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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antiinflamatoria, antioxidante y antibacteriana de dos especies del género Tabebuia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antiinflammatory, antioxidant and antibacterial activity of two species of Tabebuia genus]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Cartagena Facultad de Ciencias Farmacéuticas Grupo de Evaluación Biológica de Sustancias Promisorias]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Tabebuia rosea (Bertol.) A. DC. and Tabebuia ochracea (Cham.) Standl., belonging to the Bignoniaceae family, are widely used in folk medicine because of their antiinflammatory and antibacterial potentialities, all of which has prompted the chemical and biological study of these species. Objectives: to evaluate the antiinflammatory, antioxidant and antibacterial activity of the total ethanolic extracts and fractions obtained from the inner bark of Tabebuia rosea and Tabebuia ochracea by using ether, dichloromethane, ethyl acetate and ethanol. Methods: plant material was extracted through maceration with ethanol and fractionated through liquid-liquid partition method. The evaluation of antiinflammatory action used the 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate induced ear edema in mice, whereas the antioxidant and antibacterial activities were determined in vitro, using the 2,22 -diphenyl-1-picrylhydrazyl radical scavenging method and agar well diffusion method, respectively. Results: ethanol extracts from Tabebuia rosea and Tabebuia ochracea inner bark, as well as some of their fractions showed significant antiinflammatory and antioxidant activity, being generally Tabebuia rosea more active as antiinflammatory. Regarding the antioxidant activity Tabebuia ochracea proved to be more potent. Both Tabebuia species revealed significant antibacterial activity against Staphylococcus aureus ATCC 25923. Conclusions: it was proven that total extracts and fractions obtained from Tabebuia rosea and Tabebuia ochracea had antiinflammatory, free radical DPPH scavenging capacity, and antibacterial activity. This is the first report which validates the popular use of these species as antiinflammatory and antibacterial agents in the north coast of Colombia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</B> </font> </p>       <p>&nbsp;</p> </div>     <P>      <P><font size="4"><b><font face="Verdana">Actividad antiinflamatoria, antioxidante    y antibacteriana de dos especies del g&eacute;nero <I>Tabebuia</I> </font></b></font>     <P>&nbsp;     <P><b><font face="Verdana" size="3">Antiinflammatory, antioxidant and antibacterial    activity of two species of <i>Tabeb</i></font><font size="4"><b><font face="Verdana"><i><font size="3">uia</font></i></font></b></font><font face="Verdana" size="3">    genus</font></b>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><b><font face="Verdana" size="2">Dr. Luis Alberto Franco Ospina, Lic. Jenny    Paola Castro Guerrero, Lic. Yanet Cecilia Ocampo Buend&iacute;a, Lic. Indira    Beatriz P&aacute;jaro Bol&iacute;var, Dr. Fredyc D&iacute;az Castillo </font></b>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Universidad de Cartagena. Cartagena de Indias,    Colombia. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;  <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n:</b> <I>Tabebuia rosea</I>    (Bertol.) A. DC. y <I>Tabebuia ochracea</I> (Cham.) Standl., que pertenecen    a la familia Bignoniaceae, son utilizadas en la medicina popular por su potencial    farmacol&oacute;gico como antiinflamatorio y antibacteriano, lo que ha motivado    su estudio qu&iacute;mico y biol&oacute;gico. <B>    <br>   Objetivos:</B> determinar la actividad antiinflamatoria, antioxidante y antibacteriana    de extractos totales etan&oacute;licos y fracciones en &eacute;ter, diclorometano,    acetato de etilo y etanol, obtenidas a partir de la corteza interna de <I>Tabebuia    rosea</I> y <I>Tabebuia ochracea</I>. <B>    <br>   M&eacute;todos:</B> el material vegetal se extrajo por maceraci&oacute;n con    etanol y se fraccion&oacute; mediante procedimientos de partici&oacute;n l&iacute;quido/l&iacute;quido.    