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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <b><font face="verdana" size="4">Activación del polisacárido capsular de <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotipo 23F para la obtención de vacunas conjugadas</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><span lang=EN-US>Activation of the capsular polysaccharide serotype 23F of <em>Streptococcus pneumoniae</em> to obtain conjugate vaccine</span></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Janoi Chang-Calderón<sup>*</sup>, Yohanna Serrano-Rodríguez,<sup>**</sup> Raine Garrido-Arteaga, Jessy Pedroso-Fernández, Félix Cardoso-San Jorge, Laura Rodríguez-Noda, Darielys Santana-Mederos, Dagmar García-Rivero, Yury Valdés-Balbín, Vicente Vérez-Bencomo</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Instituto Finlay de Vacunas. Ave. 27 No. 19805, La Lisa, La Habana, Cuba.</font></p> 	 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>email</b>: <a href="mailto:yserrano@finlay.edu.cu">yserrano@finlay.edu.cu</a></font></p>         <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">* Doctor en Ciencias, Investigador Agregado.</font></p> 	    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">** Maestra en Ciencias, Investigadora Agregada.</font></p>         <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr align="left" />     <p><font face="Verdana"><strong><font size="2">RESUMEN</font></strong></font>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la actualidad, las vacunas conjugadas constituyen un gran hito en el desarrollo de fármacos que protegen contra las enfermedades infecciosas. Estas vacunas no solo disminuyen drásticamente la mortalidad y morbilidad de diferentes enfermedades causadas por bacterias en la población infantil; sino que también repercuten sobre la población no vacunada. Las vacunas conjugadas se basan en establecer una unión covalente entre un polisacárido y una proteína portadora para lo cual existen diferentes procedimientos químicos. Todos los procedimientos de conjugación requieren la presencia de grupos reactivos complementarios que muchas veces son generados en ambas macromoléculas. Este trabajo se enfoca en el estudio de la reacción de fragmentación y de la oxidación peryódica sobre el polisacárido capsular serotipo 23F de <em>Streptococcus pneumoniae</em> para su uso como antígeno vacunal. Se estableció la fragmentación del polisacárido mediante hidrólisis con ácido acético y trifluoroácetico. En el caso de la reacción de oxidación se encontró que la cantidad de moles de peryodato de sodio y la temperatura influyen de manera directamente proporcional sobre la generación de grupos carbonilos. Adicionalmente se demostró que el sustituyente glicerol-fosfatos presente en la estructura del serotipo 23F es relevante para conservar la antigenicidad. El procedimiento descrito permite obtener conjugados inmunogénicos a partir del polisacárido capsular de <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotipo 23F en el modelo de conejos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b>  <em>Streptococcus pneumoniae</em>, vacunas conjugadas, hidrolisis ácida, oxidación peryódica.</font></p> <hr align="left" />     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="2">ABSTRACT</font></strong></font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><span lang=EN-US>   Nowadays conjugate vaccines are a major milestone in the development of drugs against infectious diseases. These vaccines drastically reduce mortality and morbidity from different diseases caused by bacteria in children; but also impact on non-vaccinated population. Conjugate vaccines are based on a covalent bond between a polysaccharide and a carrier protein for which there are different chemical procedures. All conjugate procedures require the presence of additional reactive groups that often are generated in both macromolecules. This work focus on the study of the fragmentation reaction and peryodic oxidation on the capsular polysaccharide serotype 23F <em>Streptococcus pneumoniae</em> for use as a vaccine antigen. It was possible to establish the fragmentation reaction of the polysaccharide by hydrolysis with acetic and trifluoroacetic acid. Directly proportional ratio was found between numbers of moles of sodium periodate and temperature on the oxidation reactions. In addition the glycerol-phosphate substituent was found as important motif to preserve the antigenicity. The procedure allows immunogenic conjugate from capsular polysaccharide serotype 23F of <em>Streptococcus pneumoniae</em> in rabbit models.