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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[PRODUÇÃO DE 4-NEROLIDILCATECOL EM SUSPENSÕES CELULARES DE POTHOMORPHE UMBELLATA (L.) MIQ ( PIPERACEAE )]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this study we presented data related to the establishment of Pothomorphe umbellata cell suspension culture initiated from friable callus. Callus obtained from foliar blade explants of plants developed in vivo, were cultivated in MS medium supplemented with 1,0 mg.L-1 2,4-D + 0,1mg.L-1 BA. Cell suspension media were analyzed in relation to their effect on the production of 4-nerolidylcathechol and cell mass yield. MS supplemented with 20g.L-1 glucose + 1,0 mg.L-1 2,4-D + 0,1 mg.L-1 BA was the most efficient for cell biomass production while MS supplemented with 30g.L-1 sucrose + 1,0 mg.L-1 2,4-D + 0,1 mg.L-1 BA was the most efficient for 4-nerolidylcathechol production. Elicitation with glucana stimulated the synthesis of the substance and was positively influenced by incubation time and elicitor concentration. Maximum concentration of 4-nerolidylcatechol (862,38 mg/g DW) was obtained after incubation with 75 mg glucana/g cell FW for 24 h. This value is higher than those produced by plants developed in vivo and by non-elicitated cell suspensions.]]></p></abstract>
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<kwd lng="pt"><![CDATA[suspensão celular]]></kwd>
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<kwd lng="pt"><![CDATA[planta medicinal]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Universidade do Estado do Rio de Janeiro</p><h2>PRODU&Ccedil;&Atilde;O DE 4-NEROLIDILCATECOL  EM SUSPENS&Otilde;ES CELULARES    <br> DE <i>POTHOMORPHE UMBELLATA</i> (L.) MIQ (  PIPERACEAE )</h2>    <p><a href="#autor">Dra. Vera Regina Campos Viana,<span class="superscript">1</span>  Dr. Helio M. Alves,<span class="superscript">1</span> MSc. Cl&aacute;udia Sim&otilde;es<span class="superscript">2</span>  y Dra. Solange Faria Lua Figueiredo<span class="superscript">1</span></a><span class="superscript"><a name="cargo"></a></span></p><h4>Resumo</h4>    <p>Neste  trabalho s&atilde;o apresentados dados referentes ao estabelecimento de suspens&otilde;es  celulares de <i>Pothomorphe umbellata</i>. As culturas foram iniciadas com calos  fri&aacute;veis cultivados em meio MS + 1,0 mg.L<span class="superscript">-1</span>  2,4-D + 0,1mg.L<span class="superscript">-1</span> BA desenvolvidos da l&acirc;mina  foliar de plantas adultas cultivadas <i>in vivo</i>. Os meios de cultura foram  analisados quanto ao seu efeito sobre a produ&ccedil;&atilde;o de biomassa e s&iacute;ntese  de 4-nerolidilcatecol. O meio com 20g.L<span class="superscript">-1</span> glicose  + 1,0 mg.L<span class="superscript">-1</span> 2,4-D + 0,1mg.L<span class="superscript">-1</span>  BA foi o mais eficiente para a produ&ccedil;&atilde;o de biomassa enquanto a substitui&ccedil;&atilde;o  da fonte de carbono por 30g.L<span class="superscript">-1</span> sacarose propiciou  maior produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol. Visando estimular a capacidade  biossint&eacute;tica das culturas empregou-se a t&eacute;cnica de elicita&ccedil;&atilde;o,  com glucana. Constatou-se que o tempo de incuba&ccedil;&atilde;o e a concentra&ccedil;&atilde;o  do el&iacute;citor influenciaram positivamente o processo. Os teores m&aacute;ximos  detectados (862,38 <font face="Symbol">m</font>g/g PS) foram alcan&ccedil;ados  ap&oacute;s a incuba&ccedil;&atilde;o das culturas com 75 <font face="Symbol">m</font>g  glucana/g PF por 24 h. Estes valores superaram aqueles produzidos pelas plantas  intactas e pelas suspens&otilde;es celulares n&atilde;o elicitadas.     <br> Abreviaturas:  2,4-D- &aacute;cido 2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico; BA- 6-benziladenina; MS-  meio Murashige &amp; Skoog; PF- peso fresco; PIC - picloram; PS- peso seco.</p>    <p><i>Palavras  clave:</i> suspens&atilde;o celular, <i>photomorphe umbellata</i> pariparoba,  planta medicinal.</p><h4>Introdu&ccedil;&atilde;o</h4>    <p>Para sobreviver em sua  condi&ccedil;&atilde;o sedent&aacute;ria, as plantas produzem metab&oacute;litos  secund&aacute;rios que al&eacute;m de atrair polinizadores as protegem da a&ccedil;&atilde;o  de fatores bi&oacute;ticos e abi&oacute;ticos. Em conseq&uuml;&ecirc;ncia da variabilidade  destes metab&oacute;litos (alcal&oacute;ides, fen&oacute;is, flavon&oacute;ides  e terpen&oacute;ides, dentre outros), muitos autores reconhecem que tais subst&acirc;ncias  expressam a individualidade qu&iacute;mica das esp&eacute;cies. Nas plantas superiores  elas t&ecirc;m despertado a aten&ccedil;&atilde;o por suas atividades biol&oacute;gicas  ou terap&ecirc;uticas &uacute;teis ao homem.     <br>     <br> Os metab&oacute;litos secund&aacute;rios  s&atilde;o essencialmente produzidos e extra&iacute;dos a partir de plantas cultivadas  no campo sofrendo, portanto, a influ&ecirc;ncia de varia&ccedil;&otilde;es sazonais,  pragas, doen&ccedil;as e condi&ccedil;&otilde;es metereol&oacute;gicas. Desse  modo, a utiliza&ccedil;&atilde;o de t&eacute;cnicas biotecnol&oacute;gicas apresenta-se  como um importante recurso alternativo para o cultivo das esp&eacute;cies, atuando  como fonte biol&oacute;gica cont&iacute;nua para a produ&ccedil;&atilde;o de f&aacute;rmacos.    <br>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br> T&eacute;cnicas variadas v&ecirc;m sendo utilizadas com o intuito de otimizar  as condi&ccedil;&otilde;es das culturas de c&eacute;lulas vegetais, visando superar  a produ&ccedil;&atilde;o dos metab&oacute;litos secund&aacute;rios produzidos  pelas plantas matrizes. O uso de elicitores (bi&oacute;ticos ou abi&oacute;ticos)  tem sido efetivo n&atilde;o s&oacute; para induzir ou aumentar a s&iacute;ntese  de metab&oacute;litos espec&iacute;ficos, como tamb&eacute;m para elucidar importantes  etapas enzim&aacute;ticas envolvidas na rotas biossint&eacute;ticas.<span class="superscript">1</span>  A resposta das culturas de c&eacute;lulas &agrave; elicita&ccedil;&atilde;o &eacute;  afetada pela concentra&ccedil;&atilde;o do elicitor, per&iacute;odo de incuba&ccedil;&atilde;o  ap&oacute;s a elicita&ccedil;&atilde;o e estado fisiol&oacute;gico das c&eacute;lulas.<span class="superscript">2</span>      <br>     <br> Pothomorphe umbellata, conhecida como &quot;pariparoba&quot;, &eacute;  tradicionalmente empregada de norte a sul do Brasil, em fun&ccedil;&atilde;o de  suas propriedades colagogas, coler&eacute;ticas e estom&aacute;quicas. Ocorre  espontaneamente, em locais &uacute;midos e sombreados, da Amaz&ocirc;nia at&eacute;  o sul do Brasil. Apesar da utiliza&ccedil;&atilde;o popular da esp&eacute;cie  como agente terap&ecirc;utico, s&atilde;o poucas as informa&ccedil;&otilde;es  relacionadas com a sua composi&ccedil;&atilde;o qu&iacute;mica e sua atividade  biol&oacute;gica. Foram isolados das ra&iacute;zes e folhas da esp&eacute;cie  o sitosterol e o 4-nerolidilcatecol.