ARTÍCULO ORIGINAL
Tamizaje fitoquímico preliminar, evaluación de la actividad antioxidante in vitro y toxicidad de seis especies de Ericaeas colombianas
Preliminary phytochemical screening, antioxidant, and toxic activity evaluation of six species of colombian Ericaeas
MSc. Erika Andrea Plazas González
Jardín Botánico “José Celestino Mutis”. Bogotá, Colombia.
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RESUMEN
Introducción: la familia Ericaceae cuenta con aproximadamente 4 500 especies distribuidas en regiones neotropicales. Colombia es el país con mayor número de ericáceas, presentes en bosques de la región andina. Se caracterizan por poseer gran importancia a nivel ecológico, medicinal y alimenticio.
Objetivos: realizar el tamizaje fitoquímico preliminar y evaluar la actividad antioxidante in vitro y la toxicidad frente a Artemia salina en extractos de seis especies de ericaceas colombianas
Métodos: a partir de las hojas, flores y/o frutos verdes de las especies Cavendishia bracteata Hoerold, Gaultheria erecta Vent,Thibaudia floribunda Kunth, Macleania rupestris (Kunth) A.C. Sm, Bejaria resinosa Mutis ex L. f. y Disterigma alaternoides (Kunth) Nied, se obtuvieron los extractos etanólicos. Se realizó el tamizaje fitoquímico preliminar y se determinó la concentración total de fenoles y flavonoides por métodos colorimétricos. Se evaluó la actividad tóxica en el modelo de Artemia salina y la actividad antioxidante por captación de radicales DPPH.
Resultados: en el tamizaje fitoquímico preliminar se evidenció la presencia de fenoles, flavonoides, taninos, cumarinas, terpenos, esteroides y quinonas. Todos los extractos analizados excepto el de frutos verdes de C. bracteata poseen altas concentraciones de fenoles y flavonoides totales. Los extractos de hojas de G. erecta, D. alaternoides y flores de T. floribunda presentaron toxicidades medias con CL50 de 229, 173 y 196 ppm frente a Artemia salina. Los extractos de G. erecta, C. bracteata y T. floribunda poseen actividad antioxidante promisoria (IC50 50.61, 62.88 y 69.46 al respecto), al comprar con antioxidantes conocidos como el ácido gálico y ascórbico.
Conclusiones: se evidenció la presencia de un alto contenido de compuestos de tipo fenólico como flavonoides, quinonas y taninos. Además, los extractos de hojas de diferentes especies presentaron actividades antioxidantes promisorias y bajas toxicidades.
Palabras clave: análisis fitoquímico, fenoles totales, flavonoides totales, actividad tóxica, actividad antioxidante, Ericaceas.
ABSTRACT
]]> Introduction: ericaceae family includes 4500 species distributed in neotropical regions, Colombia is the country with the highest number of Ericaeae species mainly distributed in Andean forests, these are characterized by ecological, medicinal and food importance.Keywords: phytochemical analysis, totals phenols, totals flavonoids, toxic activity, antioxidant activity, Ericaceae.
INTRODUCCIÓN
La familia Ericaceae cuenta con 125 géneros y cerca de 4 500 especies distribuidas en las regiones neotropicales, en tierras ácidas de regiones templadas, subárticas y en bosques húmedos de regiones andinas de Latinoamérica.1,2 Colombia es el país con mayor número de ericaceaes en el Neotrópico, con un aproximado de 270 especies de 17 géneros, muchas de las cuales se encuentran exclusivo en este territorio. Estas especies se distribuyen en la región andina, en la cordillera central y occidental. Los géneros más representativos para Colombia son, Cavendishia, Disterigma, Gaultheria, Macleania, Pernettya y Vaccinium.3
]]> Las especies de la familia Ericaceae han sido utilizadas en diferentes regiones del mundo con fines medicinales y alimenticios. Las especies del género Gaultheria, son conocidas como “wintergreen” en América del norte y Asia. A partir de las hojas de estas especies se realiza la extracción del aceite de gaultheria, compuesto en su mayoría por salicilato de metilo y utilizado para el alivio de dolencias musculares, articulares y enfermedades como hipertensión, artritis y reumatismo entre otras.4 La especie M. rupestris es es la más representativa del género, por su amplia distribución y abundancia, se conoce en lo popular como “Uva camarona”, es usada en la medicina tradicional para disminuir la disentería y también como astringente.5Los estudios químicos permiten asilar e identificar metabolitos secundarios, en lo esencial de tipo fenólico como, flavonoides, antocianinas, taninos, tanto hidrolizables como condensados y derivados del ácido hidroxibenzóico e hidroxicinámico, entre otros. Muchos de esos componentes muestran marcada actividad biológica como antioxidante, antimicrobiana, antiinflamatoria y vaso dilatoria. Los flavonoides son los metabolitos más representativos de la familia Ericaceae; se han aislado a partir de diferentes especies de los géneros Erica y Vaccinium flavonoles, antocianinas y flavonas como la catequina, quercetina y miricetina.6 Este tipo de metabolitos tiene un interés científico especial desde hace varios años, debido a su amplio espectro de actividades biológicas y fisiológicas, atribuidas especial, a su capacidad antioxidante, su estabilidad química y la variedad estructural.7
Pese a la importancia en distribución y usos de las especies de Ericaceas en Colombia, la mayoría de ellas no poseen reportes de estudios químicos y de actividad biológica. El presente estudio pretende realizar el tamizaje fitoquímico preliminar y evaluar la actividad antioxidante in vitro y la toxicidad frente a Artemia salina en extractos de seis especies de Ericaeas colombianas.
