 30 min en la oscuridad de 20&#45;25&ordm;C.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La absorbancia se midi&oacute; a una longitud de onda de 492 nm (DO) mediante un lector de placas (Multiskan Thermo Electron Corporation, USA). Se utiliz&oacute; como control negativo una mezcla de los sueros que se colectaron antes de la primera inmunizaci&oacute;n (preinmunes).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El criterio de selecci&oacute;n de los ratones que se emplearon para la fusi&oacute;n fue: valores de absorbancia superiores a cinco veces el valor de absorbancia producidos por el suero preinmune, presente en la diluci&oacute;n de 1:10.000.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>Fusi&oacute;n celular</em></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las c&eacute;lulas espl&eacute;nicas de los ratones y las c&eacute;lulas de la l&iacute;nea de mieloma de rat&oacute;n SP2/O en crecimiento exponencial, se utilizaron para realizar las fusiones celulares seg&uacute;n el m&eacute;todo de Kohler y Milstein (10).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Los h&iacute;bridos crecidos se utilizaron para evaluar los niveles de anticuerpos en el sobrenadante de cultivo sin diluir mediante el ELISA descrito con anterioridad. Se empleo como control negativo de este ensayo sobrenadantes de hibridomas secretores de AcM contra ant&iacute;genos no relacionados.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Se determinaron las clases (IgM, IgA e IgG) y las subclases de IgG (IgG1, IgG2a, IgG2b e IgG3) de los anticuerpos presentes en el sobrenadante de los h&iacute;bridos que resultaron positivos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La identificaci&oacute;n se realiz&oacute; mediante el uso de un estuche de isotipificaci&oacute;n de rat&oacute;n (Pierce, USA), de acuerdo con las recomendaciones del fabricante.    <br>     Los hibridomas positivos que se seleccionaron, fueron clonados por el m&eacute;todo de diluci&oacute;n limitante (11) y congelados en nitr&oacute;geno l&iacute;quido en presencia de 10% de dimetilsulf&oacute;xido y suero fetal bovino.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>Producci&oacute;n in vivo de anticuerpos monoclonales</em></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las c&eacute;lulas del hibridoma que se seleccion&oacute; luego del desprendimiento, se lavaron 2 veces en SSTF y se centrifugaron a 180 g durante 10 min a 4&ordm;C.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La suspensi&oacute;n celular se inocul&oacute; en concentraci&oacute;n de 1x10<sup>6</sup> c&eacute;lulas en 0,5 mL de medio RPMI&#45;1640, por v&iacute;a intraperitoneal, a 30 ratones BALB/c. El peritoneo de los ratones se estimul&oacute; siete d&iacute;as antes de la administraci&oacute;n con Pristane (SIGMA, USA).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    A partir de los 10 d&iacute;as de la inoculaci&oacute;n se extrajo el l&iacute;quido asc&iacute;tico por punci&oacute;n del peritoneo y se clarific&oacute; por centrifugaci&oacute;n a 1125 g durante 30 min a 4&ordm;C (6). El fluido asc&iacute;tico se almacen&oacute; a &#45;20&ordm;C hasta su uso.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La titulaci&oacute;n del fluido asc&iacute;tico se determin&oacute; mediante ELISA tipo indirecto para la detecci&oacute;n de anticuerpos anti&#45;polisac&aacute;rido Vi. Se evaluaron las diluciones en base de 2 de las muestras. Como control negativo se utiliz&oacute; el suero preinmune y como control positivo las muestras de los ratones inmunizados con el polisac&aacute;rido Vi. El t&iacute;tulo se defini&oacute; como la m&aacute;xima diluci&oacute;n de la ascitis donde se obtuvo el doble del valor de absorbancia del suero preinmune.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>Purificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de anticuerpos</em></font> <em><font face="verdana" size="2">monoclonales</font></em><font face="verdana" size="2"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El AcM presente en el fluido asc&iacute;tico se purific&oacute; por cromatograf&iacute;a de afinidad, empleando la columna HiTrap Protein G High Performance (GE Healthcare, Germany) acorde a las instrucciones del fabricante (6).