</span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><span lang=EN-US>Keywords:</span></b></font><font face="verdana" size="2"> <em>Streptococcus pneumoniae</em>, conjugate vaccines, peryodic oxidation, acid hydrolysis.</font></p> <hr align="left" />     <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="3"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente las infecciones causadas por Streptococcus pneumoniae tienen un gran impacto sobre la morbilidad y mortalidad infantil, problemática que es enfrentada con gran efectividad mediante la introducción de las vacunas conjugadas (1,2). El éxito de estas vacunas se sustenta en lograr que el sistema inmune inmaduro de los niños menores de 5 años responda ante los polisacáridos (Ps), antígenos T-independientes, como si fueran antígenos T-dependiente. Esto se logra al establecer un enlace covalente entre el polisacárido bacteriano y una proteína portadora (antígenos T-dependientes). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen diversos métodos químicos que describen la formación de esta unión covalente entre ambas macromoléculas, pero en todos los casos es necesario la presencia de grupos reactivos complementarios (3-5).</font><font face="verdana" size="2"> Las proteínas al estar formadas por aminoácidos presentan una gran diversidad de grupos reactivos como: grupos aminos, ácidos carboxilos, tioles, guanidinio, entre otros. Los polisacáridos, por otro lado, presentan menor diversidad de grupos reactivos que la presentada en las proteínas. Debido a esto, en muchos casos se introduce una etapa para la activación de los polisacáridos en los procedimientos de conjugación. Esta etapa de transformación química tiene por objetivo generar grupos más reactivos en el Ps. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una de estas reacciones es la disminución de la talla molecular que permite el uso de los extremos reductores para luego introducir un brazo espaciador (6).  Adicionalmente, la disminución de la talla también brinda ventajas tecnológicas en el trabajo con los Ps como son: un producto con distribución de talla mejor definida, evitar los problemas de solubilidad y viscosidad de los polisacáridos capsulares nativos, y facilitar los procesos de purificación del producto final (7,8).  La oxidación con peryodato de sodio es un procedimiento muy utilizado para la activación de los polisacáridos. En esta reacción se forman grupos aldehídos, mediante la oxidación de dos grupos hidroxilos vecinales que son los más abundantes en los polisacáridos capsulares (PsC), con la consiguiente ruptura del enlace carbono-carbono. Los polisacáridos capsulares están formados por unidades repetitivas que pueden contener uno o varios monosacáridos y además pueden presentar ramificaciones (9). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reactividad frente a la oxidación con peryodato en los polisacáridos es primeramente sobre los alcoholes primarios, luego los hidroxilos vecinales en configuración cis y como último los dioles de configuración trans. Esta susceptibilidad es independientemente a la ubicación de estos en la estructura del polisacárido, como parte de una ramificación o dentro de la cadena lineal (10). Por ello, el uso de este procedimiento para la obtención de antígenos vacunales requiere de un control de las condiciones de la reacción para evitar afectaciones significativas de la estructura de los polisacáridos y con ello la pérdida de información inmunológica del polisacárido.  El presente trabajo tiene como objetivo establecer un procedimiento para la obtención de polisacáridos fragmentados y activados con grupos aldehídos a partir del polisacárido capsular de <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotipo 23F. El procedimiento se enfoca en el estudio de la reacción de disminución de la talla molecular del polisacárido capsular mediante la hidrólisis ácida y la formación de grupos aldehídos mediante la oxidación con peryodato de sodio sin afectar la antigenicidad del Ps.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="3"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p> 	     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <strong>Materiales:</strong> La proteína toxoide tetánico (TT) lote 6017 suministrada por el Instituto Finlay de Vacunas se obtiene como ingrediente farmacéutico activo en el proceso productivo de la vacuna triple bacteriana DPT®. En el caso del PsC 23F lote 8001, se obtuvo en el Departamento de Desarrollo Farmacéutico del Instituto, cumpliendo con los requisitos recomendados por la Organización Mundial de la Salud (OMS) para la producción de vacunas (11). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron materiales de referencia como el PsC 23F purificado proveniente de la American Type Culture Collection (ATCC) y el suero estándar internacional generado en conejos, específico contra el serogrupo 23 (23A, 23B y 23F), suministrado por Statens Serum Institute, Copenhagen.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Técnicas analíticas:</strong> La cuantificación de Ps para determinar los rendimientos de las reacciones se realizó mediante la técnica descrita por Brückner (12) y los grupos carbonilos generados se determinaron a través del método informado por Porro y cols. (13). En el caso del contenido de proteína en los conjugados se empleó la técnica de cuantificación de proteínas en disolución, descrita por Lowry y cols. (14).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluación de la identidad de los PsC se realizó mediante la resonancia magnética nuclear protónica (RMN <sup>1</sup>H) en un equipo espectrómetro Bruker/Avance DPX 250. El procesamiento de la caída libre de inducción se realizó a través del software MestReNova. Las muestras se prepararon tomando entre 5-10 mg del producto seco y se disolvieron en 0,6 mL de agua deuterada (D<sub>2</sub>O, Merck >99.8 %) y se secaron en una liofilizadora (Christ Beta 1-8 LD). Este procedimiento se realizó dos veces antes de disolverlo en agua deuterada para adquirir el espectro, los cuales se adquirieron a una temperatura de 52 ºC. La determinación de la constante de distribución de la talla molecular (K<sub>D</sub>) se realizó por cromatografía líquida de alta resolución en columna de exclusión molecular TSK 5000 PW con NaCl 0,9 % como fase móvil y detección por índice de refracción para el PsC, polisacárido fragmentado (PsFg-23F) y el polisacárido oxidado (PsOX-23F) o detección ultravioleta (206 nm) para los conjugados (23F-TT). El análisis de los datos se realizó a través del software ClarityChrom.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Preparación y caracterización de los polisacáridos y conjugados de 23F</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Disminución de la talla molecular del PsC 23F:</strong> A una disolución que contiene 10 mg de PsC 23F en 2 mL de agua destilada, se le adicionó igual volumen de la disolución del ácido en estudio, ácido acético (HAc) o ácido trifluoroacético (TFA), al doble de la concentración definida. La mezcla se mantuvo con agitación a 70 ºC entre 1–3 h. Transcurrido este tiempo la reacción se neutralizó utilizando una disolución de hidróxido de sodio 0,1 M y la mezcla se purificó por membranas de celulosa regenerada de 30, 10 y 1 kDa de porosidad. La eficiencia de la reacción se determinó de acuerdo al contenido de carbohidrato recobrado en las fracciones 10-30 kDa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Oxidaci&oacute;n con peryodato de sodio del PsFg-23F:</strong> Se prepar&oacute; una disoluci&oacute;n de Ps fragmentado en disoluci&oacute;n tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,0 de manera que se obtuvo una concentraci&oacute;n de Ps de 4, 10 o 20 mg/mL, seg&uacute;n lo definido en la aleatorizaci&oacute;n del dise&ntilde;o experimental. Luego, se adicion&oacute; igual volumen de disoluci&oacute;n de NaIO<sub>4</sub> que contiene los moles equivalentes establecidos en el dise&ntilde;o. La mezcla de reacci&oacute;n se mantuvo con agitaci&oacute;n moderada, protegida de la luz a la temperatura correspondiente. Transcurridas las 3 horas de reacci&oacute;n se a&ntilde;adieron dos equivalentes de glicerol por mol de NaIO<sub>4</sub> adicionado. Se conservaron las condiciones de reacci&oacute;n durante 30 min. La mezcla de reacci&oacute;n se purific&oacute; mediante ultrafiltraci&oacute;n a trav&eacute;s de membrana de celulosa regenerada de tama&ntilde;o de poro 10 kDa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Conjugaci&oacute;n del PsOx-23F a TT mediante aminaci&oacute;n&ndash;reductiva:</strong> La reacci&oacute;n de conjugaci&oacute;n se realiz&oacute; seg&uacute;n el procedimiento descrito (15). Solamente se modific&oacute; la relaci&oacute;n de masa de Ps y prote&iacute;na que result&oacute; de 1:1 y la concentraci&oacute;n de la reacci&oacute;n fue de 10 mg/mL.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Evaluaci&oacute;n de la inmunogenicidad:</strong> El protocolo en animales, estuvo sujeto al cumplimiento de las normas &eacute;ticas en la experimentaci&oacute;n animal y se aprob&oacute; por el Comit&eacute; de &Eacute;tica y el Departamento de Calidad de la instituci&oacute;n. </font><font face="verdana" size="2">Se utilizaron conejos blancos de Nueva Zelanda, hembras, de 1,5-1,8 kg de peso (10-12 semanas de edad), procedentes del Centro Nacional para la Producci&oacute;n de Animales de Laboratorio (CENPALAB). Se crearon grupos de 5 animales que se inmunizaron con una dosis de 5 &mu;g de Ps contenido en el conjugado o 25 &mu;g de PsC 23F. Adem&aacute;s, se incluy&oacute; un grupo control al que se le administr&oacute; suero fisiol&oacute;gico. Las inmunizaciones se realizaron a los 0, 14 y 28 d&iacute;as por v&iacute;a subcut&aacute;nea y las extracciones de sangre se realizaron 7 d&iacute;as despu&eacute;s de cada inmunizaci&oacute;n. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Evaluaci&oacute;n de memoria inmunol&oacute;gica:</strong> A los 120 d&iacute;as, cuando la respuesta de IgG contra el PsC 23F disminuy&oacute;, se aplic&oacute; una dosis de refuerzo de 25 &mu;g de PsC 23F. Se evalu&oacute; la inducci&oacute;n de IgG siete d&iacute;as posteriores a la inmunizaci&oacute;n. Todos los sueros obtenidos se conservaron a -20 &deg;C hasta su evaluaci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p><font face="verdana" size="2"><strong>Ensayos de ELISAs</strong></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <strong>Evaluaci&oacute;n del t&iacute;tulo de IgG contra el PsC 23F:</strong> Para evaluar la respuesta de anticuerpos contra el PsC 23F, se sigui&oacute; un ELISA similar al recomendado por la OMS (16) aunque no fue posible utilizar el sistema de detecci&oacute;n por fosfatasa alcalina, sustituy&eacute;ndose por un conjugado anti conejo-IgG-HRP. Los pasos del ELISA se detallan a continuaci&oacute;n: a las placas de 96 pocillos de poliestireno (Maxisorp) recubiertas con 10 &micro;g/mL de PsC 23F (50 &micro;L/pocillo) y bloqueadas con 150 &micro;L/pocillo de disoluci&oacute;n de alb&uacute;mina de suero bovino al 1 %, se les adicionaron los sueros extra&iacute;dos luego de cada inmunizaci&oacute;n en diluciones dobles seriadas comenzando por 1/100 en disoluci&oacute;n tamponada fosfato salina pH 7,2 m&aacute;s BSA 1 %, EDTA 0,01 M, Tween 20 0,3 %, incub&aacute;ndose durante 90 min a temperatura ambiente. Se adicion&oacute; el conjugado anti conejo-IgG peroxidasa (diluci&oacute;n 1/10000) y se incub&oacute; durante 90 min a temperatura ambiente. El revelado se realiz&oacute; adicionando 100 &micro;L/pocillo de orto-fenilendiamina 0,5 mg/mL en disoluci&oacute;n citrato (Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 52 mM y &aacute;cido c&iacute;trico 25 mM, pH 5,6) y se mantuvo la placa en oscuridad durante 20 min. Se detuvo la reacci&oacute;n adicionando HCl 3M, se ley&oacute; la densidad &oacute;ptica (DO) a una longitud de onda de 492 nm en un lector de ELISA. Al final de cada incubaci&oacute;n se realiz&oacute; el lavado de las placas con disoluci&oacute;n de lavado (disoluci&oacute;n tamp&oacute;n fosfato salina pH 7,2, Tween 20 0,05 %). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">  El c&aacute;lculo del t&iacute;tulo de anticuerpos IgG se realiz&oacute; mediante un an&aacute;lisis de regresi&oacute;n entre los valores de DO y el logaritmo en base 10 del rec&iacute;proco de la diluci&oacute;n del suero. Para la selecci&oacute;n de los animales respondedores, se consider&oacute; como valor de corte para la titulaci&oacute;n, el doble del valor de absorbancia del suero preinmune (t=0) diluido 1/100, por tanto, el t&iacute;tulo de anticuerpos se expres&oacute; como el log10 de la diluci&oacute;n del suero que dio un valor de DO igual al doble del valor obtenido para el suero preinmune (t=0). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">  <strong>Evaluaci&oacute;n de la conservaci&oacute;n de la antigenicidad:</strong> Para la evaluaci&oacute;n de la antigenicidad, se recubrieron las placas en las mismas condiciones que para el ELISA de titulaci&oacute;n. Se adicion&oacute; el suero de referencia internacional contra el serogrupo 23 (1/6400), disuelto en soluci&oacute;n tamp&oacute;n de diluci&oacute;n, previamente incubado durante toda la noche a 4 &ordm;C, con diluciones seriadas 1/10 del PsC en un intervalo de concentraciones de 0,005 &micro;g/mL hasta 500 &micro;g/mL. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">  El resto del procedimiento se realiz&oacute; de forma similar a lo descrito para la titulaci&oacute;n contra el PsC. Los resultados se muestran como porcentaje de inhibici&oacute;n y se calcul&oacute; seg&uacute;n la siguiente f&oacute;rmula: 1-[DO (sin inhibidor)-DO (con inhibidor) / DO (sin inhibidor)] X 100.