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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del extracto acuoso liofilizado de Ocimun tenuiflorum L. sobre la anafilaxia pasiva cutánea, espasmo y tonicidad bronquial]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of the frozen dried aqueous extract of Ocimun tenuiflorum L. on passive cutaneous anaphylaxis, spasm and bronchial tonicity]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM) Departamento de Investigaciones Biológicas ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to show the antiallergic properties conferred to Ocimum tenuiflorum L., its possible influence on the anaphylactic mediators and on bronchial spasm induced by histamine, as well as its possible effect as bronchodilator, were studied. Wistar male rats were used in the passive cutaneous anaphylaxis test. They were administered the extract at doses of 250, 500 and 1000 mg/kg by oral route for 10 days, using ketotiphen 3 mg/kg as a positive control. The anaphylaxis intensity was determined by quantifying the amount of extravasated Evans blue. The bronchodilator and protective effect of bronchial spasm was determined in Hartley male guinea pigs by inducing bronchoconstriction through the intravenous administration of histamine and determining the bronchial pressure. As a result, it was found that the frozen dried aqueous extract of Ocimum tenuiflorum L. inhibited the passive cutaneous anaphylaxis and that it did not present a protective effect of the bronchial spasm induced by histamine. No bronchodilator properties were observed in the pharmacological model used.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[anafilaxia pasiva cutánea]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Centro de Investigaci&oacute;n y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM)</p><h2>Efecto  del extracto acuoso liofilizado de <i>Ocimun tenuiflorum</i> L. sobre la anafilaxia  pasiva cut&aacute;nea, espasmo y tonicidad bronquial </h2>    <p><a href="#cargo">Lic.  Yanier N&uacute;&ntilde;ez Figueredo,<span class="superscript"><b>1</b></span>  Lic. Pedro Barzaga Fern&aacute;ndez,<span class="superscript"><b>1</b></span>  T&eacute;c. Carmen Carrillo Dom&iacute;nguez,<span class="superscript"><b>2</b></span>  Lic. Humberto Lastra Vald&eacute;s,<span class="superscript"><b>3</b></span> Lic.  Ismael Ch&aacute;vez Hern&aacute;ndez,<span class="superscript"><b>4</b></span>  Lic. Dianelis Fern&aacute;ndez Mena<span class="superscript"><b>1</b></span> y  T&eacute;c. Mar&iacute;a Lidia Gonz&aacute;lez Sanabria<span class="superscript"><b>5</b></span></a><span class="superscript"><a name="autor"></a></span></p><h4>Resumen    <br>  </h4>    <p>Para demostrar las propiedades antial&eacute;rgicas conferidas a <i>Ocimum  tenuiflorum</i> L., se estudi&oacute; su posible influencia sobre los mediadores  anafil&aacute;cticos y el espasmo bronquial inducido por histamina, as&iacute;  como su posible efecto broncodilatador. En la prueba de anafilaxia pasiva cut&aacute;nea  se emplearon ratas Wistar machos a las cuales se les administr&oacute; el extracto  en dosis de 250, 500 y 1000 mg/kg por v&iacute;a oral durante 10 d&iacute;as.  Se emple&oacute; como control positivo ketotifeno 3 mg/kg, la intensidad de la  anafilaxia se determin&oacute; cuantificando la cantidad de azul de Evans extravasado.  El efecto broncodilatador y protector del espasmo bronquial se determin&oacute;  en cobayos Hartley machos, induciendo brococonstricci&oacute;n por administraci&oacute;n  intravenosa de histamina y determinando la presi&oacute;n bronquial. Como resultado  de este trabajo se encontr&oacute; que el extracto acuoso liofilizado de <i>Ocimum  tenuiflorum</i> L. inhibi&oacute; la anafilaxia pasiva cut&aacute;nea y no present&oacute;  efecto protector del espasmo bronquial inducido por histamina, tampoco demostr&oacute;  propiedades broncodilatadoras en el modelo farmacol&oacute;gico empleado. </p>    <p><i>Palabras  clave</i>: <i>Ocimum tenuiflorum</i> L., anafilaxia pasiva cut&aacute;nea, actividad  broncodilatadora, espasmo bronquial.