</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">    En la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas totales se aplic&oacute; el m&eacute;todo del &aacute;cido bicincon&iacute;nico, utilizando el estuche comercial BCA TM Protein Assay Kit (Pierce, USA).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Los isotipos de los anticuerpos monoclonales se determinaron con el uso del estuche de isotipificaci&oacute;n de rat&oacute;n (Pierce, USA).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>Conjugaci&oacute;n del AcM a peroxidasa de r&aacute;bano picante para el desarrollo de un ELISA tipo s&aacute;ndwich</em></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La conjugaci&oacute;n de las inmunoglobulinas se realiz&oacute; seg&uacute;n Wilson (12). Fueron disueltos 8 mg del AcM purificado y acoplado a 4 mg de peroxidasa de r&aacute;bano picante (tipo VI) en 1 mL de agua destilada, se purific&oacute; por cromatograf&iacute;a de gel de filtraci&oacute;n.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Luego se a&ntilde;adi&oacute; albumina s&eacute;rica bovina al 1%, tiomersal      0,05% y glicerol 50%. Se conserv&oacute; a &#45;20&ordm;C.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>ELISA s&aacute;ndwich para la detecci&oacute;n de polisac&aacute;rido Vi en muestras de vacuna vax&#45;TyVi<sup><sup>&reg;</sup></sup></strong></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Placas de poliestireno de 96 pocillos (Maxisorp, Nunc, Reino Unido), se recubrieron con una soluci&oacute;n de anticuerpo monoclonal IgG anti&#45;polisac&aacute;rido Vi 4G3E11 en tamp&oacute;n carbonato&#45;bicarbonato, pH=9,6. Se a&ntilde;adieron cada una de las preparaciones de las diluciones correspondientes a las concentraciones: 5, 10, 15, 20 y	25 &micro;g/mL, a raz&oacute;n de 100 &micro;L por pocillo. Las placas se incubaron durante 16 a 20 h, a 4&ordm;C. Al d&iacute;a siguiente, se lavaron con SSTF&#45;Tween 20 al 0,05% (tamp&oacute;n de lavado) y se bloquearon con leche descremada al 3% en SSTF (200 &micro;L por pocillo) y se incubaron las placas 1 h a 37&ordm;C, en c&aacute;mara h&uacute;meda. A continuaci&oacute;n, las microplacas se lavaron con tamp&oacute;n de lavado 4 veces y se a&ntilde;adieron diluciones seriadas de las muestras de la vacuna con lote 9006 en SSTF&#45;leche descremada al 3%. Despu&eacute;s de 1 h en c&aacute;mara h&uacute;meda a 37&ordm;C, las placas se lavaron y se incubaron con el AcM anti&#45;polisac&aacute;rido conjugado a peroxidasa, a una diluci&oacute;n 1:8000 en tamp&oacute;n SSTF&#45;leche descremada al 1 %&#45; Tween 20 al 0,05% y se a&ntilde;adi&oacute; a raz&oacute;n de 100 &micro;L/pocillo. Transcurrido el tiempo de incubaci&oacute;n, las microplacas se lavaron y se incubaron con soluci&oacute;n de sustrato OPD durante	30 min, a temperatura ambiente, en la oscuridad. La reacci&oacute;n se detuvo con &aacute;cido sulf&uacute;rico 0,1 M y se ley&oacute; la absorbancia a 492 nm en un lector de placas ELISA.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Se realizaron cuatro ensayos independientes y los resultados se expresaron como los valores medios de absorbancia. Para establecer el criterio de positividad, se tuvo en cuenta como positivas aquellas muestras que mostraron un valor de absorbancia dos veces superior al valor de absorbancia producida por el control negativo.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Se realiz&oacute; la preparaci&oacute;n de una curva de calibraci&oacute;n a partir del lote 9006 de la vacuna vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup>. Se realizaron diluciones dobles seriadas en un rango desde 0,39&#45;10 ng/mL. Las diluciones se aplicaron por triplicado en las microplacas. Se graficaron las medias de los valores de absorbancia contra la concentraci&oacute;n de cada punto. Se seleccion&oacute; el rango lineal tomando como criterio que el valor del coeficiente de determinaci&oacute;n (R<sup>2</sup>) de los puntos de la curva seleccionada fuese igual o superior a 0,98.