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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Plantas Medicinales]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antiséptica de vinagre de Guadua angustifolia Kunth]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antiseptic activity of Guadua angustifolia Kunth vinegar]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,I Universidad de Antioquia. Medellín  ]]></institution>
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<country>Colombia</country>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: bamboo vinegars are used in the Asian countries for pharmaceutical applications, but the Guadua angustifolia Kunth species has not been similarly researched in this field. The assessment of the antiseptic activity of guadua vinegar would allow moving forward in this direction. Objective: to determine the antiseptic action of guadua vinegar against Pseudomona aeruginosa and Staphylococcus aureus bacteria, with several changes in concentration and the pH. Methods: the antimicrobial activity was measured through the agar diffusion in Muller Hinton medium. Guadua vinegars were tested at 100, 80, 60, 40, and 20 % concentrations and the pH ranged 3 to 6. The minimum inhibitory concentration was set. Results: guadua vinegar showed antiseptic properties at concentrations over 12 mg/mL, on dry weight and pH range of 2 to 6; it reduced by 4 log the final microorganism concentration and exhibited greater antibacterial activity against S. aureus. Conclusions: comparing the antiseptic activity of bamboo vinegar with that of another species, under conditions similar to those in this study, results in greater activity for Guadua angustifolia vinegar, which can prove its great potential for the development of antiseptic formulations.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Pseudomona aeruginosa]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</B> </font> </p>       <p>&nbsp;</p> </div>     <P>      <P><font face="Verdana" size="4"><b>Actividad antis&eacute;ptica de vinagre de    <I>Guadua angustifolia</I> Kunth </b></font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><b>Antiseptic activity of <i>Guadua angustifolia</i>    Kunth vinegar</b></font>      <P>     <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><b>Dra. Amanda In&eacute;s Mej&iacute;a Gall&oacute;n, Dra. Elizabeth Cadavid Torres, Dra. Cecilia Gallardo Cabrera</b></font>      <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Universidad de Antioquia. Medell&iacute;n.    Antioquia, Colombia.</font>      <P>     <P>     <P> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B></font>      <p><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n</b>: los vinagres de bamb&uacute;    se utilizan en los pa&iacute;ses orientales en aplicaciones farmac&eacute;uticas,    con la especie G<I>uadua</I> <I>angustifolia </I>Kunth no se han encontrado    investigaciones similares. Evaluar la actividad antis&eacute;ptica del vinagre    de guadua permitir&iacute;a avanzar en estos desarrollos. <B>    <br>   Objetivo</B>: determinar la sensibilidad de las bacterias <I>Pseudomona aeruginosa</I>    y <I>Staphylococcus aureus</I> frente al vinagre de guadua, los cambios con    la concentraci&oacute;n y el pH. <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   M&eacute;todos</B>: la actividad antimicrobiana se midi&oacute; por difusi&oacute;n    en agar en medio <I>Muller Hinton</I>. Se ensayaron vinagres a concentraciones    entre 100, 80, 60, 40 y 20 % a pH entre 3 y 6. Se estableci&oacute; la concentraci&oacute;n    m&iacute;nima inhibitoria. <B>    <br>   Resultados</B>: el vinagre de guadua presenta actividad antis&eacute;ptica a    concentraciones superiores a 12 mg/mL en base seca, rango de pH 2 a 6, reduce    en 4 log la concentraci&oacute;n de microorganismos y muestra mayor actividad    antis&eacute;ptica contra <I>S. aureus.