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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Plantas Medicinales]]></journal-title>
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<institution><![CDATA[,Facultad de Ciencias Médicas de Sancti Spíritus  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[An study was carried out with the aim of to prove in vitro antifungal activity against filamentous fungi of alcoholic and aqueous extracts from leaves of Pinus caribaea, by method of diffusion versus different fungi, like Microsporum gypseum, Trichophytum mentagrophytes, Microsporum canis, and Thrichophyton rubrum, which are common producers of superficial mycosis in our population. Data were statistically analized by Kruskal-Wallis&acute;s test, Mann Whitney&acute;s rank test, Friedman&acute;s test, and Wilcoxon&acute;s rank test. Authors conclude that aqueous extract and alcoholic fluid extracts (25 and 50 %), haven&acute;t antifungal activity against these fungi and that alcoholic fluids extracts (75 and 100 % had an statistically similar activity to nystatin against M. canis and T. rubrum, although showed same activity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <H2>  Actividad antif&uacute;ngica in vitro del <I>Pinus caribaea</I> (pino macho)</H2>  <I><A HREF="#autores">LIC. MIGUEL RIVERO L&Oacute;PEZ,<SUP>1</SUP> DR.  MANUEL ALVAREZ GONZ&Aacute;LEZ,<SUP>2</SUP> DRA. TANIA L&Oacute;PEZ ACOSTA<SUP>3  </SUP>Y T&Eacute;C. JUANA GONZ&Aacute;LEZ C&Aacute;CERES<SUP>4</SUP></A></I>  <H4>  RESUMEN</H4>  <I>Con el objetivo de demostrar</I> la actividad antif&uacute;ngica <I>in  vitro</I> frente a hongos filamentosos de los extractos acuoso y alcoh&oacute;lico  de hojas de pino macho, se realiza un estudio por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n  y se enfrentan &eacute;stos a diferentes especies de hongos como <I>Microsporum  gypseum, Trichophyton mentagrophytes, Microsporum canis y Trichophyton  rubrum,</I> productores frecuentes de micosis superficiales en nuestra  poblaci&oacute;n. Los datos fueron analizados estad&iacute;sticamente mediante  el <I>test</I> de Kruskal-Wallis, la prueba de rango de Mann Whitney, el  <I>test</I> de Friedman y el <I>test</I> de rango Wilcoxon. Se concluye  que el extracto acuoso y los extractos fluidos alcoh&oacute;licos al 25  y 50 % no presentaron actividad antif&uacute;ngica frente a estas especies  de hongos y que los extractos fluidos alcoh&oacute;licos al 75 y 100 %  presentaron actividad antif&uacute;ngica estad&iacute;sticamente similar  a la nistatina frente al<I> M. canis y T. rubrum</I>, aunque mostraron  la misma actividad frente a todas las especies analizadas.        <P>Descriptores DeCS: PLANTAS MEDICINALES; HONGOS; <I>IN VITRO</I>; MICOSIS  FUNGOIDES.  <H4>  ABSTRACT</H4>  An study was carried out with the aim of to prove <I>in vitro</I> antifungal  activity against filamentous fungi of alcoholic and aqueous extracts from  leaves of Pinus caribaea, by method of diffusion versus different fungi,  like <I>Microsporum gypseum,</I> <I>Trichophytum mentagrophytes</I>, <I>Microsporum  canis</I>, and <I>Thrichophyton rubrum</I>, which are common producers  of superficial mycosis in our population. Data were statistically analized  by Kruskal-Wallis&acute;s test, Mann Whitney&acute;s rank test, Friedman&acute;s  test, and Wilcoxon&acute;s rank test. Authors conclude that aqueous extract  and alcoholic fluid extracts (25 and 50 %), haven&acute;t antifungal activity  against these fungi and that alcoholic fluids extracts (75 and 100 % had  an statistically similar activity to nystatin against <I>M. canis</I> and  <I>T. rubrum</I>, although showed same activity.        <P>Subject headings: MEDICINAL PLANTS; FUNGI; IN VITRO; FUNGOYD MYCOSIS.        <P>La principal meta dentro del sector para el a&ntilde;o 2000 es la Salud  para Todos, por lo cual se ha establecido un plan para mejorar este indicador  en la poblaci&oacute;n,<SUP>1</SUP> que encierra la erradicaci&oacute;n  y prevenci&oacute;n de gran cantidad de enfermedades, lo que implica la  disponibilidad de los medicamentos a toda la poblaci&oacute;n. Esto se  ha dificultado por su costo elevado, lo que ha estimulado la b&uacute;squeda  de alternativas en diferentes pa&iacute;ses, una de ellas es las plantas  medicinales.        <P>Nuestro pa&iacute;s no est&aacute; excento de dificultades materiales  para obtener los medicamentos necesarios y se ha situado a la vanguardia  en la b&uacute;squeda de estas alternativas, un ejemplo son los trabajos  investigativos con las plantas medicinales donde se encuentran incluidos  todos los factores que garantizan su estudio y la producci&oacute;n de  preparados que, posteriormente, se adquieren por la poblaci&oacute;n.        <P>Para esta finalidad se han utilizado los conocimientos emp&iacute;ricos  que posee la poblaci&oacute;n acerca del uso de las plantas, lo que se  ha demostrado cient&iacute;ficamente.        <P>Basado en esta forma de trabajo, decidimos el estudio del <I>Pinus caribaea</I>  (pino macho) para demostrar la actividad antif&uacute;ngica de sus extractos  de hojas, al enfrentarlo <I>in vitro</I> a diferentes especies de hongos  filamentosos del grupo de los dermatofitos, causantes frecuentes de micosis  superficiales en nuestra poblaci&oacute;n.        <P>Una interrogante que se plantea como problema fundamental es &iquest;Poseen  los extractos acuoso y fluido alcoh&oacute;lico de hojas del pino macho,  actividad antif&uacute;ngica frente a los hongos filamentosos?        <P>Los objetivos de este trabajo son determinar la presencia de actividad  antif&uacute;ngica de los extractos acuoso y fluidos alcoh&oacute;licos  de hojas de pino macho y comparar el efecto inhibitorio relativo de estos  extractos de hojas (acuoso y fluido alcoh&oacute;lico), as&iacute; como  a los diferentes microorganismo.  <H4>  BREVE RECUENTO</H4>  El empleo terap&eacute;utico de las plantas en los pueblos constituye una  parte importante de la cultura universal que ha acumulado la humanidad;  sin embargo, el proceso de selecci&oacute;n biol&oacute;gica de las plantas  recogidas al azar y el examen fitoqu&iacute;mico de las plantas con el  objetivo de identificar nuevos compuestos qu&iacute;micos no han dado resultado,  no obstante, la OMS estima que el 80 % de los m&aacute;s de 4 000 millones  de habitantes de la tierra conf&iacute;an en las medicinas tradicionales  para sus principales necesidades.<SUP>2</SUP>        <P>En estos a&ntilde;os, el estudio de las plantas medicinales ha ganado  en importancia, la actividad antimicrobiana de los extractos de plantas  y productos naturales ha revelado el potencial de las plantas superiores  como una fuente de agentes antiinfectivos.<SUP>3</SUP>        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Muchos pa&iacute;ses se han involucrado en la obtenci&oacute;n de medicamentos  a partir de las plantas; Bulgaria ha estudiado la actividad antiinfecciosa  de los polifenoles extra&iacute;dos de sus plantas medicinales,<SUP>4</SUP>  los pa&iacute;ses del Tercer Mundo poseen los primeros lugares en estos  programas de estudio, para garantizar la obtenci&oacute;n de preparados  asequibles a toda la poblaci&oacute;n.<SUP>5-9</SUP>        <P>La actividad antif&uacute;ngica de las plantas ha sido muy estudiada  por la resistencia de los g&eacute;rmenes de las micosis a los distintos  tratamientos, sobre todas las micosis superficiales producidas por las  diferentes especies de dermatofitos.