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando los m&eacute;todos ELISA emplean anticuerpos monoclonales, son altamente sensibles, espec&iacute;ficos y pueden discriminar entre diferentes polisac&aacute;ridos (6).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s, brindan resultados consistentes para la validaci&oacute;n y estandarizaci&oacute;n (13). Por lo tanto, es necesario disponer de AcMs espec&iacute;ficos del polisac&aacute;rido Vi que permitan desarrollar nuevos ensayos, mejorar los existentes y que se utilicen para determinar el contenido del polisac&aacute;rido Vi en los preparados vacunales. En este trabajo se describe la obtenci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n parcial del anticuerpo monoclonal 4G3E11 que se gener&oacute; contra el polisac&aacute;rido Vi de <i>S.</i> Typhi, para lo cual se inmunizaron ratones BALB/c con Poli Vi&#45;TD.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    En la <a href="#f1">Figura 1</a> se observa que todos los ratones inmunizados alcanzaron t&iacute;tulos de anticuerpos en el suero, con valores de absorbancia entre 0,58 y 1,43. Adem&aacute;s, los t&iacute;tulos de IgG fueron superiores a los obtenidos en el tiempo 0 (preinmune). Se seleccionaron los ratones 2 y 3, por presentar los valores m&aacute;s altos de DO a 492 nm en la diluci&oacute;n 1:10.000, como fuente para la fusi&oacute;n con las c&eacute;lulas de mieloma.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/vac/v24n2/f0101215.jpg"  alt="" width="580" height="346" id="f1"/></p> 	    
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">    El dise&ntilde;o experimental del esquema de inmunizaci&oacute;n tuvo en cuenta la ruta, dosis y esquema propuestos para la generaci&oacute;n de AcMs de alta afinidad. La conjugaci&oacute;n es un procedimiento que permite que el polisac&aacute;rido Vi, ant&iacute;geno timo&#45;independiente, se convierta en timo&#45; dependiente. La respuesta que se obtiene frente a una inmunizaci&oacute;n con este tipo de ant&iacute;geno se caracteriza por la inducci&oacute;n de anticuerpos del tipo IgG, la aparici&oacute;n de una respuesta secundaria y la permanencia de esta respuesta en el tiempo (14).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Como resultado de la fusi&oacute;n se obtuvieron 338 pocillos con crecimiento de las c&eacute;lulas fusionadas, las que sobrevivieron a la selecci&oacute;n con el medio mezcla de hipoxantina, aminopterina,y timidina (medio HAT), de un total de 960 pocillos sembrados, para una eficiencia de fusi&oacute;n de un 35,2%. Los valores de eficiencia de fusi&oacute;n entre un 35 y 60% se consideran satisfactorios (15). De estos posibles h&iacute;bridos con buen crecimiento celular se obtuvieron un total de 33 con anticuerpos espec&iacute;ficos para el polisac&aacute;rido Vi en el sobrenadante, con DO 492nm &ge; 1,0. Se debe destacar que la eficiencia de fusi&oacute;n y la aparici&oacute;n de hibridomas espec&iacute;ficos se deben fundamentalmente al esquema de inmunizaci&oacute;n aplicado a los ratones y la calidad y concentraci&oacute;n del ant&iacute;geno que se emple&oacute;.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    De los 33 hibridomas expandidos a placas de 24 pozos, 13 mantuvieron la capacidad de secretar anticuerpos contra Polisac&aacute;rido Vi cuando se sometieron a una segunda evaluaci&oacute;n a partir de diversos pasos de expansi&oacute;n. En la <a href="#t1">Tabla 1</a> se muestran los resultados de la determinaci&oacute;n de la clase y la subclase de los anticuerpos que producen los tres h&iacute;bridos que presentan los mayores valores de absorbancia: 4G3, 2C5 y 2C8.</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/vac/v24n2/t0101215.jpg"  alt="" width="500" height="269" id="t1"/></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De los tres hibridomas positivos que se evaluaron, se eligi&oacute; el hibridoma 4G3 y se clon&oacute; por diluci&oacute;n limitante. La selecci&oacute;n del 4G3 se realiz&oacute; teniendo en cuenta que es el &uacute;nico secretor de anticuerpos tipo IgG y espec&iacute;fico. Son excelentes para la purificaci&oacute;n y posterior aplicaci&oacute;n de los mismos en un ELISA. La utilidad de los restantes hibridomas, secretores de anticuerpos de la clase IgM, debe evaluarse en otros estudios (16).