</I> <B>    <br>   Conclusiones</B>: la actividad antis&eacute;ptica del vinagre de bamb&uacute;    comparado con el de otra especie, obtenido en condiciones similares a las que    se realizaron en este estudio, se obtiene una mayor actividad para el vinagre    de <I>G. angustifolia</I>, lo cual permite demostrar el gran potencial de este    para el desarrollo de formulaciones con actividad antis&eacute;ptica. </font>  </p> <B></B>      <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave: </B><I>Pseudomona aeruginosa,</I>    <I>Staphylococcus aureus</I>, &aacute;cido ac&eacute;tico, vinagre de <I>Guadua    angustifolia</I> Kunth, actividad antis&eacute;ptica. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT</B></font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Introduction</b>:<b> </b>bamboo vinegars are    used in the Asian countries for pharmaceutical applications, but the G<i>uadua</i>    <i>angustifolia </i>Kunth species has not been similarly researched in this    field. The assessment of the antiseptic activity of guadua vinegar would allow    moving forward in this direction.    <br>   <b>Objective</b>: to determine the antiseptic action of guadua vinegar against    <i>Pseudomona aeruginosa</i> and <i>Staphylococcus aureus </i>bacteria<i>, </i>with    several changes in concentration and the pH<i>.</i> <b>    <br>   Methods</b>: the antimicrobial activity was measured through the agar diffusion    in <i>Muller Hinton</i> medium. Guadua vinegars were tested at 100, 80, 60,    40, and 20 % concentrations and the pH ranged 3 to 6. The minimum inhibitory    concentration was set. <b>    <br>   Results</b>:<b> </b>guadua vinegar showed antiseptic properties at concentrations    over 12 mg/mL, on dry weight and pH range of 2 to 6; it reduced by 4 log the    final microorganism concentration and exhibited greater antibacterial activity    against <i>S. aureus.</i> <b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Conclusions</b>:<b> </b>comparing the antiseptic activity of bamboo vinegar    with that of another species, under conditions similar to those in this study,    results in greater activity for <i>Guadua angustifolia</i> vinegar, which can    prove its great potential for the development of antiseptic formulations. </font>  </p>     <p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Pseudomona aeruginosa,</i>    <i>Staphylococcus aureus</i>, acetic acid, <i>Guadua angustifolia</i> Kunth    vinegar, antiseptic activity. </font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Guadua angustifolia</I> Kunth es una planta    ampliamente utilizada en Colombia en el sector de la construcci&oacute;n, por    ser una especie aut&oacute;ctona que se encuentra natural en muchas de las zonas    rurales de Colombia. Por sus buenas propiedades mec&aacute;nicas, se utiliza    en especial por los campesinos para construir viviendas, pero en el proceso    de cosecha y transformaci&oacute;n solo se emplea 40 %,<SUP>1</SUP> lo dem&aacute;s    se convierte en residuo. Uno de los usos que se est&aacute; investigando en    Colombia a este residuo es la transformaci&oacute;n en vinagre de guadua, el    cual se obtiene durante las etapas preliminares de la producci&oacute;n de carb&oacute;n    a partir de estos residuos, a temperaturas alrededor de 200 &#176;C. Se obtiene    un l&iacute;quido algo amarillo, con olor a humo, pH alrededor de 3,9; alto    contenido de compuestos fen&oacute;licos y casi 90 % de agua.<SUP>2</SUP> Los    vinagres de bamb&uacute; contienen compuestos fen&oacute;licos como el siringol,    el guayacol y &aacute;cidos org&aacute;nicos como el &aacute;cido propi&oacute;nico    y el &aacute;cido ac&eacute;tico.<SUP>3-5</SUP> Estas mol&eacute;culas ejercen    diferentes mecanismos de acci&oacute;n, las cuales hacen que las bacterias que    generan resistencia a mol&eacute;culas espec&iacute;ficas, sean atacadas de    modo simult&aacute;neo por otros puntos blancos, ampl&iacute;a el espectro de    acci&oacute;n antibacterial de los vinagres.<SUP>6,7</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En esta investigaci&oacute;n se estudia el efecto    biocida del vinagre de guadua frente a bacterias que han mostrado resistencia    a antibi&oacute;ticos y que son patog&eacute;nicas, como el bacilo gramnegativo    <I>Pseudomona aeruginosa</I> y el coco grampositivo <I>Staphylococcus aureus</I>.    