<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>1028-4796</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Plantas Medicinales]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev Cubana Plant Med]]></abbrev-journal-title>
<issn>1028-4796</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[ECIMED]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S1028-47962011000200004</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Valoración del potencial antioxidante de Mollinedia racemosa (romadizo)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Assessment of antioxidant potential of Mollinedia racemosa (romadizo)]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Solanilla Duque]]></surname>
<given-names><![CDATA[José Fernando]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lombo]]></surname>
<given-names><![CDATA[Oscar]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Murillo Perea]]></surname>
<given-names><![CDATA[Elizabeth]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Méndez Arteaga]]></surname>
<given-names><![CDATA[Jonh Jairo]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Departamento de Producción y Sanidad Vegetal Universidad del Tolima ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Ibagué ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2011</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2011</year>
</pub-date>
<volume>16</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>151</fpage>
<lpage>163</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1028-47962011000200004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1028-47962011000200004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1028-47962011000200004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Introducción: Mollinedia racemosa (Schltdl.) Tul. (romadizo), es una especie usada por grupos indígenas y comunidades campesinas de la cuenca del Orinoco colombiano, empleada para tratar fiebres, dolores de cabeza y problemas de estómago, especialmente en el tratamiento del resfriado y como analgésico. Objetivo: evaluar el potencial antioxidante de las hojas de M. racemosa (romadizo). Métodos: se preparó un macerado etanólico de hojas (relación 1:15, vegetal/solvente), renovando el solvente cada 24 h hasta agotar la muestra. El extracto se filtró, se concentró a presión reducida y se almacenó (4 ºC). Se valoró el contenido de compuestos fenólicos, flavonoides y de flavonoles totales. Se estableció además la concentración de alcaloides que posee la planta. Asimismo, se evaluó la actividad antioxidante in vitro del vegetal midiendo la capacidad del extracto etanólico para estabilizar radicales DPPH (1,1-difenil-2-picrilhidracil) y ABTS (ácido 2,2'azinobis-[3 etilbenzotiazolina]-6-sulfónico), y la potencialidad para inhibir la peroxidación de un sistema lipídico. Resultados: el potencial antioxidante de M. racemosa mostró dependencia de la concentración aplicada, que a su vez está correlacionada con la diversidad y cantidad de constituyentes de naturaleza fenólica del vegetal. Concentraciones de 14,59 mg/mL y 17,32 mg/mL se requieren para inhibir 50 % de la cantidad original utilizada de DPPH y ABTS, respectivamente. La actividad inhibitoria de la peroxidación lipídica alcanzó su máxima capacidad a las 360 h (15 d). Conclusiones: los resultados obtenidos permiten concluir que el extracto hidroalcohólico de las hojas de M. racemosa posee un efecto antioxidante y protector de un sistema lipídico.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Mollinedia racemosa (Schltdl.) Tul. (romadizo), is one species used by indigenous and peasant communities in the Colombian Orinoco basin, to treat fever, headache and stomach problems, especially in the treatment of cold and as an analgesic. Objective: to evaluate the antioxidant potential of M. racemosa (romadizo) leaves. Methods: ethanolic macerate of leaves was prepared (ratio 1:15, plant/solvent), changing the solvent every 24 h until the sample was exhausted. The extract was filtered, concentrated under reduced pressure and stored (4°C). The content of phenolic compounds, flavonoids and total flavonols were assessed. The concentration of alkaloids of this plant was also established. Additionally, the in vitro antioxidant activity of plant was determined by measuring the ability of ethanol to stabilize radicals DPPH1 (1-diphenil-2-picrilhydracil) and ABTS (2,2'azinobis-[3 etilbenzotiazolin]-6-sulphonic acid) and the potential to inhibit lipid peroxidation. Results: the antioxidant potential of this plant depended on the applied concentration that in turn was correlated to the diversity and quantity of phenols present in the plant. Concentration rates of 14.59 and 17.32 µg/mL were required to inhibit 50 % (IC50) of the original quantity of DPHH and ABTS respectively. The inhibitory capacity of lipidic peroxidation reached its maximum level after 360 hours (15 days). Conclusions: the results showed that the extract from M. racemosa leaves had antioxidant and protective effect in a lipidic system.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Mollinedia racemosa]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[actividad antioxidante]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[DPPH]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[ABTS]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[peroxidación lipídica]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[compuestos fenólicos]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Mollinedia racemosa]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[antioxidant activity]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[DPPH]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[ABTS]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[lipid peroxidation]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[phenolic compounds]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL </B></font></p>       <p>&nbsp; </p> </div>     <P>      <P><font size="4"><b><font face="Verdana">Valoraci&oacute;n del potencial antioxidante    de <I>Mollinedia racemosa</I> (romadizo)</font></b></font>      <P>      <P><font size="3"><b><font face="Verdana">Assessment of antioxidant potential    of <I>Mollinedia racemosa</I> (romadizo) </font></b></font>      <P>     <P>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><b><font face="Verdana" size="2">Jos&eacute; Fernando Solanilla Duque,<SUP>I</SUP>    Oscar Lombo,<SUP>II</SUP> Elizabeth Murillo Perea,<SUP>III</SUP> Jonh Jairo    M&eacute;ndez Arteaga</font><font face="Verdana" size="2"><SUP>IV</SUP></font></b>     <P> <font face="Verdana" size="2"><SUP>I </sup>Doctor en Ciencia y Tecnolog&iacute;a    en coloides e interfaces. Profesor Asociado. Investigador Adscrito. Grupo de    Investigaci&oacute;n CEDAGRITOL. Departamento de Producci&oacute;n y Sanidad    Vegetal. Universidad del Tolima. Ibagu&eacute;, Colombia. </font>     <br>   <font face="Verdana" size="2"><SUP>II </SUP>Investigador Adscrito. COLCIENCIAS.    Grupo de Investigaci&oacute;n GIPRONUT. Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad    del Tolima. Ibagu&eacute;, Colombia.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>III </SUP>M&aacute;ster en Ciencias    Qu&iacute;micas. Profesor Titular. Investigador Adscrito. Grupo de Investigaci&oacute;n    GIPRONUT. Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad del Tolima. Ibagu&eacute;,    Colombia.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>IV </SUP>Doctor en Ciencias Qu&iacute;micas.    Profesor Asociado. Investigador Adscrit. Grupo de Investigaci&oacute;n GIPRONUT.    Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad del Tolima. Ibagu&eacute;, Colombia.    </font>     <P>     <P>  <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B></font>     <p><B> </B><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n</b>: <I>Mollinedia    racemosa</I> (Schltdl.) Tul. (romadizo), es una especie usada por grupos ind&iacute;genas    y comunidades campesinas de la cuenca del Orinoco colombiano, empleada para    tratar fiebres, dolores de cabeza y problemas de est&oacute;mago, especialmente    en el tratamiento del resfriado y como analg&eacute;sico. <B>    <br>   Objetivo</B>: evaluar el potencial antioxidante de las hojas de <I>M. racemosa</I>    (romadizo). <B>    <br>   M&eacute;todos</B>: se prepar&oacute; un macerado etan&oacute;lico de hojas    (relaci&oacute;n 1:15, vegetal/solvente), renovando el solvente cada 24 h hasta    agotar la muestra. El extracto se filtr&oacute;, se concentr&oacute; a presi&oacute;n    reducida y se almacen&oacute; (4 &#186;C). Se valor&oacute; el contenido de    compuestos fen&oacute;licos, flavonoides y de flavonoles totales. Se estableci&oacute;    adem&aacute;s la concentraci&oacute;n de alcaloides que posee la planta. Asimismo,    se evalu&oacute; la actividad antioxidante <I>in vitro</I> del vegetal midiendo    la capacidad del extracto etan&oacute;lico para estabilizar radicales DPPH (1,1-difenil-2-picrilhidracil)    y ABTS (&aacute;cido 2,2'azinobis-[3 etilbenzotiazolina]-6-sulf&oacute;nico),    y la potencialidad para inhibir la peroxidaci&oacute;n de un sistema lip&iacute;dico.    <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Resultados</B>: el potencial antioxidante de <I>M. racemosa</I> mostr&oacute;    dependencia de la concentraci&oacute;n aplicada, que a su vez est&aacute; correlacionada    con la diversidad y cantidad de constituyentes de naturaleza fen&oacute;lica    del vegetal. Concentraciones de 14,59 <font face="Symbol">m</font>g/mL y 17,32    <font face="Symbol">m</font>g/mL se requieren para inhibir 50 % de la cantidad    original utilizada de DPPH y ABTS, respectivamente. La actividad inhibitoria    de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica alcanz&oacute; su m&aacute;xima capacidad    a las 360 h (15 d). <B>    <br>   Conclusiones</B>: los resultados obtenidos permiten concluir que el extracto    hidroalcoh&oacute;lico de las hojas de <I>M. racemosa </I>posee un efecto antioxidante    y protector de un sistema lip&iacute;dico. </font></p>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave:</B> <I>Mollinedia racemosa</I>,    actividad antioxidante, DPPH, ABTS, peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica, compuestos    fen&oacute;licos. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT </B></font>      <p><font face="Verdana" size="2"><B>Introduction</b>: <I>Mollinedia racemosa</I>    (Schltdl.) Tul. (romadizo), is one species used by indigenous and peasant communities    in the Colombian Orinoco basin, to treat fever, headache and stomach problems,    especially in the treatment of cold and as an analgesic. <B>    <br>   Objective</B>: to<B> </B>evaluate the antioxidant potential of <I>M. racemosa</I>    (romadizo) leaves. <B>    <br>   Methods</B>: ethanolic macerate of leaves was prepared (ratio 1:15, plant/solvent),    changing the solvent every 24 h until the sample was exhausted. The extract    was filtered, concentrated under reduced pressure and stored (4&#176;C). The    content of phenolic compounds, flavonoids and total flavonols were assessed.    The concentration of alkaloids of this plant was also established. Additionally,    the <I>in vitro</I> antioxidant activity of plant was determined by measuring    the ability of ethanol to stabilize radicals DPPH1 (1-diphenil-2-picrilhydracil)    and ABTS (2,2'azinobis-[3 etilbenzotiazolin]-6-sulphonic acid) and the potential    to inhibit lipid peroxidation. <B>    <br>   Results</B>: the antioxidant potential of this plant depended on the applied    concentration that in turn was correlated to the diversity and quantity of phenols    present in the plant. Concentration rates of 14.59 and 17.32 &#181;g/mL were    required to inhibit 50 % (IC<SUB>50</SUB>) of the original quantity of DPHH    and ABTS respectively. The inhibitory capacity of lipidic peroxidation reached    its maximum level after 360 hours (15 days). <B>    <br>   Conclusions</B>: the results showed that the extract from <I>M. racemosa</I>  leaves had antioxidant and protective effect in a lipidic system.</font></p>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words:</B> <I>Mollinedia racemosa</I>,    antioxidant activity, DPPH, ABTS, lipid peroxidation, phenolic compounds. </font> <hr size="1" noshade>     <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B></font>      <P><font face="Verdana" size="2">La b&uacute;squeda de fuentes medicinales naturales    para el tratamiento de diferentes enfermedades y el control de reacciones qu&iacute;micas    en los alimentos que incrementen su vida &uacute;til, ha despertado gran inter&eacute;s    en la comunidad cient&iacute;fica en los a&ntilde;os recientes.<SUP>1,2</SUP>    Numerosos trabajos reportan pruebas del efecto antioxidante de extractos vegetales    con potencial estabilizador y(o) inhibitorio de las especies reactivas de ox&iacute;geno    y nitr&oacute;geno generados en el cuerpo humano, pero que pueden provocar da&ntilde;os    org&aacute;nicos asociados a varias enfermedades degenerativas, como la aterosclerosis,    enfermedades coronarias, envejecimiento y algunos tipos de c&aacute;ncer.<SUP>3</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Otros estudios reconocen la asociaci&oacute;n    existente entre los antioxidantes de origen vegetal y la disminuci&oacute;n    de la morbilidad y mortalidad por enfermedades, como las mencionadas anteriormente.<SUP>4,5    </SUP>A lo anterior se agrega que los antioxidantes sint&eacute;ticos (BHA y    BHT, por ejemplo) son cuestionados por su riesgo potencial de toxicidad para    la salud.<SUP>2,6</SUP> Por el contrario, el uso de los productos naturales    vegetales para tratar enfermedades tiene un mayor inter&eacute;s en la poblaci&oacute;n,    como consecuencia de su buena actuaci&oacute;n terap&eacute;utica y baja toxicidad.<SUP>2,7</SUP>    Encontrar nuevas fuentes de antioxidantes seguras de origen natural es de vital    importancia a nivel farmacol&oacute;gico y alimentario. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En este trabajo los autores se propusieron evaluar    algunas de las caracter&iacute;sticas qu&iacute;micas y el poder antioxidante    del extracto obtenido a partir de las hojas de la planta de romadizo, buscando    con ello profundizar en el conocimiento cient&iacute;fico de la familia Monimiaceae    en Colombia, en particular de la especie <I>Mollinedia racemosa </I>(Schltdl.)    Tul., para correlacionar la presencia de algunos de sus constituyentes qu&iacute;micos    con propiedades bioactivas y dar soporte cient&iacute;fico al uso etnom&eacute;dico    dado por las comunidades populares de la Orinoquia colombiana y, a la vez, sacar    del anonimato cient&iacute;fico a esta especie vegetal. </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODOS</font></B></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Material vegetal</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2">El material vegetal se colect&oacute; en una    zona boscosa de la franja suburbana de Yopal-Casanare (28-30 &#186;C, 313 m    sobre el nivel del mar, precipitaci&oacute;n pluvial 1 500-2 500 mm). Un ejemplar    fue enviado al Herbario Nacional de la Universidad Nacional de Colombia para    su determinaci&oacute;n taxon&oacute;mica y depositado con el n&uacute;mero    de colecci&oacute;n 530879.<SUP>8</SUP> El estudio se realiz&oacute; con la    parte a&eacute;rea del vegetal (hojas), en &oacute;ptimo estado de desarrollo    vegetativo y fitosanitario. El secado se realiz&oacute; en bandejas a temperatura    ambiente (27 &#177; 2 &#186;C). La obtenci&oacute;n del extracto se prepar&oacute;    a trav&eacute;s de un macerado etan&oacute;lico (relaci&oacute;n 1:15, vegetal/solvente),    renovando el solvente cada 24 h hasta agotar la muestra. El extracto se filtr&oacute;,    se concentr&oacute; a presi&oacute;n reducida y se almacen&oacute; (4 &#186;C)    hasta su utilizaci&oacute;n. </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Tamizaje fitoqu&iacute;mico</I></font>      <P><font face="Verdana" size="2">Se realiz&oacute; mediante ensayos cualitativos    individuales para cada grupo qu&iacute;mico<SUP>9,10</SUP> y aplicando la metodolog&iacute;a    cl&aacute;sica de fraccionamiento por polaridad de solvente.<SUP>11</SUP> Los    ensayos a la gota se verificaron con cromatograf&iacute;a de capa delgada.<SUP>12</SUP>    El nivel de fenoles totales (FT) se evalu&oacute; mediante el m&eacute;todo    de <I>Folin-Ciocalteau</I>, empleando &aacute;cido fosfomol&iacute;bdico como    complejo para desarrollar color.<SUP>13</SUP> Para la cuantificaci&oacute;n    de taninos se aplic&oacute; un m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico que    const&oacute; de 2 etapas: en la primera de ellas se cuantificaron los polifenoles    totales en el extracto y en la segunda se determinaron los polifenoles residuales    despu&eacute;s del secuestro de los taninos con gelatina.<SUP>14,15</SUP> Los    taninos que precipitaron prote&iacute;nas (condensados) se cuantificaron a trav&eacute;s    del ensayo de alb&uacute;mina de suero bovino.<SUP>16,17</SUP> Para determinar    el contenido de alcaloides totales se alcaliniz&oacute; la muestra, las bases    alcaloidales formadas se solubilizaron en un solvente org&aacute;nico y a continuaci&oacute;n    se aplic&oacute; un m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico, comparando la    lectura de absorbancia a 450 nm en una curva de calibrado preparada con morfina.<SUP>18,19</SUP>    </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Capacidad antioxidante</I></font>      <P><font face="Verdana" size="2">Se utilizaron los m&eacute;todos DPPH (1,1-difenil-2-picrilhidracil),    ABTS (&aacute;cido 2,2'azinobis-[3 etilbenzotiazolina]-6- sulf&oacute;nico)    y capacidad protectora de un sistema lip&iacute;dico. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El DPPH es uno de los pocos radicales org&aacute;nicos    nitrogenados estables disponibles comercialmente. Su reducci&oacute;n hace que    el color de su soluci&oacute;n se desvanezca, comportamiento que es aprovechado    para monitorear el progreso de la reacci&oacute;n a trav&eacute;s de un espectrofot&oacute;metro    UV-VIS. Este procedimiento es de uso frecuente para medir la actividad antioxidante    de extractos vegetales.<SUP>20</SUP> La capacidad antioxidante de <I>M. racemosa</I>    para estabilizar el radical DPPH se determin&oacute; mezclando una al&iacute;cuota    del extracto etan&oacute;lico preparado a diferentes concentraciones (10-100    &#181;g/mL), con la soluci&oacute;n del radical (1:3, extracto/radical). Despu&eacute;s    de 20 min de incubaci&oacute;n, la absorbancia del radical no decolorado se    ley&oacute; a 517 nm.<SUP>21</SUP> El porcentaje de degradaci&oacute;n del color    violeta de las muestras y patrones de referencia (&aacute;cido asc&oacute;rbico,    AA, y BHT) fue determinado mediante la ecuaci&oacute;n: </font>     <P><img src="/img/revistas/pla/v16n2/fo0104211.gif" width="289" height="62">      