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Análisis Estadístico</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La influencia de la concentración de PsFg-23F, los equivalentes de NaIO<sub>4</sub> y la temperatura en la reacción de oxidación con NaIO<sub>4</sub> se realizó a través de un diseño experimental factorial multinivel 3&#094;3 (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/t0102117.jpg">tabla 1</a>). Se escogieron como variables respuestas; la cantidad de grupos carbonilos introducidos en la estructura del PsFg-23F, expresados como mol de grupo carbonilo por unidad repetitiva (UR), y el rendimiento de la reacción a través del recobrado de PsFg-23F. El análisis estadístico se realizó a través del programa estadístico de computación Statgraphics Centurion XV (StatPoint Inc. 1982-2007), se consideró significación estadística para p = 0,05. Las diferencias en la respuesta de anticuerpos IgG anti-PsC 23F entre los distintos grupos experimentales se realizó mediante la aplicación de la prueba de Kruskal Wallis (no paramétrico) y la prueba de Dunn <em>a posteriori</em>. Las diferencias se consideraron significativas para p = 0,05. El procesamiento estadístico de los datos de todos los experimentos se realizó con el programa GraphPad Prism, versión 4.00.</font></p>     
<p align="justify">&nbsp;</p>         <p align="justify"><font face="Verdana" size="3"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Caracterización del PsC 23F mediante RMN <sup>1</sup>H </strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identidad del PsC de <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotipo 23F se realizó mediante RMN <sup>1</sup>H. Se apreciaron las señales correspondientes a los grupos metilos de la a-L-ramnosa y ß-L-ramnosa a 1,26 y 1,36 ppm respectivamente. Además, se identificaron las señales correspondientes a los cuatro anoméricos a 4,83; 4,85; 4,93 y 5,1 ppm lo cual coincide con lo reportado en la caracterización de la unidad repetitiva del serotipo 23F por RMN <sup>1</sup>H y con el espectro registrado para el PsC 23F ATCC de referencia. Adicionalmente se obtuvo un Ps de 23F sin sustituyente glicerol-fosfato según lo descrito por James Richards en 1988 (17) para utilizarlo como referencia de afectación del sustituyente glicerol-fosfato en los ensayos de identidad por RMN <sup>1</sup>H y de antigenicidad por ELISA.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Obtención del PsFg-23F mediante hidrólisis ácida</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fragmentación de los PsC se implementa mediante métodos físicos, mecánicos y químicos. La disminución de la talla del PsC 23F se estudió mediante hidrólisis ácida y se evaluaron dos tipos de ácidos en diferentes condiciones. Los resultados muestran que tanto con HAc como TFA se obtienen PsFg-23F con tallas entre 10-30 kDa, aunque los mejores rendimientos (84 %) se alcanzaron con TFA (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/t0202117.jpg">tabla 2</a>). Al ser el TFA un ácido más fuerte se requiere de un menor tiempo, así como de una menor temperatura de reacción. Estos resultados son comparables con los reportados para la reducción de la talla molecular de polisacáridos de neumococo por hidrólisis ácida en cuanto a la eficiencia del TFA (19).</font></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un requisito muy importante al modificar los PsC para utilizarlos como ant&iacute;genos de vacunas conjugadas es lograr conservar los ep&iacute;topes B. La unidad repetitiva del PsC 23F presenta dos ramificaciones, un residuo de L-ramnosa que debe ser conservado ya que es un determinante antig&eacute;nico, lo cual se demostr&oacute; con sueros de conejos, de caballos y humanos (20). La otra ramificaci&oacute;n es un sustituyente glicerol-fosfato de la cual no encontramos informaci&oacute;n sobre su importancia inmunol&oacute;gica. Ambas ramificaciones pueden sufrir hidr&oacute;lisis con TFA (21) y de ser eliminadas pueden causar afectaci&oacute;n de la antigenicidad del PsFg-23F. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los espectros de RMN <sup>1</sup>H de los PsFg-23F obtenidos con ambos &aacute;cidos mostraron que todos conservaron la identidad de la unidad repetitiva al compararse con el espectro del PsC 23F, excepto cuando se utiliz&oacute; TFA 0,25 M (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0102117.jpg">figura 1A</a>). En el espectro correspondiente se aprecia una se&ntilde;al en &delta; 5,12 ppm caracter&iacute;stica de la ausencia del sustituyente glicerol-fosfato (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0102117.jpg">figura1B</a>) y que se corresponde con la &alpha;-L-ramnosa seg&uacute;n lo reportado por Richards en 1988 (17).