</p>La b&uacute;squeda de nuevos principios  activos obtenidos a partir de productos naturales, es de vital importancia con  vistas a incorporar los mismos en el tratamiento de diversas enfermedades muy  frecuentes en la poblaci&oacute;n entre de las que se encuentran el edema, prurito,  broncoconstricci&oacute;n e hipotensi&oacute;n que se observan cl&iacute;nicamente  como fiebre de heno, urticaria, asma, <i>shock</i> anafil&aacute;ctico, entre  otros.<span class="superscript">1</span>    <br>     <p>Las reacciones de hipersensibilidad  tipo I contra los ant&iacute;genos ambientales (alergenos) en individuos gen&eacute;ticamente  sensibles producen anticuerpos IgE contra alergenos tales como: polen, mohos,  polvo, caspa de la piel de los animales y ciertos alimentos. La exposici&oacute;n  al alergeno agresivo da por resultado la liberaci&oacute;n de mediadores como  histamina, sustancias de reacci&oacute;n lenta (SRS-A), y el factor quimiot&aacute;ctico  de los eosin&oacute;filos (ECF-A) en el &oacute;rgano que sirve de blanco. La  acci&oacute;n de estos mediadores sobre los vasos sangu&iacute;neos, m&uacute;sculo  liso y gl&aacute;ndulas secretoras con su reacci&oacute;n inflamatoria asociada,  es responsable de las manifestaciones sintom&aacute;ticas y de las caracter&iacute;sticas  del padecimiento, entre ellas, una hipereactividad bronquial, es decir una respuesta  exagerada en forma de broncoconstricci&oacute;n. <span class="superscript">1</span>    <br>  </p>    <p><i>Ocimum tenuiflorum</i> L. es una planta de la familia Lamiaceae conocida  popularmente como albahaca morada. Se considera nativa de Cuba, siendo muy com&uacute;n  su empleo en la medicina tradicional cubana como hipoglicemiante, antiasm&aacute;tico,  y antiinflamatorio. En estudios de tamizaje fitoqu&iacute;mico se ha identificado  la presencia de aminas, flavonoides, leuco-antocianinas, esteroles y triterpenos.<span class="superscript">2</span>    <br>  </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por su aceptaci&oacute;n popular en el pa&iacute;s para el tratamiento  del asma bronquial,<span class="superscript">3</span> en el Centro de Investigaci&oacute;n  y Desarrollo de Medicamentos se prerar&oacute; el extracto acuoso liofilizado  de<i> Ocimum tenuiflorum</i> L. y en el presente trabajo se evaluan las propiedades  del mismo sobre el espasmo bronquial inducido por la administraci&oacute;n endovenosa  de histamina, anafilaxia pasiva cut&aacute;nea, as&iacute; como sus posibles propiedades  broncodilatadoras.<span class="superscript">4</span></p><h4> M&eacute;todos    <br>  </h4><h6>Sustancia de ensayo    <br> </h6>    <p>Extracto acuoso liofilizado de <i>O.  tenuiflorum</i> obtenido a partir de la suspensi&oacute;n acuosa del follaje de  la planta.    <br> </p>    <p>El material vegetal fue colectado en la Estaci&oacute;n  Experimental de Plantas Medicinales &quot;Juan Tom&aacute;s Roig&quot; (EEPM)  del Centro de Investigaci&oacute;n y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM) en primavera,  con No. de herbario 0019, lote 16-17 y secado a 40 &ordm;C en estufa de recirculaci&oacute;n  de aire. La suspensi&oacute;n acuosa fue preparada por reflujo de 100 g de material  vegetal con 1L de agua destilada durante 15 min y preservada con metilparabeno  0,2 % y propilparabeno 0,02 %. El perfil cromatogr&aacute;fico de la suspensi&oacute;n  fue caracterizado por cromatograf&iacute;a de capa delgada. Posteriormente la  suspensi&oacute;n acuosa fue sometida a un proceso de liofilizaci&oacute;n empleando  para ello una liofilizadora Edward.    <br> </p><h6>Animales     <br> </h6>    <p>La evaluaci&oacute;n  del espasmo bronquial inducido por la administraci&oacute;n de histamina se realiz&oacute;  en cobayos Hartley machos (400-450 g de peso corporal) procedentes del Centro  Nacional para la Producci&oacute;n de Animales de Laboratorios (CENPALAB). En  el ensayo de anafilaxia pasiva cut&aacute;nea se utilizaron ratas Wistar machos  de 300 a 350 g de peso corporal y ratones albinos Suizos machos de 18 a 22 g de  peso corporal para la obtenci&oacute;n del antisuero de ovoalb&uacute;mina, procedentes  de la colonia de la UCTB control Biol&oacute;gico (CIDEM).    <br> </p><h6>Condiciones  ambientales y de laboratorio    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </h6>Los animales se mantuvieron en un cuarto  con temperatura controlada de 22 &plusmn; 2 &ordm;C, con un ciclo luz-oscuridad  12/12 h. La dieta administrada consisti&oacute; en pienso convencional para cobayos  CCO 1302 y ratonina en pelotillas para ratas y ratones CMO 1000 proveniente del  CENPALAB y agua a voluntad.    <br> <h6>Reactivos y Medicamentos    <br> </h6>    <p>Aminofilina  20 mg inyectable. Laboratorios Eron S.A, La Habana, Cuba    <br> Difenhidramina 25  mg tabletas. Laboratorios ERON S.A, La Habana, Cuba    <br> Fosfato &aacute;cido de  histamina. BDH, Inglaterra    <br> Ketotifeno 1 mg tableta. Laboratorios Eron S.A,  La Habana, Cuba    <br> Alb&uacute;mina de huevo. Fluka Chemie AG, CH-9740 Buchs,  Suiza    <br> El resto de los reactivos empleados provienen de la casa comercial SIGMA,  EE.UU.    <br> </p><h6>Espasmo bronquial inducido por histamina    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </h6>    <p>Se confeccionaron  5 grupos de ensayo con 4 animales cada uno, 3 de los grupos fueron tratados con  extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> a las dosis de 200, 400 y  800 mg/kg respectivamente por v&iacute;a oral durante 7 d&iacute;as, otro con  difenhidramina 60 mg/kg en dosis &uacute;nica por la misma v&iacute;a 1 h antes  del desaf&iacute;o y un ultimo grupo control sin tratamiento.     <br> </p>    <p>Posteriormente  todos los animales fueron anestesiados con 40 mg/kg de pentobarbital s&oacute;dico  para realizar la traqueotom&iacute;a y ventilarlos con una bomba de respiraci&oacute;n  con 100 pulsaciones/min/ kg de peso, se canaliz&oacute; la vena yugular y se administraron  15 mg/kg de pentobarbital s&oacute;dico para producir el paro respiratorio. A  continuaci&oacute;n se realizaron 3 administraciones por v&iacute;a intravenosa  de 15 mg/kg de histamina tanto a los grupos tratados como al grupo control y se  determin&oacute; la presi&oacute;n intratraqueal despu&eacute;s de cada administraci&oacute;n  mediante un transductor de presi&oacute;n TP-101T acoplado a un pol&iacute;grafo  NIHON KOHDEN.<span class="superscript">4</span>    <br> </p>El resultado se consider&oacute;  positivo cuando la media de los valores de la diferencia de presi&oacute;n bronquial  de cada animal provocada por la administraci&oacute;n de histamina en los animales  tratados result&oacute; menor que el 50 % de la media de los valores de la diferencia  de presi&oacute;n bronquial en los animales controles.<span class="superscript">5</span>    <br>  <h6>Actividad broncodilatadora    <br> </h6>Se sigui&oacute; el mismo procedimiento  que para el ensayo anterior s&oacute;lo que en este caso se realizaron 3 administraciones  de histamina con intervalo entre ellas de 6 min antes de administrar por v&iacute;a  intravenosa 25, 50 y 100 mg/kg de extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i>  y posteriormente se realizaron otras 2 administraciones de histamina 15 mg/kg  con el mismo intervalo de tiempo entre ellas.<span class="superscript">5</span>  El criterio de positividad fue el mismo que para el ensayo anterior.     <br> <h6>Anafilaxia  pasiva cut&aacute;nea (APC)    <br> </h6>Obtenci&oacute;n del antisuero de ovoalb&uacute;mina    <br>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se administraron 0,2 mL de soluci&oacute;n sensibilizante de alb&uacute;mina  de huevo a un grupo de 20 ratones por v&iacute;a intraperitoneal, cuya composici&oacute;n  fue: alb&uacute;mina de huevo 0,1% (10 mL), NaHCO<span class="subscript">3</span>  8,4 % (4,5 mL), KAl(SO<span class="subscript">4</span>)<span class="subscript">2</span>  10 % (10 mL), PBS pH 7,4 (20 mL). Los animales se inmunizaron 2 veces con 7 d&iacute;as  de intervalo entre ellas. 14 d&iacute;as despu&eacute;s de la &uacute;ltima administraci&oacute;n  se sacrificaron los animales y se procedi&oacute; a la extracci&oacute;n de la  sangre por la vena femoral, la que se centrifug&oacute; a 2 500 rpm por 10 min  a 37 &ordm;C para obtener el antisuero.<span class="superscript">4</span>    <br>  </p>    <p>Para el ensayo de APC se formaron 4 grupos de trabajo de 4 ratas cada uno:  2 grupos recibieron extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> a las  dosis de 250, 500 y 1 000 mg/kg respectivamente, un grupo control positivo administrado  con ketotifeno 3 mg/kg y un grupo control sin tratamiento. El extracto acuoso  liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> se administr&oacute; por v&iacute;a oral  durante un per&iacute;odo de 10 d&iacute;as. La &uacute;ltima administraci&oacute;n  de la sustancia de ensayo y la administraci&oacute;n del ketotifeno fue realizada  1 h antes del desaf&iacute;o.     <br> </p>    <p>Las ratas fueron rasuradas en el &aacute;rea  dorsal 1 h antes de la administraci&oacute;n intrad&eacute;rmica de 0,1 mL de  antisuero de alb&uacute;mina de huevo (obtenido previamente de ratones) diluido  en cloruro de sodio 0,9 % (1:20) en 6 sitios del lomo. Pasadas 24 h se provoc&oacute;  la reacci&oacute;n anafil&aacute;ctica mediante la administraci&oacute;n por v&iacute;a  intravenosa de 1 mL de una soluci&oacute;n al 0,1% de alb&uacute;mina de huevo  en el colorante azul de Evans al 1 %. Los animales fueron sacrificados 1 h despu&eacute;s  de provocada la reacci&oacute;n de anafilaxia para la extracci&oacute;n de porciones  de piel que fueron colocadas en tubos de ensayo que conten&iacute;an 4 mL de formamida  e incubados a 37 &deg;C durante 48 h. Se midi&oacute; la densidad &oacute;ptica  del colorante extravasado a una <font face="Symbol">l</font>= 623 nm.<span class="superscript">4,6</span>  Los valores de densidad &oacute;ptica obtenidos fueron expresados mediante una  curva de calibraci&oacute;n en mg de azul de Evans extravasado/sitio.    <br> </p><h6>Procesamiento  estad&iacute;stico    <br> </h6>    <p>Los resultados obtenidos se expresaron a trav&eacute;s  de la media &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. Los mismos se procesaron  mediante un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a y posteriormente se  realiz&oacute; una prueba de <i>Duncan</i> con un nivel de significaci&oacute;n  de <i>p</i>&lt;0,05.<span class="superscript">7</span></p><h4>Resultados    <br> </h4>    <p>En  el ensayo donde se provoc&oacute; espasmo bronquial por administraci&oacute;n  intravenosa de histamina 15 mg/kg en cobayos, se pudo comprobar que los animales  tratados con las diferentes dosis de extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i>  no tuvieron efecto protector al mismo pues se obtuvieron valores de presi&oacute;n  intratraqueal similares a los obtenidos en el grupo control negativo (figura 1).</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v9n3/f0106304.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n3/f0106304.jpg" width="275" height="207" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  1. Efecto del extracto acuoso liofilizado <i>O. tenuiflorum </i>sobre el espasmo  bronquial inducido por histamina 15 mg/kg, animales controles (A), tratados con  difenhidramina 60 mg/kg (B), tratados con extracto acuoso liofilizado de <i>O.  tenuiflorum</i> a las dosis de 200, 400 y 800 mg/kg (C, D y E respectivamente).