<span class="superscript">3</span> A an&aacute;lise  fitoqu&iacute;mica dos extratos hex&acirc;nico e dicloromet&acirc;nico de seus  diferentes &oacute;rg&atilde;os, resultou no isolamento da mistura dos ester&oacute;ides  sitosterol e estigmasterol al&eacute;m do peltatol A e do 4-nerolidilcatecol,  estando este presente em todos os &oacute;rg&atilde;os.<span class="superscript">4</span>  Tamb&eacute;m foi constatada a presen&ccedil;a de componentes sesquiterp&ecirc;nicos  de peso molecular 204, inclusive nerolidol, no &oacute;leo essencial das folhas.<span class="superscript">4</span>    <br>      <br> A atividade antioxidante foi verificada em extrato etan&oacute;lico de raiz,  caule e folhas de pariparoba tendo sido comprovado que o 4-nerolidilcatecol foi  o princ&iacute;pio ativo respons&aacute;vel por tal atividade<span class="superscript">5</span>.  Esta subst&acirc;ncia tamb&eacute;m apresentou resultado positivo para as atividades  antiinflamat&oacute;ria e analg&eacute;sica.<span class="superscript">4</span>      <br>     <br> O objetivo desse trabalho foi estabelecer metodologia para a obten&ccedil;&atilde;o  de suspens&otilde;es celulares de P.umbellata e avaliar a capacidade de produ&ccedil;&atilde;o  de 4-nerolidilcatecol nestas culturas. Verificou-se tamb&eacute;m a influ&ecirc;ncia  de elicitor sobre a otimiza&ccedil;&atilde;o da s&iacute;ntese do metab&oacute;lito.  </p><h4>Material E M&eacute;todos</h4>    <p>Inicia&ccedil;&atilde;o e sele&ccedil;&atilde;o  das condi&ccedil;&otilde;es b&aacute;sicas de cultivo das suspens&otilde;es celulares  - As culturas de c&eacute;lulas em suspens&atilde;o foram iniciadas com calos  fri&aacute;veis (2g) produzidos em meio MS6 + 1,0mg.L-1 2,4-D + 0,1mg.L-1 BA e  30g.L-1 sacarose a partir de explantes da l&acirc;mina foliar com 16 dias de idade,  oriundos de plantas cultivadas <i>in vivo</i>.<span class="superscript">6,7</span>  Os calos foram transferidos para frascos erlenmeyer (125 mL) contendo 25 mL de  meio l&iacute;quido com a mesma composi&ccedil;&atilde;o sal&iacute;nica e hormonal  usada no meio s&oacute;lido. Os frascos foram vedados com rolhas de silicosen  T-32 (Skin-Etsu Polymer CO, Ltd) e incubados no escuro, em agitador orbital (120  rpm), a 28 &plusmn; 2 &deg;C e 50 % de umidade relativa. Para a manuten&ccedil;&atilde;o  das culturas estoque, as subculturas foram realizadas na fase exponencial do ciclo  de crescimento em frascos de 125 mL, com in&oacute;culo na raz&atilde;o de 1:3.  Foram utilizados quatro frascos de cultura, com o acompanhamento do crescimento  durante tr&ecirc;s subculturas.     <br>     <br> Para caracterizar o crescimento da cultura  foi usado o m&eacute;todo da curva de dissimila&ccedil;&atilde;o, para cada frasco  individualmente.<span class="superscript">8</span> Para a quantifica&ccedil;&atilde;o  do PS final e do a&ccedil;&uacute;car residual do meio, as culturas foram encerradas  nove dias ap&oacute;s terem atingido a fase estacion&aacute;ria. As c&eacute;lulas  foram separadas do meio de cultura por filtra&ccedil;&atilde;o a v&aacute;cuo,  seguida de lavagem com &aacute;gua deionizada. Ap&oacute;s aferi&ccedil;&atilde;o  do PF, a massa celular foi seca em estufa a 50 &deg;C por 18 h, para a determina&ccedil;&atilde;o  do PS. Utilizou-se balan&ccedil;a anal&iacute;tica ER-120A (precis&atilde;o 0,1mg).  O meio l&iacute;quido foi filtrado em papel de filtro Whatman n<span class="superscript">o</span>  1 e a quantifica&ccedil;&atilde;o do a&ccedil;&uacute;car residual determinada  pelo m&eacute;todo do DNS (<i>Chaplin MF, Kennedy</i> <i>JF</i>. Carbohydrate  analysis: a pratical approach. IRL Press, 1986).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Efeito de diferentes  reguladores de crescimento e fontes de carbono sobre a produ&ccedil;&atilde;o  de biomassa e de 4-nerolidilcatecol - As suspens&otilde;es celulares utilizadas  nestes tratamentos foram iniciadas a partir da transfer&ecirc;ncia das c&eacute;lulas  cultivadas em meio MS + 1mg.L-1 2,4-D + 0,1mg.L-1 BA para frascos erlenmeyer (125  ml-25 mL de meio) com varia&ccedil;&otilde;es nas concen-tra&ccedil;&otilde;es  dos reguladores de crescimento e nas fontes de carbono (Tabela 1). </p>    <p align="center">TABELA  1. <i>Combina&ccedil;&atilde;o de reguladores de crescimento e fontes de carbono  acrescidos ao meio MS para o estabelecimento de suspens&otilde;es celulares de  P.umbellata.</i></p><table width="75%" border="1" align="center"> <tr> <td>     <p align="center">Meios  de cultura </p></td><td>     <div align="center">Reguladores de crescimento (mg.L-1)(  mg/l ) </div></td><td>     <div align="center">Fontes de carbono(g.L-1)</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="center">A1 </div></td><td>     <div align="center">0,5 &nbsp;&nbsp;2,4-D  + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="center">A2 </div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">1,0 &nbsp;&nbsp;2,4-D  + 0,1 BAP</div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="center">A3</div></td><td>     <div align="center">1,5 &nbsp;&nbsp;2,4-D  + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="center">A4 </div></td><td>     <div align="center">2,0 &nbsp;&nbsp;2,4-D  + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="center">A5 </div></td><td>     <div align="center">2,5&nbsp;&nbsp;  2,4-D + 0,1 BAP </div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">30 sacarose</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="center">A6 </div></td><td>     <div align="center">0,25 PIC  + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="center">A7 </div></td><td>     <div align="center">0,5 PIC + 0,1  BAP </div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr> <td>      <div align="center">A8 </div></td><td>     <div align="center">0,75 PIC + 0,1 BAP  </div></td><td>     <div align="center">30 sacarose</div></td></tr> <tr> <td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">A9  </div></td><td>     <div align="center">1,0 PIC + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">30  sacarose</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="center">A10 </div></td><td>     <div align="center">1,0&nbsp;&nbsp;&nbsp;  2,4-D + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">20 sacarose</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="center">A11 </div></td><td>     <div align="center">1,0 &nbsp;&nbsp;2,4-D  + 0,1 BAP </div></td><td>     <div align="center">20 glicose</div></td></tr> <tr>  <td>     <p align="center">A12 </p></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">1,0 &nbsp;&nbsp;2,4-D  + 0,1 BAP</div></td><td>     <div align="center">30 glicose</div></td></tr> </table>    <p align="left">As  culturas mantidas em meios com 2,4-D e picloram (PIC) foram encerradas no 30<span class="superscript">o</span>  e 32<span class="superscript">o</span> dia de cultivo, respectivamente, sem subculturas.  