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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estabilidad físico-química y microbiológica de la corteza fresca de Mangifera indica L.]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The physical, chemical and microbiological stability of Mangifera indica L. fresh bark]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: the dry aqueous extract from the decoction of the bark of some selected Mangifera indica L. varieties is the active principle of some Vimang® formulations. This natural extract was reported to have antioxidant, anti-inflammatory, antimicrobial, spasmolytic, analgesic and antipyretic properties. The main component is mangiferin, a xanthone c-glycosilated, with several reported biological actions. For this reason, mangiferin was chosen as chemical marker for the study of the chemical stability, and the quality control of the different formulations of mango tree bark, commercially used as antioxidant nutritional supplement to treat several chronic diseases. Objective: to study the influence of the suggested storage conditions for Mangifera indica L. bark on the physical, chemical and microbiological properties and the content of mangiferina in the vegeral raw material. Methods: the fresh bark material of Mangifera indica L was grounded and stored in polyethylene bags during 70 days under two storage conditions at 22 ± 1°C and 55 ± 5 % relative humidity. Presence and total counting of micro-organisms was determined in the bark, whereas the pH value and the content of total solids and mangiferin were identified in the aqueous extract. The mangiferin was analyzed by high performance liquid chromatography. Results: there were observed rapid microbial growth and presence of unwanted micro-organisms from the beginning of the study. After 31 day-storage under specified temperature and humidity conditions, a pathogenic micro-organism called Pseudomonas aeruginosa emerged. The content of total solids and mangiferin in the aqueous extract did not significantly change during the study, which indicated the lack of chemical degradation in these components. The pH value of the aqueous extract decreased as a result of the emergence of fungi in the bark. Conclusions: it is recommended to store the fresh bark for 30 days as maximum, in order to prevent deterioration and contamination of the vegetal material caused by pathogenic micro-organisms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2"><B>     <div align="right">       <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</p>       <p>&nbsp; </p> </div> </B></font>      <p><b><font face="Verdana" size="4">Estabilidad f&iacute;sico-qu&iacute;mica y    microbiol&oacute;gica de la corteza fresca de <I>Mangifera indica </I>L. </font></b>  </p>     <P>&nbsp;     <P>      <P><font size="3"><b><font face="Verdana">The physical, chemical and microbiological    stability of <I>Mangifera indica </I>L. fresh bark</font></b></font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><b><font face="Verdana" size="2">Ing. Lauro Nuevas-Paz,<SUP>I</SUP> Ing. Juan    Carlos &Aacute;lvarez de Le&oacute;n,<SUP>II</SUP> MSc. Ayme Su&aacute;rez-Torras,<SUP>III</SUP>    MSc. Lisette Sordo-Mart&iacute;nez,<SUP>II</SUP> Lic. Leonora Gonz&aacute;lez-Hern&aacute;ndez,<SUP>IV</SUP>    Dr. C. Jhoany Acosta-Esquijarosa<SUP>V</SUP></font> </b>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><SUP>I</SUP> Centro Nacional de Gen&eacute;tica    M&eacute;dica de Cuba. La Habana, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>II </SUP>Empresa del Vidrio, Lisa.    La Habana, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>III</SUP> Centro Estatal para el Control    de Medicamentos (CECMED).<FONT  COLOR="#000080"> </FONT>La Habana, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>IV</SUP> Instituto de Farmacia y Alimentos    (IFAL). La Habana, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>V</SUP> Centro de Ingenier&iacute;a    de Procesos (CIPRO). Instituto Superior Polit&eacute;cnico Jos&eacute; A. Echevarr&iacute;a.    La Habana, Cuba.