MÉTODOS
Material vegetal
El material vegetal de las especies Cavendishia bracteata Hoerold, Gaultheria erecta Vent, Thibaudia floribunda Kunth, Macleania rupestris (Kunth) A.C. Sm, Bejaria resinosa Mutis ex L. f. y Disterigma alaternoides (Kunth) Nied, fue colectado en la vereda San Francisco del páramo de Cruz Verde, vía Bogotá-Choachí en el Departamento de Cundinamarca, Colombia. Un espécimen de cada muestra reposa en el herbario del Jardín Botánico de Bogotá “José Celestino Mutis”, con los números de colección HL 3036, 3058, 3088, 3094 y 4015 al respecto.
Obtención de extractos
El material vegetal recolectado se separó en los diferentes órganos: hojas, frutos y flores. Se limpió y se secó en un horno con convección de aire a 40 °C durante 24 h. El material seco y molido se sometió a extracción por maceración con etanol del 96 % a temperatura ambiente. El extracto etanólico resultante se concentró y eliminó el solvente por destilación a presión reducida en un evaporador rotatorio.
]]>Se tomaron 2 g de los extractos etanólicos de hojas, flores y frutos de las seis especies y se realizaron las pruebas cualitativas, se siguió un protocolo y se modificó basado en diferentes metodologías propuestas por diferentes autores.8-10 Para corroborar la presencia de grupos de metabolitos secundarios se usaron controles positivos y negativos en cada ensayo.
Determinación de fenoles totales
El contenido total de fenoles en el extracto etanólico fue determinado espectrofotométricamente de acuerdo al método Follin-Ciocalteu, se usó como patrón una solución stock 200 mg/L ácido gálico (reactivo analítico). Para el análisis de las muestras, se pesó 1 mg de la muestra y se disolvió en 1 mL de metanol, luego se aforó a 10 mL con agua destilada, se obtuvo una solución de 100 mg/L. Posterior, se tomó una alícuota de 1 mL de esta solución y se le agregó 5 mL del reactivo Follin-Ciocalteu (diluído en proporción 1:10 con agua destilada), se dejó en reposo 5 minutos y se le agregó 4 mL de una solución 7,5 % de carbonato de sodio; la solución se agitó y se guardó en un lugar oscuro a temperatura ambiente por 2 h.11-13
Los ensayos se hicieron por triplicado y las lecturas se realizaron en un espectrofotómetro a una longitud de onda de 765 nm. Los resultados fueron expresados como mg de ácido gálico por g de extracto (mg GA/g extracto).
Determinación de flavonoides totales
El contenido total de flavonoides se determinó de acuerdo al método colorimétrico de cloruro de aluminio, se usó como patrón una solución stock de quercetina (0,5 mg/mL). Para las muestras, se pesaron 5 mg y se disolvieron en 1 mL de agua o metanol, después se diluyó 1:10. A cada una de las muestras y patrones preparados se les adicionó 1250 μL de agua destilada, 75 μL de NaNO2 al 5 %, se dejó reposar por 6 minutos, se adicionaron 150 μL de AlCl3 al 10 % y se dejó reposar otros 5 minutos, a continuación se adicionaron 500 μL de NaOH 1M y en lo final se completó el volumen de cada una de las muestras a 2,5 mL con agua destilada.14
]]> Los ensayos se hicieron por triplicado y las lecturas se realizaron en un espectrofotómetro a una longitud de onda de 510 nm. La concentración total de flavonoides se calculó a partir de la curva de calibración y los resultados se expresaron en mg de quercetina por g de extracto (mg de Q/g extracto).