As condi&ccedil;&otilde;es de cultivo e a avalia&ccedil;&atilde;o do crescimento  seguiram a metodologia anteriormente mencionada. A viabilidade celular foi avaliada  atrav&eacute;s do m&eacute;todo do diacetato de fluoresce&iacute;na (FDA). A massa  celular usada para a determina&ccedil;&atilde;o do PS de cada cultura, e o meio  l&iacute;quido foram acondicionados a -20 &deg;C para posterior an&aacute;lise  cromatogr&aacute;fica.    <br> </p>    <p align="left">Em face dos resultados obtidos  com as suspens&otilde;es celulares mantidas no meio A11, foi estabelecido um experimento  para acompanhar a cin&eacute;tica de crescimento da cultura considerando-se o  PF, PS, PF/PS e o consumo da fonte de carbono. Foram utilizados 18 frascos (125mL  - 25mL de meio) com 3g de c&eacute;lulas obtidas das culturas estoque, por filtra&ccedil;&atilde;o  &agrave; v&aacute;cuo. Durante um per&iacute;odo de 36 dias foram coletados, a  cada quatro dias, dois frascos de cultura para aferi&ccedil;&atilde;o das vari&aacute;veis  determinadas.     <br> Visando a otimiza&ccedil;&atilde;o da produ&ccedil;&atilde;o  de biomassa, as c&eacute;lulas cultivadas em meio A2 foram transferidas para o  meio A11, sendo as subculturas realizadas no 15<span class="superscript">o</span>  dia de cultivo.</p>    <p>Para otimizar a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol,  3g de c&eacute;lulas mantidas no meio A11 foram coletadas por filtra&ccedil;&atilde;o  a v&aacute;cuo, no 28<span class="superscript">o</span> dia de cultivo, e transferidas  para o meio A2. As condi&ccedil;&otilde;es de cultivo foram as citadas anteriormente.  As culturas foram encerradas ao final de 30 dias para avalia&ccedil;&atilde;o  do teor do metab&oacute;lito.</p>    <p>Elicita&ccedil;&atilde;o das suspens&otilde;es  celulares - O elicitor utilizado foi a glucana isolada do extrato da levedura  <i>Saccharomyces cerevisae</i>. Para o preparo da solu&ccedil;&atilde;o estoque  (1:1), a glucana foi dissolvida em meio de cultura fresco, o pH ajustado para  5,4 e a esteriliza&ccedil;&atilde;o efetuada por filtra&ccedil;&atilde;o (0,22  mm).    <br>     <br> No 18<span class="superscript">o</span> dia de cultivo, as culturas  mantidas no meio A11 foram reunidas em um s&oacute; frasco, subdivididas em por&ccedil;&otilde;es  de 10 mL em erlenmeyer de 50 mL. O elicitor foi adicionado nas concentra&ccedil;&otilde;es  de 25; 50; 75 e 100 mg/g PF de c&eacute;lulas e as culturas foram incubadas no  escuro a 28 &plusmn; 2 &deg;C, em agitador orbital. A intervalos regulares de  incuba&ccedil;&atilde;o (8; 24; 48; 96; 144 e 216 h) dois frascos de cada concentra&ccedil;&atilde;o  do elicitor foram retirados e as c&eacute;lulas separadas do meio l&iacute;quido  por filtra&ccedil;&atilde;o a v&aacute;cuo. Avaliou-se a viabilidade celular e  aferiram-se os PF e PS. </p><h4>Identifica&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol</h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Obten&ccedil;&atilde;o  do extrato hex&acirc;nico - Das suspens&otilde;es celulares cultivadas nos diferentes  meios foram utilizadas a massa celular e o meio l&iacute;quido. As c&eacute;lulas  secas e trituradas foram extra&iacute;das com hexano em Soxhlet, em temperatura  ambiente, por 15 h. O meio l&iacute;quido foi extra&iacute;do com hexano, agitado  em Vortex e centrifugado (1 200 rpm, 10 min). Os extratos foram concentrados sob  press&atilde;o reduzida, pesados e mantidos a -20 &deg;C.     <br>     <br> An&aacute;lise  cromatogr&aacute;fica - O extrato de cada amostra foi retomado em acetonitrila  (0,005 g.mL<span class="superscript">-1</span>) e centrifugado (1200 rpm, 10 min).  Foram injetados 20 mL do sobrenadante acrescido de 150 <font face="Symbol">m</font>L  de acetonitrila 20 % e de 20 <font face="Symbol">m</font>L do &aacute;cido ortoan&iacute;sico  usado como padr&atilde;o interno. As amostras foram fracionadas por cromatografia  l&iacute;quida de alta efici&ecirc;ncia (CLAE), utilizando-se equipamento Shimadzu  LC-10AS com detector UV-VIS Shimadzu SPD-10A, em 280 nm; coluna C18 (Bondapack  da Waters) para fase inversa (10mm, 250 x 4,6 mm) e um fluxo de 1 mL/min. A mistura  solvente foi usada partindo de &aacute;cido trifluoroac&eacute;tico 0,1 % em &aacute;gua,  em sistema de gradiente com acetonitrila 70 % em &aacute;cido trifluoroac&eacute;tico  0,1 %.    <br>     <br> A identifica&ccedil;&atilde;o do 4-nerolidilcatecol nas amostras  foi obtida comparando-se com o tempo de reten&ccedil;&atilde;o da subst&acirc;ncia  padr&atilde;o (18 min), ou atrav&eacute;s de co-inje&ccedil;&atilde;o com a subst&acirc;ncia  padr&atilde;o. Os resultados quantitativos foram expressos em <font face="Symbol">m</font>g/g  PS (para a massa celular) e <font face="Symbol">m</font>g/mL (para o meio l&iacute;quido),  representando a m&eacute;dia de tr&ecirc;s r&eacute;plicas.    <br>     <br> An&aacute;lise  estat&iacute;stica - As diferen&ccedil;as entre os tratamentos foram determinadas  pela an&aacute;lise de vari&acirc;ncia (ANOVA) e as m&eacute;dias foram comparadas  atrav&eacute;s do teste de Tukey ao n&iacute;vel de 5 % de probabilidade.    <br>  </p><h4>Resultados </h4>    <p>Efeito de diferentes reguladores de crescimento e fontes  de carbono sobre a produ&ccedil;&atilde;o de biomassa, s&iacute;ntese e ac&uacute;mulo  de 4-nerolidilcatecol - As curvas de dissimila&ccedil;&atilde;o das suspens&otilde;es  celulares de <i>P.umbellata</i>, cultivadas nos meios com 2,4-D e PIC, exibem  um t&iacute;pico crescimento sigmoidal (figura 1). O in&iacute;cio da fase estacion&aacute;ria  das culturas, determinado pela curva de dissimila&ccedil;&atilde;o, foi constatado  pelo valor m&aacute;ximo de PS alcan&ccedil;ado. As culturas nos meios com 2,4-D  atingiram a fase estacion&aacute;ria entre o 20<span class="superscript">o</span>  e 21<span class="superscript">o</span> dia de cultivo (A2, A3, A4) e entre o 22<span class="superscript">o</span>  e 24<span class="superscript">o</span> dia (A1, A5). Aquelas mantidas em meios  com PIC (A6, A7, A8, A9) atingiram esta fase entre o 23<span class="superscript">o</span>  e 24<span class="superscript">o</span> dia de cultivo (figura 1B).    