La actividad antiinflamatoria se evalu&oacute; utilizando el modelo murino <I>in    vivo</I> de edema auricular inducido por 13-acetato de 12-orto-tetradecanoilforbol,    mientras que la actividad antioxidante y antibacteriana se determin&oacute;    <I>in vitro</I>, utilizando el m&eacute;todo de captaci&oacute;n del radical    2,2-difenil-1-picrilhidrazilo y m&eacute;todos de difusi&oacute;n en agar, respectivamente.    <br>   <B>Resultados:</B> los extractos etan&oacute;licos de la corteza de <I>Tabebuia    rosea y Tabebuia ochracea</I>,<I> </I>as&iacute; como algunas de sus fracciones,    mostraron significativa actividad antiinflamatoria y antioxidante; en t&eacute;rminos    generales <I>Tabebuia rosea</I> result&oacute; m&aacute;s activa como antiinflamatoria,    mientras que en cuanto a la actividad antioxidante <I>Tabebuia ochracea </I>mostr&oacute;    ser m&aacute;s potente. Ambas especies de <I>Tabebuia </I>presentaron importante    actividad antibacteriana frente a <I>Staphylococcus aureus </I>ATCC25923. <B>    <br>   Conclusiones:</B> se demostr&oacute; actividad antiinflamatoria, captadora de    radicales libres 2,2-difenil-1-picrilhidrazilo y antibacteriana, en extractos    totales y fracciones obtenidas de <I>Tabebuia rosea</I> y <I>Tabebuia ochracea.    </I>Este constituye el primer reporte que valida el uso popular dado a estas    especies como antiinflamatorio y antibacteriano, en la costa norte colombiana.    </font>  <B></B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave:</B> <I>Tabebuia</I>, antiinflamatorios,    antioxidantes, antibacterianos<I>.</I> </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT </B></font>     <p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Introduction:</b> <i>Tabebuia rosea</i> (Bertol.)    A. DC. and <i>Tabebuia ochracea</i> (Cham.) Standl., belonging to the Bignoniaceae    family, are widely used in folk medicine because of their antiinflammatory and    antibacterial potentialities, all of which has prompted the chemical and biological    study of these species. <b>    <br>   Objectives:</b> to evaluate the antiinflammatory, antioxidant and antibacterial    activity of the total ethanolic extracts and fractions obtained from the inner    bark of <i>Tabebuia rosea</i> and <i>Tabebuia ochracea</i> by using ether, dichloromethane,    ethyl acetate and ethanol. <b>    <br>   Methods:</b> plant material was extracted through maceration with ethanol and    fractionated through liquid-liquid partition method. The evaluation of antiinflammatory    action used the 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate induced ear edema in mice,    whereas the antioxidant and antibacterial activities were determined <i>in vitro,    </i>using the 2,22 -diphenyl-1-picrylhydrazyl radical scavenging method and    agar well diffusion method, respectively. <b>    <br>   Results:</b> ethanol extracts from <i>Tabebuia rosea</i> and <i>Tabebuia ochracea</i>    inner bark, as well as some of their fractions showed significant antiinflammatory    and antioxidant activity, being generally <i>Tabebuia rosea</i> more active    as antiinflammatory. Regarding the antioxidant activity <i>Tabebuia ochracea</i>    proved to be more potent. Both <i>Tabebuia</i> species revealed significant    antibacterial activity against <i>Staphylococcus aureus </i>ATCC 25923. <b>    <br>   Conclusions:</b> it was proven that total extracts and fractions obtained from    <i>Tabebuia rosea</i> and <i>Tabebuia ochracea</i> had antiinflammatory, free    radical DPPH scavenging capacity, and antibacterial activity. This is the first    report which validates the popular use of these species as antiinflammatory    and antibacterial agents in the north coast of Colombia. </font>      <p>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Tabebuia</i>, antiinflammatory    agents, antioxidants, anti-bacterial agents. </font>  <font face="Verdana" size="2"> </font>  <hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b> </font> <B></B> </p>     <P><font face="Verdana" size="2">La inflamaci&oacute;n es la respuesta fisiol&oacute;gica    de defensa del organismo a est&iacute;mulos nocivos, como los pat&oacute;genos,    las c&eacute;lulas da&ntilde;adas, los traumas f&iacute;sicos o irritantes;<SUP>1</SUP>    se trata de un proceso complejo que involucra la acci&oacute;n coordinada de    m&uacute;ltiples c&eacute;lulas, caracterizado por alteraciones en la permeabilidad    vascular y la producci&oacute;n de mediadores inflamatorios locales, como esteroides,    prostaglandinas, citocinas, quimiocinas, factores de crecimiento y especies    reactivas de ox&iacute;geno (ERO).<SUP>2,3</SUP> La sobreproducci&oacute;n de    estas &uacute;ltimas puede inducir estr&eacute;s oxidativo y generar da&ntilde;os    a nivel celular, que promueven la aparici&oacute;n de enfermedades cr&oacute;nicas.<SUP>4,5</SUP>    En las enfermedades infecciosas, la inflamaci&oacute;n es una respuesta fundamental    en la defensa del hu&eacute;sped, la eliminaci&oacute;n del agente pat&oacute;geno    y en la reparaci&oacute;n y normalizaci&oacute;n de las funciones del tejido,<SUP>6</SUP>    sin embargo, m&uacute;ltiples enfermedades que evolucionan con procesos infecciosos    como la fibrosis qu&iacute;stica,<SUP>7-9</SUP> sinusitis,<SUP>10</SUP> bronquitis,<SUP>11</SUP>    prostatitis,<SUP>12-14</SUP> el colon irritable,<SUP>15</SUP> as&iacute; como    las que se desarrollan a nivel periodontal,<SUP>16</SUP> y del tracto gastrointestinal;<SUP>17</SUP>    involucran respuestas inflamatorias sostenidas que generan efectos potencialmente    nocivos que agravan en gran medida las condiciones patol&oacute;gicas. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El g&eacute;nero <I>Tabebuia</I> est&aacute;    compuesto por alrededor de 100 especies estrictamente le&ntilde;osas pertenecientes    a la familia Bignoniaceae. Su distribuci&oacute;n abarca grandes regiones del    tr&oacute;pico y subtr&oacute;pico americano. En Sudam&eacute;rica, este g&eacute;nero    es conocido por la calidad de la madera que se obtiene de algunas de sus especies;    asimismo, debe se&ntilde;alarse que las sustancias qu&iacute;micas extra&iacute;das    de la corteza y madera de algunas especies de este g&eacute;nero tienen gran    potencial farmacol&oacute;gico, con amplia utilizaci&oacute;n en la medicina    popular como antif&uacute;ngica, antiparasitaria, antineopl&aacute;sica, analg&eacute;sica,    antibacteriana y antiinflamatoria,<SUP>18,19</SUP> las cuales han sido evaluadas    experimentalmente por diversos grupos de investigaci&oacute;n.<SUP>20-28</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En el presente trabajo se evalu&oacute; la actividad    antiinflamatoria, antioxidante y antibacteriana de los extractos totales y las    fracciones en &eacute;ter, diclorometano, acetato de etilo y etanol obtenidas    de las cortezas internas de <I>Tabebuia rosea</I> y <I>Tabebuia ochracea</I>.    </font>     <P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>M&Eacute;TODOS</B></font><font face="Verdana" size="2">    </font>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><I>Materiales y reactivos</I>: 2,2-difenil-1-picrilhidrazilo    (DPPH), 13-acetato de 12-orto-tetradecanoilforbol (TPA) e indometacina se adquirieron    de Sigma-Aldrich; &aacute;cido asc&oacute;rbico, sulfato de gentamicina, solventes:    &eacute;ter de petr&oacute;leo, diclorometano, acetato de etilo, dimetilsulf&oacute;xido    y etanol de Merck. Caldos y medios de cultivo, agar Mueller Hinton y caldo tripticasa    soya de Scharlau. Las cepas de estudio se adquirieron de la <I>American Type    Culture Collection</I> (ATCC) y correspondieronn a: <I>Staphylococcus aureus</I>    25923, <I>Escherichia coli</I> 25922 y <I>Pseudomonas aeruginosa </I>27853.    </font>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Animales de experimentaci&oacute;n</I>:<B>    </B>como reactivo biol&oacute;gico se utilizaron ratones ICR hembras (6-7 semanas    de edad), con pesos alrededor de 25 g, suministrados por el Instituto Nacional    de Salud de Colombia. Los animales se mantuvieron con ciclos de 12 h de luz/oscuridad,    temperatura de 22 &#177; 3 &#186;C y humedad relativa 45 &#177; 5 %, con agua    y alimento <I>ad libitum</I>. Los experimentos se realizaron de acuerdo con    los lineamientos del Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Universidad de Cartagena-Colombia    y la normatividad nacional e internacional para el cuidado y uso de animales    de experimentaci&oacute;n. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Material vegetal</I>: las cortezas internas    de <I>T. ochracea</I> y <I>T. rosea </I>se recolectaron en el municipio de Turbaco    (Bol&iacute;var), se identificaron en el Jard&iacute;n Bot&aacute;nico &quot;Guillermo    Pi&ntilde;eres&quot; de la ciudad de Cartagena, con los registros N&#186; 57477    y N&#186; 518912, respectivamente. </font>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Extracci&oacute;n del material vegetal</I>:    el material vegetal seco y pulverizado de <I>T. rosea </I>y <I>T. ochracea</I>    se extrajo por maceraci&oacute;n con etanol 96 % hasta agotamiento. Los extractos    totales obtenidos se concentraron a presi&oacute;n reducida utilizando calentamiento    suave y despu&eacute;s se fraccionaron mediante procesos de partici&oacute;n    l&iacute;quido/l&iacute;quido con &eacute;ter de petr&oacute;leo, diclorometano,    acetato de etilo y etanol, sucesivamente, obteni&eacute;ndose las respectivas    fracciones. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Actividad antiinflamatoria</I>: la actividad    antiinflamatoria de los extractos y las fracciones de las especies de <I>Tabebuia    </I>se determin&oacute; utilizando el modelo murino <I>in vivo</I> de edema    auricular inducido por TPA.<SUP>29,30</SUP> Brevemente, una soluci&oacute;n    en acetona de 13-acetato-12-O-tetradecanoilforbol (0,125 mg/L), se aplic&oacute;    de manera t&oacute;pica sobre la superficie interna y externa de la oreja derecha    del animal (10 &micro;L/lado) para inducir la inflamaci&oacute;n. Las sustancias    en estudio (1 mg/oreja) y la indometacina (0,5 mg/oreja) disueltas en acetona    se aplicaron sobre la superficie interna y externa de la oreja derecha de rat&oacute;n,    inmediatamente antes de la administraci&oacute;n del TPA. Despu&eacute;s de    4 h de la administraci&oacute;n del agente irritante, los animales se sacrificaron    por dislocaci&oacute;n cervical y se tomaron secciones circulares (7 mm de di&aacute;metro)    de ambas orejas (tratada y no tratada), las cuales se pesaron determin&aacute;ndose    el edema como el delta de peso.<SUP>31</SUP> Los resultados se expresan como    este delta y como porcentaje de inhibici&oacute;n frente al grupo control, utilizando    la <a href="#fo1">expresi&oacute;n</a> siguiente:</font>      <P><img src=/img/revistas/pla/v18n1/fo0106113.gif" width="421" height="53"><a name="fo1"></a>      
<P><font face="Verdana" size="2">Donde:</font>     <P><font face="Verdana" size="2"> Pt es el peso de la secci&oacute;n de la oreja    tratada y Pnt es el peso de la secci&oacute;n de la oreja no tratada. </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Determinaci&oacute;n de la actividad antioxidante</I>    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2">La actividad antioxidante se determin&oacute;    midiendo la reducci&oacute;n del radical libre DPPH con el m&eacute;todo descrito    por <I>Silva </I>y otros,<SUP>32</SUP> con modificaciones. En cada uno de los    pozos de una microplaca de 96, se adicionaron 75 &#181;L de los extractos y    fracciones de las especies de <I>Tabebuia </I>en estudio y 150 &#181;L de soluci&oacute;n    metan&oacute;lica de DPPH (100 &#181;g/mL). La reacci&oacute;n se llev&oacute;    a cabo a temperatura ambiente por un per&iacute;odo de 30 min, luego se determin&oacute;    con espectrofot&oacute;metro la desaparici&oacute;n del radical DPPH en lector    de microplacas (Multiscan EX Thermo<SUP>&#174;</SUP>) a densidad &oacute;ptica    de 550 nm. Como control positivo se utiliz&oacute; &aacute;cido asc&oacute;rbico    (25 &#181;g/mL), y en el control negativo de captaci&oacute;n se utiliz&oacute;    el veh&iacute;culo usado para disolver la muestra. El porcentaje de captaci&oacute;n    del radical DPPH se calcul&oacute; utilizando la <a href="#fo2">expresi&oacute;n</a>    siguiente:<SUP>33</SUP> </font>      <P><img src=/img/revistas/pla/v18n1/fo0206113.gif" width="316" height="56"><a name="fo2"></a>      