Actividad antioxidante (DPPH)
La capacidad antioxidante medida como la capacidad captadora de radicales libres se determinó cualitativamente por el método DPPH. El ensayo fue estandarizado y se implementó por triplicado, se tomó una alícuota de 100 μl de solución en metanol de la muestra a tres concentraciones distintas (150, 100 y 50 mg/L), después se adicionaron 900 μl de DPPH en solución metanólica 60 mg/L; una vez mezclados, se leyó su absorbancia de inmediato a 517 nm en un espectrofotómetro UV-VIS, la actividad fue monitoreada cada minuto hasta que la disminución de la absorbancia se estabilizó. Como control positivo, se utilizaron ácido ascórbico y ácido gálico en solución metanólica 100, 50 y 10 mg/L.15-17
El porcentaje de inhibición del radical DPPH se calculó con la siguiente fórmula:
A es la absorbancia.
Una vez que se determina el valor del porcentaje de inhibición de cada una de las concentraciones, se procede a realizar una regresión lineal con dichos valores, de esta forma, se obtuvo la ecuación de la forma:
Para calcular la IC50 se debe remplazar, el valor correspondiente al 50 % de inhibición del DPPH en Y, obteniéndose en X la concentración de antioxidante necesaria para inhibir en un 50 % el DPPH.
]]>Para el ensayo de toxicidad se usó el modelo de letalidad en A. salina de acuerdo con el protocolo sugerido por McLaughlin y colaboradores.18 Los huevos de A. salina se incubaron durante 24 horas a una temperatura de 28 °C en un medio de cultivo de sal marina a una concentración de 38 g/L. Los ensayos se realizaron por triplicado empleando 10 nauplios por pozo, los cuales se expusieron a concentraciones de 1 000, 500, 250, 100 y 10 mg/mL de extractos. Al cabo de 24 h se hicieron las lecturas, y se registró el número de sobrevivientes en cada pozo. Los datos obtenidos se procesaron con el programa estadístico “Epa probit analysisprogram” para de determinar la concentración letal 50 (CL50) y un rango de confianza de 95 %.
RESULTADOS
Rendimientos de extracción
Los rendimientos de extracción fueron variables en todos los órganos de las especies de estudio y se encuentran entre 12 y 53 %. Los mayores se presentaron en la obtención de extractos de frutos y flores, lo que indica una mayor cantidad de metabolitos secundarios solubles en etanol (tabla 1).
Tamizaje fitoquímico preliminar
Por medio del análisis cualitativo se determinó la presencia de diferentes grupos de metabolitos secundarios en los extractos de hojas, flores y frutos de las seis especies de la familia Ericaceae. Todas las especies evidenciaron pruebas positivas para fenoles, flavonoides, taninos, cumarinas, terpenos, esteroides y quinonas. Los metabolitos más abundantes en todos los extractos resultaron ser los fenoles y los flavonoides. Los extractos de frutos y flores de las diferentes especies mostraron la presencia de antocianinas y la usencia de quinonas. Las antocianinas son los metabolitos responsables de los colores morados y rojos, característicos de algunas flores y de los frutos maduros en especies de ericáceas.
Cuantificación de fenoles y flavonoides totales
En la tabla 3 se reportan los resultados de la cuantificación de fenoles y flavonoides en los diferentes extractos de estudio. El contenido de compuestos fenólicos en plantas, podría clasificarse en tres categorías:
De acuerdo con lo anterior es posible decir que todos los extractos analizados, excepto el de frutos verdes de C. bracteata poseen altas concentraciones de fenoles totales. Todos los extractos evidenciaron la presencia de flavonoides por el método colorimétrico de Liu.
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Actividad antioxidanteLa actividad antioxidante fue determinada por el método de captación de radicales DPPH y fue expresada como actividad antioxidante equivalente al ácido ascórbico mg/L (VCEAC). El porcentaje de inhibición indica la capacidad del antioxidante para neutralizar el radical libre DPPH a las concentraciones y condiciones específicas, entre más alto el porcentaje, mayor es su potencial como antioxidante. De forma complementaria el valor IC50 indica la concentración del antioxidante necesaria para neutralizar la mitad de la concentración del radical libre DPPH, por lo tanto a menor IC50 mayor poder del antioxidante.19,20 De acuerdo a lo anterior es posible observar que los extractos de hojas de todas las especies evaluadas que mostraron porcentajes de inhibición superiores al 60 % y CI 50 inferiores a 100 ppm son promisorias en el ensayo de actividad antioxidante por captación de radicales (tabla 4).
Evaluación de la toxicidad
En la tabla 5 se reportan las concentraciones letales cincuenta calculadas para los extractos de las especies de estudio, se empleó el método estadístico EPA probit.