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> As  suspens&otilde;es celulares mantidas em 2,4-D mostraram um crescimento lento,  sobretudo as cultivadas nos meios A1 e A5, com fase lag mais longa. Estas culturas  foram escurecendo gradativamente e ao final de 30 dias apresentavam uma colora&ccedil;&atilde;o  bege-escura, reduzida produ&ccedil;&atilde;o de biomassa e 52 % de viabilidade  celular. As culturas mantidas nos meios A2 e A3, apesar da pequena densidade celular,  exibiram um aspecto saud&aacute;vel, colora&ccedil;&atilde;o bege-clara e elevada  viabilidade celular (84 e 78 %, respectivamente). As culturas mantidas em PIC  apresentaram crescimento mais lento do que aquelas cultivadas com 2,4-D. Os meios  A7 e A8 produziram culturas com colora&ccedil;&atilde;o bege e 6 3 % de viabilidade  celular. Nos meios A6 e A9 as culturas apresentaram colora&ccedil;&atilde;o bege-escura  e baixa viabilidade celular (36 % e 32 %, respectivamente).    <br>     <br> A varia&ccedil;&atilde;o  na concentra&ccedil;&atilde;o de sacarose (A10) n&atilde;o exerceu influ&ecirc;ncia  sobre a perda de peso por dissimila&ccedil;&atilde;o (Figura 1C) nem sobre a produ&ccedil;&atilde;o  de biomassa celular em rela&ccedil;&atilde;o &agrave;s culturas mantidas em meio  com 30g.L<span class="superscript">-1</span> sacarose (A2). A colora&ccedil;&atilde;o,  densidade e viabilidade celular tamb&eacute;m foram semelhantes &agrave;quelas  descritas para as culturas em meio A2. </p>    <p align="center">    <br> <a href="/img/revistas/pla/v9n1/f0114104.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n1/f0114104.jpg" width="413" height="308" border="0"></a>  </p>    
<p align="center">Fig.1. Curvas de dissimila&ccedil;&atilde;o obtidas a partir  de suspens&otilde;es celulares de <i>P.umbellata</i> cultivadas em meios com diferentes  reguladores de crescimento e tipos de fontes de carbono. A- 2,4-D + BA + sacarose;  B- PIC + BA + sacarose; C- 2,4-D + BA + sacarose ou glicose.</p>    <p align="left">A  substitui&ccedil;&atilde;o da sacarose por glicose (A11 e A12) foi positiva para  o crescimento das culturas sendo que o meio A11, dentre todos os meios testados,  proporcionou a maior produ&ccedil;&atilde;o de biomassa. Atrav&eacute;s das curvas  de dissimila&ccedil;&atilde;o constatou-se, para ambas as culturas, uma fase lag  reduzida (figura 1C). O in&iacute;cio da fase estacion&aacute;ria foi atingido  no 20<span class="superscript">o</span> dia de cultivo para as duas culturas.  Observou-se que no meio A11 a glicose foi totalmente absorvida at&eacute; o 20<span class="superscript">o</span>  dia de cultura (figura 2A), confirmando o momento em que foi alcan&ccedil;ado  o m&aacute;ximo valor de PS (figura 2B). O acompanhamento do aumento do PF e do  PS, em intervalos regulares do ciclo de crescimento das culturas, apontou uma  redu&ccedil;&atilde;o gradativa do PS a partir do in&iacute;cio da fase estacion&aacute;ria  (figura 2B).</p>    <p align="center">    <br> <a href="/img/revistas/pla/v9n1/f0214104.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n1/f0214104.jpg" width="411" height="241" border="0"></a>  </p>    
<p align="center">Fig.2. Suspens&otilde;es celulares de <i>P.umbellata</i>  cultivadas em meio com 1,0mg.L<span class="superscript">-1</span> 2,4-D+0,1mg.L<span class="superscript">-1</span>  BA+20g.L<span class="superscript">-1</span> glicose. A- Concentra&ccedil;&atilde;o  de glicose no meio de cultura e curva de dissimila&ccedil;&atilde;o; B- Acompanhamento  dos pesos fresco (PF) e seco (PS) e da rela&ccedil;&atilde;o PF/PS. </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Ao  final de 30 dias as culturas mantidas nos meios A11 e A12 apresentaram um aspecto  saud&aacute;vel caracterizado por colora&ccedil;&atilde;o bege-clara, alta densidade  celular e viabilidade m&eacute;dia equivalente a 94 % e 90 %, respectivamente.  Nas culturas em meio A11 a cin&eacute;tica de crescimento e o aspecto de vitalidade  foram conservados atrav&eacute;s das subculturas, sendo este selecionado como  o meio de produ&ccedil;&atilde;o de biomassa.    <br>     <br> Constatou-se que o 2,4-D  em combina&ccedil;&atilde;o com a sacarose foi mais eficiente para a produ&ccedil;&atilde;o  de 4-nerolidilcatecol do que o PIC (figuras 3A e 3B), sendo os maiores teores  detectados na massa celular das culturas mantidas em 1,0; 1,5 e 2,0 mg.L-<span class="superscript">1</span>  2,4-D (A2, A3 e A4), sem diferen&ccedil;a estat&iacute;stica entre eles. A concentra&ccedil;&atilde;o  mais baixa e a mais elevada de 2,4-D (A1 e A5) reduziram a produ&ccedil;&atilde;o  da subst&acirc;ncia. O PIC, apesar de usado em concentra&ccedil;&otilde;es menores,  n&atilde;o estimulou a produ&ccedil;&atilde;o do metab&oacute;lito, n&atilde;o  mostrando diferen&ccedil;a significativa entre os meios A6, A7 e A8 (figura 3B),  onde os teores detectados na massa celular foram aproximadamente tr&ecirc;s vezes  menores do que aqueles registrados nas culturas mantidas em 2,4-D (A2, A3 e A4).  Somente foi detectada a presen&ccedil;a da subst&acirc;ncia, em n&iacute;veis  reduzidos, no meio l&iacute;quido das culturas em A1, A5, A6 e A9 (figuras 3A  e 3B).    <br> </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v9n1/f0314104.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n1/f0314104.jpg" width="306" height="315" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.3.  Efeito do 2,4-D e do PIC sobre a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol  em suspens&otilde;es celulares de <i>P.umbellata</i> cultivadas em: A - 2,4-D  + BA; B - PIC + BA.     <br> mg/g PS - massa celular; mg/mL - meio l&iacute;quido.    <br>  Letras iguais sobre as colunas de mesma cor n&atilde;o diferem significativamente  pelo teste de Tukey ao n&iacute;vel de 5 % de probabilidade.    <br> </p>    <p>Dentre  os meios testados com varia&ccedil;&atilde;o na concentra&ccedil;&atilde;o da  fonte de carbono, aqueles suplementados com glicose apresentaram os menores teores  de 4-nerolidilcatecol, sem diferen&ccedil;a significativa entre as duas concentra&ccedil;&otilde;es  utilizadas (figura 4).</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v9n1/f0414104.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n1/f0414104.jpg" width="273" height="182" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.4.  Efeito dos meios suplementados com sacarose ou glicose (20 ou 30 g.L<span class="superscript">-1</span>)  sobre a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol em suspens&otilde;es celulares  de <i>P.umbellata</i>.     <br> Letras iguais sobre as colunas n&atilde;o diferem  significativamente pelo teste de Tukey ao n&iacute;vel de 5 % de probabilidade.    <br>  </p>    <p>Pode-se constatar que os maiores teores de 4-nerolidilcatecol foram detectados  na fase estacion&aacute;ria do ciclo de crescimento, caracterizando uma rela&ccedil;&atilde;o  inversa entre o crescimento da cultura e o ac&uacute;mulo da subst&acirc;ncia  (figuras 5A e 5B). </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v9n1/f0514104.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n1/f0514104.jpg" width="293" height="239" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  5. Produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol em suspens&otilde;es celulares  de <i>P.umbellata</i> durante as diferentes etapas do ciclo de crescimento. A  - meio A2; B - meio A11.     <br> Letras iguais sobre as colunas n&atilde;o diferem  significativamente pelo teste de Tukey ao n&iacute;vel de 5 % de probabilidade.    <br>  </p>    <p align="left">Efeito do elicitor glucana sobre a produ&ccedil;&atilde;o  de 4-nerolidilcatecol - Constatou-se que a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol  nas suspens&otilde;es celulares submetidas ao tratamento de elici-ta&ccedil;&atilde;o  foi dependente da concentra&ccedil;&atilde;o da glucana e do tempo de incuba&ccedil;&atilde;o  (Tabela 2). </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">TABELA 2. <i>Efeito do elicitor glucana sobre  a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol em suspens&otilde;es celulares  de P.umbellata cultivadas em meio A11.</i></p><table width="75%" border="1" align="center">  <tr> <td colspan="13">     <div align="center">Tempo de Incuba&ccedil;&atilde;o (horas)</div></td></tr>  <tr> <td rowspan="3" width="20%">     <div align="center">Glucana(<font face="Symbol">m</font>g/g  PF) </div></td><td colspan="2">     <div align="center">8 </div></td><td colspan="2">      <div align="center">24</div></td><td colspan="2">     <div align="center">48</div></td><td colspan="2">      <div align="center">96</div></td><td colspan="2">     <div align="center">144</div></td><td colspan="2">      <div align="center">216</div></td></tr> <tr> <td colspan="12">     <div align="center">Teor  de 4-nerolidilcatecol (<font face="Symbol">m</font>g/g PS)</div></td></tr> <tr>  <td width="7%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">MC </div></td><td width="7%">     <div align="center">ML  </div></td><td width="7%">     <div align="center">MC </div></td><td width="5%">     <div align="center">ML  </div></td><td width="7%">     <div align="center">MC </div></td><td width="6%">     <div align="center">ML  </div></td><td width="7%">     <div align="center">MC </div></td><td width="4%">     <div align="center">ML  </div></td><td width="7%">     <div align="center">MC </div></td><td width="4%">     <div align="center">ML  </div></td><td width="7%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">MC </div></td><td width="4%">     <div align="center">ML</div></td></tr>  <tr> <td width="20%">     <div align="center">0 </div></td><td width="7%">     <div align="center">-  </div></td><td width="7%">     <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">-  </div></td><td width="5%">     <div align="center">-</div></td><td width="7%">     <div align="center">56,41</div></td><td width="6%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">102,26 </div></td><td width="4%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">150,03 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">159,41 </div></td><td width="4%">      <div align="center">-</div></td></tr> <tr> <td width="20%">     <div align="center">25  </div></td><td width="7%">     <div align="center">32,10</div></td><td width="7%">      <div align="center">-</div></td><td width="7%">     <div align="center">68,24</div></td><td width="5%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">143,04 </div></td><td width="6%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">195,64 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">182,02 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">136,52 </div></td><td width="4%">      <div align="center">-</div></td></tr> <tr> <td width="20%">     <div align="center">50  </div></td><td width="7%">     <div align="center">56,10 </div></td><td width="7%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">152,22 </div></td><td width="5%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">164,28 </div></td><td width="6%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">358,61 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">326,78 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">222,64 </div></td><td width="4%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">-</div></td></tr> <tr> <td width="20%">     <div align="center">75  </div></td><td width="7%">     <div align="center">238,24 </div></td><td width="7%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">862,38 </div></td><td width="5%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">496,46 </div></td><td width="6%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">482,14 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">448,81 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">338,74 </div></td><td width="4%">      <div align="center">-</div></td></tr> <tr> <td width="20%">     <div align="center">100  </div></td><td width="7%">     <div align="center">244,32 </div></td><td width="7%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">641,66 </div></td><td width="5%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">652,14 </div></td><td width="6%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">674,14 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">492,36 </div></td><td width="4%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     <div align="center">326,81 </div></td><td width="4%">      <div align="center">-</div></td></tr> <tr> <td width="20%">     <p align="center">150  </p></td><td width="7%">     <div align="center">46,30 </div></td><td width="7%">      <div align="center">- </div></td><td width="7%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">62,29 </div></td><td width="5%">      <div align="center">1,06 </div></td><td width="7%">     <div align="center">64,52  </div></td><td width="6%">     <div align="center">1,28 </div></td><td width="7%">      <div align="center">98,74 </div></td><td width="4%">     <div align="center">1,35  </div></td><td width="7%">     <div align="center">72,04 </div></td><td width="4%">      <div align="center">2,75 </div></td><td width="7%">     <div align="center">57,60  </div></td><td width="4%">     <div align="center">4,2</div></td></tr> </table>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A  presen&ccedil;a da subst&acirc;ncia foi detectada em todas as suspens&otilde;es  em per&iacute;odo menor do que aquele em que as culturas normalmente atingiam  a fase estacion&aacute;ria. Nas culturas n&atilde;o tratadas a produ&ccedil;&atilde;o  da subst&acirc;ncia foi constatada somente ap&oacute;s 48 h de incuba&ccedil;&atilde;o  o que corresponde ao in&iacute;cio da fase estacion&aacute;ria de crescimento.  