<P><font face="Verdana" size="2">Donde: </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Ab DPPH: absorbancia del control negativo, AbM:    absorbancia de la muestra, y AbB: absorbancia del blanco de muestra. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La actividad captadora de los extractos y las    fracciones se expres&oacute; en t&eacute;rminos de la concentraci&oacute;n necesaria    para disminuir la absorci&oacute;n inicial de DPPH en 50 % (IC<SUB>50</SUB>).    </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Actividad antibacteriana</I>:<B> </B>la actividad    antibacteriana <I>in vitro</I> de los extractos y fracciones de las especies    de <I>Tabebuia </I>en estudio se evalu&oacute; frente a las cepas: <I>Staphylococcus    aureus </I>ATCC 25923, <I>Escherichia coli </I>ATCC 25922 y <I>Pseudomonas aeruginosa    </I>ATCC 27853, mediante el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en agar descrito    por <I>Mitscher </I>y otros.<SUP>34</SUP> Brevemente, 20 mL de agar Mueller    Hinton se solidific&oacute; en cajas Petri mediante una perforaci&oacute;n central    de 1 cm de di&aacute;metro; se le adicionaron diluciones en DMSO de los extractos    y fracciones de<I> Tabebuia </I>(10 mg/pozo), utilizando sulfato de gentamicina    (60 &#181;g/pozo) como control positivo de actividad y DMSO (50 &#181;L) como    control negativo. Para permitir una adecuada difusi&oacute;n de las muestras,    las cajas se refrigeraron a 10 &#186;C por 24 h antes de la siembra de las suspensiones    bacterianas en caldo tripticasa soya a turbidez equivalente a 0,5 en la escala    de McFarland. A continuaci&oacute;n, las cajas se incubaron a 35 &#177; 2 &#186;C    durante 24 h y se determin&oacute; el efecto midiendo los halos de inhibici&oacute;n    del crecimiento bacteriano. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Posteriormente, para establecer la concentraci&oacute;n    cr&iacute;tica, se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en agar    descrito por <I>Bauer </I>y otros,<SUP>35</SUP> el cual se realiz&oacute; de    manera similar al ensayo de <I>Mistcher</I> previamente descrito, con la diferencia    de que en este caso se realizaron 4 pozos en cada caja de Petri, en los cuales    se depositaron las muestras a evaluar a las concentraciones siguientes: 10;    5; 2,5; 1,25; 0,625; 0,312; 0,156 y 0,078 mg/pozo. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</I>:<B>    </B>los resultados correspondientes a 3 ensayos independientes se expresaron    como el promedio &#177; error est&aacute;ndar medio y analizados mediante an&aacute;lisis    de varianza de una v&iacute;a (ANOVA), seguido de <I>Dunnet</I> o <I>Tukey post    hoc</I> para comparaciones m&uacute;ltiples. Valores de p&lt; 0,05 se consideraron    significativos. Los valores de IC<SUB>50 </SUB>calculados en la actividad antioxidante    se determinaron mediante an&aacute;lisis de regresi&oacute;n lineal y se expresaron    como la media con sus respectivos intervalos de confianza al 95 %. </font>     <P>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS</B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Actividad antiinflamatoria</I>: la aplicaci&oacute;n    t&oacute;pica del TPA provoc&oacute; una fuerte irritaci&oacute;n e inflamaci&oacute;n    de la oreja del rat&oacute;n, la cual es disminuida de manera significativa    por la indometacina (p&lt; 0,001) (<a href=/img/revistas/pla/v18n1/t0106113.gif">tabla 1</a>). Los    extractos totales de <I>T. rosea </I>y <I>T. ochracea</I>, presentaron significativa    actividad antiinflamatoria en este modelo, el extracto total de <I>T. rosea</I>    result&oacute; m&aacute;s activo que el de <I>T. ochracea</I>. Esa actividad    se mantiene en varias fracciones obtenidas de ambas especies, con excepci&oacute;n    de la fracci&oacute;n en acetato de etilo de <I>T. ochracea</I>, que se observa    una distribuci&oacute;n de los activos en casi todo el rango de polaridad evaluado.    