</font></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La antigenicidad se evalu&oacute; mediante un ELISA de inhibici&oacute;n, para lo cual se utiliz&oacute; un suero de referencia espec&iacute;fico contra el serogrupo 23. Las curvas de inhibici&oacute;n registradas con los diferentes fragmentos presentaron similitud a la obtenida para el PsC 23F, excepto para los fragmentos con afectaciones del sustituyente glicerol-fosfato (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0202117.jpg">figura 2</a>). </font></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El PsC 23F sin sustituyente glicerol-fosfato obtenido como referencia del estudio no es capaz de inhibir al suero espec&iacute;fico en un 100 %, y el PsFg-23F (0,25M de &aacute;cido trifluoroac&eacute;tico) con afectaci&oacute;n parcial del sustituyente glicerol-fosfato necesit&oacute; m&aacute;s de 10 veces la concentraci&oacute;n para alcanzar el 50% de inhibici&oacute;n en comparaci&oacute;n con el resto de los derivados evaluados (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0202117.jpg">figura 2</a>). En nuestro caso, todos los fragmentos obtenidos se encuentran en el mismo intervalo de tallas moleculares (K<sub>D</sub>), luego, la disminuci&oacute;n de la antigenicidad est&aacute; directamente relacionada con la afectaci&oacute;n del sustituyente glicerol-fosfato. Este resultado indica que el glicerol-fosfato juega un rol fundamental en la antigenicidad del serotipo 23F, lo cual ha sido observado para el serotipo 18C de neumococo donde este sustituyente es un elemento importante en el reconocimiento por parte del sistema inmune (18). </font></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Obtención del PsOx-23F mediante la oxidación con NaIO<sub>4</sub></strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La unidad repetitiva del PsC 23F presenta varios sitios posibles de ser oxidados, algunos de los cuales se localizan en el residuo de L-ramnosa de la cadena lateral, descrita como determinante antig&eacute;nico (19). Con el objetivo de tener mayor conocimiento de la reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n con NaIO<sub>4</sub> se realiz&oacute; un dise&ntilde;o experimental multifactorial 3&#094;3. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico arroj&oacute; que los par&aacute;metros equivalentes de NaIO<sub>4</sub> (p=0,000 para ambas variables) y la temperatura (p=0,0036 para nivel de oxidaci&oacute;n y p=0,0001 para el rendimiento) influyen de manera significativa sobre el nivel de oxidaci&oacute;n y los rendimientos obtenidos, aunque los equivalentes de NaIO<sub>4</sub> presentan mayor significaci&oacute;n. De manera inesperada los resultados mostraron que la variaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de Ps en la reacci&oacute;n no influy&oacute; en ninguna de las variables evaluadas. Tanto los equivalentes de NaIO<sub>4</sub> como la temperatura tienen una relaci&oacute;n directa con la generaci&oacute;n de grupos aldeh&iacute;do (p= 0,0018).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">  Adem&aacute;s, se realiz&oacute; una evaluaci&oacute;n de la conservaci&oacute;n de la identidad y la antigenicidad sobre los PsOx-23F. Al comparar los espectros de RMN <sup>1</sup>H de PsOx-23F con diferentes contenidos de grupos carbonilos se observ&oacute; afectaci&oacute;n de la identidad de la UR del PsC 23F (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0302117.jpg">figura 3</a>). A medida que aument&oacute; el n&uacute;mero de grupos carbonilos generados, los espectros de RMN <sup>1</sup>H presentaron menor resoluci&oacute;n.  El an&aacute;lisis espectrosc&oacute;pico muestra una disminuci&oacute;n de la intensidad relativa de la se&ntilde;al correspondiente al grupo metilo de la &alpha;-L-ramnosa (&delta; 1,26 ppm) y un aumento de las se&ntilde;ales a &delta; 1,20; 2,04; 2,14 y 5,20 ppm, respectivamente. Se puede relacionar la se&ntilde;al de 1,20 ppm con el grupo metilo de la ramnosa lateral oxidada y la se&ntilde;al de &delta; 5,20 ppm con el carbono anom&eacute;rico de este sustituyente. El conjunto de modificaciones apreciadas evidencian que desde la generaci&oacute;n de un carbonilo cada 2,5 UR existe afectaci&oacute;n de la identidad de la UR en el PsOx-23F. Por otro lado, a medida que se aumenta la oxidaci&oacute;n sobre el Ps 23F ocurre afectaci&oacute;n de la antigenicidad, la cual es marcada en el m&aacute;ximo nivel de activaci&oacute;n evaluado (C = O:1 UR) (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0402117.jpg">figura 4</a>), por lo que se aprecia una correspondencia con los resultados obtenidos en el an&aacute;lisis espectrosc&oacute;pico. Lo anterior indica que la disminuci&oacute;n de la antigenicidad se debe a la oxidaci&oacute;n excesiva del residuo de &alpha;-L-ramnosa, donde se encuentran los sitios m&aacute;s susceptibles a la oxidaci&oacute;n (20) y al mismo tiempo es un determinante antig&eacute;nico (21).