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">  Se seleccionaron un total de 11 pocillos, que al visualizarse conten&iacute;an una &uacute;nica colonia de c&eacute;lulas. El m&eacute;todo de diluci&oacute;n limitante permite que cada pocillo contenga al menos una colonia del h&iacute;brido de inter&eacute;s y de esta manera asegura la monoclonalidad (11). Los clones obtenidos secretaron anticuerpos espec&iacute;ficos y ninguno presentaron reactividad cruzada con el TD, prote&iacute;na portadora en el esquema de inmunizaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">  Se seleccion&oacute; el clon 4G3E11 para la producci&oacute;n de los AcM en fluido asc&iacute;tico y posterior purificaci&oacute;n, seg&uacute;n su reactividad en el ELISA contra el polisac&aacute;rido Vi y caracter&iacute;sticas de crecimiento en cultivo. Los t&iacute;tulos de anticuerpos de la ascitis fueron elevados, en el orden de 1:16.000. La concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas totales del AcM 4G3E11 purificado a partir del l&iacute;quido asc&iacute;tico fue de 3,2 mg/mL.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para caracterizar, de manera parcial, el AcM obtenido, se investig&oacute; si es capaz de reconocer el polisac&aacute;rido Vi en muestras de vacunas vax&#45;TyVi<sup><sup>&reg;</sup></sup> mediante un ELISA s&aacute;ndwich. Como paso crucial del ELISA, se estableci&oacute; la concentraci&oacute;n &oacute;ptima de recubrimiento del anticuerpo monoclonal 4G3E11 (<a href="#f2">Fig. 2</a>). La meseta de mayor se&ntilde;al con la muestra de polisac&aacute;rido Vi y la meseta de menor se&ntilde;al con el blanco control se observa a partir de 10 &micro;g/mL.</font></p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/vac/v24n2/f0201215.jpg"  alt="" width="579" height="531" id="f2"/></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">  La concentraci&oacute;n de recubrimiento para el anticuerpo monoclonal se estableci&oacute; en 10 &micro;g/mL, (<a href="#f2">Fig. 2</a>) locual coincide con Gavilondo (11). Por otra parte el AcM se marc&oacute; con &eacute;xito con la enzima peroxidasa y demostr&oacute; su empleo como reactivo de detecci&oacute;n en el ELISA, a la diluci&oacute;n de trabajo de 1:8.000 y frente a una concentraci&oacute;n fija del polisac&aacute;rido Vi.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El empleo de los AcM en este tipo de ELISA, proporcionan al m&eacute;todo una elevada sensibilidad, especificidad y que los resultados sean aceptables en t&eacute;rminos de exactitud y variabilidad (13). Teniendo en cuenta los resultados del ELISA con el 4G3E11, se realizaron tres r&eacute;plicas de una curva con muestras de la vacuna vax&#45;TyVi<sup><sup>&reg;</sup></sup>, lote 9006 (<a href="#f3">Fig. 3</a>) y as&iacute; probar su posible aplicaci&oacute;n como est&aacute;ndar en este tipo de ensayo.</font></p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/vac/v24n2/f0301215.jpg"  alt="" width="500" height="438" id="f3"/>    
<br>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Todas las curvas de polisac&aacute;ridos (calibraci&oacute;n) rindieron valores de R<sup>2</sup> superiores a 0,98 en el rango entre 10 y 0,39 ng/mL, con factor de diluci&oacute;n 2. Adem&aacute;s los valores de absorbancia para los puntos de mayor concentraci&oacute;n de cada una de las curvas se ubicaron entre 0,9 y 1,7. Los blancos del ensayo tuvieron un valor promedio de 0,083, lo cual se corresponde con lo esperado para los m&eacute;todos colorim&eacute;tricos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">  Como resultado de este ensayo, el AcM 4G3E11 pudiera ser incluido como parte de los ensayos dise&ntilde;ados para la identificaci&oacute;n y la caracterizaci&oacute;n del polisac&aacute;rido Vi presente en diferentes formulaciones vacunales y as&iacute; remplazar los antisueros espec&iacute;ficos que se utilizan actualmente. Adem&aacute;s, pudiera aplicarse en conjunto con los h&iacute;bridos 2C5 y 2C8 para el diagn&oacute;stico de la FT, en sistemas inmunoenzim&aacute;ticos o de aglutinaci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">  La caracterizaci&oacute;n completa de estos AcM resulta necesaria, por lo tanto ser&aacute; de gran utilidad profundizar en su especificidad frente a otros polisac&aacute;ridos de cepas de <i>Salmonella</i> Paratyphi y <i>Citrobacter</i> freundii, as&iacute; como la determinaci&oacute;n de su constante de afinidad.