]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2">La CI<SUB>50</SUB> se calcul&oacute; como una    reducci&oacute;n de 50 % de la cantidad inicial utilizada del radical. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El radical ABTS posee una solubilidad alta en    agua y buena estabilidad qu&iacute;mica. Cuando se oxida por la remoci&oacute;n    de un electr&oacute;n, el ABTS genera cationes radicales metaestables, con un    espectro de absorci&oacute;n caracter&iacute;stico y una alta absortividad molar    en 414 nm. En la reacci&oacute;n entre el cati&oacute;n-radical ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP>    y la sustancia antioxidante, la especie que contiene el radical es neutralizada    por la ganancia de un electr&oacute;n. En consecuencia, la desaparici&oacute;n    del cati&oacute;n-radical ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP> puede    ser estimada por la disminuci&oacute;n de la absorbancia.<SUP>22,23</SUP> </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Para medir la actividad antirradical de <I>M.    racemosa</I> frente al radical ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP>    se aplic&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por <I>Iqbal</I>.<SUP>6</SUP>    El radical se form&oacute; tras la reacci&oacute;n del ABTS (7 mM) con persulfato    pot&aacute;sico (2,45 mM, concentraci&oacute;n final) incubados a temperatura    ambiente y en oscuridad (16 h). Una vez formado el radical ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP>    se diluy&oacute; con etanol hasta obtener un valor de absorbancia de 0,700 &#177;    0,100 a 754 nm (longitud de m&aacute;xima absorci&oacute;n). A 980 &#181;L de    la diluci&oacute;n del radical ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP>    ya generado se le determin&oacute; la A<SUB>754</SUB> (27 &#186;C), se a&ntilde;adieron    20 &#181;L de la muestra (preparada entre 10 y 100 &#181;g/mL), y se midi&oacute;    de nuevo la A<SUB>754</SUB> pasados 7 min. La actividad antirradical se calcul&oacute;    a trav&eacute;s de la f&oacute;rmula siguiente:</font>      <P><img src="/img/revistas/pla/v16n2/fo0204211.gif" width="282" height="38">     
<P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">La CI<SUB>50</SUB> se calcul&oacute; como una    reducci&oacute;n de 50 % de la cantidad inicial utilizada del radical. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La capacidad protectora antioxidante de un sistema    lip&iacute;dico de determin&oacute; mediante el m&eacute;todo descrito por <I>Iqbal</I>.<SUP>24</SUP>    El extracto preparado a diferentes concentraciones (0,1; 0,5 y 1,0 %), se le    a&ntilde;adi&oacute; una mezcla de soluci&oacute;n de &aacute;cido linoleico    (0,13 mL), etanol 10 mL al 99,8 % y 10 mL de una soluci&oacute;n tamp&oacute;n    de fosfato de sodio (pH 7,0; 0,2 mM). El volumen total se ajust&oacute; a 25    mL con agua destilada. La soluci&oacute;n se incub&oacute; a diferentes tiempos    (0, 5, 10, 15 y 20 d) y a una temperatura de 40 &#186;C. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El grado de oxidaci&oacute;n se midi&oacute;    seg&uacute;n el m&eacute;todo del tiocianato (SCN<SUP>-</SUP>),<SUP>24</SUP>    con 5 mL de etanol (75 %), 0,1 mL de una soluci&oacute;n acuosa de tiocianato    de amonio (30 %), 0,1 mL de soluci&oacute;n de la muestra y 0,1 mL de cloruro    ferroso (FeCl<SUB>2</SUB>) en 20 mM de HCl al 3,5 %. Las lecturas se hicieron    despu&eacute;s de 3 min de agitaci&oacute;n, los valores de absorci&oacute;n    de la mezcla se midieron a 500 nm, lo que se interpreta como contenido de per&oacute;xido.    Se realizaron controles negativos con el &aacute;cido linoleico, pero sin los    extractos, y como controles positivos, antioxidantes sint&eacute;ticos (BHT    y &aacute;cido asc&oacute;rbico, AA). El porcentaje de inhibici&oacute;n de    la peroxidaci&oacute;n del &aacute;cido linoleico por parte del extracto, se    calcul&oacute; mediante la ecuaci&oacute;n: </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"> <img src="/img/revistas/pla/v16n2/fo0304211.gif" width="336" height="53"></font>      
<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">donde t<SUB>f</SUB> es el tiempo final a diferentes    d&iacute;as de incubaci&oacute;n (20 d).<SUP>2,6</SUP> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Todos los resultados son expresados como la media    &#177; DE (n= 3). El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal se efectu&oacute;    para calcular la relaci&oacute;n dosis-respuesta de las soluciones est&aacute;ndares    utilizadas y de las muestras analizadas. El grado de correlaci&oacute;n entre    las variables se expres&oacute; a trav&eacute;s del coeficiente de correlaci&oacute;n    r<SUP>xy</SUP>. </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS</B> </font>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Tamizaje fitoqu&iacute;mico</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Las hojas secas de <I>M. racemosa</I> mostraron    abundante contenido en compuestos fen&oacute;licos: taninos, flavonoides y fenilpropanoides.    El an&aacute;lisis mostr&oacute; adem&aacute;s la presencia de terpenos, esteroides    y carbohidratos de tipo reductor. Todos los ensayos realizados para reconocer    el n&uacute;cleo alcaloidal fueron positivos, confirm&aacute;ndose su presencia    a trav&eacute;s de cromatograf&iacute;a de capa delgada. La marcha sistem&aacute;tica    de <I>Bandford</I>, constituida por una serie de pruebas cl&aacute;sicas para    el reconocimiento espec&iacute;fico de algunos tipos de alcaloides, permiti&oacute;    ver que el extracto de <I>M. racemosa</I> posee alcaloides de tipo morfe&oacute;lico,    como morfina (analg&eacute;sico utilizado en el tratamiento de dolores agudos),    code&iacute;na, papaverina, noscapina, entre otros, y del grupo de las anfetaminas    y derivados. En la <a href="/img/revistas/pla/v16n2/t0104211.gif">tabla</a> se reportan los valores    determinados para algunos de los constituyentes qu&iacute;micos de <I>M. racemosa.</I>    </font>      
<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Sobre la base de las pruebas realizadas en el    an&aacute;lisis cualitativo aplicado a <I>M. racemosa</I> se procedi&oacute;    a cuantificar algunos de los metabolitos detectados, con el prop&oacute;sito    de profundizar en el conocimiento fitoqu&iacute;mico de la planta y asociar    el tipo de compuesto encontrado y su nivel de concentraci&oacute;n con la bioactividad    manifestada por el extracto de la planta. </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Capacidad antioxidante</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/pla/v16n2/f0104211.gif">figura 1</a> se    ilustra en forma comparativa, el comportamiento inhibitorio del cati&oacute;n    radical DPPH y ABTS. Dado que la cin&eacute;tica entre el radical DPPH<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP> y la concentraci&oacute;n de los antioxidantes no es lineal, resulta conveniente    expresar la actividad como CI<SUB>50</SUB>.</font>      
<P><font face="Verdana" size="2">En este estudio el valor determinado para este    par&aacute;metro fue 14,59 &#177; 0,011 <font face="Symbol">m</font>g/mL frente    al DPPH<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP> y 17,32 &#177; 0,12 <font face="Symbol">m</font>g/mL    frente al ABTS<SUP>+<font size="1">&#149;</font></SUP>, aunque estos valores    parecen estar muy distantes del obtenido para el BHT (5,5 &#177; 0,140 <font face="Symbol">m</font>g/mL),    no obstante son cercanos al del AA (10,48 &#177; 0,24 <font face="Symbol">m</font>g/mL),    dos sustancias utilizadas como referentes en el presente trabajo por su amplia    aceptaci&oacute;n como antioxidantes a nivel alimentario y farmacol&oacute;gico.    </font>      <P><font face="Verdana" size="2">El potencial antioxidante del extracto de <I>M.    racemosa </I>se complement&oacute; valorando su capacidad para inhibir la oxidaci&oacute;n    del &aacute;cido linoleico (18:2&Auml;9,12). En este m&eacute;todo, se observ&oacute;    que el extracto de <I>M. racemosa</I> inhibi&oacute; la peroxidaci&oacute;n    del &aacute;cido linoleico entre 52,76 y 74,07 %, lo cual evidenci&oacute; la    m&aacute;xima potencialidad a las 360 h (15 d). Esta actividad result&oacute;    ser dependiente de la concentraci&oacute;n aplicada.</font>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/pla/v16n2/f0204211.gif">figura 2</a> se    muestra que al inicio del proceso las muestras hacen dos grandes grupos: el    menos activo constituido por el AA y el extracto de <I>M. racemosa </I>preparado    a la m&aacute;s baja concentraci&oacute;n (0,1 %); aunque las restantes muestras    fueron m&aacute;s activas que las antes mencionadas, no por ello superaron 10    % de su capacidad antioxidante. Asimismo, esta evaluaci&oacute;n deja ver adem&aacute;s,    que la diferenciaci&oacute;n entre la actividad de las muestras fue haci&eacute;ndose    cada vez m&aacute;s evidente, a las 360 h. El AA se muestra como el m&aacute;s    activo aunque sin diferenciarse significativamente (p&gt; 0,05) del BHT y del    extracto de <I>M. racemosa </I>preparado a 0,5 y 1,0 %.</font>      
