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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad espermicida y citotóxica del extracto de Sapindus saponaria L. (jaboncillo)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of the spermicidal and cytotoxic activity of extracts of Sapindus saponaria L. (jaboncillo)]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Grupo Reproducción ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: spermicides are contraceptive methods aimed at either immobilizing or killing spermatozoa. Objective: evaluate the spermicidal and cytotoxic activity of extracts of Sapindus saponaria L. (jaboncillo) on human spermatozoa and the HeLa cell line, respectively. Methods: semen samples from healthy individuals were incubated with extracts of Sapindus saponaria L. and their fractions. Sperm motility and viability were measured before and after each treatment. Additionally, the cytotoxic effect of the extract on the HeLa cell line was assessed by the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-5-(3-carboxy methoxy phenyl)-2-(4-sulfophenyl)-2H-tetrazolium MTS assay. Results: maximum spermicidal effect was observed when semen samples were incubated with the polar fraction of Sapindus saponaria L. leaf extract after 5 minutes of treatment (p< 0.05). No cytotoxic effect on the HeLa cell line was found after 6 and 12 hours of treatment with the polar fraction of the leaf extract. Conclusion: the extract of Sapindus saponaria L. may be a new spermicidal option with fewer adverse effects.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Sapindus saponaria L]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[espermatozoide]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">     <p><font face="Verdana" size="2"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL  </B></font></p>    <p>&nbsp;</p></div><B>     <P> </B>     <P><font size="4"><b><font face="Verdana">Actividad  espermicida y citot&oacute;xica del extracto de <I>Sapindus saponaria </I>L.<I>  </I>(jaboncillo)</font></b></font>     <P>&nbsp;     <P><b><font face="Verdana" size="3">Evaluation  of the spermicidal and cytotoxic activity of extracts of <i>Sapindus saponaria  </i>L. (jaboncillo) </font></b>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P>     <P>     <P>     <P><b><font face="Verdana" size="2">Dra.  Luisa Ospina Medina, Dra. &Aacute;ngela &Aacute;lvarez G&oacute;mez, Dr. V&iacute;ctor  Arango Valencia, Dra. &Aacute;ngela Cadavid Jaramillo, Prof. Walter Cardona Maya</font></b>      <P><font face="Verdana" size="2">Grupo de Reproducci&oacute;n. Universidad de  Antioquia, Colombia. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN</B></font>      <p><B> </B><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n:</b> los espermicidas  est&aacute;n entre los m&eacute;todos anticonceptivos que pueden inmovilizar o  matar los espermatozoides. <B>    <br> Objetivo:</B> evaluar la actividad espermicida  y citot&oacute;xica de los extractos de <I>Sapindus saponaria </I>L., conocida  como jaboncillo, sobre espermatozoides humanos y la l&iacute;nea celular HeLa,  respectivamente. <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> M&eacute;todos:</B> las muestras de semen donadas por  individuos sanos se incubaron con los extractos de <I>Sapindus saponaria </I>L.  y sus respectivas fracciones. La movilidad y la viabilidad esperm&aacute;tica  se evalu&oacute; antes y despu&eacute;s de cada tratamiento. Adicionalmente, el  efecto citot&oacute;xico del extracto se valor&oacute; sobre la l&iacute;nea celular  HeLa mediante el ensayo 3-(4,5 dimetiltiazol-2-il)-5-(3-carboximetoxifenil)-2-(4-sulfofenil)-2H-tetrazolio  (MTS). <B>    <br> Resultados:</B> el m&aacute;ximo efecto espermicida se observ&oacute;  cuando las muestras de semen se incubaron con la fracci&oacute;n polar del extracto  de hojas de <I>Sapindus saponaria </I>L., luego de 5 min de tratamiento (p&lt;  0,05). No se encontr&oacute; efecto citot&oacute;xico en la l&iacute;nea celular  HeLa luego de 6 y 12 h de tratamiento con la fracci&oacute;n polar del extracto  de hojas. <B>    <br> Conclusi&oacute;n:</B> el extracto de <I>Sapindus saponaria  </I>L.<I> </I>puede ser una nueva opci&oacute;n como espermicida con menos efectos  adversos. </font> </p><B></B>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras  clave: </B><I>Sapindus saponaria </I>L<I>., </I>espermatozoide, capacitaci&oacute;n  esperm&aacute;tica, actividad espermicida. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT</B></font>      <p><font face="Verdana" size="2"><b>Introduction:</b> spermicides are contraceptive  methods aimed at either immobilizing or killing spermatozoa. <b>    <br> Objective:</b>  evaluate the spermicidal and cytotoxic activity of extracts of <i>Sapindus saponaria  </i>L. (<i>jaboncillo</i>) on human spermatozoa and the HeLa cell line, respectively.  <b>    <br> Methods:</b> semen samples from healthy individuals were incubated with  extracts of <i>Sapindus saponaria </i>L. and their fractions. Sperm motility and  viability were measured before and after each treatment. Additionally, the cytotoxic  effect of the extract on the HeLa cell line was assessed by the 3<font color="#222222">-(</font>4<font  color="#222222">,</font>5<font  color="#222222">-</font>dimethylthiazol<font  color="#222222">-</font>2<font  color="#222222">-</font>yl<font  color="#222222">)-</font>5<font  color="#222222">-(</font>3<font  color="#222222">-</font>carboxy<font  color="#222222"> methoxy phenyl)-</font>2<font  color="#222222">-(</font>4<font  color="#222222">-</font>sulfophenyl<font  color="#222222">)-</font>2H<font  color="#222222">-</font>tetrazolium MTS assay. <b>    <br> Results:</b> maximum spermicidal  effect was observed when semen samples were incubated with the polar fraction  of <i>Sapindus saponaria </i>L. leaf extract after 5 minutes of treatment (p&lt;  0.05). No cytotoxic effect on the HeLa cell line was found after 6 and 12 hours  of treatment with the polar fraction of the leaf extract. <b>    <br> Conclusion:</b>  the extract of <i>Sapindus saponaria </i>L. may be a new spermicidal option with  fewer adverse effects. </font> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b>Key words:  </b><i>Sapindus saponaria </i>L<i>., </i>spermatozoon, sperm capacitation, spermicidal  activity. </font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font face="Verdana" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font>  </p><B></B>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">En la actualidad, a pesar que  se encuentra una amplia variedad de espermicidas, es importante encaminar la investigaci&oacute;n  a la b&uacute;squeda de nuevas opciones que tengan una funci&oacute;n preventiva  frente a los embarazos no deseados y las infecciones de transmisi&oacute;n sexual,  pero que adicionalmente no presenten un efecto citot&oacute;xico contra las c&eacute;lulas  del epitelio vaginal.<SUP>1</SUP> En esa b&uacute;squeda se ha encontrado que  diferentes extractos de plantas y frutos tienen capacidad de inmovilizar o matar  los espermatozoides humanos,<SUP>2</SUP> como es el caso del extracto de <I>Passiflora  edulis</I>, el cual adem&aacute;s de su efecto espermicida, no present&oacute;  un efecto citot&oacute;xico sobre c&eacute;lulas epiteliales.<SUP>3</SUP> Adicionalmente,  se ha demostrado que el jugo del lim&oacute;n tiene efecto espermicida,<SUP>4</SUP>  as&iacute; como el pigmento natural presente en la planta <I>Curcuma longa</I>,  que adem&aacute;s de tener efectos antitumorales y antiinflamatorios, aumenta  a 100 % el porcentaje de espermatozoides inm&oacute;viles a los 60 min de exposici&oacute;n;<SUP>5</SUP>  los extractos de <I>Aloe barbadensis</I><SUP>6</SUP> y <I>Pongamia glabra</I><SUP>7</SUP>  presentan tambi&eacute;n efecto espermicida. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Distribuida  desde EE. UU. hasta Argentina<SUP>8,9</SUP> se encuentra la planta <I>Sapindus  saponaria</I> L., com&uacute;nmente conocida como jaboncillo o pepo, la cual tiene  una abundante cantidad de saponinas,<SUP>9</SUP> sustancias que conforman un grupo  de gluc&oacute;sidos con amplias variedades estructurales que le otorgan propiedades  biol&oacute;gicas como detergentes<SUP>10,11</SUP> y surfactantes.<SUP>12</SUP>  Las plantas del g&eacute;nero <I>Sapindus </I>son conocidas por sus m&uacute;ltiples  usos como antirreum&aacute;ticos, antihelm&iacute;nticos y por su utilizaci&oacute;n  como t&oacute;nicos.<SUP>13</SUP> Paralelamente, se ha determinado que de las  semillas de <I>Sapindus saponaria </I>L. se puede extraer aceite comestible que  contiene omega 3, 6 y 9 y &aacute;cidos grasos insaturados.<SUP>11</SUP> Teniendo  en cuenta estas propiedades, resulta interesante la evaluaci&oacute;n del extracto  de la planta como un m&eacute;todo anticonceptivo. Los m&eacute;todos anticonceptivos  son definidos como sustancias o productos que inhiben la producci&oacute;n o movilidad  esperm&aacute;tica, que previenen la formaci&oacute;n de un oocito o que pueden  alterar el endometrio para hacerlo no receptivo a un oocito fecundado.<SUP>14</SUP>  Espec&iacute;ficamente, los espermicidas son agentes qu&iacute;micos dise&ntilde;ados  para prevenir la fecundaci&oacute;n porque causan la muerte o la inactivaci&oacute;n  de los espermatozoides,<SUP>1,15</SUP> gracias a la acci&oacute;n biol&oacute;gica  de su compuesto principal, el nonilfenoxi-polietilenoxietano, m&aacute;s conocido  como nonoxinol-9 o N-9.<SUP>16,17</SUP> Los espermicidas se encuentran ampliamente  distribuidos, entre sus presentaciones se incluyen los &oacute;vulos y las cremas  que por lo general deben ser acompa&ntilde;ados con el uso de otro m&eacute;todo  anticonceptivo como el cond&oacute;n.