<SUP>5,10-12</SUP>        <P>El <I>Pinus caribaea</I> (pino macho) es una planta abundante en otras  regiones del mundo, cuyas hojas son de 2 clases: las primeras, lineales  o escamiformes y caducas; las secundarias, aciculares que forman el follaje  ordinario, son estrechas, lineales y salen de las axilas de las primarias  en fasc&iacute;culas de 2 &oacute; 3 subtendidas por la escama de la yema,  algunas de las cuales est&aacute;n unidas para formar una vaina; las hojas  son verde oscuro, brillantes, de 17 a 30 cm de largo.<SUP>13</SUP> A esta  planta se le han descrito usos en la hemorragia posparto, curar la impotencia,  estimular la actividad inmunol&oacute;gica, como antibacterina, antitumoral,  antiviral y estimulante de las c&eacute;lulas granuloc&iacute;tica. <SUP>14</SUP>        <P>El uso popular de esta planta no est&aacute; evaluado cient&iacute;ficamente,  como antif&uacute;ngico en las micosis superficiales, por esta raz&oacute;n,  nos decidimos a realizar un estudio de los extractos de sus hojas frente  a dermatofitos comunes en nuestra poblaci&oacute;n, con el prop&oacute;sito  de demostrar la validez de este uso.  <H4>  VARIABLES</H4>  Porcentaje de inhibici&oacute;n relativa (PIR): Asumiendo que el m&aacute;ximo  efecto inhibitorio es el producto por el control positivo (CP), se determina  el porcentaje de efecto de inhibici&oacute;n del crecimiento del microoganismo  de cada extracto, relativo al CP. Para el c&aacute;lculo se procede de  la manera siguiente:      <PRE>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;<IMG SRC="x.gif" HEIGHT=15 WIDTH=13> di&aacute;m halo inhib del extracto  <FONT SIZE=-2>PIR = ----------------------------------------- x 100  </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;<IMG SRC="x.gif" HEIGHT=15 WIDTH=13> di&aacute;m halo inhib control positivo</PRE>    <H4>  M&Eacute;TODOS</H4>  Se realiza un estudio experimental en el Laboratorio de Microbiolog&iacute;a  del Hospital Ginecoobst&eacute;trico Provincial Docente de Sancti Sp&iacute;ritus,  para determinar la presencia de actividad antif&uacute;ngica de los extractos  acuoso y fluido alcoh&oacute;lico de hojas de pino macho.        <P><I>Recolecci&oacute;n del material vegetal</I>. El material vegetal  previamente identificado y comparado con la muestra de referencia No. 2012  del herbario del Jard&iacute;n Bot&aacute;nico de Sancti Spir&iacute;tus,  fue recolectado en la zona del Cacahual donde existe una poblaci&oacute;n  completamente desarrollada, lo que demuestra la idoneidad de la zona para  el desarrollo de esta planta. Las hojas fueron recogidas en horas tempranas  de la ma&ntilde;ana para evitar la evaporaci&oacute;n del metabolito aceite  esencial.        <P><I>Secado</I>. Las hojas fueron secadas a la sombra durante 13 d&iacute;as.        <P><I>Extracto</I>. Los extractos fueron suministrados por el Laboratorio  de Control de la Calidad de la Empresa Provincial de Suministros M&eacute;dicos  en la forma siguiente: extracto acuoso (obtenido por decocci&oacute;n al  20 %) y extracto fluido alcoh&oacute;lico diluido al 25, 50, 75 y 100 %  con etanol al 70 % como menstruo.        <P><I>Controles</I>. Positivo: nistatina 4 mg/mL; negativo: alcohol, 70  %. Para ambos, agua destilada.        <P><I>Especies microbianas</I>.<I> Microsporum gypseum, Trichophyton mentagrophytes,  Microsporum canis y Trichophyton rubrum.</I> Estas especies microbianas  fueron aisladas y purificadas en el Laboratorio de Micolog&iacute;a del  Hospital "Calixto Garc&iacute;a" de Ciudad de La Habana.        ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>Soluci&oacute;n salina para homogeneizar hongos</I>. Agua destilada,  NaCl y Tween 80. Se homogenizan los hongos de 1 mL por placa. Se utiliza  el patr&oacute;n No. 9 de la escala Mc Farlan para utilizar una concentraci&oacute;n  equivalente.        <P><I>Medio de cultivo</I>. Se utiliza el medio Saboureaud-dextrosa de  la Merck.        <P><I>Ensayo</I>. Se prepara el medio de cultivo y se mantiene en ba&ntilde;o  Mar&iacute;a a 45 <SUP>o</SUP>C, se inocula la soluci&oacute;n homogeneizada  de hongo y se vierte en placas grandes, 15 mL por placa. Una vez solidificado  el medio, se realizan perforaciones de 10 mm de di&aacute;metro donde se  inoculan 100 L de extractos y controles; posteriormente se incuban a 25  <SUP>o</SUP>C durante 7 d&iacute;as. Este ensayo se repite 3 veces.        <P><I>Lectura</I>. Se mide el di&aacute;metro en cent&iacute;metros de  la zona de inhibici&oacute;n del crecimiento del microorganismo. Se realizan  2 mediciones desde la l&iacute;nea que define el halo de inhibici&oacute;n  de un lado al otro del centro y se toma como resultado el valor promedio  de estas mediciones; posteriormente se calcula el porcentaje de inhibici&oacute;n  relativo.  <H4>  RESULTADOS</H4>  Los datos obtenidos se muestran en las tablas 1 y 2 y se les realizan las  pruebas estad&iacute;sticas necesaria para su confirmaci&oacute;n.        <P>TABLA 1.<I> Media de la zona de inhibici&oacute;n (cm) de los extractos  frente a las diferentes especies de hongos en los 3 ensayos</I>      <CENTER><TABLE CELLPADDING=4 >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">Hongos</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>Nistatina</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>100 %</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>75 %</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%"><I>M. gypseum</I></TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>2,3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>1,6</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,2</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER><I>Test </I>de Friedman</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>2,3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>X<SUP>2</SUP>=6</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>2,3</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,5</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>p=0,0498</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%"><I>T.mentagrophytes</I></TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>2,4</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,5</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,2</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>2,1</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,2</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>X<SUP>2</SUP>=6</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>2,5</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      <CENTER>1,8</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="17%">      ]]></body>
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<body><![CDATA[<P>No obstante, al analizar la tabla 2, se muestran los porcentajes de  inhibici&oacute;n relativos de los extractos frente al control, observamos  que &eacute;stos muestran una importante capacidad antif&uacute;ngica.  El extracto al 100 % alcoh&oacute;lico se comporta frente a <I>M. canis</I>  y <I>T. rubrum</I> casi al mismo nivel que la nistatina, comprobado por  el <I>test</I> en la tabla 1, donde se demostr&oacute; estad&iacute;sticamente  que en esos casos los 3 productos se comportaron de igual forma, lo cual  es muy alentador para su uso contra las micosis provocadas por estos hongos.        <P>El extracto acuoso y las diluciones del extracto fluido alcoh&oacute;lico  al 25 y 50 %, as&iacute; como los controles acuoso y alcoh&oacute;lico  no presentaron actividad antif&uacute;ngica.  <H4>  CONCLUSIONES</H4>    <OL>      <LI>  El extracto acuoso de hojas de pino macho no present&oacute; actividad  antif&uacute;ngica, as&iacute; como los extractos fluidos alcoh&oacute;licos  al 25 y 50 %, frente a los hongos utilizados en el ensayo.</LI>        <LI>  Los extractos fluidos alcoh&oacute;licos de hojas al 100 y 75 % presentaron  actividad antif&uacute;ngica similar a la nistatina frente al <I>M. canis</I>  y <I>T. rubrum</I>.</LI>        <LI>  El extracto fuido alcoh&oacute;lico de hojas de pino macho al 100 % se  comport&oacute; con mayor actividad que los restantes extractos.</LI>      </OL>    <H4>  REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4>    <OL>      <!-- ref --><LI>  De Canales FH, De Alvarado EL, Pineda EB. Metodolog&iacute;a de la investigaci&oacute;n:  Manual para el desarrollo del personal de la salud. M&eacute;xico: OPS.  PASCCAD, 1989:24-90.</LI>    <!-- ref --><LI>  Farnsworth NR, et al. Las plantas medicinales en la terap&eacute;utica.  Bol Sanit Panam 1989;107(4):314-29.</LI>    <!-- ref --><LI>  Rojas A, et al. Screening for antimicrobial activity of crude drug extracts  and pure natural products from Mexican medicinal plants. J Nat Etnopharmacol  1992;35:275-83.</LI>    <!-- ref --><LI>  Lozoya X, Navarro VM, Zurita M. Solanum chrysotrichum a plant used in Mexico  for the treatment of skin micosis. J Nat Etnopharmacol 1992;36(2):127-32.</LI>    <!-- ref --><LI>  Palacios C, et al. Cicatricial, antibacterial and antimycotic effects of  Tepescohuite in experimental animals. Rev Invest Clin 1991;43(3):205-10.</LI>    <!-- ref --><LI>  Dom&iacute;nguez XA, et al. Isolation and identification of xochiloldione  and isoxochitlolone from <I>Cnidosculus urens</I>. J Nat Product 1992;55(2):221-4.</LI>    <!-- ref --><LI>  Barbosa - Filho JH, et al. Chemical and pharmacological investigation of  <I>Solanum species</I> of Brazil. A search for solanodine and other potentialy  useful therapeutic agents. Mem Inst Oswaldo Cruz 1991;86(suppl 2):189-91.</LI>    <!-- ref --><LI>  Paulo M de Q, et al. Antimicrobial activity of benzylisoquinoline alkaloide  from <I>Annona salzmanni</I>. Etnopharmacol 1992;36(1):39-41.</LI>    <!-- ref --><LI>  Garg SC, Siddiqui N. Antifungal activity of some essential oil isolate.  Pharmazie 1992;47(6):467-8.</LI>    <!-- ref --><LI>  C&aacute;ceres A, L&oacute;pez BR, Gir&oacute;n MA, Logemann H Plants used  in Guatemala for the treatment of dermatophytic infection. 1. Screening  for the antimicotic activity of 44 plants extracts. J Etnopharmacol 1991;31(3):263-76.</LI>    <!-- ref --><LI>  Bader G, Kulnanek Y, Ziegler - Bohme H. The antifungal action of poligalacic  acid glycosides. Pharmazie 1990;45(8):618-20.</LI>    <!-- ref --><LI>  Roig y Mesa JT. Plantas arom&aacute;ticas y venenosas de Cuba. Ed. Revolucionaria.  La Habana:Instituto Cubano del Libro, 1962.</LI>    <!-- ref --><LI>  NAPRALERT: Profile for <I>Pinus caribaea</I> (3 par query for nap, 1-3-94).  Univ of Illinois, 1994.</LI>    </OL>  Recibido: 25 de febrero de 1997. Aprobado: 26 de febrero de 1997.        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lic. <I>Miguel Rivero L&oacute;pez</I>. Facultad de Ciencias M&eacute;dicas  de Sancti Sp&iacute;ritus, Cuba.        <P><SUP>1&nbsp;<A NAME="autores"></A></SUP>Profesor Asistente.      <BR><SUP>2 </SUP>Doctor en Ciencias. Profesor Titular.      <BR><SUP>3 </SUP>Profesor Instructor. Jefe del Departamento de Microbiolog&iacute;a.      <BR><SUP>4 </SUP>T&eacute;cnica en Docencia.          ]]></body><back>
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