<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>DISCUSI&Oacute;N</B></font>      <P><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos en el presente estudio    resultan concordantes con las observaciones anotadas por <I>Leit&atilde;o,</I><SUP>25</SUP>    para especies de la familia Monimiacae, los que a su vez podr&iacute;an dar    soporte a las aplicaciones etnom&eacute;dicas de <I>M. racemosa</I>. Estudiar    extractos vegetales resulta de particular importancia teniendo en cuenta que    aportan fitocompuestos con diversidad de bioactividades, entre ellas la antioxidante,    a lo que se adiciona su origen natural. Todo lo anterior resulta beneficioso    para la salud en humanos y animales.<SUP>26,27</SUP> En este sentido, el n&uacute;mero    de investigadores dedicados a indagar sobre este tema es voluminoso y se incrementa    cada d&iacute;a m&aacute;s.<SUP>28,29</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Borneo</I> y otros,<SUP>30</SUP> estudiaron    41 plantas medicinales de la provincia de C&oacute;rdoba (Argentina) por su    contenido fen&oacute;lico y actividad antioxidante; los resultados arrojaron    valores de fenoles comprendidos entre 8,2 y 100,2 mg EAG/g (mg equivalentes    de &aacute;cido g&aacute;lico por gramo de material vegetal). Sobre la base    de los resultados obtenidos, estos investigadores proponen un futuro promisorio    para las plantas estudiadas como fuente de antioxidantes. Comparando estos resultados    con los reportados en la tabla 1 se puede pronosticar para <I>M. racemosa </I>su<I>    </I>uso potencial en la industria, sobre la base de una evidente diversidad    de metabolitos secundarios con potencial antioxidante y(o) farmacol&oacute;gico.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Adicionalmente, en la tabla 1 se observa que    solo 12 % de los fenoles totales son de naturaleza polifen&oacute;lica, 11 %    son de naturaleza tanoide y m&aacute;s de 50 % son de tipo condensado. De esta    forma, <I>M. racemosa</I> manifestar&iacute;a no solo poder para reducir radicales    libres, y as&iacute; estabilizarlos, sino que adem&aacute;s actuar&iacute;a    como quelante de metales a trav&eacute;s de los taninos condensados, lo cual    incrementar&iacute;a su acci&oacute;n como antioxidante. Importa mencionar que    el potencial antioxidante de <I>M. racemosa </I>es derivado, al menos en parte,    de los compuestos de bajo peso molecular, por ejemplo, flavonoides y fenilpropanoides.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El radical DPPH tras recibir el prot&oacute;n    de cualquier donador de hidr&oacute;geno, principalmente fenoles, pierde el    crom&oacute;foro y adquiere una tonalidad amarilla.<SUP>31</SUP> En la medida    que la concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos o grado de hidroxilaci&oacute;n    de estos aumenta, la capacidad de eliminaci&oacute;n del radical DPPH se incrementa,    y con ella la actividad antioxidante.<SUP>6</SUP> A diferencia de otros radicales    producidos en el laboratorio, como el hidroxilo y el ani&oacute;n super&oacute;xido,    el DPPH tiene la ventaja de que no es afectado por iones quelantes de metales    y por enzimas de inhibici&oacute;n.<SUP>32</SUP> Por su parte, el radical sint&eacute;tico    ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+ </SUP>es utilizado para probar extractos    vegetales altamente coloreados, teniendo en cuenta su m&aacute;xima absorbancia    a 734 nm; donde muchos de los productos vegetales no absorben a esa longitud    de onda, lo cual reduce las posibilidades de interferencias de compuestos que    absorben en la regi&oacute;n del visible o resultantes de reacciones secundarias;    adem&aacute;s puede aplicarse tanto a un sistema hidrof&iacute;lico como lipof&iacute;lico.    </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Se observ&oacute; que el radical ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+    </SUP>es inhibido en mayor grado en la medida que la concentraci&oacute;n de    los antioxidantes de la planta se incrementa, lo que no sucede con el radical    DPPH. Lo anterior puede ser consecuencia de la interferencia generada por los    diferentes compuestos del extracto vegetal sobre el color del DPPH.<SUP>22</SUP>    </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Tal efecto, podr&iacute;a evidenciarse a concentraciones    altas y, en consecuencia, presentarse una disminuci&oacute;n en el porcentaje    de inhibici&oacute;n del DPPH<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP>. Un ejemplo    lo constituye el contenido de clorofila de los extractos, compuesto este que    presenta absorbancias m&aacute;ximas entre 400 y 700 nm,<SUP>33</SUP> que interfiere    en consecuencia con el crom&oacute;geno DPPH, con m&aacute;ximos de absorci&oacute;n    entre 515 y 528 nm. Al incrementarse el nivel de concentraci&oacute;n del extracto    aumentar&iacute;a tambi&eacute;n la interferencia, dando lugar quiz&aacute;    a una medida de actividad relativamente baja.<SUP>34</SUP> El crom&oacute;geno    ABTS<SUP><font size="1">&#149;</font>+</SUP>, por su parte, tiene varias bandas    de absorci&oacute;n entre 380 y 850 nm,<SUP>22,34</SUP> por lo tanto, la absorci&oacute;n    que puedan presentar los extractos a mayor concentraci&oacute;n podr&iacute;a    eliminar la interferencia del color. </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Se han propuesto algunos mecanismos para explicar    la acci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos como antioxidantes. Uno    de ellos ha sido planteado por <I>Ram&iacute;rez-Anguiano</I> y otros.<SUP>35</SUP>    De acuerdo con estos investigadores, la oxidaci&oacute;n de difenoles a quininas    es una reacci&oacute;n muy r&aacute;pida que puede ocurrir en segundos. Incluso    cuando solo unas pocas quinonas son formadas antes de la preparaci&oacute;n    del extracto, ellas se convierten a compuestos de bajo peso molecular, con lo    cual podr&iacute;an reaccionar de modo espont&aacute;neo con otros fenoles y    generar compuestos ind&oacute;licos, d&iacute;meros del catecol y otros pol&iacute;meros    de mayor peso que forman radicales capaces de rescatar productos de degradaci&oacute;n.    Se podr&iacute;a entonces pensar que la actividad antioxidante de <I>M. racemosa    </I>est&aacute; soportada en gran medida por los fitofenoles que posee, actuando    con sinergia otros compuestos de bajo peso molecular presentes en el vegetal.    Esto explicar&iacute;a los valores relativamente bajos de las CI<SUB>50 </SUB>determinados.    Otros autores, que han trabajado con extractos vegetales, han reportado valores    mucho m&aacute;s altos.<SUP>28</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La actividad antioxidante de los materiales vegetales    ha sido correlacionada con el contenido fen&oacute;lico total.<SUP>1,28,36</SUP>    Flavonoides, &aacute;cidos fen&oacute;licos y taninos son considerados como    los mayores contribuyentes a la capacidad antioxidante de las plantas. Estos    antioxidantes tambi&eacute;n poseen otras propiedades bioactivas como antiinflamatorios,    antiateroscler&oacute;tica, anticarcinog&eacute;nica, entre otras. Estas funcionalidades    pueden estar asociadas a su actividad antioxidante.<SUP>36</SUP> Se ha sugerido    tambi&eacute;n que los compuestos polifen&oacute;licos poseen efecto inhibitorio    sobre la mutag&eacute;nesis y carcinog&eacute;nesis en humanos, cuando 1,0 g    es ingerido a trav&eacute;s de la dieta diaria rica en frutas y vegetales.<SUP>37</SUP>    Todo lo anterior se constituye en una raz&oacute;n m&aacute;s por la cual se    evalu&oacute; el contenido fen&oacute;lico total en esta especie. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Por otro lado, los alcaloides constituyen un    gran grupo de metabolitos secundarios de car&aacute;cter b&aacute;sico con uno    o varios &aacute;tomos de nitr&oacute;geno, que por lo general, est&aacute;n    incorporados en una estructura c&iacute;clica; a menudo presentan actividades    fisiol&oacute;gicas dram&aacute;ticas, de ah&iacute; su amplio uso en medicina.<SUP>38</SUP>    Se ha reconocido que alcaloides y flavonoides muestran actividad antioxidante,    y que sus efectos sobre la salud y la nutrici&oacute;n humana es considerable.<SUP>39</SUP>    Para algunos autores el mecanismo de acci&oacute;n de los alcaloides se efect&uacute;a    a trav&eacute;s de la inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n.<SUP>40</SUP>    El contenido del &aacute;tomo de nitr&oacute;geno convierte a la mayor&iacute;a    de los alcaloides en compuestos capaces de donar electrones y, en consecuencia,    capturar radicales libres. Si la mol&eacute;cula del alcaloide contiene grupos    funcionales adyacentes que cedan electrones, como por ejemplo los grupos alquilo,    la disponibilidad de los electrones del &aacute;tomo de nitr&oacute;geno aumenta.    De esta forma, se puede afirmar que la acci&oacute;n conjunta de fitofenoles    y alcaloides contenidos en <I>M. racemosa </I>dan soporte a la actividad antirradical    manifestada por el vegetal, con una CI<SUB>50 </SUB>muy cercana a la del &aacute;cido    asc&oacute;rbico, de amplio reconocimiento como antioxidante en el organismo    humano y a nivel de los alimentos. Adicionalmente, existen reportes relacionados    con la actividad de los alcaloides como antitusivos, anest&eacute;sicos, antinociceptivos,    estimulantes, analg&eacute;sicos y con acci&oacute;n narc&oacute;tica.<SUP>41,42</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Puesto que los mayores constituyentes de las    membranas biol&oacute;gicas son los l&iacute;pidos y las prote&iacute;nas, la    funcionalidad de las membranas se incrementa en funci&oacute;n de la cantidad    de prote&iacute;nas; no obstante, las especies reactivas del ox&iacute;geno    pueden f&aacute;cilmente degradar los constituyentes de las membranas celulares    y provocar da&ntilde;o a compuestos como fosfol&iacute;pidos y lipoprote&iacute;nas    durante la etapa de propagaci&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n.<SUP>43</SUP>    Los fitofenoles parecen tambi&eacute;n tener un papel importante en la estabilizaci&oacute;n    de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica. En este estudio se obtuvieron inhibiciones    entre 52,76 y 74,07 %, porcentajes que si bien son altos, resultan menores que    los reportados en otros estudios,<SUP>2,44</SUP> donde se trabaj&oacute; con    extractos vegetales y resultados entre 64,8 y 96,4 %. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los productos naturales, como extractos de plantas,    compuestos puros o extractos estandarizados, proporcionan oportunidades ilimitadas    para el hallazgo de nuevos f&aacute;rmacos, teniendo en cuenta la diversidad    qu&iacute;mica incomparable que poseen. De otra parte, estudiar compuestos de    origen natural y establecer su biofuncionalidad, se considera de importancia    relevante para la salud humana. Varias plantas han resultado ser fuente importante    de un n&uacute;mero de fitocompuestos y metabolitos secundarios, por lo que    parece razonable pensar que agentes hasta ahora no descubiertos, pueden ser    obtenidos a partir de especies vegetales desconocidas por el mundo cient&iacute;fico,    como es el caso del romadizo (<I>M. racemosa)</I>. Los resultados obtenidos    en este estudio son prometedores e insinuantes de que el extracto de la planta    podr&iacute;a encontrar aplicaci&oacute;n en el tratamiento de enfermedades    asociadas al estr&eacute;s oxidativo o bien en la industria de productos nutrac&eacute;uticos    y alimentos funcionales, entre otras. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En el presente trabajo se demuestra que la especie    <I>M. racemosa</I> posee compuestos qu&iacute;micos con capacidad para estabilizar    radicales libres y potencialidad para inhibir la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica.    Esta funcionalidad antioxidante parece estar soportada fundamentalmente en la    acci&oacute;n conjunta de los fitofenoles que posee, como flavonoides, fenilpropanoides    y taninos condensados, adem&aacute;s de sus alcaloides tipo morfe&oacute;lico    y del grupo de las anfetaminas. Los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n    dan soporte cient&iacute;fico al uso popular de romadizo en el tratamiento del    resfriado y como analg&eacute;sico. Asimismo, se hace necesario realizar bioensayos    de mayor nivel que involucren extractos de diferente polaridad, as&iacute; como    tambi&eacute;n el aceite esencial contenido en sus hojas; se debe hacer &eacute;nfasis    en la identificaci&oacute;n de los componentes responsables de la actividad    antioxidante, cuyas aplicaciones podr&iacute;an estar orientadas hacia la industria    alimentaria o farmac&eacute;utica. </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>AGRADECIMIENTOS</B></font>      <P><font face="Verdana" size="2">Al Departamento de Qu&iacute;mica y a la Oficina    de Investigaciones y Desarrollo Cient&iacute;fico de la Universidad del Tolima    por el apoyo log&iacute;stico y econ&oacute;mico otorgado a esta investigaci&oacute;n.    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B></font><font face="Verdana" size="2">    </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Li H-B, Wong C-C, Cheng K-W, Chen F. Antioxidant    properties in vitro and total phenolic contents in methanol extracts from medicinal    plants. LWT - Food Science Technology. 2008;41(3):385-90. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Sultana B, Anwar F, Asi MR, Chatha SAS. Antioxidant    potential of extracts from different agro wastes: Stabilization of corn oil.    Grasas y Aceites. 2008;59:205-17. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Finkel T, Holbrook NJ. Oxidants, oxidative    stress and the biology of ageing. Nature. 2000;408(6809):239-47. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Eberhardt MV, Lee CY, Liu RH. Nutrition: Antioxidant    activity of fresh apples. Nature. 2000;405(6789):903-4. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. La Vecchia C, Altieri A, Tavani A. Vegetables,    fruit, antioxidants and cancer: a review of Italian studies. European J Nutrition.    2001;40(6):261-7. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Iqbal S, Bhanger MI, Anwar F. Antioxidant    properties and components of bran extracts from selected wheat varieties commercially    available in Pakistan. LWT - Food Science Technology. 2007;40(2):361-7. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Li H-B, Cheng K-W, Wong C-C, Fan K-W, Chen    F, Jiang Y. Evaluation of antioxidant capacity and total phenolic content of    different fractions of selected microalgae. Food Chemistry. 2007;102(3):771-6.    </font>    <P><font face="Verdana" size="2">8. Lombo O, Murillo E, Mendez JJJ. Qu&iacute;mica    y funcionalidad biol&oacute;gica de romadizo (<I>Mollinedia</I> sp.), un recurso    de valor etnom&eacute;dico en la Orinoqu&iacute;a colombiana. Universidad de    Salermo. XVIII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina. Cuba: Sociedad    Cubana de Qu&iacute;mica; 2009. p. 170-1. </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9. De Marcano D, Hasegawa M. Fitoqu&iacute;mica    Org&aacute;nica. Caracas, Venezuela: Consejo de Desarrollo Cient&iacute;fico    y Human&iacute;stico;1991. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10. Garc&iacute;a DE, Medina MG, Dom&iacute;nguez    C, Baldiz&aacute;n A, Humbr&iacute;a J, Cova L. Evaluaci&oacute;n qu&iacute;mica    de especies no leguminosas con potencial forrajero en el estado Trujillo, Venezuela.    Zootecnia Tropical. 2006;24:401-15. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">11. Galindo WF, Rosales M, Murgueitio E, Larrahondo    JE. Sustancias antinutricionales en las hojas de guamo, nacedero y matarrat&oacute;n.    Livestock Research Rural Development; 1989. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">12. Ibarra MdJ, Cant&uacute; PC, Verde MJ, Oranday    A. Caracterizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica y efecto hipoglucemiante de <I>Tecoma    stans</I> y su relaci&oacute;n con la presencia del cromo como factor de tolerancia    a la glucosa. Informaci&oacute;n Tecnol&oacute;gica. 2009;20:55-64. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">13. Makkar HPS, Becker K, Sidhuraju P. Plant    Secondary Metabolites. Totowa, New Jersey: Ed. Humana Press; 2007. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">14. Lastra H, Rodr&iacute;guez E, Ponce de Le&oacute;n    H, Gonz&aacute;lez ML. M&eacute;todo anal&iacute;tico para la cuantificaci&oacute;n    de taninos en el extracto acuoso de romerillo. Rev Cubana Plant Med. 2000;5:17-22.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">15. Isaza JH, Veloza L&Aacute;, Guevara CA, Ram&iacute;rez    LS. Estimaci&oacute;n espectrofotom&eacute;trica de taninos hidrolizables y    condensados en plantas Melastomat&aacute;ceas. Scientia et Technica. 2007;33:261-6.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">16. Hagerman AE, Butler LG. Protein precipitation    method for the quantitative determination of tannins. J Agricultural Food Chemistry.    1978;26(4):809-12. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">17. Naczk M, Amarowicz R, Zadernowski R, Shahidi    F. Protein precipitating capacity of condensed tannins of beach pea, canola    hulls, evening primrose and faba bean. Food Chemistry. 2001;73(4):467-71. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">18. Schoeneberger H, Gross R, Cremer HD, Elmadfa    I. Composition and protein quality of <I>Lupinus mutabilis</I>. J Nutrition.    1982;112(1):70-6. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">19. Hatzold T, Elmadfa I, Gross R, Wink M, Hartmann    T, Witte L. Quinolizidine alkaloids in seeds of <I>Lupinus mutabilis</I>. J    Agricultural Food Chemistry. 1983;31(5):934-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">20. Sultana B, Anwar F, Przybylski R. Antioxidant    activity of phenolic components present in barks of <I>Azadirachta indica</I>,    <I>Terminalia arjuna</I>, <I>Acacia nilotica</I>, and <I>Eugenia jambolana</I>    Lam. trees. Food Chemistry. 2007;104(3):1106-14. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">21. Prado ACPd, Arag&atilde;o AM, Fett R, Block    JM. Antioxidant properties of pecan nut (<I>Carya illinoinensis</I> [Wangenh.]    C. Koch) Shell Infusion. Grasas y Aceites. 2009;60:330-5. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">22. Arnao MB. Some methodological problems in    the determination of antioxidant activity using chromogen radicals: a practical    case. Trends Food Science Technology. 2000;11(11):419-21. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">23. Arnao MB, Cano A, Acosta M. The hydrophilic    and lipophilic contribution to total antioxidant activity. Food Chemistry. 2001;73(2):239-44.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">24. Iqbal S, Bhanger MI, Anwar F. Antioxidant    properties and components of some commercially available varieties of rice bran    in Pakistan. Food Chemistry. 2005;93(2):265-72. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">25. Leit&atilde;o GG, Simas NK, Soares SSV, de    Brito APP, Claros BMG, Brito TBM, et al. Chemistry and pharmacology of Monimiaceae:    a special focus on Siparuna and Mollinedia. J Ethnopharmacol. 1999;65(2):87-102.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">26. Langley-Evans SC. Antioxidant potential of    green and black tea determined using the ferric reducing power (FRAP) assay.    International J Food Sciences Nutrition. 2000;51:181-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">27. Liu RH. Health benefits of fruit and vegetables    are from additive and synergistic combinations of phytochemicals. American J    Clinical Nutrition. 2003;78(3):517-20. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">28. She G-M, Xu C, Liu B, Shi R-B. Polyphenolic    acids from mint (the Aerial of <I>Mentha haplocalyx</I> Briq.) with DPPH radical    scavenging activity. J Food Science. 2010;75(4):C359-C62. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">29. Terpinc P, Abramovic H. A kinetic approach    for evaluation of the antioxidant activity of selected phenolic acids. Food    Chemistry. 2010;121(2):366-71. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">30. Borneo R, Le&oacute;n AE, Aguirre A, Ribotta    P, Cantero JJ. Antioxidant capacity of medicinal plants from the Province of    C&oacute;rdoba (Argentina) and their in vitro testing in a model food system.    