No obstante, existe una mayor concentraci&oacute;n de los metabolitos antiinflamatorios    en las fracciones de baja (&eacute;ter) y mediana (diclorometano) polaridad    de las 2 especies. Es importante resaltar la potente actividad antiinflamatoria    observada en las fracciones en diclorometano y acetato de etilo de <I>T. rosea,</I>    con porcentajes de inhibici&oacute;n de 50,1 y 44,4 %, los cuales no difieren    estad&iacute;sticamente del valor presentado por la indometacina usada como    referencia y sugieren la presencia de potentes metabolitos secundarios en estas.    </font>      
<P><font face="Verdana" size="2"><I>Actividad antioxidante</I>: los extractos    y fracciones de las especies de <I>Tabebuia</I> evaluadas presentaron actividad    captadora de radicales libres DPPH de manera concentraci&oacute;n dependiente,    con el extracto total de <I>T. ochracea</I> aproximadamente 11 veces m&aacute;s    potente que el de <I>T. rosea, </I>por lo que se presenta como un extracto promisorio    para el aislamiento de sustancias activas con propiedades antioxidantes, porque    se trata de un extracto total constituido por numerosas sustancias (<a href=/img/revistas/pla/v18n1/t0206113.gif">tabla    2</a>). El fraccionamiento de los extractos totales de las especies de <I>Tabebuia    </I>en estudio, conduce a un significativo incremento en la actividad captadora    de los radicales libres DPPH como consecuencia del enriquecimiento de los compuestos    activos; se observa una potente actividad barredora en las fracciones en etanol    y acetato de etilo de <I>T. ochracea</I>, y en las fracciones en diclorometano    y acetato de etilo de <I>T. rosea</I>. Esas fracciones constituyen una prometedora    fuente para la b&uacute;squeda de mol&eacute;culas captadoras de radicales libres    que podr&iacute;an ser potenciales agentes antioxidantes y por lo tanto deben    continuar siendo exploradas. </font>      
<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Actividad antibacteriana</I> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Los resultados de la evaluaci&oacute;n de la    actividad antibacteriana que se presentan en la <a href=/img/revistas/pla/v18n1/t0306113.gif">tabla    3</a>, muestran que <I>Staphylococcus aureus</I> ATCC 25923 result&oacute; la    &uacute;nica cepa sensible al efecto de extractos totales y fracciones en diclorometano    y acetato de etilo de las especies de <I>Tabebuia</I> en estudio; se resalta    la potente actividad presentada por las fracciones en acetato de etilo de ambas    especies, con valores de inhibici&oacute;n similares a los mostrados por la    gentamicina utilizada como control positivo de actividad. En funci&oacute;n    de estos resultados, se determin&oacute; la concentraci&oacute;n cr&iacute;tica    en los extractos totales y las fracciones en acetato de etilo, utilizando el    m&eacute;todo de Bauer; se encontr&oacute; una concentraci&oacute;n cr&iacute;tica    de 10 mg/pozo para los extractos totales, mientras que las fracciones en acetato    de etilo de ambas especies exhibieron una potente actividad antibacteriana a    concentraciones de 10 y 5 mg/pozo, con grandes y uniformes halos de inhibici&oacute;n,    los cuales contin&uacute;an siendo significativos a 2,5 y 1,25 mg/pozo, de tal    forma que la concentraci&oacute;n cr&iacute;tica para ambas fracciones es de    1,25 mg/pozo (<a href=/img/revistas/pla/v18n1/t0406113.gif">tabla 4</a>). </font>      