</p>    <p align="left">En  el ensayo de actividad broncodilatadora el extracto acuoso liofilizado de <i>O.  tenuiflorum</i> no present&oacute; efecto positivo sobre este indicador en ninguna  de las dosis ensayadas (figura 2), los animales tratados con aminofilina 25 mg/kg  disminuyeron significativamente los valores de presi&oacute;n intratraqueal con  respecto al grupo control negativo seg&uacute;n el criterio de positividad empleado.</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v9n3/f0206304.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n3/f0206304.jpg" width="342" height="239" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.2.  Efecto broncodilatador del extracto acuoso liofilizado <i>O. tenuiflorum</i>,  animales controles (A), tratados con aminofilina 25 mg/kg (B), tratados con extracto  acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i>. a las dosis de 25, 50 y 100 mg/kg  (C, D y E respectivamente).    <br> </p>    <p>Los resultados de la administraci&oacute;n  de extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> a las dosis de 250, 500  y 1 000 mg/kg, por un per&iacute;odo de 10 d&iacute;as sobre la APC, mostraron  una disminuci&oacute;n de la intensidad de la reacci&oacute;n anafil&aacute;ctica  en ratas (figura 3), la que fue diferente con respecto al grupo control negativo  para <i>p</i>&lt;0,01. Los grupos tratados con la dosis de 250 y 500 mg/kg de  <i>O. tenuiflorum</i> mostraron resultados estad&iacute;sticamente similares.  </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v9n3/f0306304.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v9n3/f0306304.jpg" width="361" height="268" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  3. Medias de la cantidad de colorante extravasado /sitio en cada uno de los grupos  de ensayo.</p><h4>Discusi&oacute;n    <br> </h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Como es conocido, la reacci&oacute;n  ant&iacute;geno- IgE produce un cambio estructural a nivel de la membrana de la  c&eacute;lula mastocita que suele alterar la permeabilidad de la misma, permitiendo  el r&aacute;pido ingreso de diversos iones, entre ellos el calcio, el cual es  esencial para la desgranulaci&oacute;n de estas c&eacute;lulas. Adem&aacute;s  se produce un cambio bif&aacute;sico en los niveles de AMP c&iacute;clico, lo  que hace que ocurra un incremento r&aacute;pido del mismo, seguido de una disminuci&oacute;n  notable. Es precisamente durante esta disminuci&oacute;n notable de AMP c&iacute;clico  que se liberan los mediadores de la anafilaxia. <span class="superscript">4,8-14</span>    <br>  </p>    <p>En el ensayo donde se provoc&oacute; la APC mediante un mecanismo inmunol&oacute;gico  se observ&oacute; el efecto inhibitorio de la intensidad de la misma por parte  del extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> a las dosis ensayadas,  probablemente debido a que este impida de alguna manera la reacci&oacute;n ant&iacute;geno-anticuerpo,  impida la s&iacute;ntesis y/o liberaci&oacute;n de los mediadores al&eacute;rgicos  por parte de los mastocitos especialmente de la serotonina, bradiquinina, factor  activador de plaquetas, prostaglandinas y/o leucotrienos o antagonicen sus receptores  que evitar&iacute;a la fragilidad capilar provocada por ellos y por lo tanto que  haya una disminuci&oacute;n de la cantidad de colorante extravasado/sitio, ya  que los productos antagonistas de estos mediadores inhiben el aumento de la permeabilidad  capilar producida por los mismos. <span class="superscript">15</span>    <br> </p>    <p>Tambi&eacute;n  se pudo apreciar que el extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> a  las dosis de 200, 400 y 800 mg/kg despu&eacute;s de haber sido administrado por  v&iacute;a oral durante un