Food Chemistry. 2009;112(3):664-70. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">31. S&aacute;nchez-Moreno C, Larrauri J, Saura-Calixto    F. Free radical scavenging capacity and inhibition of lipid oxidation of wines,    grape juices and related polyphenolic constituents. Food Research International.    1999;32(6):407-12. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">32. Amarowicz R, Pegg RB, Rahimi-Moghaddam P,    Barl B, Weil JA. Free-radical scavenging capacity and antioxidant activity of    selected plant species from the Canadian prairies. Food Chemistry. 2004;84(4):551-62.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">33. Wang K-J, Zhang Y-J, Yang C-R. New phenolic    constituents from <I>Balanophora polyandra</I> with radical-scavenging activity.    Chemistry Biodiversity. 2006;3(12):1317-24. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">34. Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C.    Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT - Food Science    Technology. 1995;28(1):25-30. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">35. Ram&iacute;rez-Anguiano AC, Santoyo S, Reglero    G, Soler-Rivas C. Radical scavenging activities, endogenous oxidative enzymes    and total phenols in edible mushrooms commonly consumed in Europe. J Science    Food Agriculture. 2007;87(12):2272-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">36. Tung Y-T, Wu J-H, Kuo Y-H, Chang S-T. Antioxidant    activities of natural phenolic compounds from Acacia confusa bark. Bioresource    Technology. 2007;98(5):1120-3. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">37. Karadeniz F, Burdurlu HS, Koca N, Soyer Y.    Antioxidant activity of selected fruits and vegetables grown in Turkey. Turkish    J Agriculture Forestry. 2005;29:297-303. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">38. Harborne JB. Phytochemical methods: a guide    to modern techniques of plant analysis. New York: Springer; 1998. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">39. Pourmorad F, Hosseinimehr SJ, Shahabimajd    N. Antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Iranian    medicinal plants. African J Biotechnology. 2006;5:1142-5. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">40. Kumar PS, Sucheta S, Deepa VS, Selvamani    P, Latha S. Antioxidant activity in some selected Indian medicinal plants. African    J Biotechnology. 2008;7:1826-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">41. Macko E, Weisbach JA, Douglas B. Some observations    on the pharmacology of mitragynine. Archives Internationales Pharmacodynamie    Th&eacute;rapie. 1972;198(1):145. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">42. Takayama H. Chemistry and pharmacology of    analgesic indole alkaloids from the rubiaceous plant, <I>Mitragyna speciosa</I>.    Chemical Pharmaceutical Bulletin. 2004;52(8):916-28. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">43. Sundararajan R, Haja NA, Venkatesan K, Mukherjee    K, Saha BP, Bandyopadhyay A, et al. Cytisus scoparius link- A natural antioxidant.    BMC Complementary Alternative Medicine. 2006;6:8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">44. Moyo M, Ndhlala AR, Finnie JF, Van Staden    J. Phenolic composition, antioxidant and acetylcholinesterase inhibitory activities    of <I>Sclerocarya birrea</I> and <I>Harpephyllum caffrum</I> (Anacardiaceae)    extracts. Food Chemistry. 2010;123(1):69-76. </font>    <P>     <P>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Recibido: 21 de noviembre de 2010.    <br>   Aprobado: 14 de marzo de 2011. </font>     <P>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Jos&eacute; Fernando Solanilla Duque</I>.    Facultad de Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica, Universidad del Tolima Sede    Santa Elena A.A 546 Tel&eacute;f.: 57 3208478350, Tel-Fax: 57 8 2652530. Correo    electr&oacute;nico: <FONT COLOR="#0000ff"><a href="mailto:jfsolanilla@ut.edu.co">jfsolanilla@ut.edu.co</a></FONT></font>       ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Li]]></surname>
<given-names><![CDATA[H-B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wong]]></surname>
<given-names><![CDATA[C-C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cheng]]></surname>
<given-names><![CDATA[K-W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chen]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties in vitro and total phenolic contents in methanol extracts from medicinal plants]]></article-title>
<source><![CDATA[LWT - Food Science Technology.]]></source>
<year>2008</year>
<volume>41</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>385-90</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sultana]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Anwar]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Asi]]></surname>
<given-names><![CDATA[MR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chatha]]></surname>
<given-names><![CDATA[SAS]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant potential of extracts from different agro wastes: Stabilization of corn oil]]></article-title>
<source><![CDATA[Grasas y Aceites.]]></source>
<year>2008</year>
<volume>59</volume>
<page-range>205-17</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Finkel]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Holbrook]]></surname>
<given-names><![CDATA[NJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing]]></article-title>
<source><![CDATA[Nature.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>408</volume>
<numero>6809</numero>
<issue>6809</issue>
<page-range>239-47</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Eberhardt]]></surname>
<given-names><![CDATA[MV]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lee]]></surname>
<given-names><![CDATA[CY]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liu]]></surname>
<given-names><![CDATA[RH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Nutrition: Antioxidant activity of fresh apples]]></article-title>
<source><![CDATA[Nature.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>405</volume>
<numero>6789</numero>
<issue>6789</issue>
<page-range>903-4</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[La Vecchia]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Altieri]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tavani]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Vegetables, fruit, antioxidants and cancer: a review of Italian studies]]></article-title>
<source><![CDATA[European J Nutrition.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>40</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>261-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Iqbal]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bhanger]]></surname>
<given-names><![CDATA[MI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Anwar]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties and components of bran extracts from selected wheat varieties commercially available in Pakistan]]></article-title>
<source><![CDATA[LWT - Food Science Technology.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>40</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>361-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Li]]></surname>
<given-names><![CDATA[H-B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cheng]]></surname>
<given-names><![CDATA[K-W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wong]]></surname>
<given-names><![CDATA[C-C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fan]]></surname>
<given-names><![CDATA[K-W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chen]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jiang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of antioxidant capacity and total phenolic content of different fractions of selected microalgae]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>102</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>771-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lombo]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Murillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mendez]]></surname>
<given-names><![CDATA[JJJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Química y funcionalidad biológica de romadizo (Mollinedia sp.), un recurso de valor etnomédico en la Orinoquía colombiana]]></source>
<year></year>
<conf-name><![CDATA[XVIII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina]]></conf-name>
<conf-date>2009</conf-date>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>170-1</page-range><publisher-name><![CDATA[Universidad de Salermo]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[De Marcano]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hasegawa]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Fitoquímica Orgánica]]></source>
<year>1991</year>
<publisher-loc><![CDATA[Caracas ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Consejo de Desarrollo Científico y Humanístico]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[García]]></surname>
<given-names><![CDATA[DE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Medina]]></surname>
<given-names><![CDATA[MG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Domínguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Baldizán]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Humbría]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cova]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación química de especies no leguminosas con potencial forrajero en el estado Trujillo, Venezuela]]></article-title>
<source><![CDATA[Zootecnia Tropical.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>24</volume>
<page-range>401-15</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Galindo]]></surname>