En el ensayo de toxicidad en Artemia salina, valores entre 100 y 250 μg/mL son considerados de toxicidad media, entre 250 y 500 μg/mL toxicidad baja y superiores a 500 μg/mL no tóxicos. Los extractos que presentan CL50 inferiores a 100 μg/mL son considerados tóxicos aunque los extractos de mayor toxicidad presentan valores desde 1-10 μg/mL.21 De acuerdo, con la escala de toxicidad es posible ver que la mayoría de los extractos analizados poseen toxicidades bajas o moderadas. Los extractos de frutos de M. rupestris y G. erecta poseen CL50 superiores a 1000 ppm, a la mayor concentración ensayada no afectaron a la mitad de la población del microcrustaceo. Los extractos de hojas de G. erecta y D. alaternoides y flores de T. floribunda presentaron toxicidades medias con CL50 de 229, 173 y 196 ppm.
DISCUSIÓN
La extracción de los diferentes órganos de las especies de estudio se realizó de forma exhaustiva con el fin de determinar el rendimiento del proceso. Se pudo observar que las flores y frutos de las especies de estudio evidenciaron mayor efectividad en la extracción con etanol con rendimientos superiores a los 26 % comparados con las hojas de todas las especies de estudio. Los rendimientos indican una mayor presencia de metabolitos solubles en etanol en flores y frutos, comparados con las hojas, en donde se presume una mayor presencia de celulosa y lignina que no se extraen con el solvente empleado.22
]]> Por medio del tamizaje fitoquímico preliminar fue posible determinar la presencia de metabolitos secundarios que se caracterizan por poseer un núcleo fenólico como: flavonoides, antocianinas, taninos y derivados del ácido benzoico. Los metabolitos más abundantes en todos los extractos resultaron ser los flavonoides. Estos resultados son coherentes con los reportes químicos realizados en otras especies de la familia Ericaceae en donde se destaca la presencia de flavonoides responsables de una amplia gama de factores biológicos y actividades fisiológicas, en lo principal antioxidantes. La abundante presencia de los flavonoides en la familia Ericaceae los constituyen en marcadores quimio-taxonómicos.23,24Al tener en cuenta los resultados del tamizaje fitoquímico preliminar se realizó la cuantificación de fenoles y flavonoides con el fin de determinar su correlación con la capacidad antioxidante en extractos de seis especies colombianas de la familia Ericaceae. Por medio de la cuantificación de fenoles totales, y al emplear el método colorimétrico de Folin se determinó que los extractos de hojas poseen mayor contenido de este tipo de compuestos, respecto a los demás órganos de la planta (tabla 3). Lo anterior podría estar asociado a una mayor presencia de taninos, puesto que este tipo de compuestos son abundantes en las hojas de especies de esta familia.25
Los frutos de la especie C. bracteata evidenciaron la menor concentración de fenoles, al comparar con las demás especies, esto puede tener relación con el estado de maduración de los frutos, debido a que los análisis se realizaron con frutos inmaduros. Para comprobar esta hipótesis debe realizarse un análisis de cuantificación que emplee frutos con diferentes estados de maduración; para ello debe hacerse un seguimiento al estado fenológico de la planta en un periodo mínimo de un año, de tal forma que se asegure que se cumpla por lo menos un ciclo de fructificación.