O teor m&aacute;ximo de 4-nerolidilcatecol (862,38 <font face="Symbol">m</font>g/g  PS) foi detectado em culturas elicitadas com 75 <font face="Symbol">m</font>g  glucana/g PF, ap&oacute;s 24h de incuba&ccedil;&atilde;o. A perman&ecirc;ncia  por mais 24h em presen&ccedil;a do elicitor reduziu o teor da subst&acirc;ncia  em 42,4 %. A concentra&ccedil;&atilde;o de 150 <font face="Symbol">m</font>g/g  PF foi a menos eficiente tanto sobre a produ&ccedil;&atilde;o do metab&oacute;lito  como sobre a viabilidade celular, que decresceu para 52 %. Nas demais concentra&ccedil;&otilde;es  as culturas mostraram 96 % de viabilidade celular. A presen&ccedil;a de 4-nerolidilcatecol  no meio de cultura foi detectada somente quando foram tratadas com a mais alta  concentra&ccedil;&atilde;o do elicitor (150 <font face="Symbol">m</font>g/g PF).  </p><h4>Discuss&atilde;o</h4>    <p>A curva de dissimila&ccedil;&atilde;o expressa  uma perda de peso cumulativa para cada frasco de cultura decorrente da dissimila&ccedil;&atilde;o  dos a&ccedil;&uacute;cares e &eacute; calculada a partir do balan&ccedil;o de  carbono.<span class="superscript">8</span> Durante a apreens&atilde;o de carboidratos,  uma porcentagem fixada &eacute; usada para dissimila&ccedil;&atilde;o de a&ccedil;&uacute;cares  (energia de consumo das c&eacute;lulas) e a outra porcentagem para a forma&ccedil;&atilde;o  de bio-massa<span class="superscript">8</span>.     <br>     <br> Como o m&eacute;todo  selecionado n&atilde;o &eacute; invasivo, n&atilde;o se torna necess&aacute;ria  a utiliza&ccedil;&atilde;o de um grande n&uacute;mero de frascos de culturas.    <br>  Apesar da associa&ccedil;&atilde;o do 2,4-D com uma citocinina ser amplamente  usada para o crescimento das suspens&otilde;es celulares<span class="superscript">10</span>,  n&atilde;o se constatou um bom rendimento de biomassa nas suspens&otilde;es de  <i>P.umbellata</i>, independente das concentra&ccedil;&otilde;es testadas.     <br>  Os baixos valores de perda de peso por dissimila&ccedil;&atilde;o, referidos para  as culturas mantidas em meios com 2,4-D e PIC foram, provavelmente, decorrentes  da reduzida taxa de divis&atilde;o celular. Nestas condi&ccedil;&otilde;es, onde  a necessidade energ&eacute;tica &eacute; menor, haver&aacute; pequena taxa de  dissimila&ccedil;&atilde;o do a&ccedil;&uacute;car e conseq&uuml;entemente menor  libera&ccedil;&atilde;o de CO<span class="subscript">2</span>. Este tipo de resposta  tamb&eacute;m foi mencionada para culturas de <i>Morinda citrifolia</i>.<span class="superscript">10</span>  Cabe ressaltar que o baixo consumo de a&ccedil;&uacute;car registrado por essas  culturas e evidenciado atrav&eacute;s da an&aacute;lise do a&ccedil;&uacute;car  residual, est&aacute; relacionado n&atilde;o s&oacute; &agrave; pequena taxa de  dissimila&ccedil;&atilde;o como tamb&eacute;m &agrave; reduzida taxa de convers&atilde;o  e armazenamento deste a&ccedil;&uacute;car em biomassa.<span class="superscript">8,11</span>  Por outro lado, o aumento de biomassa celular em suspens&atilde;o de <i>P.umbellata</i>  no meio A11 foi claramente evidente, e encontra apoio nas proposi&ccedil;&otilde;es  dos autores.<span class="superscript">8,11</span>    <br>     <br> A redu&ccedil;&atilde;o  do PS a partir da fase estacion&aacute;ria indica, que devido ao esgotamento da  glicose no meio de cultura, a dissimila&ccedil;&atilde;o passou a ocorrer &agrave;s  custas dos a&ccedil;&uacute;cares de reserva, tendo como conseq&uuml;&ecirc;ncia  um aumento na rela&ccedil;&atilde;o PF/PS, o que foi observado neste trabalho  nas suspens&otilde;es em meio A11, e nas culturas de <i>Rollinia mucosa</i>.<span class="superscript">12  </span>    <br>     <br> Embora a sacarose seja o a&ccedil;&uacute;car mais utilizado,  sobretudo a 2 e 3 %, favorecendo os mais altos &iacute;ndices de crescimento,<span class="superscript">9,16,12</span>  a glicose tamb&eacute;m pode ser considerada como uma efetiva fonte de carbono.<span class="superscript">13</span>  No presente trabalho, a utiliza&ccedil;&atilde;o da glicose a 2 % (meio A11) foi  determinante para a produ&ccedil;&atilde;o de biomassa, provavelmente, por ser  rapidamente metabolisada, o que evidencia a import&acirc;ncia do tipo e da concentra&ccedil;&atilde;o  do carboidrato fornecido.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Os resultados apresentados em rela&ccedil;&atilde;o  &agrave; presen&ccedil;a de 4-nerolidicatecol no meio l&iacute;quido mostram que  a subst&acirc;ncia n&atilde;o foi excretada naturalmente para todos os meios l&iacute;quidos,  resultando em ac&uacute;mulo nas c&eacute;lulas. Os n&iacute;veis detectados apenas  nos meios A1, A5, A6 e A9 possivelmente foram decorrentes do processo de lise  celular, uma vez que as respectivas suspens&otilde;es apresentaram pequena taxa  de viabilidade quando comparada &agrave;s demais.     <br>     <br> O 2,4-D &eacute; citado  na literatura por seus efeitos inibit&oacute;rios sobre a produ&ccedil;&atilde;o  de metab&oacute;-litos secund&aacute;rios, podendo estar associado aos n&iacute;veis  end&oacute;genos deste regulador de cresci-mento nas c&eacute;lulas cultivadas  de diferentes esp&eacute;cies. No entanto, para suspens&otilde;es celulares de  <i>P.umbellata</i>, quando em associa&ccedil;&atilde;o com sacarose, estimulou  a atividade de enzimas relacio-nadas &agrave; bioss&iacute;ntese de 4-nerolidilcatecol.  O maior teor obtido (547,96 <font face="Symbol">m</font>g/g PS) superou aquele  registrado nas folhas com 16 dias de idade de plantas adultas cultivadas <i>in  vivo</i> (440,34 <font face="Symbol">m</font>g/g PS).<span class="superscript">14</span>  A a&ccedil;&atilde;o estimuladora do 2,4-D sobre a bioss&iacute;ntese dos metab&oacute;litos  secund&aacute;rios foi tamb&eacute;m constatada em culturas de c&eacute;lulas  de <i>Thalictrum minus</i><span class="superscript">15</span> e de <i>Aralia cordata</i>.<span class="superscript">9</span>  Ao contr&aacute;rio do efeito produzido pelo 2,4-D, o PIC n&atilde;o foi eficiente  para estimular a capacidade biossint&eacute;tica das culturas de <i>P.umbellata</i>.  