<given-names><![CDATA[WF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rosales]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Murgueitio]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Larrahondo]]></surname>
<given-names><![CDATA[JE]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Sustancias antinutricionales en las hojas de guamo, nacedero y matarratón]]></source>
<year>1989</year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ibarra]]></surname>
<given-names><![CDATA[MdJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cantú]]></surname>
<given-names><![CDATA[PC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Verde]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Oranday]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización fitoquímica y efecto hipoglucemiante de Tecoma stans y su relación con la presencia del cromo como factor de tolerancia a la glucosa]]></article-title>
<source><![CDATA[Información Tecnológica.]]></source>
<year>2009</year>
<volume>20</volume>
<page-range>55-64</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Makkar]]></surname>
<given-names><![CDATA[HPS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Becker]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sidhuraju]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant Secondary Metabolites]]></source>
<year>2007</year>
<publisher-loc><![CDATA[Totowa, New Jersey ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Ed. Humana Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lastra]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rodríguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ponce de León]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Método analítico para la cuantificación de taninos en el extracto acuoso de romerillo]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Plant Med.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>5</volume>
<page-range>17-22</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Isaza]]></surname>
<given-names><![CDATA[JH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Veloza]]></surname>
<given-names><![CDATA[LÁ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Guevara]]></surname>
<given-names><![CDATA[CA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ramírez]]></surname>
<given-names><![CDATA[LS]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estimación espectrofotométrica de taninos hidrolizables y condensados en plantas Melastomatáceas]]></article-title>
<source><![CDATA[Scientia et Technica.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>33</volume>
<page-range>261-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hagerman]]></surname>
<given-names><![CDATA[AE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Butler]]></surname>
<given-names><![CDATA[LG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Protein precipitation method for the quantitative determination of tannins]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agricultural Food Chemistry.]]></source>
<year>1978</year>
<volume>26</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>809-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Naczk]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Amarowicz]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zadernowski]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shahidi]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Protein precipitating capacity of condensed tannins of beach pea, canola hulls, evening primrose and faba bean]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>73</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>467-71</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Schoeneberger]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gross]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cremer]]></surname>
<given-names><![CDATA[HD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Elmadfa]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Composition and protein quality of Lupinus mutabilis]]></article-title>
<source><![CDATA[J Nutrition.]]></source>
<year>1982</year>
<volume>112</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>70-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hatzold]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Elmadfa]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gross]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wink]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hartmann]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Witte]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quinolizidine alkaloids in seeds of Lupinus mutabilis]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agricultural Food Chemistry.]]></source>
<year>1983</year>
<volume>31</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>934-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sultana]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Anwar]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Przybylski]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity of phenolic components present in barks of Azadirachta indica, Terminalia arjuna, Acacia nilotica, and Eugenia jambolana Lam: trees]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>104</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>1106-14</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Prado]]></surname>
<given-names><![CDATA[ACPd]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aragão]]></surname>
<given-names><![CDATA[AM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fett]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Block]]></surname>
<given-names><![CDATA[JM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties of pecan nut (Carya illinoinensis [Wangenh.] C. Koch) Shell Infusion]]></article-title>
<source><![CDATA[Grasas y Aceites.]]></source>
<year>2009</year>
<volume>60</volume>
<page-range>330-5</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Arnao]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Some methodological problems in the determination of antioxidant activity using chromogen radicals: a practical case]]></article-title>
<source><![CDATA[Trends Food Science Technology.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>11</volume>
<numero>11</numero>
<issue>11</issue>
<page-range>419-21</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Arnao]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cano]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Acosta]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The hydrophilic and lipophilic contribution to total antioxidant activity]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>73</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>239-44</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Iqbal]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bhanger]]></surname>
<given-names><![CDATA[MI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Anwar]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties and components of some commercially available varieties of rice bran in Pakistan]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>93</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>265-72</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Leitão]]></surname>
<given-names><![CDATA[GG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Simas]]></surname>
<given-names><![CDATA[NK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Soares]]></surname>
<given-names><![CDATA[SSV]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[de Brito]]></surname>
<given-names><![CDATA[APP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Claros]]></surname>
<given-names><![CDATA[BMG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Brito]]></surname>
<given-names><![CDATA[TBM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chemistry and pharmacology of Monimiaceae: a special focus on Siparuna and Mollinedia]]></article-title>
<source><![CDATA[J Ethnopharmacol.]]></source>
<year>1999</year>
<volume>65</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>87-102</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Langley-Evans]]></surname>
<given-names><![CDATA[SC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant potential of green and black tea determined using the ferric reducing power (FRAP) assay]]></article-title>
<source><![CDATA[International J Food Sciences Nutrition.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>51</volume>
<page-range>181-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Liu]]></surname>
<given-names><![CDATA[RH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Health benefits of fruit and vegetables are from additive and synergistic combinations of phytochemicals]]></article-title>
<source><![CDATA[American J Clinical Nutrition.]]></source>
<year>2003</year>
<volume>78</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>517-20</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[She]]></surname>
<given-names><![CDATA[G-M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Xu]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liu]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shi]]></surname>
<given-names><![CDATA[R-B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Polyphenolic acids from mint (the Aerial of Mentha haplocalyx Briq: ) with DPPH radical scavenging activity]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Science.]]></source>
<year>2010</year>
<volume>75</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>C359-C62</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Terpinc]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Abramovic]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A kinetic approach for evaluation of the antioxidant activity of selected phenolic acids]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2010</year>