<P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>DISCUSI&Oacute;N</B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">El modelo de edema auricular inducido por TPA    es ampliamente utilizado para evaluar la actividad antiinflamatoria en extractos    y fracciones de productos naturales; la aplicaci&oacute;n t&oacute;pica del    TPA en la oreja del rat&oacute;n induce una inflamaci&oacute;n cut&aacute;nea,    consistente en edema, hiperplasia epid&eacute;rmica, sobreproducci&oacute;n    de mediadores inflamatorios como TNF-alfa, IL-1, IL-6 y COX-2,<SUP>36</SUP>    as&iacute; como especies reactivas de ox&iacute;geno y nitr&oacute;geno, que    provocan estr&eacute;s oxidativo, el cual amplifica el da&ntilde;o cut&aacute;neo    inducido por TPA.<SUP>37</SUP> En este estudio se evalu&oacute; la actividad    antiinflamatoria de extractos totales y fracciones primarias obtenidas de la    corteza interna de <I>T. rosea </I>y <I>T. ochracea</I>, encontrando que los    extractos totales de ambas especies de <I>Tabebuia</I> exhiben una importante    actividad antiinflamatoria que se mantiene en sus fracciones, las cuales presentan    distintos valores de polaridad y sugiere la presencia de compuestos estructuralmente    diferentes que podr&iacute;an actuar por diversos mecanismos, contribuyendo    de manera aditiva al efecto antiinflamatorio global observado <I>in vivo</I>.    Este enriquecimiento de activos es particularmente evidente para <I>T. rosea</I>,    en la cual el extracto total presenta casi la mitad del efecto antiinflamatorio    observado para la indometacina, pero sus fracciones en diclorometano y acetato    de etilo presentan valores de inhibici&oacute;n similares a esta, lo que se    considera promisorio teniendo en cuenta que se trata de fracciones primarias    constituidas por numerosos compuestos. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las especies del g&eacute;nero<I> Tabebuia</I>    son utilizadas en la medicina popular por sus propiedades antiinflamatorias,<SUP>19</SUP>    encontr&aacute;ndose reportes que validan este uso en las especies <I>T. avellanedae,    T. impetiginosa </I>y<I> T. chrysanta</I>.<SUP>27,38,39</SUP> Para <I>Tabebuia    ochracea </I>y <I>Tabebuia rosea </I>no se encuentran estudios que eval&uacute;en    esta actividad, de tal manera que este trabajo constituye el primero que demuestra    actividad antiinflamatoria en esas especies<I>.</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La acci&oacute;n captadora de radicales libres    generados en los procesos inflamatorios, se considera uno de los tantos mecanismos    de acci&oacute;n mediante los cuales una sustancia puede ejercer un efecto antiinflamatorio.<SUP>4,40</SUP>    En este estudio, la actividad captadora de radicales libres quiz&aacute; no    est&aacute; relacionada con el efecto antiinflamatorio mostrado por los extractos    y las fracciones de <I>Tabebuia rosea</I> y <I>T. ochracea</I>, porque esta    &uacute;ltima a pesar de tener una mayor actividad captadora de los radicales    DPPH, mostr&oacute; menor actividad antiinflamatoria. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los extractos y las fracciones de <I>T. ochracea    </I>y <I>T. rosea </I>presentaron importante actividad antibacteriana, que inhibe    el crecimiento de <I>Staphylococcus aureus, </I>coco grampositivo, causante    de m&uacute;ltiples infecciones y con creciente resistencia a los antibi&oacute;ticos    de uso com&uacute;n; en la actualidad se estima que de 50 a 90 % de las cepas    aisladas presentan resistencia a oxacilina y meticilina, y muchas a vancomicina.<SUP>41-43</SUP>    La actividad antibacteriana mostrada en este trabajo por los extractos y las    fracciones que se obtuvieron de la corteza interna de <I>T. rosea</I> frente    a <I>S. aureus</I>, quiz&aacute; est&aacute; relacionada con la presencia de    compuestos de naturaleza quinoidal, aislados e identificados en extractos de    diferentes especies de <I>Tabebuia</I>,<SUP>44,45</SUP> los cuales han mostrado    actividad frente a cepas de <I>S. aureus</I>.<SUP>46</SUP> </font>      <P><font face="Verdana" size="2">La actividad antibacteriana mostrada por <I>T.    rosea </I>se complementa con la reportada para el extracto total de las hojas    de esta especie por <I>Sathiya</I> y <I>Muthuchelian</I>,<SUP>47</SUP> y para    los extractos totales de las hojas y cortezas reportadas por <I>Binutu</I> y    <I>Lajubutu</I>.<SUP>48</SUP> Mientras que para <I>T. ochracea</I> no se encuentran    reportes de actividad antibacteriana, que validen el uso popular dado a esta    especie de <I>Tabebuia</I>. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Los promisorios resultados en este trabajo presentan    a estas especies de<I> Tabebuia </I>como alternativas terap&eacute;uticas para    la prevenci&oacute;n y el tratamiento de diversas infecciones causadas por <I>S.    aureus</I>, espec&iacute;ficamente las fracciones en acetato de etilo de ambas    especies. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En este estudio se demostr&oacute; actividad    antiinflamatoria y antibacteriana en extractos totales obtenidos de <I>T. rosea</I>    y <I>T. ochracea,</I> que validan de esta manera su uso en la medicina popular,    lo cual constituye el primer reporte de actividad antiinflamatoria y antioxidante    en estas 2 especies de <I>Tabebuia</I> y el primero de actividad antibacteriana    en <I>T. ochracea</I>. Las fracciones obtenidas de estas especies que mostraron    promisoria actividad antiinflamatoria, antioxidante y antibacteriana, constituyen    la base de posteriores estudios encaminados a aislar, purificar y caracterizar    los compuestos responsables de estas actividades, as&iacute; como plantear posibles    mecanismos de acci&oacute;n implicados en sus efectos farmacol&oacute;gicos.</font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>AGRADECIMIENTOS </B></font><font face="Verdana" size="2">    </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">A la Universidad de Cartagena y al Hospital Universitario    del Caribe (Cartagena-Colombia) por el apoyo financiero e institucional recibido,    sin los cuales el desarrollo de este trabajo no hubiera sido posible. Tambi&eacute;n    agradecen la valiosa colaboraci&oacute;n de los estudiantes Harold Manolin Castro    Pupo y German Crist&oacute;bal Vel&aacute;squez Jaimes del programa de Qu&iacute;mica    Farmac&eacute;utica de la Universidad de Cartagena. </font>     <P>&nbsp;      <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Bayarsaihan D. Epigenetic mechanisms in inflammation.    J Dent Res. 2011;90(1):9-17.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Hutchinson JL, Rajagopal SP, Sales KJ, Jabbour    HN. Molecular regulators of resolution of inflammation: potential therapeutic    targets in the reproductive system. Reproduction. 2011;142(1):15-28.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Chow JM, Shen SC, Huan SK, Lin HY, Chen YC.    Quercetin, but not rutin and quercitrin, prevention of H2O2-induced apoptosis    via anti-oxidant activity and heme oxygenase 1 gene expression in macrophages.    Biochemical pharmacology. 2005;69(12):1839-51.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Cui XY, Kim JH, Zhao X, Chen BQ, Lee BC, Pyo    HB, et al. Antioxidative and acute anti-inflammatory effects of Campsis grandiflora    flower. J Ethnopharmacol. 2006;103(2):223-8.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Naik E, Dixit VM. Mitochondrial reactive oxygen    species drive proinflammatory cytokine production. J Exp Med. 2011;208(3):417-20.        </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Perry VH, Cunningham C, Holmes C. Systemic    infections and inflammation affect chronic neurodegeneration. Nat Rev Immunol.    2007;7(2):161-7.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Fayon M. CF-Emerging therapies: Modulation    inflammation. Paediatr Respir Rev. 2006;7 Suppl 1:S170-4.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">8. Heijerman H. Infection and inflammation in    cystic fibrosis: a short review. J Cyst Fibros. 2005;4 Suppl 2:3-5.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9. Sagel SD, Gibson RL, Emerson J, McNamara S,    Burns JL, Wagener JS, et al. Impact of Pseudomonas and Staphylococcus infection    on inflammation and clinical status in young children with cystic fibrosis.    J Pediatr. 2009;154(2):183-8.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10. Chen HH, Liu X, Ni C, Lu YP, Xiong GY, Lu    YY, et al. Bacterial biofilms in chronic rhinosinusitis and their relationship    with inflammation severity. Auris Nasus Larynx. 2012;39(2):169-74.     </font>     ]]></body>
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