</font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN</B></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B> </B><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n</b>: el extracto    acuoso seco que se obtiene a partir de la decocci&oacute;n de la corteza de    algunas variedades de <I>Mangifera indica </I>L. es el principio activo de las    formulaciones del Vimang<SUP>&#174;</SUP>. Este producto de origen natural posee    actividad antioxidante, antiinflamatoria, antimicrobiana, espasmol&iacute;tica,    analg&eacute;sica y antipir&eacute;tica; su componente principal es mangiferina    una xantona con varias actividades biol&oacute;gicas reportadas, por lo cual    se seleccion&oacute; como marcador qu&iacute;mico para llevar a cabo los estudios    de estabilidad de la corteza y el control de calidad de las formulaciones desarrolladas    del extracto de la corteza del &aacute;rbol del mango, el cual se utiliza en    Cuba como suplemento nutricional antioxidante para el tratamiento de diversas    enfermedades cr&oacute;nicas. <B>    <br>   Objetivo</B>: estudiar la influencia sobre las propiedades f&iacute;sico-qu&iacute;micas,    microbiol&oacute;gicas y el contenido de mangiferina en la materia prima vegetal,    de las condiciones de almacenamiento propuestas para la corteza de <I>Mangifera    indica</I> L. <B>    <br>   M&eacute;todos</B>: la corteza se tritur&oacute; y envas&oacute; en bolsas de    polietileno y fue almacenada durante 70 d con 2 condiciones de almacenamiento    a temperatura 22 &#177; 1 &#176;C y humedad relativa 55 &#177; 5 %. A la corteza    se le determin&oacute; la presencia y el conteo total de microorganismos. A    los extractos acuosos preparados con la corteza el pH, contenido de s&oacute;lidos    totales y mangiferina; este &uacute;ltimo por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida    de alta resoluci&oacute;n. <B>    <br>   Resultados</B>: en la corteza se observ&oacute; un r&aacute;pido crecimiento    microbiano y la presencia de microorganismos indeseables desde el inicio mismo    del estudio. A los 31 d de almacenamiento en condiciones de temperatura y humedad    se observ&oacute; la aparici&oacute;n de <I>Pseudomonas aeruginosa, </I>un microorganismo    pat&oacute;geno. El contenido de s&oacute;lidos totales y mangiferina en los    extractos no vari&oacute; significativamente durante el estudio, lo cual indica    la ausencia de degradaci&oacute;n qu&iacute;mica de los componentes de la corteza.    En el valor del pH del extracto acuoso se observ&oacute; una disminuci&oacute;n    que est&aacute; relacionada con la aparici&oacute;n de hongos en la corteza.    <B>    <br>   Conclusiones</B>: <I>s</I>e recomienda almacenar la corteza fresca por un per&iacute;odo    de 30 d como m&aacute;ximo para evitar el deterioro y la contaminaci&oacute;n    del material vegetal por microorganismos pat&oacute;genos. </font> </p> <B></B>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave</B>: corteza, estudios de estabilidad,    mangiferina, <I>Mangifera indica</I>. </font> <hr size="1" noshade> <b><font face="Verdana" size="2">ABSTRACT </font> </b>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Introduction</B>: the dry aqueous extract    from the decoction of the bark of some selected <I>Mangifera indica</I> L. varieties    is the active principle of some Vimang&#174; formulations. This natural extract    was reported to have antioxidant, anti-inflammatory, antimicrobial, spasmolytic,    analgesic and antipyretic properties. The main component is mangiferin, a xanthone    c-glycosilated, with several reported biological actions. For this reason, mangiferin    was chosen as chemical marker for the study of the chemical stability, and the    quality control of the different formulations of mango tree bark, commercially    used as antioxidant nutritional supplement to treat several chronic diseases.    <B>    <br>   Objective</B>: to study the influence of the suggested storage conditions for    <I>Mangifera indica</I> L. bark on the physical, chemical and microbiological    properties and the content of mangiferina in the vegeral raw material. <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Methods</B>: the fresh bark material of <I>Mangifera indica</I> L was grounded    and stored in polyethylene bags during 70 days under two storage conditions    at 22 &#177; 1&#176;C and 55 &#177; 5 % relative humidity. Presence and total    counting of micro-organisms was determined in the bark, whereas the pH value    and the content of total solids and mangiferin were identified in the aqueous    extract. The mangiferin was analyzed by high performance liquid chromatography.    <B>    <br>   Results:</B> there were observed rapid microbial growth and presence of unwanted    micro-organisms from the beginning of the study. After 31 day-storage under    specified temperature and humidity conditions, a pathogenic micro-organism called    <I>Pseudomonas aeruginosa</I> emerged. The content of total solids and mangiferin    in the aqueous extract did not significantly change during the study, which    indicated the lack of chemical degradation in these components. The pH value    of the aqueous extract decreased as a result of the emergence of fungi in the    bark. <B>    <br>   Conclusions</B>: it is recommended to store the fresh bark for 30 days as maximum,    in order to prevent deterioration and contamination of the vegetal material    caused by pathogenic micro-organisms. </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words</B>: bark, stability studies, mangiferin,    <I>Mangifera indica</I> L. </font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">El &aacute;rbol del mango o<I> Mangifera indica    </I>L<font color="#000000">.</font> (Anacardiaceae) crece en las regiones tropicales    y subtropicales y sus partes son com&uacute;nmente utilizadas en la medicina    tradicional para una gran variedad de remedios.<SUP>1</SUP> La composici&oacute;n    qu&iacute;mica de esta planta ha sido muy estudiada, los extractos presentan    gran cantidad de triterpenos, flavonoides y polifenoles entre otros compuestos    bioactivos.<SUP>2</SUP> El extracto acuoso seco de la corteza del &aacute;rbol    del mango (ECAM) se obtiene solo de 17 de las 273 variedades de <I>Mangifera    indica</I> L. que crecen en Cuba&#160;y se&#160;emplea&#160;como un complemento    nutricional antioxidante para la mejor&iacute;a de la calidad de vida en pacientes    con diversas enfermedades cr&oacute;nicas.<SUP>3</SUP> </font>      <P><font face="Verdana" size="2">El compuesto mayoritario del ECAM es una xantona    C-glucosilada de nombre qu&iacute;mico conocida como mangiferina (<a href="#fig1">Fig.    1</a>). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n2/f0102212.jpg" width="420" height="252"> <a name="fig1"></a>     <P><font face="Verdana" size="2">Este compuesto se encuentra entre 5 y 25 % en    el extracto. La mangiferina posee actividad antidiab&eacute;tica,<SUP>4</SUP>    antiviral, antitumoral, inmunomoduladora y efecto anti VIH<SUP>5,6 </SUP>y,    adem&aacute;s, un potente efecto antioxidante.<SUP>7</SUP> Por ello, se seleccion&oacute;    como marcador qu&iacute;mico para evaluar la estabilidad de la materia prima    vegetal y la calidad de las formulaciones desarrolladas del ECAM que se conocen    con el nombre comercial de Vimang<SUP>&#174;</SUP>. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El proceso de obtenci&oacute;n del ECAM consiste    en la extracci&oacute;n acuosa de la corteza de algunas variedades seleccionadas    de <I>Mangifera indica </I>L. El extracto obtenido es concentrado hasta 10 %    de s&oacute;lidos solubles y posteriormente secado por atomizaci&oacute;n.<SUP>8,9</SUP>    Dentro del esquema tecnol&oacute;gico de obtenci&oacute;n del ECAM la etapa    de secado y almacenamiento de la corteza vegetal reviste gran importancia, porque    si el material vegetal se encuentra contaminado microbiol&oacute;gicamente o    si el contenido de mangiferina se encuentra por debajo del l&iacute;mite permisible    en la corteza (&lt; 2 %)<SUP>8</SUP>, no se obtiene un producto con las especificaciones    de calidad establecidas. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los microorganismos que degradan la celulosa,    conocidos como celulol&iacute;ticos, son abundantes en la naturaleza. Entre    ellos se encuentran hongos, bacterias, actinomicetos, protozoos, tanto anaerobios    como aerobios, muchos de los cuales pueden crecer en condiciones extremas de    temperatura y pH<SUP>10</SUP>. De esta manera las plantas deben ser almacenadas    en condiciones espec&iacute;ficas para evitar su contaminaci&oacute;n y deterioro.    Se recomienda de forma general evitar la incidencia de la luz, lograr temperatura    y humedades bajas, y el envase a emplear no debe interactuar con el material    vegetal para evitar la degradaci&oacute;n de los componentes bioactivos que    puedan ser responsables de la actividad biol&oacute;gica que presente la planta.<SUP>10</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En el desarrollo de la tecnolog&iacute;a de obtenci&oacute;n    del ECAM se han llevado a cabo diferentes estudios previos donde ha sido evaluada    la influencia del tama&ntilde;o de la part&iacute;cula en la obtenci&oacute;n    del principio activo, y se ha establecido la relaci&oacute;n material vegetal/volumen    de disolvente.<SUP>8</SUP> Recientemente, se report&oacute; el estudio de lixiviaci&oacute;n    de la corteza vegetal, determin&aacute;ndose las etapas de extracci&oacute;n    necesarias para la obtenci&oacute;n del ECAM y, adem&aacute;s, la solubilidad    de la mangiferina en agua.<SUP>11</SUP> Sin embargo, no han sido estudiadas    las condiciones de almacenamiento a que debe someterse la corteza del &aacute;rbol    del mango para garantizar la producci&oacute;n estable del ECAM, el cual constituye    la materia prima de las formulaciones Vimang<SUP>&#174;</SUP>. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Teniendo en cuenta lo anterior, en este trabajo    se reporta el estudio de la influencia de las condiciones y el tiempo de almacenamiento    sobre la estabilidad f&iacute;sico-qu&iacute;mica y microbiol&oacute;gica de    la corteza de <I>M. indica</I>. Estas 2 condiciones de almacenamiento se seleccionaron    de acuerdo con las condiciones de conservaci&oacute;n de la corteza, que existen    en el laboratorio farmac&eacute;utico industrial donde se elabora el ECAM. </font>     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODOS</font></B></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><I>Recolecci&oacute;n y preparaci&oacute;n del    material vegetal</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La corteza de <I>M. indica</I> fue colectada    de forma manual en agosto de 2006 en la localidad de Corralillo, Villa Clara,    Cuba; codificada en el herbario del Instituto de Ecolog&iacute;a y Sistem&aacute;tica    del Ministerio de Ciencias y Tecnolog&iacute;a, (CITMA) con el n&uacute;mero    de herbario 41722 y autenticada por MSc. Ramona Oviedo Prieto curadora del herbario    y MSc. Isora Bar&oacute; Oviedo, directora del Herbario. La materia prima vegetal    h&uacute;meda se moli&oacute; hasta obtener un tama&ntilde;o de part&iacute;cula    de 2 a 3 cm. La humedad inicial fue de 54 &#177; 1 %. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Estudio de estabilidad y almacenamiento de    la corteza de Mangifera indica </I>L. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El material vegetal molido fue envasado en bolsas    de <I>polietileno</I> con una capacidad de 400 g. Se identificaron las muestras    seg&uacute;n el estudio a realizar. La muestra A se almacen&oacute; en un cuarto    ventilado, protegido de la lluvia y del sol, a temperatura (T) y humedad relativa    (HR) ambiente. La muestra B se almacen&oacute; en un lugar con aire acondicionado    (T= 22 &#177; 1 &#176;C y HR= 55 &#177; 5 %). Se generaron alrededor de 10 muestras    para cada condici&oacute;n de almacenamiento. El tiempo de duraci&oacute;n del    estudio fue de 70 d. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Obtenci&oacute;n de los extractos de la corteza    de Mangifera indica </I>L. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para realizar las diferentes determinaciones    anal&iacute;ticas como el pH del extracto acuoso, el contenido de s&oacute;lidos    totales, el conteo total de microorganismos y el contenido de mangiferina se    hace necesario preparar el material vegetal en forma de extracto. Para esto    la corteza ya molida se pes&oacute; y se introdujo en un reactor enchaquetado    de 2 L de capacidad, utilizando agua como el disolvente de extracci&oacute;n    y como medio de calentamiento, aceite. El proceso de extracci&oacute;n se realiz&oacute;    a reflujo constante y se emple&oacute; una relaci&oacute;n 1/12 de material    vegetal/volumen del disolvente.<SUP>8</SUP> Se tomaron 50 mL del extracto obtenido,    se filtraron y almacenaron a 4 &#176;C hasta su an&aacute;lisis. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Determinaciones anal&iacute;ticas</B> </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Determinaci&oacute;n del contenido de humedad,    los s&oacute;lidos totales y del pH del extracto</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El ensayo de la determinaci&oacute;n del contenido    de humedad en el material vegetal y de s&oacute;lidos totales en el extracto    de la corteza de <I>M. indica</I> L., se realiz&oacute; en una termobalanza    MA 40 (Sartorius). El pH del extracto se midi&oacute; en un peach&iacute;metro    de laboratorio Metrohm 691, equipado con un electrodo combinado de vidrio y    una sonda de temperatura. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Determinaci&oacute;n del contenido de mangiferina    por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (HPLC) </I>    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">El an&aacute;lisis por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida    de alta resoluci&oacute;n se realiz&oacute; en un equipo de HPLC conformado    por una bomba de gradiente L6200A (Merck-Hitachi) acoplado a un detector UV-VIS    PU 4225 (Unicam) ajustado a 254 nm. Para realizar la separaci&oacute;n cromatogr&aacute;fica    se emple&oacute; una columna LiChrospher RP- 18 (Merck) de 250 x 4 mm DI y un    tama&ntilde;o de part&iacute;culas de 5 &#181;m. La fase m&oacute;vil consisti&oacute;    en una mezcla de &aacute;cido ac&eacute;tico 2,5 % y metanol en una relaci&oacute;n    72:28 v/v. El volumen de inyecci&oacute;n fue de 20 &#181;L.<SUP>12</SUP> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Ensayos microbiol&oacute;gicos.</I> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Para la identificaci&oacute;n de pat&oacute;genos    que no deben estar presentes en la corteza vegetal, as&iacute; como el conteo    total de microorganismos que incluyen bacterias, hongos y levaduras se hicieron    evaluaciones seg&uacute;n la norma cubana NC 26-126.<SUP>13</SUP></font>     <P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS </font></B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Resultados del estudio de estabilidad y almacenamiento    de la materia prima vegetal.</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">El estudio de estabilidad y almacenamiento del    material vegetal estuvo dirigido a evaluar la influencia de 2 condiciones de    temperatura y humedad seleccionadas. Durante los 70 d que dur&oacute; el estudio    se observ&oacute; un aumento exponencial en el contenido total de microorganismos    para ambas condiciones de almacenamiento (<a href="#fig2">Fig. 2</a>). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n2/f0202212.jpg" width="420" height="365"><a name="fig2"></a>      <P><font face="Verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n cualitativa de <I>Salmonella</I>,    <I>Klebsiella </I>sp. y <I>Escherichia coli</I> mostr&oacute; que estas bacterias    estuvieron presentes en las muestras desde el inicio. Sin embargo, las <I>Pseudomonas    ferruginosas</I> aparecieron solo en las muestras almacenadas a temperatura    ambiente a partir de los 31 d de iniciado el estudio. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El contenido de los s&oacute;lidos totales extra&iacute;dos    de la corteza para las 2 condiciones de almacenamiento se muestra en la <a href="#fig3">figura    3</a>. </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n2/f0302212.jpg" width="420" height="420"><a name="fig3"></a>      <P><font face="Verdana" size="2">Esta variable no cambi&oacute; significativamente    durante todo el tiempo de estudio. La variaci&oacute;n del pH de los extractos    preparados con las muestras objeto de estudio se muestran en la <a href="#fig4">figura    4</a>. </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n2/f0402212.jpg" width="420" height="292"><a name="fig4"></a>      <P><font face="Verdana" size="2">Los valores de pH disminuyen con mayor velocidad    durante los primeros 30 d del estudio. Sin embargo a partir de los 45 d los    valores de pH de los extractos son muy similares con muy poca variaci&oacute;n.    </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Comportamiento del contenido de mangiferina    durante el estudio.</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2">La determinaci&oacute;n del contenido de mangiferina    presente en la corteza vegetal se determin&oacute; en 2 momentos, al inicio    y al final del estudio de estabilidad. Los resultados obtenidos para las 2 condiciones    se muestran en la <a href="#tab1">tabla</a> y se aprecia que el contenido de    mangiferina en la muestra A tuvo poca variaci&oacute;n al final del estudio.    Sin embargo, en el caso de la muestra B la variaci&oacute;n fue significativa.    </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n2/t0102212.gif" width="569" height="150"><a name="tab1"></a>      <P>&nbsp;     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></B>    </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">En el ensayo de determinaci&oacute;n de <I>Staphylococus    aureus</I> no se detect&oacute; su presencia durante el tiempo que dur&oacute;    el estudio, no result&oacute; as&iacute; para las enterobacterias, las cuales    estuvieron presentes por encima del valor m&aacute;ximo permisible (1 x 10<SUP>3    </SUP>ufc/g)<SUP>13</SUP> durante todo el ensayo. Si bien es deseable que el    material vegetal no contenga este tipo de bacterias, no debe ser rechazado teniendo    en cuenta 2 razones fundamentales: a) la corteza no se utilizar&aacute; como    producto final y b) la corteza vegetal es sometida a varios procesos de extracci&oacute;n    y concentraci&oacute;n que emplean temperaturas de hasta 110 &#176;C, en las    cuales las c&eacute;lulas vegetativas de bacterias, hongos y levaduras morir&aacute;n.<SUP>14</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Con respecto al conteo total de la cantidad de    microorganismos, el incremento se debe a su continua reproducci&oacute;n en    el tiempo, teniendo en cuenta que el contenido de humedad del material vegetal    fue disminuyendo durante el per&iacute;odo y la temperatura de las condiciones    de almacenamiento sufri&oacute; pocas variaciones. La humedad del material vegetal    almacenado en aire acondicionado disminuy&oacute; a mayor velocidad con respecto    a la almacenada a temperatura ambiental, durante los primeros 31 d lo hizo hasta    alcanzar un porcentaje de humedad estable (14 % para la condici&oacute;n A y    13 % para la B). La humedad del material vegetal no pudo continuar disminuyendo    por haber alcanzado quiz&aacute; la humedad de equilibrio para ambas condiciones    de almacenamiento. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">El comportamiento obtenido en la variaci&oacute;n    del pH es l&oacute;gico si se tiene en cuenta que en la medida que hay crecimiento    de microorganismos, se van produciendo desechos &aacute;cidos de su metabolismo,    los cuales son incorporados al extracto lo que hace que el valor de pH disminuya.    Es conocido que el intervalo de pH &oacute;ptimo de crecimiento de las bacterias    oscila entre 6,5 y 8, mientras que el de los hongos est&aacute; en el intervalo    &aacute;cido,<SUP>14</SUP> lo cual permite suponer que estos son los principales    contaminantes del material vegetal. No obstante, esta disminuci&oacute;n en    el valor del pH no afecta la estabilidad de los principales componentes del    ECAM, los que mayoritariamente se degradan en medio b&aacute;sico.