<volume>121</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>366-71</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<label>30</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Borneo]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[León]]></surname>
<given-names><![CDATA[AE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aguirre]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ribotta]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cantero]]></surname>
<given-names><![CDATA[JJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant capacity of medicinal plants from the Province of Córdoba (Argentina) and their in vitro testing in a model food system]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2009</year>
<volume>112</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>664-70</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<label>31</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez-Moreno]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Larrauri]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Saura-Calixto]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Free radical scavenging capacity and inhibition of lipid oxidation of wines, grape juices and related polyphenolic constituents]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Research International.]]></source>
<year>1999</year>
<volume>32</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>407-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B32">
<label>32</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Amarowicz]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pegg]]></surname>
<given-names><![CDATA[RB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rahimi-Moghaddam]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barl]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Weil]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Free-radical scavenging capacity and antioxidant activity of selected plant species from the Canadian prairies]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>84</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>551-62</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B33">
<label>33</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Wang]]></surname>
<given-names><![CDATA[K-J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zhang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y-J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yang]]></surname>
<given-names><![CDATA[C-R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[New phenolic constituents from Balanophora polyandra with radical-scavenging activity]]></article-title>
<source><![CDATA[Chemistry Biodiversity.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>3</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>1317-24</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B34">
<label>34</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Brand-Williams]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cuvelier]]></surname>
<given-names><![CDATA[ME]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Berset]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity]]></article-title>
<source><![CDATA[LWT - Food Science Technology.]]></source>
<year>1995</year>
<volume>28</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>25-30</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B35">
<label>35</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ramírez-Anguiano]]></surname>
<given-names><![CDATA[AC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Santoyo]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Reglero]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Soler-Rivas]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Radical scavenging activities, endogenous oxidative enzymes and total phenols in edible mushrooms commonly consumed in Europe]]></article-title>
<source><![CDATA[J Science Food Agriculture.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>87</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>2272-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B36">
<label>36</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tung]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y-T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wu]]></surname>
<given-names><![CDATA[J-H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kuo]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y-H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chang]]></surname>
<given-names><![CDATA[S-T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activities of natural phenolic compounds from Acacia confusa bark]]></article-title>
<source><![CDATA[Bioresource Technology.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>98</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>1120-3</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B37">
<label>37</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Karadeniz]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Burdurlu]]></surname>
<given-names><![CDATA[HS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Koca]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Soyer]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity of selected fruits and vegetables grown in Turkey]]></article-title>
<source><![CDATA[Turkish J Agriculture Forestry.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>29</volume>
<page-range>297-303</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B38">
<label>38</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Harborne]]></surname>
<given-names><![CDATA[JB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Phytochemical methods: a guide to modern techniques of plant analysis]]></source>
<year>1998</year>
<publisher-loc><![CDATA[New York ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Springer]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B39">
<label>39</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pourmorad]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hosseinimehr]]></surname>
<given-names><![CDATA[SJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shahabimajd]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants]]></article-title>
<source><![CDATA[African J Biotechnology.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>5</volume>
<page-range>1142-5</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B40">
<label>40</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kumar]]></surname>
<given-names><![CDATA[PS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sucheta]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Deepa]]></surname>
<given-names><![CDATA[VS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Selvamani]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Latha]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity in some selected Indian medicinal plants]]></article-title>
<source><![CDATA[African J Biotechnology.]]></source>
<year>2008</year>
<volume>7</volume>
<page-range>1826-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B41">
<label>41</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Macko]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Weisbach]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Douglas]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Some observations on the pharmacology of mitragynine]]></article-title>
<source><![CDATA[Archives Internationales Pharmacodynamie Thérapie.]]></source>
<year>1972</year>
<volume>198</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>145</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B42">
<label>42</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Takayama]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chemistry and pharmacology of analgesic indole alkaloids from the rubiaceous plant, Mitragyna speciosa]]></article-title>
<source><![CDATA[Chemical Pharmaceutical Bulletin.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>52</volume>
<numero>8</numero>
<issue>8</issue>
<page-range>916-28</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B43">
<label>43</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sundararajan]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Haja]]></surname>
<given-names><![CDATA[NA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Venkatesan]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mukherjee]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Saha]]></surname>
<given-names><![CDATA[BP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bandyopadhyay]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cytisus scoparius link- A natural antioxidant]]></article-title>
<source><![CDATA[BMC Complementary Alternative Medicine.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>6</volume>
<page-range>8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B44">
<label>44</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Moyo]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ndhlala]]></surname>
<given-names><![CDATA[AR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Finnie]]></surname>
<given-names><![CDATA[JF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Van Staden]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolic composition, antioxidant and acetylcholinesterase inhibitory activities of Sclerocarya birrea and Harpephyllum caffrum (Anacardiaceae) extracts]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chemistry.]]></source>
<year>2010</year>
<volume>123</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>69-76</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