La alta resistencia de estos microorganismos se debe a su capacidad de sintetizar    enzimas, que les permiten adaptarse a condiciones extremas de pH y a medios    escasos en fuentes de carbono,<SUP>8</SUP> y tambi&eacute;n les permiten defenderse    de mol&eacute;culas como penicilinas, meticilinas y dem&aacute;s antibi&oacute;ticos.    Este hecho ha originado en la comunidad cient&iacute;fica la necesidad de buscar    de continuo mol&eacute;culas o matrices que act&uacute;en como bactericidas    para ser utilizadas como conservantes, antibi&oacute;ticos o desinfectantes,<SUP>3,9</SUP>    de manera que permitan reemplazar los actuales, a los cuales las bacterias han    generado resistencia, o simplemente ofrecer una mayor variedad de compuestos;<SUP>10</SUP>    de manera que se evite el uso continuo del mismo antibi&oacute;tico, para no    estimular mecanismos de resistencia en los microorganismos.<SUP>11</SUP> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>M&Eacute;TODOS</B> </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Preparaci&oacute;n de la muestra</I> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Se filtraron 200 mL de vinagre de guadua en reposo    m&iacute;nimo de 6 meses. </font>     <P>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><I>Cultivo de microorganismos</I> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Cepas <I>Pseudomona aeruginosa</I> ATCC 9027    y <I>Staphylococcus aureus </I>ATCC 6538. Se mantuvieron en medio s&oacute;lido    Centrimide y Baird Parker, respectivamente. De cada medio se tomaron 5 colonias    y se inocularon en medio l&iacute;quido Muller Hinton, se incubaron por 48 h    a 37 &#176;C. La turbidez del medio se ajust&oacute; a una absorbancia de 0,2    UA a longitud de onda 540 nm en un espectrofot&oacute;metro VARIAN<SUP>&#174;    </SUP>CARY 50 BIO UV/VIS. Esta absorci&oacute;n result&oacute; equivalente a    una concentraci&oacute;n espec&iacute;fica de 10<SUP>7 </SUP>UFC/mL. </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Determinaci&oacute;n de la sensibilidad del    vinagre de guadua y del &aacute;cido ac&eacute;tico, contra los microorganismos    S. aureus y P. aureuginosa</I> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n    en agar<SUP>6</SUP> en medio s&oacute;lido Muller Hinton, con vinagres a 100,    80, 60, 40 y 20 %; pH en el rango de 3 a 6, que se ajusta con sulfato de sodio    dib&aacute;sico 97 %. Para comparar la sensibilidad de estos microorganismos    al &aacute;cido ac&eacute;tico, se analizaron simult&aacute;neamente soluciones    de &aacute;cido ac&eacute;tico a 9, 6, 4 y 2 % (a las cuales se encuentra este    &aacute;cido en el vinagre de guadua a 100, 60, 40 y 20 %, respectivamente).    Se utilizaron pozuelos de 4,6 mm de di&aacute;metro, se deposit&oacute; en cado    uno 15 &#181;L de muestra. La medici&oacute;n del di&aacute;metro total de los    halos de inhibici&oacute;n se realiz&oacute; con un calibrador de resoluci&oacute;n    m&aacute;xima de 0,01 mm. </font>     <P>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P> <font face="Verdana" size="2"><I>Determinaci&oacute;n de la sensibilidad de las  bacterias S. aureus y P. aureuginosa al &aacute;cido ac&eacute;tico y al vinagre  de guadua </I></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Influencia del pH</i>:<B> </B>como el &aacute;cido    ac&eacute;tico es el principal componente del vinagre de guadua, se estudi&oacute;    su influencia en soluci&oacute;n acuosa 9 % a diferentes pH &aacute;cidos. Se    realiz&oacute; la prueba de sensibilidad con el vinagre de guadua, utilizando    los mismos pH. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Interacci&oacute;n de componentes</I>:<I>    </I>se evalu&oacute; la sensibilidad de 3 compuestos presentes en el vinagre    de guadua: el &aacute;cido ac&eacute;tico, el fenol y el metanol, a concentraciones    de 9, 1,3 y 0,5 %, respectivamente; concentraciones similares a las reportadas    en los vinagres obtenidos a partir de residuos ligninocelul&oacute;sicos, con    el fin de determinar si existe interacci&oacute;n entre los componentes y evaluar    su sensibilidad a estas bacterias individualmente. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o    factorial 2<SUB>.</SUB><SUP>3</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria    (CMI)</I>: se efectu&oacute; por el m&eacute;todo descrito en <I>Society for    Microbiology</I>, 2007,<SUP>12</SUP> con medio l&iacute;quido Muller Hinton.    Se utiliz&oacute; un volumen total de 3 mL. La muestra de vinagre se proporcion&oacute;    a pH 5,5 con fosfato de sodio dib&aacute;sico. El medio con microorganismos    se ajust&oacute; a una absorbancia de 0,2 UA a longitud de onda de 540 nm en    un espectrofot&oacute;metro VARIAN<SUP>&#174;</SUP> CARY 50 BIO UV/VIS, equivalente    a una concentraci&oacute;n de 10<SUP>7 </SUP>UFC/mL. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Cuantificaci&oacute;n de microorganismos</I>:    se realiz&oacute; por m&eacute;todo de inmersi&oacute;n en placa, con medio    s&oacute;lido Casoy. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</I>:<I>    </I>se hizo por medio del programa Design-Expert<SUP>&#174;</SUP> 6. </font>      <P>     <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS</B> </font>     <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><i><font face="Verdana" size="2">Pruebas de sensibilidad a diferentes concentraciones    y a diferentes pH </font></i>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">En la <a href="#fig1">figura 1</a> se muestra    la sensibilidad del &aacute;cido ac&eacute;tico y del vinagre de guadua sobre    <I>P. aeruginosa y S. aureus,</I> a diferentes concentraciones.</font>     <P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v16n3/f0104311.jpg" width="420" height="400"><a name="fig1"></a>      
<P>     <P><font face="Verdana" size="2">En la <a href="#fig2">figura 2</a> se muestra    la sensibilidad del &aacute;cido ac&eacute;tico y del vinagre de guadua con    la variaci&oacute;n del pH. En la <a href="#fig1">figura 1</a> se observa que    <I>S. aureus </I>presenta halos de inhibici&oacute;n de mayor di&aacute;metro    que <I>P. aeruginosa, </I>en todas las concentraciones de vinagre de guadua.    La <I>P. aeruginosa</I> presenta halos de inhibici&oacute;n menores en todas    las concentraciones estudiadas. Esto indica que la bacteria <I>S. aureus es</I>    m&aacute;s sensible al vinagre de guadua que la bacteria <I>P. aeruginosa</I>.    Sobre el &aacute;cido ac&eacute;tico, a concentraciones bajas <I>S. aureus</I>    es menos sensible, presenta halos de inhibici&oacute;n de menor di&aacute;metro;    mientras que a concentraciones mayores, 6 y 9 %, <I>S. aureus</I> tiene una    sensibilidad muy similar a la que se presenta con el vinagre de guadua a las    mayores concentraciones (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). Con <I>P. aeruginosa</I>,    se presentan halos de inhibici&oacute;n de mayor di&aacute;metro con todas las    concentraciones de &aacute;cido ac&eacute;tico comparados con los obtenidos    con el vinagre de guadua. Sin embargo, tambi&eacute;n se presenta variabilidad    en el comportamiento frente al &aacute;cido ac&eacute;tico, porque disminuye    y aumenta a diferentes concentraciones; no se presenta un claro efecto de la    sensibilidad de este microorganismo frente a las concentraciones crecientes    de soluciones de &aacute;cido ac&eacute;tico (<a href="#fig1">Fig. 1</a>).</font>     <P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v16n3/f0204311.jpg" width="420" height="391"><a name="fig2"></a>      
]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P>     <P><font face="Verdana" size="2">En la <a href="#fig2">figura 2</a>, al comparar    la sensibilidad al &aacute;cido ac&eacute;tico (9 %, a pH entre 2 y 6), a pH    superiores a 4,46, las 2 bacterias pierden sensibilidad frente al &aacute;cido    ac&eacute;tico. Frente a las muestras de vinagre de guadua a los mismos pH,    la bacteria <I>P. aureuginosa </I>presenta halos de inhibici&oacute;n de menor    di&aacute;metro que <I>S. aureus</I> en el rango de pH estudiado. Sin embargo,    los halos de inhibici&oacute;n que se obtienen con el vinagre de guadua tienen    mayor di&aacute;metro que los obtenidos con &aacute;cido ac&eacute;tico, para    ambas bacterias a pH superiores a 4,46, pH a los cuales perd&iacute;an sensibilidad    frente a soluciones de &aacute;cido ac&eacute;tico solas. Por lo tanto, ambas    bacterias son sensibles al vinagre de guadua en el rango de pH entre 2 y 6,    sin embargo, es mucho m&aacute;s sensible la bacteria <I>S. aureus</I> que la    bacteria </font> <font face="Verdana" size="2"><I>P. aureuginosa. </I></font> <I>     <P>  </I>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria</i>:<B>    </B>en la <a href="/img/revistas/pla/v16n3/t0104311.gif">tabla 1</a> se presentan las concentraciones    finales de microorganismos halladas en las siembras por inmersi&oacute;n en    placa, de cada uno de los tubos en los cuales no se presento turbidez. </font>      
<P><font face="Verdana" size="2">En medio l&iacute;quido se evidencia una concentraci&oacute;n    m&iacute;nima inferior que la encontrada por el m&eacute;todo de sensibilidad    por difusi&oacute;n en agar 20 % v/v, debido a la mayor vulnerabilidad de los    microorganismos en medio l&iacute;quido; porque aumentan la permeabilidad de    sus membranas y adem&aacute;s tienen mayor superficie de contacto con el biocida.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los resultados evidencian que en medio l&iacute;quido    las bacterias <I>P. aeruginosa</I> y <I>S. aureus</I> son sensibles al vinagre    de guadua y tienen sensibilidad similar. La concentraci&oacute;n m&iacute;nima    a la cual se reduce como m&iacute;nimo en 4 log la concentraci&oacute;n de microorganismos    es 12 mg/mL en base seca, equivalente a 12 % de vinagre de guadua v/v para las    2 bacterias. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Interacci&oacute;n de los componentes del    vinagre de guadua frente a S. aureus y P. aeruginosa</I>:<B> </B>para determinar    el porcentaje de contribuci&oacute;n de diferentes componentes, se utiliz&oacute;    el estudio de interacci&oacute;n de componentes y el porcentaje de contribuci&oacute;n    de cada uno, que se presenta en la <a href="/img/revistas/pla/v16n3/t0204311.gif">tabla 2</a>. El an&aacute;lisis    estad&iacute;stico obtenido es: </font>      
<P><font face="Verdana" size="2">- Modelo lineal (<I>Lack of fit</I> 4, error    puro 16) para <I>S. aureus</I>: R<SUP>2</SUP> 0,9992; R-ajustado 0,9989; R<SUP>2</SUP>    predicho 0,9982; p&lt; 0,0001-significativo. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">- Modelo lineal (<I>Lack of fit</I> 4, error    puro 136) para <I>P. aeruginosa</I>: R<SUP>2 </SUP>0,9942; R-ajustado 0,9939;    R<SUP>2 </SUP>predicho 0,9935; p&lt; 0,0001-significativo. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Frente a <I>S. aureus</I>, el componente que    m&aacute;s explica la sensibilidad, a pH inferiores de 4, es el &aacute;cido    ac&eacute;tico: porcentaje de contribuci&oacute;n 98,99 %. El fenol ofrece un    efecto sin&eacute;rgico con el &aacute;cido ac&eacute;tico, evidenciado en el    aumento del tama&ntilde;o del halo de inhibici&oacute;n, contribuci&oacute;n    0,25 %. Cuando se eval&uacute;a la sensibilidad del fenol solo, no presenta    efecto biocida. El metanol con contribuci&oacute;n de 0,1 %, no tiene influencia    significativa en el aumento de sensibilidad y no muestra sensibilidad por s&iacute;    solo. El componente que presenta mayor actividad frente a la bacteria <I>P.    aeruginosa</I> a pH inferiores de 4 es el &aacute;cido ac&eacute;tico, contribuci&oacute;n    94,39 %. El fenol tiene efecto sin&eacute;rgico con contribuci&oacute;n de 0,12    %, con menor influencia que frente a la bacteria <I>S. aureus. C</I>uando se    eval&uacute;a su sensibilidad solo, no evidencia efecto biocida. El metanol    con contribuci&oacute;n de 0,056 % no tiene influencia significativa en el aumento    del actividad del &aacute;cido ac&eacute;tico. Tampoco demuestra actividad por    s&iacute; solo (<a href="/img/revistas/pla/v16n3/t0204311.gif">tabla 2</a>). </font>     