<SUP>2</SUP>    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">El contenido de los s&oacute;lidos totales se    mantuvo dentro del intervalo de 3 %, establecido durante los estudios de ingenier&iacute;a    y confirmado en los estudios de extracci&oacute;n realizados al material vegetal.    <SUP>8,11</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los resultados en el contenido de mangiferina    permiten suponer que debido a la poca homogeneidad de la corteza vegetal cuando    fue envasada para conformar cada muestra, provoc&oacute; la diferencia en el    contenido de mangiferina. Sin embargo, el valor obtenido es similar al que se    alcanza en el proceso tecnol&oacute;gico<SUP> </SUP>(2,4 g/L),<SUP>8,11 </SUP>que    es la concentraci&oacute;n promedio obtenida para la relaci&oacute;n materia    vegetal/volumen de disolvente (1/12). Teniendo en cuenta los resultados se puede    plantear que si bien hay diferencias en el contenido de mangiferina al finalizar    el estudio, el valor se encuentra dentro de los intervalos de concentraci&oacute;n    de mangiferina permitidos en esquema tecnol&oacute;gico en la producci&oacute;n    del ECAM. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Estos resultados indican que no hay degradaci&oacute;n    de los componentes de la corteza, en particular de mangiferina, en las 2 condiciones    de almacenamiento estudiadas. No obstante, se recomienda procesar la corteza    de <I>Mangifera indica</I> L. antes de los 30 d de almacenamiento para evitar    que la carga microbiana que aparece despu&eacute;s de este tiempo, contribuya    al deterioro del material vegetal.</font>     <P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</font></B>    </font>      <P>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Wauthoz N, Balde A, Balde ES, Van Damme M,    Duez P. Ethnopharmacology of <I>Mangifera indica </I>L. and pharmacological    studies of its main c-glucosylxanthone, mangiferin. Intl J Biomed Pharma Sci.    2007;1(2):112-9.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s A, V&eacute;lez-Castro    H, Ag&uuml;ero-Ag&uuml;ero J, Gonz&aacute;lez-Gonz&aacute;lez J, Nadeo F, de    Simoni F, et al. Isolation and quantitative analysis of phenolic constituents,    free sugars, and polyols from mango (<I>Mangifera indica</I> L.) stem bark aqueous    decoction used in Cuba as nutritional supplement.<B> </B>J<FONT COLOR="#ff0000">    </FONT>Agric Food Chem. 2002;50:762-6.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Guevara-Garc&iacute;a M, Gonz&aacute;lez-Laime    S, &Aacute;lvarez-Le&oacute;n A, Ria&ntilde;o-Montalvo A, Garrido-Garrido G,    N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s AJ. Uso etnom&eacute;dico de la corteza de    <I>Mangifera indica</I> L. en Cuba. Rev Cubana Plant Med. 2004:9:1-9.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Miura T, Ichiki H, Hashimoto I, Iwamoto N,    Kato M, Kubo M, et al. Antidiabetic activity of a xanthone compound, mangiferin.    Phytomed. 2001;8:85-7.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Guha S, Ghosal S, Chattopadhyay U. Antitumor,    immunomodulatory and anti-HIV effect of mangiferin, a naturally occurring glucosylxanthone.    Chemotherapy. 1996;42:443-51.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Zhu XM, Song JX, Huang ZZ, Wu YM, Yu MJ. Antiviral    activity of mangiferin against herpes simplex virus type 2 in vitro. Chung Kuo    Yao Li Hseh Pho. 1993; 14: 452-4.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Sato T, Kawamoto A, Tamura A, Tatsumi Y, Fujii    T. 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<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Lauro Nuevas-Paz</I>. Laboratorio de Gen&eacute;tica    Bioqu&iacute;mica, Centro Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica. Calle 146    esq. 31. Cubanac&aacute;n, Playa. CP 11600. La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico:    <U><FONT  COLOR="#0000ff"><a href="mailto:lauro@cngen.sld.cu">lauro@cngen.sld.cu</a></FONT></U>    </font>       ]]></body><back>
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