Al comparar los resultados obtenidos para la cuantificación de fenoles totales en las seis especies estudiadas con otras especies de la familia Ericaceae, se puede resaltar una mayor concentración en los extractos de hojas de las especies de estudio respecto a otras especies del género Erica como: E. andevalensis 37.15, E. australis 112.39 y E. arbórea 81.37 mg de AG/g de extracto.20 Estos resultados sugieren un importante potencial químico y biológico de las especies de ericaceas colombianas. Se tiene en cuenta que los fenoles son sustancias orgánicas muy amplias distribuidas en el reino vegetal, que se sintetizan para cumplir funciones de defensa, para dar propiedades de color, astringencia y “flavor” (sabor y aroma) y que han demostrado un amplio número de actividades biológicas antioxidante y antiflamatoria.21-24
Con el fin de determinar qué cantidad de los compuestos fenólicos poseen núcleos de tipo flavonoide se realizó la cuantificación por el método espectrofotométrico de Liu, que se basa en la capacidad que tienen los hidroxilos fenólicos sobre el núcleo de flavonoide en posiciones orto, para quelatarse con el cloruro de aluminio anhidro (AlCl3), se genera desplazamientos batocrómicos en el espectro UV.26 La especie G. erecta presentó el mayor contenido de flavonoides comparado con las demás especies, seguida por C. bracteata y T. floribunda (tabla 3). En general los extractos de hojas mostraron mayor cantidad de flavonoides respecto a los demás órganos de la planta, sin embargo, en la especie G. erecta las flores poseen cantidades superiores que las hojas, este comportamiento se puede asociar a la presencia de pigmentos antocianicos y flavonoides glicosilados muy comunes en las flores de especies de esta familia.27 Los altos contenidos de flavonoides en las especies de estudio les otorgan un importante valor agregado, se tiene en cuenta que este tipo de metabolitos se caracterizan por poseer diferentes espectros de actividades biológicas, en lo principal asociados a la capacidad antioxidante.23
Al comparar los valores del contenido de fenoles con el de flavonoides en un gramo de extracto seco para las especies de estudio, se puede ver que el porcentaje de flavonoides varía entre un 30 y 80 %, depende del órgano de la especie. Los flavonoides representan un aproximado de 50 % del total de fenoles en las hojas de todas las especies y valores cercanos al 80 % en los frutos. La cantidad restante de compuestos fenólicos que no son de tipo flavonoide pueden ser, derivados de ácido benzoico, taninos, quinonas o cumarinas, de acuerdo a los resultados obtenidos en el análisis fitoquímico preliminar y la quimiotaxonomía de la familia Ericaceae.
En el ensayo de actividad antioxidante por captación de radicales DPPH, los extractos de hojas de C. bracteata, M. rupestris, G. erecta, T. floribunda, D. alaternoides y flores de G. erecta presentaron altos porcentajes de captación de radicales DPPH. Sin embargo sólo se consideran activos aquellos con IC50 cercanas a los controles (ácido ascórbico y ácido gálico), son los extractos más promisorios los extractos de hojas de G. erecta, C. bracteata y T. floribunda. Los extractos de frutos presentaron valores muy bajos, inhibición del radical y concentraciones inhibitorias altas, por lo que se consideran inactivos.
Al correlacionar la actividad antioxidante con el contenido de fenoles totales y flavonoides se observa que los extractos de hojas que poseen altas concentraciones de fenoles y flavonoides presentan en todos los casos las mejores actividades antioxidantes. En diferentes estudios realizados en extractos de la familia se ha observado correlaciones directas de las concentraciones de fenoles totales con las actividades captadoras de radicales libres.28
Para el desarrollo de antioxidantes seguros y efectivos se requieren que estos tengan baja toxicidad. Para complementar la actividad antioxidante evidenciada por los tres extractos promisorios, se evaluó la actividad tóxica preliminar en el modelo de A. salina (tabla 5) . Los frutos de las especies del género Gaultheria son considerados tóxicos por los pobladores de las áreas rurales del Distrito Capital y por lo tanto no son consumidos, los resultados preliminares de toxicidad indican que los frutos de la especie G. erecta poseen una toxicidad comparable con los frutos de la “uva camarona”; seguros para el consumo.
La toxicidad en hojas de diferentes especies del género Gaultheria se asocia a altas concentraciones de salicilato de metilo, que es un metabolito secundario típico de este género responsable de las actividades antiinflamatorias y antireumaticas, pero que en concentraciones muy altas posee toxicidad media.29 El extracto de hojas de B. resinosa presentó una alta toxicidad con una CL50 de 22 ppm, debido a que no existen muchos estudios químicos y de actividad biológica de especies de este género, no es posible asociar la toxicidad evidenciada a un tipo de metabolito específico, por lo tanto es recomendable realizar un estudio bio dirigido para el aislamiento de los principios activos de la especie.
]]> Por medio del tamizaje fitoquímico preliminar y el estudio de la variabilidad de los compuestos fenólicos y la actividad antioxidante de seis especies colombianas de la familia Ericaeae (C. bracteata, G. erecta, T. floribunda, M. rupestris, B. resinosa y D. alaternoides) fue posible determinar un alto contenido de compuestos de tipo fenólico y flavonoide en las hojas de todas las especies y bajas concentraciones en los frutos. Los extractos de hojas resultaron ser promisorios en el ensayo de actividad antioxidante por captación de radicales DPPH, mientras que los extractos de frutos fueron inactivos. Estos resultados sugieren una correlación directa de la concentración de fenoles totales con las actividad captadora de radicales libres.
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Recibido: 12 de noviembre de 2013.
Aprobado: 8 de febrero de 2015.
Erika Andrea Plazas González. Jardín Botánico “José Celestino Mutis”. Bogotá, Colombia.
Correo electrónico: erikaandrea.plazasgonzalez@gmail.com