Nas culturas de <i>Taxus baccata</i><span class="superscript">16</span> e de calos  de &oacute;rg&atilde;os oriundos de pl&acirc;ntulas de <i>Rollinia mucosa</i><span class="superscript">17</span>  o PIC tamb&eacute;m n&atilde;o favoreceu a produ&ccedil;&atilde;o de metab&oacute;litos  espec&iacute;ficos, embora tenha aumentado a produ&ccedil;&atilde;o de biomassa.      <br>     <br> A superioridade da glicose sobre a sacarose, observada no crescimento  das culturas n&atilde;o foi mantida para a produ&ccedil;&atilde;o e o ac&uacute;mulo  do metab&oacute;lito, uma vez que na presen&ccedil;a deste monossacar&iacute;deo  a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol foi reduzida em cerca de quatro  vezes se comparada ao cultivo com 30 g.L<span class="superscript">-1</span> sacarose.  A redu&ccedil;&atilde;o da concentra&ccedil;&atilde;o de sacarose para 20 g.L<span class="superscript">-1</span>  causou diminui&ccedil;&atilde;o da produ&ccedil;&atilde;o em cerca de 1,7 vezes  em rela&ccedil;&atilde;o &agrave; 30 g.L<span class="superscript">-1</span>. Estudos  comparativos entre as diferentes fontes de carbono suplementadas &agrave;s culturas,  revelam que os &iacute;ndices mais elevados de produ&ccedil;&atilde;o de metab&oacute;litos  espec&iacute;ficos tamb&eacute;m foram assinalados nas suspens&otilde;es celulares  de <i>Tabernaemontana divaricata</i><span class="superscript">18</span> e <i>Taxus  baccata</i><span class="superscript">16</span> suplementadas com sacarose.    <br>      <br> O padr&atilde;o de s&iacute;ntese 4-nerolidilcatecol durante a fase estacion&aacute;ria  das culturas de <i>P. umbellata</i> tamb&eacute;m foi mencionada para berberina  em culturas de <i>Thalictrum minus</i><span class="superscript">19</span> e de  lignanas furofur&acirc;nicas em culturas de <i>Rollinia mucosa</i>.<span class="superscript">20</span>      <br>     <br> Em conseq&uuml;&ecirc;ncia da cin&eacute;tica do crescimento e da produ&ccedil;&atilde;o  observada nas suspens&otilde;es celulares de <i>P.umbellata</i> n&atilde;o foi  poss&iacute;vel estabelecer um &uacute;nico meio de cultura que proporcionasse  um bom rendimento de biomassa e altos teores de 4-nerolidilcatecol. Provavelmente  tanto no meio A2 como no meio A11 ocorreu o ac&uacute;mulo dos precursores da  rota biossint&eacute;tica, por&eacute;m, o est&iacute;mulo da convers&atilde;o  bioqu&iacute;mica foi maior no meio A2. Desse modo definiu-se o meio A11 como  o meio de crescimento e manuten&ccedil;&atilde;o das culturas e o meio A2 como  o de produ&ccedil;&atilde;o do metab&oacute;lito. Este mesmo tipo de estrat&eacute;gia  foi utilizado em culturas de outras plantas medicinais como <i>Thalictrum minus</i>,<span class="superscript">19</span>  <i>Morinda citrifolia</i><span class="superscript">10</span> e de <i>Rollinia  mucosa</i>.<span class="superscript">20 </span>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> Comparando os teores  de 4-nerolidilcatecol detectados nas culturas elicitadas ou n&atilde;o, sugere-se  que a adi&ccedil;&atilde;o do elicitor favoreceu a indu&ccedil;&atilde;o e o aumento  da atividade de enzimas envolvidas na rota metab&oacute;lica da subst&acirc;ncia  aumentando sua produ&ccedil;&atilde;o. De maneira geral os elicitores promovem  tamb&eacute;m a libera&ccedil;&atilde;o dos metab&oacute;litos para o meio extracelular.<span class="superscript">2,20</span>  Na maioria das culturas de <i>P.umbellata</i> os teores de 4-nerolidilcatecol  foram detectados somente na massa celular. As &uacute;nicas culturas que liberaram  a subst&acirc;ncia para o meio l&iacute;quido, foram aquelas tratadas com 150  <font face="Symbol">m</font>g glucana/g PF. Considerando as baixas produtividade  e viabilidade celular destas culturas, admite-se que a presen&ccedil;a de 4-nerolidilcatecol  no meio extracelular seja conseq&uuml;&ecirc;ncia da lise celular. Por outro lado,  nas culturas de <i>Eschoscholtzia californica</i>,<span class="superscript">21</span>  <i>Ageratina adenophora</i><span class="superscript">22</span> e <i>Picea abies</i><span class="superscript">23</span>  a glucana estimulou a libera&ccedil;&atilde;o dos metab&oacute;litos das c&eacute;lulas  vivas para o meio de cultura.    <br>     <br> Diante da constata&ccedil;&atilde;o da  produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol nas culturas em suspens&atilde;o,  tornam-se promissores novos estudos na &aacute;rea de Biotecnologia Vegetal e  sua intera&ccedil;&atilde;o com a Enzimologia, a Fitoqu&iacute;mica e a Farmacologia.  Devem ser estimuladas as pesquisas sobre as etapas da rota biossint&eacute;tica  da subst&acirc;ncia, com adequa&ccedil;&atilde;o de metodologia para a otimiza&ccedil;&atilde;o  da produ&ccedil;&atilde;o em n&iacute;veis comerciais.</p><h4>Resumen</h4>    <p>Producci&oacute;n  de 4-nerolidilcatecol en suspensiones celulares de Pothomorphe umbellata (L.)  Miq (Piperaceae)    <br> En este estudio se presentan los datos referentes a la obtenci&oacute;n  de suspensiones celulares de <i>Pothomorphe umbellata</i>. Se empleo el medio  Murashige &amp; Skoog con 1,0 mg/L<span class="superscript">-1</span> de &aacute;cido  2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico y 0,1 mg/L<span class="superscript">-1</span>  de 6-benziladenina. Los cultivos se iniciaron con callos &quot;friables&quot;  extraidos de la l&aacute;mina foliar de plantas adultas cultivadas <i>in vivo</i>.  Se analiz&oacute; la producci&oacute;n de biomasa y la s&iacute;ntesis de 4-nerolidilcatecol  en los medios de cultivo. El medio descrito arriba suplementado con 20g/L<span class="superscript">-1</span>  de glucosa fue el m&aacute;s eficiente para la producci&oacute;n de biomasa en  tanto que la sustituci&oacute;n de la fuente de carbono por 30g/L<span class="superscript">-1</span>de  sacarosa propici&oacute; mayor producci&oacute;n de 4-nerolidilcatecol. La adici&oacute;n  del polisac&aacute;rido glucano a los cultivos, estimul&oacute; la capacidad biosint&eacute;tica  de los mismos. Se constat&oacute; que el tiempo de incubaci&oacute;n y la concentraci&oacute;n  de glucano influyeron positivamente en el proceso. La concentraci&oacute;n m&aacute;xima  de 4-nerolidilcatecol (862,38 <font face="Symbol">m</font>g/g de peso seco) se  obtuvo despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n de los cultivos con 75 <font face="Symbol">m</font>g  glucano/g de peso fresco/ 24 horas. Estos valores superaron a aquellos obtenidos  a partir de plantas intactas y de suspensiones celulares a las cuales no se les  adicion&oacute; el glucano. </p>    <p><i>Palabras clave</i>: Suspensi&oacute;n celular,  <i>Pothomorphe umbellata</i>, pariparoba, planta medicinal, medios de cultivo.    <br>  </p><h4>Summary    <br> </h4>    <p>In this study we presented data related to the establishment  of <i>Pothomorphe umbellata</i> cell suspension culture initiated from friable  callus. Callus obtained from foliar blade explants of plants developed <i>in vivo</i>,  were cultivated in MS medium supplemented with 1,0 mg.L<span class="superscript">-1</span>  2,4-D + 0,1mg.L<span class="superscript">-1</span> BA. Cell suspension media were  analyzed in relation to their effect on the production of 4-nerolidylcathechol  and cell mass yield. MS supplemented with 20g.L<span class="superscript">-1</span>  glucose + 1,0 mg.L<span class="superscript">-1</span> 2,4-D + 0,1 mg.L<span class="superscript">-1</span>  BA was the most efficient for cell biomass production while MS supplemented with  30g.L<span class="superscript">-1</span> sucrose + 1,0 mg.L<span class="superscript">-1</span>  2,4-D + 0,1 mg.L<span class="superscript">-1</span> BA was the most efficient  for 4-nerolidylcathechol production. Elicitation with glucana stimulated the synthesis  of the substance and was positively influenced by incubation time and elicitor  concentration. Maximum concentration of 4-nerolidylcatechol (862,38 <font face="Symbol">m</font>g/g  DW) was obtained after incubation with 75 <font face="Symbol">m</font>g glucana/g  cell FW for 24 h. This value is higher than those produced by plants developed  in vivo and by non-elicitated cell suspensions.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p>    <p><i>Keywords:</i> Cell  suspension, <i>pothomorphe umbellata</i>, pariparoba, medicinal plant.</p><h4>Referencias  bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>     <!-- ref --><li> Yamamoto H, Yato A, Yazaki K, Hayashi H, Tagushi  G, Inoue K. Increase of secundary metabolite production in various plant cell  cultures by co-cultivation with cork. Biosc Biotechnol Biochem 2001;65 (4):853-60.    <br>  </li>    <!-- ref --><li> Brodelius PE. Use of fungal elicitors to increase the yield of secondary  products in plant cell cultures. In: Sidkar SK, Bier M, Todd P. Frontiers in Bioprocessing.  Boca Rat&oacute;n: CRC Press; 1990.p.109-28.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Kijjoa A, Giesbrecht  AM, Akisue MK, Gottlieb OR, Gottlieb HE. 4-nerolidylcatechol from <i>Pothomorphe  umbellata</i>. Plant Med 1980;39 (1):85-9.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Janu&aacute;rio VA. Estudo  qu&iacute;mico e farmacol&oacute;gico de <i>Pothormophe umbellata</i> (L.) Miq.  Disserta&ccedil;&atilde;o de Mestrado-N&uacute;cleo de Pesquisa de Produtos Naturais,  Universidade Fede-ral do Janeiro Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, 1994: 102.    <br>  </li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><li> Barros SBM, Teixeira DS, Aznar AE, Moreira JA, Ishii I, Freitas PCD.  Increase of secundary metabolite production in various plant cell cultures by  co-cultivations with cork. Biosci Biotechnol Biochem 2001;65 (4):853-60.    <br> </li>    <!-- ref --><li>  Murashigue T, Skook F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco  tissue cultures. Physio. Plant 1962;15:473-97.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Viana VRC. Desenvolvimento  de um sistema de cultura <i>in vitro</i> para a produ&ccedil;&atilde;o de 4-nerolidilcatecol  a partir de <i>Pothomorphe umbellata</i> (L.) Miq. Tese de Doutorado- Universidade  Federal do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, 1997: 114.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Schripsema  J, Meijer AH, Van Iren F, Hoopen HJG, Verpoorte R. Dissimilation curves as a simple  method for the characterization of growth of plants cell suspension cultures.  Plant Cell Tiss Org Cult 1990;22:55-64.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Sakamoto K, Lida K, Sawamura  K, Hajiro K, Asada Y, Yoshikawa T, et al. Anthocyanin produc-tion in cultured  cells of <i>Aralia cordata</i> thunb. Plant Cell Tiss Org Cult 1994; 36:21-6.    <br>  </li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><li> van der Plas LHW, Eijkelboom C, Hagendoorn MJM. Relation between primary  and secondary metabolism in plant cell suspensions. Plant Cell Tiss Org Cult 1995;43:111-6.    <br>  </li>    <!-- ref --><li> Langezaal CR, Scheffer JJC. Initiation and growth characterization of  some hop cell suspension. Plant Cell Tiss Org Cult 1992;30:159-64.    <br> </li>    <!-- ref --><li>  Figueiredo SFL, Sim&otilde;es C, Albarello N, Viana VRC. <i>Rollinia mucosa</i>  cell suspension cultures: Establishment and growth conditions. Plant Cell Tiss  Org Cult 2000;63:85-92.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Hagendoorn MJM, Van Der Plas LHW, Sergers  GJ. Accumulation of anthraquinones in <i>Morinda citrifolia</i> cell suspensions.  Plant Cell Tiss Org Cult 1994;38:227-34.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Viana VRC, Tavares ES,  Alves HM, Sim&otilde;es C, Albarello N, Figueiredo SFL. Propaga&ccedil;&atilde;o  <i>in vitro</i> de <i>Pothomorphe umbellata</i> para obten&ccedil;&atilde;o de  clones produtores de 4- nerolidil-catecol. Rev Bras Farm 2000;81 (1/2):43-7.    <br>  </li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><li> Nakagawa K, Fukui H, Tabata M. Hormonal regulation of berberine production  in cell suspension cultures of <i>Thalictrum minus</i>. Plant Cell Rep 1986;5:69-71.    <br>  </li>    <!-- ref --><li> Hirasuna TJ, Pestchanker LJ, Srinivasan V, Shuler ML. Taxol production  in suspension cultures of <i>Taxus baccata</i>. Plant Cell Tiss Org Cult 1996;  44:95-102.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Figueiredo SFL, Viana VRC, Sim&otilde;es C, Albarello  N, Trugo LC, Kaplan MAC. <i>Rollinia mucosa</i> (Jacq.) Baill. Establisment of  callus culture and lignin production. Rev Cubana Plant Med. In press 2003[    STANDARDIZEDENDPARAG]<br>  </li>    <!-- ref --><li> Schripsema J. Factors involved in the alkaloid production of <i>Tabernaemontana  divaricata</i> plant cell suspension cultures (dissertation). Leiden: Universidade  Leiden; 1991.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Hara M, Kitamura T, Fukui H, Tabata M. Induction  of berberine biosynthesis by cytokinins in <i>Thalictrum minus</i> cell suspension  cultures. Plant Cell Rep 1993;12:70-3.    <br> </li>    ]]></body>
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<body><![CDATA[<br> Dra.<i>Vera  Regina Campos Viana</i>. Rua Marechal Jofre, 61/ apto 701- Graja&uacute; Rio de  Janeiro - Brasil - CEP- 20560-18(55)02125767472. E-mail: <a href="mailto:%20jfviana@uol.com.br">jfviana@uol.com.br</a>    <br>  </p>    <p><a href="#cargo"><b>1</b>PhD, Professor Adjunto.    <br> <b>2 </b>MSc, Bi&oacute;loga.</a><a name="autor"></a>  </p>      ]]></body><back>
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