<SUP>18</SUP> Los espermicidas presentan  varias ventajas respecto a otros m&eacute;todos anticonceptivos, como son el bajo  costo, la amplia disponibilidad,<SUP>19</SUP> la discreci&oacute;n en su uso y  la f&aacute;cil adquisici&oacute;n<SUP>20</SUP> e incluso su evaluada y conocida  acci&oacute;n como agentes microbicidas debido a su efecto l&iacute;tico sobre  la envoltura del virus de la inmunodeficiencia humana.<SUP>21</SUP> Por esta raz&oacute;n  se ha demostrado la capacidad <I>in vitro</I> para prevenir o evitar la transmisi&oacute;n  de algunas infecciones de transmisi&oacute;n sexual;<SUP>22</SUP> sin embargo,  su uso frecuente est&aacute; relacionado con irritaciones cervicovaginales<SUP>23</SUP>  y con la interrupci&oacute;n del crecimiento de la flora bacteriana residente,  en especial de <I>Lactobacillus </I>acidophilus,<SUP>24,25</SUP> considerado como  el grupo predominante de bacterias en el tracto vaginal normal de la mujer.<SUP>26</SUP>  Adicionalmente, se ha demostrado que su uso frecuente (m&aacute;s de 3 usos en  el d&iacute;a) puede incrementar el riesgo de infecci&oacute;n por el virus de  la inmunodeficiencia humana debido a un da&ntilde;o sobre el epitelio vaginal.<SUP>27</SUP>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo consisti&oacute;  en evaluar las propiedades espermicida y citot&oacute;xica de las fracciones obtenidas  del extracto de los tallos, hojas y total (hojas m&aacute;s tallos) de la planta  <I>Sapindus saponaria </I>L.<I> </I>sobre espermatozoides humanos y la l&iacute;nea  celular epitelial HeLa, respectivamente. Los resultados con el desarrollo de este  estudio permitir&aacute;n en el futuro generar una herramienta para la prevenci&oacute;n  de embarazos no deseados, teniendo como una de sus ventajas la libre decisi&oacute;n  de cu&aacute;ndo utilizarlo, al no estar sujeto a un uso continuo como sucede  con otros m&eacute;todos de planificaci&oacute;n. </font>     <P>&nbsp;     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="3"><B>M&Eacute;TODOS</B>  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Muestras de semen</I> </font>      <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Las muestras de semen fueron donadas por  voluntarios aparentemente sanos en edad reproductiva (26,9 &#177; 6,7) mediante  masturbaci&oacute;n, despu&eacute;s de una abstinencia sexual de 3 a 5 d&iacute;as  (3,8 &#177; 0,8), como lo sugiere la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud en  su manual para el an&aacute;lisis seminal de 1999.<SUP>28</SUP> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis  de las muestras de semen</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Luego  de cumplido el tiempo de licuefacci&oacute;n de la muestra de semen normalmente  establecido entre 30 y 60 min, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de los par&aacute;metros  esperm&aacute;ticos por medio de un espermograma, siguiendo los lineamientos establecidos  por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud en su manual para an&aacute;lisis  seminal de 1999.<SUP>28</SUP> En el examen macrosc&oacute;pico se analizaron el  volumen, el pH, y la consistencia; luego se realiz&oacute; un examen microsc&oacute;pico  en el que se evaluaron la movilidad, la viabilidad y la concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica.  Brevemente, la evaluaci&oacute;n de los distintos tipos de movilidad esperm&aacute;tica  se realiz&oacute; de la manera siguiente: movilidad a: &gt;25 &#181;m/s, movilidad  b: 5-25 &#181;m/s, movilidad c: &lt; 5 &#181;m/s (movilidad sin desplazamiento)  y movilidad d: inm&oacute;viles. En este estudio, los datos de movilidad progresiva  a y b se analizaron de forma conjunta. Posteriormente, se realiz&oacute; la determinaci&oacute;n  del porcentaje de viabilidad, mezclando 10 &#181;L de la muestra seminal con 10  &#181;L de eosina-Y 0,5 % (IHR<SUP>&#174;</SUP> Cali, Colombia)<FONT  COLOR="#ff0000"> </FONT>y se consideraron como espermatozoides vivos aquellos  que no ten&iacute;an su cabeza te&ntilde;ida con el colorante; finalmente, se  evalu&oacute; la concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica utilizando la c&aacute;mara  de <I>Makler.<SUP>29</SUP></I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En la  <a href="#tab1">tabla</a> se resumen los valores m&iacute;nimos que deb&iacute;an  tener las muestras en el momento de su evaluaci&oacute;n inicial para ser incluidas  en el estudio.</font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v18n2/t0103213.gif" width="451" height="219"><a name="tab1"></a>      