</font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">  Se realizaron 5 r&eacute;plicas de las condiciones de oxidaci&oacute;n para obtener un grupo carbonilo entre 5-7 UR. Se obtuvo un rendimiento promedio de 76,4 %; un nivel de oxidaci&oacute;n de un grupo carbonilo cada 6,2 y una K<sub>D</sub> promedio de 0,55.  El espectro del PsOx-23F mostr&oacute; todas las se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas del PsC 23F natural. Adem&aacute;s, se observan los cuatros protones anom&eacute;ricos, con intensidades relativas similares a las del PsFg-23F, que indica que se conserv&oacute; la cadena lateral. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado no se observaron se&ntilde;ales relacionadas con la afectaci&oacute;n del sustituyente glicerol-fosfato, el cual es imprescindible para mantener la antigenicidad del PsC 23F. No obstante, se apreciaron nuevas se&ntilde;ales a &delta; 1,20; 2,04; 5,20; 6,59 y 9,22 ppm, aunque todas con baja intensidad relativa. Estos corrimientos qu&iacute;micos est&aacute;n relacionados con los cambios estructurales que provocaron la generaci&oacute;n de los grupos carbonilos en la estructura del PsOx-23F como se describi&oacute; anteriormente</font><font face="verdana" size="2">.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong>Conjugación del PsOx-23F a la proteína portadora toxoide tetánico</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se seleccion&oacute; un PsOx-23F con un carbonilo cada 6 UR y se conjug&oacute; a la prote&iacute;na portadora TT mediante la reacci&oacute;n de aminaci&oacute;n reductiva para conocer si estos pod&iacute;an inducir una respuesta inmune espec&iacute;fica contra el PsC 23F. Las características de los conjugados obtenidos fueron: un recobrado superior al 48 %, una relación carbohidrato: proteína en el intervalo de 1,1:1 hasta 1:1,2 y un porcentaje de proteína no conjugada promedio de 12,5 %, determinada en columna SUPEROSA 12. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los valores obtenidos de la relación carbohidrato: proteína se encuentran incluidos en el intervalo recomendado por la OMS para la obtención de vacunas conjugadas de neumococo (11). Además, el análisis en cromatografía líquida de alta resolución en columna de exclusión molecular arrojó una KD de 0,33 en columna TSK 5000. Los títulos de IgG contra el PsC 23F inducido por el conjugado fueron superiores con significación estadística a los inducidos por el grupo inmunizado con PsC 23F luego de la segunda y tercera dosis (<a href="/img/revistas/vac/v26n1/f0502117.jpg">figura 5</a>).  Por otro lado, el conjugado incrementó la generación de IgG después de cada inmunización, aunque solo fue estadísticamente significativa luego de la segunda dosis. </font></p>     
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Siete días posteriores a la inmunización con polisacárido capsular, se observó un incremento significativo de los títulos de IgG, solo en el grupo previamente inmunizado con conjugado. Esto indica que la respuesta inmune generada por los conjugados fue capaz de inducir memoria inmunológica, que supone la presencia de poblaciones específicas al PsC de células B de memoria, lo cual es característico de antígenos de tipo T dependientes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados experimentales permiten concluir que se puede utilizar la hidrólisis ácida para la fragmentación del PsC 23F de manera que se conserve la identidad de la UR y la antigenicidad del Ps. El sustituyente glicerol-fosfato presente en el PsC 23F es importante para el reconocimiento por los anticuerpos, por lo cual debe ser conservado.  La oxidación peryódica sobre el polisacárido 23F debe ser controlada para evitar la disminución de la antigenicidad por la afectación del residuo de L-ramnosa. Los conjugados obtenidos por esta vía generan una respuesta T-dependiente específica contra el polisacárido capsular serotipo 23F.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong>REFERENCIAS</strong></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Simonsen L, Taylor RJ, Young-Xu Y, Haber M, May L, Klugman KP. Impact of pneumococcal conjugate vaccination of infants on pneumonia and influenza hospitalization and mortality in all age groups in the United States. MBio 2011;2:e00309-10.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Pilishvili T, Lexau C, Farley M, Hadler J, Harrison L, Bennett N, et al. Sustained reductions in invasive pneumococcal disease in the era of conjugate vaccine. J Infect Dis 2010;201:32-41</font><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 3. Lees A, Nelson B, Mond J. Activation of soluble polysaccharides with 1-cyano-4-dimethylaminopyridinium tetrafluroborate for use in protein–polysaccharide conjugate vaccines and immunological reagents. Vaccine 1996;14:190–8.