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS</strong><b></b></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Verma R, Bairwa M, Chawla S, Prinja S, Rajput M. New generation typhoid vaccines. An effective preventive strategy to control typhoid fever in developing countries. Human Vaccines 2011;7(8):883&#45;5.    </font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Ministerio de Salud P&uacute;blica de Cuba. Anuario Estad&iacute;stico de Salud 2013. La Habana: MINSAP; 2013. Disponible en: www. http://files.sld.cu/dne/files/2014/05/anuario&#45;2013&#45;esp&#45;e.pdf</a></font><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Riveron L, Daniel Cardoso. Vax&#45;TyVi: Vacuna cubana de polisac&aacute;rido Vi de Salmonella typhi. Biotecnol Aplicada 2003;20(4):245&#45;7.    </font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Ministerio de Salud P&uacute;blica de Cuba. Esquema Oficial Vacunaci&oacute;n Infantil. Cuba 2014. La Habana: MINSAP; 2014. Disponible en: http://files.sld.cu/puericultura/files/2013/01/ esquema&#45;de&#45;vacunacion&#45;2011.pdf</font><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Fern&aacute;ndez Y. Estandarizaci&oacute;n del ELISA para la cuantificaci&oacute;n de polisac&aacute;ridos A, C, Y y W en vacunas antimeningoc&oacute;ccicas multivalentes. Tesis para optar por el Grado de Licenciado en Ciencias Farmac&eacute;uticas. La Habana: Universidad de La Habana. Instituto de Farmacia y Alimentos; 2014.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Reyes F, Amin N, Otero O, Aguilar A, Cuello M, Valdes Y, et al. Four monoclonal antibodies against capsular polysaccharides of Neisseria meningitidis serogroups A, C, Y and W135: its application in identity tests. Biologicals 2013;41(4):275&#45;8.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. World Health Organization. Requirements for Vi polisaccharide typhoid vaccine. Serie de reportes t&eacute;cnicos, 840. Geneva: WHO; 1994.    </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Fajardo ME, Delgado I, River&oacute;n L, Izquierdo L, Iglesias N, &Aacute;lvarez E, et al. Validaci&oacute;n de un ELISA tipo inhibici&oacute;n para cuantificar polisac&aacute;rido Vi en la vacuna antitifo&iacute;dica cubana vax&#45; TyV. VacciMonitor 2006;15(2):5&#45;12.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Ram&iacute;rez JC, Serrano B, Lara M, Fari&ntilde;as M, Mirabal M, Sifontes S, et al. Estudio de inmunogenicidad de la vacuna antitifo&iacute;dica cubana de polisac&aacute;rido Vi vax&#45;TyVi<sup>&reg;</sup> en ratones. VacciMonitor 2006;15(2):1&#45;4.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Kohler G, Milstein C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature 1975; 256:495&#45;7.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Gavilondo JV. Anticuerpos monoclonales. La Habana: Elfos Scientiae; 1995.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Wilson M, Nakane P. Recent development in the periodate method of conjugating horseradish peroxidase (HRPO) to antibodies. In: Knapp W, Holubar K, Wick G, editors. Immunofluorescence and related staining techniques. Amsterdam: Elsevier; 1978.p.215&#45;24.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Ochoa RF. Estandarizaci&oacute;n de t&eacute;cnicas inmunoenzim&aacute;ticas. En T&eacute;cnicas inmunoenzim&aacute;ticas. en el desarrollo cl&iacute;nico de vacunas. La Habana: Finlay Ediciones; 2013.p.15&#45;23.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Cabrera O, Cuello M, Soto C, P&eacute;rez O, Taboada C, Fari&ntilde;as M, et al. Preparaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de conjugados de polisac&aacute;rido Vi de Salmonella typhi con toxoide tet&aacute;nico. VacciMonitor 2002;11(2):6&#45;9.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Falero G, Rodriguez BL, Rodriguez I, Suzarte E, Otero O, N&uacute;&ntilde;ez N, et al. 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