<P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Obtenci&oacute;n del extracto y las fracciones  de Sapindus saponaria L.</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">De la  parte a&eacute;rea de la planta sin desecar se tomaron 10 g de hojas, 10 g de  tallos y 10<I> </I>g<I> </I>de hojas m&aacute;s tallos (Voucher 1895, Fernando  Alzate, 1985, Herbario de la Universidad de Antioquia). A cada componente se le  adicionaron 50 mL de soluci&oacute;n salina al 0,85 % y se mezclaron en una licuadora  entre 2 y 4 min, posteriormente se filtraron 2 veces con gaza est&eacute;ril para  eliminar la mayor cantidad posible de detrito vegetal,<B> </B>con el fin de obtener  el extracto de cada parte de la planta. Los extractos obtenidos (hojas, tallos  y hojas m&aacute;s tallos) se filtraron de nuevo por duplicado con papel filtro  para eliminar las part&iacute;culas de material vegetal s&oacute;lido m&aacute;s  peque&ntilde;as<B> </B>y se les realiz&oacute; una extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido  utilizando acetato de etilo para obtener la fase acuosa o polar y la fase org&aacute;nica  o no polar. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las fases org&aacute;nicas  obtenidas se llevaron a sequedad en una c&aacute;mara de extracci&oacute;n hasta  completar la evaporaci&oacute;n del acetato de etilo y fueron redisueltas en una  soluci&oacute;n de dimetil sulf&oacute;xido (DMSO) m&aacute;s soluci&oacute;n  salina 0,85 %, en proporci&oacute;n 1:9 v/v. Posteriormente, se evalu&oacute;  la actividad espermicida de las 6 fracciones, una acuosa y una org&aacute;nica  de cada parte de la planta. La fracci&oacute;n que present&oacute; la mayor actividad  espermicida se someti&oacute; a una cromatograf&iacute;a en capa fina en s&iacute;lica  gel (Merck 60 F<SUB>254</SUB> 0,2 mm) utilizando como fase m&oacute;vil una mezcla  de diclorometano:acetona en proporci&oacute;n 4:1 para obtener 2 fracciones, una  con los compuestos que tuvieran un valor de Rf mayor que 0,5 (Rf: relaci&oacute;n  entre la distancia recorrida por el soluto y la distancia recorrida por el solvente)  y otra con los compuestos con un Rf menor que 0,5; as&iacute; como la realizaci&oacute;n  de 2 diluciones, a 50 y 25 % para ser mezcladas con las muestras de semen y obtener  concentraciones de 25 y 12,5 % del extracto y de esta manera poder determinar  la concentraci&oacute;n m&iacute;nima efectiva (CME) sobre la movilidad a + b,  d y la viabilidad esperm&aacute;tica. Todos los extractos y las fracciones se  almacenaron protegidos de la luz a 4 &#186;C hasta su uso. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Evaluaci&oacute;n  del efecto de los extractos y las fracciones sobre las muestras de semen</I> </font>      <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Se mezclaron 30 &#181;L de cada extracto  o fracci&oacute;n con 30 &#181;L de semen para obtener una concentraci&oacute;n  de 50 % del extracto o fracci&oacute;n (proporci&oacute;n 1:1 v/v); posteriormente  se tomaron 10 &#181;L de la mezcla para determinar la movilidad y 10 &#181;L para  la viabilidad, usando un microscopio de luz Olympus&#174; CH20 en alto poder (40X),  en tiempos de 20 s, 3 y 5 min. Todos los ensayos se hicieron por duplicado y como  m&iacute;nimo 3 veces. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Tanto la movilidad  y viabilidad esperm&aacute;tica fueron determinadas antes y despu&eacute;s de  la incubaci&oacute;n con cada extracto o fracci&oacute;n. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Evaluaci&oacute;n  de la actividad citot&oacute;xica de la fracci&oacute;n o extracto de Sapindus  saponaria L. con mayor actividad espermicida sobre la l&iacute;nea celular HeLa  utilizando el ensayo 3-(4,5 dimetiltiazol-2-il)-5-(3-carboximetoxifenil)-2-(4-sulfofenil)-2H-tetrazolio  (MTS)</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">En platos de 96 pozos de  fondo plano se sembraron 3 x 10<SUP>3</SUP> c&eacute;lulas/pozo de la l&iacute;nea  celular epitelial HeLa en medio RPMI-1640 (GIBCO<SUP>&#174;</SUP>, USA) con L-glutamina,  suplementado con suero bovino fetal (SBF, GIBCO&#174;, USA) al 10 %, penicilina-estreptomicina  (GIBCO<SUP>&#174;</SUP>, USA) al 1 % y gentamicina 1 % (GENFAR<SUP>&#174;</SUP>,  Colombia) previamente esterilizado con filtros de 0,22 &igrave;m siguiendo el  protocolo anteriormente descrito.<SUP>30</SUP> Luego de 12 h de incubaci&oacute;n,  el medio fue retirado y se agregaron 100 &igrave;L de los diferentes est&iacute;mulos  por triplicado: PBS (SIGMA<SUP>&#174;</SUP>, Steinheim Germany) como control positivo  porque no promueve la proliferaci&oacute;n celular, medio suplementado con SBF  10 % como control negativo de citotoxicidad, medio sin SBF como control de medio  o blanco y la fracci&oacute;n o extracto con mayor actividad espermicida de <I>Sapindus  saponaria </I>L.<B> </B>diluida en RPMI a una concentraci&oacute;n de 50 %. Los  platos se incubaron por 6, 12 y 24 h a 37 &#176;C, 5 % CO<SUB>2</SUB>. Posteriormente  se agregaron 20 &igrave;L de MTS a cada pozo, se incubaron por 3 h y se determin&oacute;  la absorbancia en un lector universal de platos (<I>ELx 800NB Universal Microplate</I>,  BIO-TEK Instruments Inc., Winooski, V, USA) a 490 nm. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El  efecto citot&oacute;xico de la fracci&oacute;n polar del extracto de hojas de  la planta se determin&oacute; por un ensayo colorim&eacute;trico para establecer  el n&uacute;mero de c&eacute;lulas viables; este se basa en la bioreducci&oacute;n  de un compuesto de tetrazolio en uno coloreado (formazan, Cell Titer 96<SUP>&#174;</SUP>  AQueous Non-Radioactive Cell Proliferation Assay, Promega Corporation, Madison  Wisconsin, USA). El porcentaje de viabilidad celular se calcul&oacute; sobre la  base de la <a href="#fo1">f&oacute;rmula</a> siguiente:<SUP>30</SUP> </font>     <P>      <P><img src="/img/revistas/pla/v18n2/fo03213.jpg" width="487" height="80"><a name="fo1"></a>      
<P>     <P><font face="Verdana" size="2">Se realizaron 2 ensayos independientes, cada  uno por triplicado. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Marcha fitoqu&iacute;mica</I>  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Una marcha fitoqu&iacute;mica permite  determinar de forma cualitativa la presencia o ausencia de algunos compuestos  en el extracto de una planta.<SUP>31</SUP> En este caso, se realiz&oacute; la  determinaci&oacute;n de la presencia de flavonoides, amino&aacute;cidos, compuestos  fen&oacute;licos, taninos, alcaloides y saponinas, siguiendo los protocolos establecidos  en el laboratorio del Grupo de Productos Marinos de la Universidad de Antioquia.  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de flavonoides  se llevaron 10 mL de la fracci&oacute;n con mayor actividad espermicida de la  planta a un rotoevaporador para desecar la muestra y obtener finalmente un concentrado,  luego fue redisuelta en etanol puro y se agreg&oacute; magnesio y HCl concentrado;  la formaci&oacute;n de una espuma y un compuesto coloreado rojo indic&oacute;  positividad para la presencia de estos compuestos. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En  el caso de la prueba para amino&aacute;cidos, una tirilla de papel filtro se impregn&oacute;  con unas gotas de la fracci&oacute;n polar del extracto de hojas y una vez seca  se agreg&oacute; ninhidrina hasta dejar secar de nuevo; la formaci&oacute;n de  un sombreado violeta indicaba positividad. Para determinar la presencia de compuestos  fen&oacute;licos se tom&oacute; 1 mL de la fracci&oacute;n con mayor actividad  espermicida de la planta y se agreg&oacute; 1 gota de cloruro f&eacute;rrico,  en este caso la formaci&oacute;n de un compuesto verde o marr&oacute;n indicaba  positividad. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n  de taninos se tomaron 3 mL de la fracci&oacute;n en estudio y se agreg&oacute;  1 mL del reactivo de gelatina-sal, con la cual se espera la formaci&oacute;n de  un precipitado en caso de ser positivo. La prueba para alcaloides consisti&oacute;  en tomar 12 mL de la fracci&oacute;n que present&oacute; una actividad espermicida  m&aacute;s marcada y agregar HCl al 5 % y luego agregar unas gotas del revelador  de <I>Dragendorf </I>seguido de la adici&oacute;n del reactivo de Meyer. En caso  de ser positivo se observar&aacute; la formaci&oacute;n de un precipitado. Por  &uacute;ltimo, para la determinaci&oacute;n de saponinas se aplic&oacute; la fracci&oacute;n  con una mayor actividad espermicida en una placa de s&iacute;lica gel y se agreg&oacute;  butanol: &aacute;cido ac&eacute;tico:agua en proporciones 4:1:5, con el fin de  permitir la migraci&oacute;n de los compuestos por la placa durante 2 h aproximadamente;  por &uacute;ltimo se agreg&oacute; anisaldeh&iacute;do como revelador y la formaci&oacute;n  de manchas violeta indicaba positividad. Todas las pruebas se realizaron y compararon  con sus respectivos controles positivos y negativos. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis  estad&iacute;stico</I> </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Se realiz&oacute;  un an&aacute;lisis descriptivo determinando los valores de la media y la desviaci&oacute;n  est&aacute;ndar de la movilidad y la viabilidad esperm&aacute;tica, antes y despu&eacute;s  de la incubaci&oacute;n con cada extracto en funci&oacute;n del tiempo. Adicionalmente,  se compararon los valores de cada grupo, las muestras sin tratamiento y tratadas  con los extractos y sus fracciones, usando la prueba Anova no param&eacute;trica  <I>Friedman</I> <I>test</I> y el <I>test </I>posterior de Dunns mediante el programa  estad&iacute;stico Prism 5.0<SUP>&#174;</SUP>. </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS</B>  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Todas las muestras de semen usadas  en este estudio presentaban par&aacute;metros seminales superiores a los l&iacute;mites  inferiores establecidos por la OMS: volumen 2,7 mL &#177; 1,0; pH 7,4 &#177; 0,43;  movilidad a + b, 64 % &#177; 5.0; movilidad d, 22 % &#177; 6,0; viabilidad, 77  % &#177; 4,84 y concentraci&oacute;n 44 x 10<SUP>6</SUP> espermatozoides/mL &#177;  18,79. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En el tratamiento de los espermatozoides  con los extractos de <I>Sapindus saponaria </I>L.<I>, </I>tanto el total como  las hojas y los tallos, inducen una disminuci&oacute;n significativa de la movilidad  a + b (p&lt; 0,05 para total y hojas; p&lt; 0,01 para tallos) (<a href="#fig1">Fig.  1A</a>). As&iacute; mismo inducen un aumento estad&iacute;sticamente significativo  de la movilidad d luego de 5 min de contacto con los extractos (p&lt; 0,05 para  total y hojas; p&lt; 0,01 para tallos) (<a href="#fig1">Fig. 1B</a>); en el caso  de la viabilidad esperm&aacute;tica, solo se evidenci&oacute; una disminuci&oacute;n  significativa (p&lt; 0,05) a los 5 min de tratamiento con el extracto total (<a href="#fig1">Fig.  1C</a>). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v18n2/f0103213.jpg" width="580" height="620"><a name="fig1"></a>      
<P><font face="Verdana" size="2">El siguiente paso fue la evaluaci&oacute;n del  efecto de las fracciones polares provenientes del extracto total, de hojas y de  tallos de <I>Sapindus saponaria </I>L. sobre los espermatozoides humanos en t&eacute;rminos  de movilidad a + b (<a href="#fig2">Fig. 2A</a>), movilidad d (<a href="#fig2">Fig.  2B</a>) y la viabilidad esperm&aacute;tica (<a href="#fig2">Fig. 2C</a>)<I> </I>en  funci&oacute;n del tiempo, 20 s, 3 y 5 min. Ese tratamiento disminuy&oacute; el  porcentaje de movilidad a + b (p&lt; 0,05 para el extracto total y de tallos;  p&lt; 0,01 para hojas) y aument&oacute; el porcentaje de movilidad d (p&lt; 0,05  en todos los casos), adicionalmente, se observ&oacute; una disminuci&oacute;n  de la viabilidad esperm&aacute;tica (p&lt; 0,05 para las fracciones polares del  extracto total y de tallos; p&lt; 0,01 para la fracci&oacute;n polar del extracto  de hojas) respecto a las muestras sin tratamiento pasados 5 min de contacto con  esas fracciones. </font>     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v18n2/f0203213.jpg" width="580" height="557"><a name="fig2"></a>      
<P><font face="Verdana" size="2">Con la finalidad de verificar que la soluci&oacute;n  de DMSO m&aacute;s soluci&oacute;n salina en la que fueron redisueltas las fracciones  no polares de los extractos <I>per se</I>, no afectara la movilidad o la viabilidad  esperm&aacute;tica, se realiz&oacute; la cuantificaci&oacute;n de &eacute;stas  en tiempos de 20 s, 3 y 5 min del contacto de los espermatozoides con la soluci&oacute;n.  No se afect&oacute; de forma significativa la movilidad esperm&aacute;tica a +  b, la movilidad d ni la viabilidad esperm&aacute;tica. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Posteriormente,  se hizo la evaluaci&oacute;n de las fracciones no polares<B> </B>provenientes  del extracto total, de tallos y de hojas de <I>Sapindus saponaria </I>L. sobre  la movilidad esperm&aacute;tica a + b, d y la viabilidad esperm&aacute;tica. La  movilidad esperm&aacute;tica a + b, tuvo una disminuci&oacute;n significativa  a los 5 min de tratamiento con la fracci&oacute;n no polar proveniente del extracto  total y de tallos (p&lt; 0,05), as&iacute; como un aumento significativo de la  movilidad d (p&lt; 0,05). Estas fracciones tambi&eacute;n afectaron la viabilidad  esperm&aacute;tica luego de 5 min de tratamiento (p&lt; 0,05). </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El  tratamiento de las muestras de semen con la fracci&oacute;n polar<B> </B>del extracto  de hojas permiti&oacute; evidenciar un aumento significativo de los espermatozoides  inm&oacute;viles (movilidad tipo d) hasta un promedio de 90 % pasados 5 min de  tratamiento (p&lt; 0,05), respecto a las muestras sin tratamiento que ten&iacute;an  un promedio de 23 % y una disminuci&oacute;n de espermatozoides con movilidad  a + b luego de 5 min de tratamiento, hasta un promedio de 7 % respecto a las muestras  sin tratamiento (pomedio de 64 %). As&iacute; se muestra que es el tratamiento  m&aacute;s efectivo como espermicida, por tal motivo la fracci&oacute;n polar  del extracto de hojas se seleccion&oacute; para realizar una cromatograf&iacute;a  en capa fina y separar los compuestos seg&uacute;n su Rf . </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los  tratamientos con las soluciones que conten&iacute;an los compuestos con un Rf  tanto menor como mayor que 0,5; permitieron evidenciar una disminuci&oacute;n  estad&iacute;sticamente significativa de los espermatozoides con movilidad a +  b (p&lt; 0,05) luego de 5 min de contacto con estas, as&iacute; como un aumento  de los espermatozoides con movilidad d (p&lt; 0,05) y la disminuci&oacute;n de  la viabilidad esperm&aacute;tica (p&lt; 0,05). </font>     <P><font face="Verdana" size="2">A  pesar de que los compuestos con distintos valores de Rf afectan de forma significativa  la movilidad y la viabilidad esperm&aacute;tica, la fracci&oacute;n polar del  extracto de hojas demostr&oacute; ser la fracci&oacute;n con una mayor actividad  espermicida. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">A esta fracci&oacute;n se  le realiz&oacute; la marcha fitoqu&iacute;mica y se encontr&oacute; que era positiva  para flavonoides, amino&aacute;cidos, compuestos fen&oacute;licos y saponinas;  y era negativa para taninos y alcaloides. Adicionalmente esta fracci&oacute;n  se utiliz&oacute; para realizar los ensayos de citotoxicidad sobre la l&iacute;nea  celular epitelial HeLa, una vez determinada su concentraci&oacute;n m&iacute;nima  efectiva. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Bajo el tratamiento de las  muestras de semen con las diluciones a 25 y 12,5 % de la fracci&oacute;n polar  proveniente del extracto de hojas, no hubo ninguna diferencia significativa sobre  las movilidades esperm&aacute;ticas a + b (<a href="#fig3">Fig. 3A</a>) o d (<a href="#fig3">Fig.  3B</a>) ni en la viabilidad esperm&aacute;tica (<a href="#fig3">Fig. 3C</a>) respecto  a las muestras sin tratamiento. </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v18n2/f0303213.jpg" width="580" height="555"><a name="fig3"></a>      
<P><font face="Verdana" size="2">En los ensayos de citotoxicidad sobre la l&iacute;nea  celular epitelial HeLa, se encontr&oacute; un porcentaje de viabilidad celular  de 62 y 60 % luego de 6 y 12 h de incubaci&oacute;n con la fracci&oacute;n polar  proveniente del extracto de hojas de <I>Sapindus saponaria </I>L. respectivamente<I>;  </I>despu&eacute;s de ese tiempo, una nueva determinaci&oacute;n de la viabilidad  celular a las 24 h muestra una depleci&oacute;n de la misma hasta 20 % (<a href="#fig4">Fig.  4</a>). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v18n2/f0403213.jpg" width="433" height="431"><a name="fig4"></a>      
<P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>DISCUSI&Oacute;N</B> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Los  resultados indican que el extracto de la planta <I>Sapindus saponaria </I>L.<I>,  </I>y a&uacute;n m&aacute;s la fracci&oacute;n polar proveniente del extracto  de hojas<I> </I>presentan un efecto inmovilizante pero no letal sobre los espermatozoides  humanos, debido a que en su mayor&iacute;a los extractos o fracciones tuvieron  un efecto mucho m&aacute;s marcado sobre la movilidad (disminuci&oacute;n de la  movilidad progresiva o aumento de la inmovilidad) que sobre la viabilidad esperm&aacute;tica,  aunque en algunos casos esta disminuy&oacute; de forma significativa. Este hallazgo,  sin embargo, se incluye en la definici&oacute;n del t&eacute;rmino &#171;espermicida&#187;,  porque es considerado como tal todo compuesto responsable de la inactivaci&oacute;n  o muerte de los espermatozoides.<SUP>1,15</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Sapindus  saponaria </I>L. es una planta con alto contenido de saponinas,<SUP>9</SUP> esta  caracter&iacute;stica se confirm&oacute; con el an&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico,  y es coherente con un estudio previo en el cual se demostr&oacute; que las saponinas  aisladas de varias plantas medicinales nativas de India tambi&eacute;n tuvieron  un efecto espermicida.<SUP>32</SUP> Sin embargo, en este estudio, en la misma  fracci&oacute;n que present&oacute; un efecto espermicida tambi&eacute;n se confirm&oacute;  la presencia de otros compuestos como flavonoides y compuestos fen&oacute;licos,  y estos podr&iacute;an potenciar el efecto que tienen las saponinas sobre la movilidad  esperm&aacute;tica. Es necesario, por lo tanto, la realizaci&oacute;n de m&aacute;s  estudios que confirmen si las saponinas (mol&eacute;culas a las que se les ha  atribuido un sinn&uacute;mero de propiedades f&iacute;sico-qu&iacute;micas debido  a su naturaleza anfip&aacute;tica como detergentes y emulsificantes),<SUP>33</SUP>  al ser purificadas o aisladas de este extracto, son las directamente implicadas  en el efecto inmovilizante sobre los espermatozoides humanos, porque de lo contrario  existir&iacute;a una acci&oacute;n sin&eacute;rgica con los dem&aacute;s compuestos  presentes en la fracci&oacute;n polar proveniente del extracto de hojas. </font>      <P><font color="#262626" face="Verdana" size="2">A pesar de un amplio conocimiento  actual sobre las propiedades espermicidas de varios productos naturales, en nuestro  medio ninguno ha sido desarrollado a nivel farmac&eacute;utico para finalmente  ser comercializado y este es un agravante frente a la necesidad de tener m&eacute;todos  anticonceptivos de bajo costo y accesibilidad para la poblaci&oacute;n. Un espermicida,  como una de las tantas alternativas en anticoncepci&oacute;n, debe ser una sustancia  que no tenga efectos nocivos sobre el epitelio,<SUP>34</SUP> y a pesar de eso,  la mayor&iacute;a se fabrican a base Nonoxinol-9</font><font face="Verdana" size="2">,  un agente qu&iacute;mico que induce la fragmentaci&oacute;n del DNA celular en  explantes endometriales<SUP>35</SUP> y afecta de forma significativa la estructura  del endometrio y la expresi&oacute;n de algunas citoquinas.