per&iacute;odo de 7 d&iacute;as, no present&oacute;  efectividad en el tratamiento profil&aacute;ctico de la broncoconstricci&oacute;n  inducida por histamina, ya que los valores de presi&oacute;n bronquial entre el  grupo control y los grupos tratados no fueron significativamente diferente seg&uacute;n  el criterio estad&iacute;stico analizado. Tampoco se observ&oacute; efecto broncodilatador  por parte del extracto acuoso liofilizado de O. <i>tenuiflorum</i> administrado  por v&iacute;a endovenosa en cobayos, por lo que parece que el extracto de acuoso  liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> no inhibe los efectos de la histamina a nivel  bronquial, la cual al interactuar con los receptores H<span class="subscript">1</span>  provoca broncoconstricci&oacute;n <span class="superscript">4,16</span> y por  consiguiente se convierte en uno de los mediadores de las enfermedades al&eacute;rgicas.<span class="superscript">1,16</span></p>Finalmente  se puede concluir que el extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i>  inhibi&oacute; la anafilaxia pasiva cut&aacute;nea en ratas a las dosis ensayadas,  no inhibi&oacute; el espasmo bronquial inducido por la administraci&oacute;n intravenosa  de 15 mg/kg de histamina y por v&iacute;a endovenosa no present&oacute; efecto  broncodilatador en el modelo farmacol&oacute;gico empleado. <h4>Summary</h4>In  order to show the antiallergic properties conferred to <i>Ocimum tenuiflorum</i>  L., its possible influence on the anaphylactic mediators and on bronchial spasm  induced by histamine, as well as its possible effect as bronchodilator, were studied.  Wistar male rats were used in the passive cutaneous anaphylaxis test. They were  administered the extract at doses of 250, 500 and 1000 mg/kg by oral route for  10 days, using ketotiphen 3 mg/kg as a positive control. The anaphylaxis intensity  was determined by quantifying the amount of extravasated Evans blue. The bronchodilator  and protective effect of bronchial spasm was determined in Hartley male guinea  pigs by inducing bronchoconstriction through the intravenous administration of  histamine and determining the bronchial pressure. As a result, it was found that  the frozen dried aqueous extract of <i>Ocimum tenuiflorum</i> L. inhibited the  passive cutaneous anaphylaxis and that it did not present a protective effect  of the bronchial spasm induced by histamine. No bronchodilator properties were  observed in the pharmacological model used.    <br>     <p><i>Key words</i>: <i>Ocimum  tenuiflorum</i> L.; passive cutaneous anaphylaxis, bronchodilator activity; bronchial  spasm.    <br> </p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas </h4>    <!-- ref --><P> 1. Elena RJP. Aspectos  no tradicionales en fisiopatolog&iacute;a respiratoria. La Habana: Editorial Ciencias  M&eacute;dicas; 1988.p. 94-5.<!-- ref --><P> 2. Roig TJ. Plantas medicinales arom&aacute;ticas  o venenosas de Cuba. 2da ed. La Habana: Instituto del Libro; 1988.p.141-3. <!-- ref --><P>  3. Disponible en URL: [en l&iacute;nea] <a href="http://www.niam.com/corp-web/ocimum.htm">http://www.niam.com/corp-web/ocimum.htm</a>.  Abril 2002.<!-- ref --><P> 4. N&uacute;&ntilde;ez Y, Lagarto A, Till&aacute;n J, Lastra  H, Ag&uuml;ero S, Guerra I, et al. 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Calle 17 No. 6208 e/ 62 y 64  Playa, La Habana, Cuba. e-mail: <a href="mailto:cinfa@infomed.sld.cu">cinfa@infomed.sld.cu</a></p>    <p></p>    <p></p>    <p></p>    <p></p>    ]]></body>
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<body><![CDATA[<br> <span class="superscript"><b>4</b></span>  Licenciado en Bioqu&iacute;mica. Investigador Agregado.    <br> <span class="superscript"><b>5</b></span>  T&eacute;cnico Medio en Qu&iacute;mica Analista.</a><a name="cargo"></a>      ]]></body><back>
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