<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>DISCUSION </B></font><font face="Verdana" size="2">    </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">El componente que m&aacute;s contribuye a la    sensibilidad de las bacterias <I>S. aureus</I> y <I>P. aeruginosa</I>, frente    al vinagre de guadua a pH inferiores de 4, es el &aacute;cido ac&eacute;tico,    debido a la contribuci&oacute;n que este hace a la actividad en 98,9 % y 94,39    %, respectivamente. Sin embargo, es la interacci&oacute;n del fenol con el &aacute;cido    ac&eacute;tico la que aumenta la sensibilidad de estas bacterias frente al vinagre    de guadua a pH inferiores a 4,46, seg&uacute;n los porcentajes de contribuci&oacute;n    hallados. La <I>P. aeruginosa</I> es menos sensible al vinagre de guadua que    al &aacute;cido ac&eacute;tico 9 %. Esto puede ser debido que la <I>P. aeruginosa,</I>    frente al vinagre de guadua, puede iniciar mecanismos de defensa inducidos por    la presencia de los compuestos fen&oacute;licos, dando como consecuencia resistencia.    Esta resistencia ha sido demostrada experimentalmente con fenol y triclosan.<SUP>13,14</SUP>    Sin embargo, aun as&iacute;, se logra obtener la reducci&oacute;n logar&iacute;tmica    de 4 en la concentraci&oacute;n de microorganismos a concentraciones mayores    que 12 mg/mL (<a href="/img/revistas/pla/v16n3/t0104311.gif">tabla 1</a>) con el vinagre de guadua,    por lo cual se puede calificar como un bactericida.<SUP>15</SUP> </font>      
<P><font face="Verdana" size="2">La alta sensibilidad del <I>S. aureus</I> puede    deberse a su membrana compuesta de p&eacute;ptido glucano y &aacute;cidos teicoicos,    que permiten la permeabilidad de los biocidas.<SUP>16</SUP> En caso contrario    la membrana externa de la <I>P. aeruginosa</I> es la responsable de su resistencia,<SUP>13</SUP>    porque est&aacute; compuesta principalmente por lipo-polisac&aacute;ridos (LPSs)    que hacen la pared celular m&aacute;s resistente a mol&eacute;culas hidrof&oacute;bicas,    y su elevado contenido de magnesio hace una fuerte uni&oacute;n con los LPSs,    que dificulta el paso de los biocidas a trav&eacute;s de la membrana.<SUP>15</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La concentraci&oacute;n m&iacute;nima activa    con efecto antimicrobiano del vinagre de guadua es de 12 % v/v o en base seca    de 12 mg/mL. Su rango de pH de acci&oacute;n est&aacute; entre pH 2 y 6. Bajo    estas condiciones de concentraci&oacute;n y pH se logra como m&iacute;nimo una    reducci&oacute;n en el n&uacute;mero de microorganismos de 4 log. La actividad    del vinagre de guadua en este amplio pH es una gran una ventaja porque la mayor&iacute;a    de los conservantes est&aacute; condicionado a pH m&aacute;s estrechos. Su uso    como conservante de productos farmac&eacute;uticos no ser&aacute; limitado por    el pH, porque se puede usar a un amplio rango de pH entre 3 y 6. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Comparando la actividad antis&eacute;ptica del    vinagre de bamb&uacute; de la especie <I>Gigantochlo ascortechinii</I>,<SUP>16    </SUP>que se ha obtenido en condiciones similares a las de este estudio, se    report&oacute; un halo de inhibici&oacute;n (medido desde el borde) de 3,78    mm. Para el vinagre de guadua se obtiene 5.09 mm de inhibici&oacute;n a la misma    concentraci&oacute;n. Es decir, que se obtiene una mayor actividad para el vinagre    de <I>Guadua angustifolia</I>, lo cual permite demostrar el gran potencial de    este para el desarrollo de formulaciones con actividad antis&eacute;ptica. </font>     <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></B>    </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural,    a la Universidad de Antioquia, a la empresa Kosmein y a la Escuela de Administraci&oacute;n    y Mercadotecnia del Quind&iacute;o por la financiaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n    C&Oacute;DIGO: 2007M3674-892.</font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>      <P>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Espinal CF, Mart&iacute;nez HJ, Pinz&oacute;n    N, Espinosa D. Documento de trabajo N&#186; 65<B>. </B>La cadena de la guadua    en Colombia una mirada global de su estructura y din&aacute;mica 1991-2005.    