<SUP>36</SUP> Es a  partir de estos hallazgos que se acrecienta el inter&eacute;s en la b&uacute;squeda  de compuestos de origen natural con propiedades espermicidas, pero que tengan  m&iacute;nimos o incluso ning&uacute;n efecto adverso sobre el epitelio vaginal.  En ese orden de ideas, habiendo demostrado en este estudio la propiedad espermicida<FONT  COLOR="#262626"> del extracto de <I>Sapindus saponaria </I>L. y, adicionalmente,  que este no mostr&oacute; un efecto t&oacute;xico para las c&eacute;lulas HeLa  durante 6 y 12 h de tratamiento, podr&iacute;a pensarse adem&aacute;s en la evaluaci&oacute;n  de la fracci&oacute;n polar del extracto de hojas sobre la microbiota vaginal.  En un estudio realizado por <I>Aslim</I> y otros,<SUP>26 </SUP>demostraron que  el extracto de una planta del mismo g&eacute;nero, <I>Sapindus mukorosii</I> no  afectaba el crecimiento de colonias de <I>Lactobacillus acidophilus, </I>uno de  los microorganismos presentes en el ambiente vaginal que act&uacute;a como barrera  protectora, porque impide la colonizaci&oacute;n de otros microorganismos de car&aacute;cter  pat&oacute;geno,<SUP>26</SUP> adem&aacute;s participa en la producci&oacute;n  de &aacute;cido l&aacute;ctico y conocido como uno de los principales responsables  del mantenimiento del pH vaginal normal que debe mantenerse aproximadamente en  4,5. </FONT></font>     <P><font face="Verdana" size="2">Teniendo en cuenta estos  aspectos, la fracci&oacute;n polar del extracto de hojas de <I>Sapindus saponaria  </I>L., luego de algunos estudios complementarios podr&iacute;a llegar a ser un  producto anticonceptivo promisorio, porque no presenta un efecto citot&oacute;xico  sobre una l&iacute;nea celular epitelial en un tiempo r&aacute;pido, lo que podr&iacute;a  junto a otros m&eacute;todos como el cond&oacute;n llegar a ser una gran herramienta  para la prevenci&oacute;n de embarazos no deseados, e impactar principalmente  en poblaciones vulnerables como los adolescentes y en aquellas personas que no  desean utilizar m&eacute;todos de uso continuo como los hormonales. </font>     <P>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>AGRADECIMIENTOS</B> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Por  el apoyo econ&oacute;mico a la Universidad de Antioquia, Programa Sostenibilidad  2011-2012 y al Instituto Tecnol&oacute;gico Metropolitano (ITM). &Aacute;ngela  Mar&iacute;a &Aacute;lvarez y Walter Cardona Maya fueron becarios de Colciencias.  Luisa Ospina Medina es joven investigadora de Colciencias. </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Gupta  G. Microbicidal spermicide or spermicidal microbicide? Eur J Contracept Reprod  Health Care. 2005;10(4):212-8.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. &Aacute;lvarez-G&oacute;mez  AM, Cardona-Maya WD, Castro-Alvarez JF, Jimenez Silvia, Cadavid A. Nuevas opciones  en anticoncepci&oacute;n: posible uso espermicida de plantas colombianas. Actas  Urol Esp. 2007;31(4):372-81.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. &Aacute;lvarez  G&oacute;mez AM, Cardona Maya W, Forero J, Cadavid A. Human Spermicidal Activity  of Passiflora edulis Extract. J Reproduction Contraception. 2010;21(2):95-100.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Clarke GN, McCoombe SG, Short RV.  Sperm immobilizing properties of lemon juice. Fertil Steril. 2006;85(5):1529-30.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Rithaporn T, Monga M, Rajasekaran  M. Curcumin: a potential vaginal contraceptive. Contraception. 2003 Sep;68(3):219-23.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Fahim MS, Wang M. Zinc acetate and  lyophilized <I>Aloe barbadensis</I> as vaginal contraceptive. Contraception. 1996;53(4):231-6.      </font>     ]]></body>
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Jain JK, Li A, Minoo P, Nucatola DL, Felix JC. The effect of nonoxynol-9 on human  endometrium. Contraception. 2005;71(2):137-42.    </font>     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Recibido:  22 de septiembre de 2011.     <br> Aprobado: 29 de julio de 2012. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Walter Cardona Maya</I>. Carrera 53 # 61-30,  lab 534, A.A. 1226, Grupo Reproducci&oacute;n, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n,  Colombia. Correo electr&oacute;nico: <U><FONT COLOR="#0000ff"><a href="mailto:wdcmaya@medicina.udea.edu.co">wdcmaya@medicina.udea.edu.co</a></FONT></U>  </font>       ]]></body><back>
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