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Gildersleeve J, Oyelaran O, Simpson J, Allred B. Improved Procedure for Direct Coupling of Carbohydrates to Proteins via Reductive Amination. Bioconjug Chem 2008;19(7):1485-90.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Paterson G, DunKan J. Recent advances in the field of <em>Salmonella</em> Typhi vaccines. Human Vaccine 2010;6(5):379-84.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Qingrui H, Dongxia L, Aijun K, Wenqi A, Bei F, Xiaowei M, et al. PEG as a spacer arm markedly increases the immunogenicity of meningococcal group Y polysaccharide conjugate vaccine. Journal of Controlled Release 2013;172:382-9.    </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Pawlowski A, Kallenius G, Svenson S. Preparation of pneumococcal capsular polysaccharide-protein conjugate vaccines utilizing new fragmentation and conjugation technologies. Vaccine 2000;18(18):1873-85.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Soubal J, Peña L, Santana D, Valdés Y, García D, Pedroso J, et al. Procedure for the conjugation of the <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotype 6B capsular polysaccharide to the tetanus toxoid. Biotecnología Aplicada 2013;30:208-15.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Kamerling J. Pneumococcal polysaccharides: A chemical view. En: Tomasz A, editor. <em>Streptococcus pneumoniae</em>: molecular biology and mechanisms of disease. New York: Mary Ann Lierbert, Inc.; 2000. p.85–93.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. John S, Laskowich E, Michon F, Kaiser R, Arumugham R. Monitoring activation sites on polysaccharides by GC–MS. Anal Biochem 2006;358(1):136-42.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. World Health Organization. Recommendations for the production and control of pneumococcal conjugate vaccine. Technical Report Series No 927. Geneva: WHO; 2005.    </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Bruckner J. Estimation of monosaccharides by the orcinol-sulfuric acid reaction. Biochemical Journal 1995;60:200-5.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Porro M, Vitti S, Antoni G, Neri P. Modifications of Park-Johnson ferricyanide submicromethod for the assay of reducing groups in carbohydrates. Anal Biochem. 1981;118:301-6.     </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951;193:265-75.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Chang J, SerranoY, Garrido R, Pedroso J, Cardoso F, García D, et al. Caracterización de conjugados inmunogénicos de polisacárido capsular <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotipo 14. VacciMonitor 2013;22(1):15-21.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. World Health Organization. Training Manual for Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for the Quantitation of <em>Streptococcus pneumoniae </em>Serotype-Specific IgG (Pn Ps ELISA). London: World Health Organization Pneumococcal Serology Reference Laboratories; 2016. Disponible en: https://www.vaccine.uab.edu/ELISA%20protocol.pdf.    </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Richards J, Perry M. Structure of the specific capsular polysaccharide of <em>Streptococcus pneumoniae</em> type 23F (American type 23). Biochem Cell Biol 1988;66:758-71.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Chang J, Serrano Y, Garrido R, Rodríguez L, Pedroso J, Cardoso F, et al. Relevance of O-Acetyl and phosphoglycerol groups for the antigenicity of <em>Streptococcus pneumoniae</em> serotype 18C capsular polysaccharide. Vaccine 2012;30:7090-6.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Park S, Nahm M. L-rhamnose is often an important part of immunodominant epitope for pneumococcal serotype 23F polysaccharide antibodies in human sera immunized with PPV23. PLoSOne 2013;8:e83810. doi: 10.1371/journal.pone.0083810.     </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Charlotte C, Yu I, Manam V, Hepler R, PHennessey J. Carbohydrate composition analysis of bacterial polysaccharides: optimized acid hydrolysis conditions for HPAEC-PAD analysis. Anal Biochem 1992;201:343-9.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Kim J, Laskowich E, Michon F, Kaiser R, Arumugham R. Monitoring activation sites on polysaccharides by GC-MS. Anal Biochem. 2006;358:136-42.    </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Recibido: Noviembre de 2016&nbsp;&nbsp;&nbsp; &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; &nbsp;&nbsp;&nbsp;Aceptado: Enero de 2017</i></font></p>      ]]></body><back>
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