Colombia. Bogot&aacute;: Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural-Observatorio    Agrocadenas; Marzo de 2005.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Mej&iacute;a AI, Gallardo C, Vallejo J. Plantas    del g&eacute;nero <I>Bambusa</I>: Importancia y aplicaciones en la industria    farmac&eacute;utica, cosm&eacute;tica y alimentaria. Vitae. 2009;16(3):396-405.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Akakabe Y, Tamura Y, Iwamoto S. Volatile organic    compounds with characteristic odor in bamboo vinegar. Biosci Biotechnol Biochem.    2006;70(11):2797-9.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Phil S, Sub C. Pyrolysis GC-MS analysis of    tars formed during the aging of wood and bamboo crude vinegars. J Wood Sci.    2009;56:47-52.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Mu J, Uehara T, Furuno T. Effect of bamboo    vinegar on regulation of germination and radical growth of seed plants II: composition    of moso bamboo vinegar at different collection temperature and its effects.    J Wood Sciences. 2004;50:470-6.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Shan B, Cai Y, Brooks J, Corke H. The <I>in    vitro</I> antibacterial activity of dietary spice and medicinal herb extracts.    International J Food Microbiol. 2007;117:111-9.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Hernandez A. Aportaciones al estudio de la    actividad antimicrobiana de los antis&eacute;pticos y desinfectantes [Tesis    Doctoral]. Barcelona, Espa&ntilde;a: Universidad Aut&oacute;noma de Barcelona;    2009. p. 14.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">8. River&oacute;n F, Hern&aacute;ndez J, Ponce    L, Machado C. Resistencia bacteriana. Rev Cubana Med Milit. 2003;32(1):44-8.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9. Jun M, Zhi-ming Y, Wen-qiang W, Qing-li Wu.    Preliminary study of application effect of bamboo vinegar on vegetable growth.    For Stud China. 2006;8(3):43-7.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10. Lin FH. Bamboo vinegar shampoo for pets and    manufacturing process of the same. Patente US 2008/0096783 A1.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">11. Yoshihiko A, Yuka T, Soota I, Miho T, Takeshi    N. Volatile Organic compounds with characteristic odor in bamboo vinegar. Biosci    Biotechnol Biochem. 2006;70(11):2797-9.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">12. Counts JM, Astles JR, Tenover FC, Hindler    J. Systems Approach to Improving Antimicrobial Susceptibility Testing in Clinical    Laboratories in the United States. J Clin Microbiol. 2007;45(7):2230-4.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">13. Chitiva R, Dussan J. Evaluaci&oacute;n de    matrices para la inmovilizaci&oacute;n de Pseudomonas spp. en biorremediaci&oacute;n    de fenol. Rev Colombiana Biotecnol. 2003;5(2):5-10.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">14. Chuanchuen R, Karkhoff-Schweizer, Schweizer    H. High-level triclosan resistance in <I>Pseudomonas aeruginosa </I>is solely    a result of efflux. Am J Infect Control. 2003;31:124-7.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">15. Madigan M, Martinko J, Parker J. Biolog&iacute;a    de los microorganismos, 10 ed. M&eacute;xico: Pearson Alhambra; 2004. p. 66-79.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">16. Sulaiman O<I>,</I> Murphy RJ, Hashim R, Sanchis    G. The inhibition of microbial growth by bamboo vinegar. J Bamboo Rattan. 2005;4:71-80.    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Recibido: 25 de noviembre de 2010.     <br>   Aprobado: 14 de marzo de 2011. </font>     <P>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Amanda In&eacute;s Mej&iacute;a Gall&oacute;n</I>.    Grupo de investigaci&oacute;n BIOPOLIMER. Universidad de Antioquia. Carrera    50 A N&#186; 63-85. Tel: 57-4-2198332. Ext. 2310 Medell&iacute;n. Antioquia.    Colombia. Tel&eacute;f.: 57-4-2198332. Ext. 2310. Correo electr&oacute;nico:    <U><FONT COLOR="#0000ff"><a href="mailto:amejia@quimbaya.udea.edu.co">amejia@quimbaya.udea.edu.co</a></FONT></U>    </font>       ]]></body><back>
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