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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Endocrinología]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-id>S1561-29532007000200008</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Daño al ADN espermático: aspectos clínicos y biológicos]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Sperm DNA damage: clinical and biological aspects]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro Nacional de Genética Médica  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Ciudad de La Habana ]]></addr-line>
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</front><body><![CDATA[ <p>Centro Nacional de  Gen&eacute;tica M&eacute;dica</p> <h2><strong>Da&ntilde;o al ADN  esperm&aacute;tico: aspectos cl&iacute;nicos y biol&oacute;gicos</strong></h2>     <p><a href="#cargo">Lic.  Reinaldo Guti&eacute;rrez Guti&eacute;rrez<span class="superscript">1</span></a><a name="autor" id="autor"></a></p> <h4><strong>RESUMEN</strong><strong>&nbsp;</strong></h4>     <p align="justify">Cada vez m&aacute;s, la  integridad del ADN esperm&aacute;tico es reconocida como una medida independiente de  su calidad. La integridad del ADN del espermatozoide es de vital importancia en  el inicio y mantenimiento de un embarazo a t&eacute;rmino tanto <em>in</em> <em>vivo</em> como <em>in vitro</em>. El estudio rutinario del semen  no identifica defectos en la arquitectura de la cromatina esperm&aacute;tica. La  intenci&oacute;n de esta revisi&oacute;n es hacer &eacute;nfasis en la informaci&oacute;n pertinente al  origen, las causas y algunos m&eacute;todos de estudio del da&ntilde;o al ADN esperm&aacute;tico,  especialmente su significaci&oacute;n cl&iacute;nica y su relaci&oacute;n con la infertilidad  masculina. La evaluaci&oacute;n de la integridad del ADN en el espermatozoide, adem&aacute;s  del estudio de los par&aacute;metros sistem&aacute;ticos seminales, podr&iacute;a aportar una  informaci&oacute;n adicional acerca de la calidad del espermatozoide. Esto podr&iacute;a  aliviar los problemas sociales y emocionales asociados con los intentos  fallidos en las t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida.</p>     <p><em>Palabras clave:</em> Infertilidad masculina, ADN del espermatozoide, cromatina esperm&aacute;tica, da&ntilde;o  al ADN.</p>     <p align="justify">La infertilidad afecta  a un 15-20 % de&nbsp; las parejas, y en  aproximadamente la mitad de los casos, es de origen masculino.<span class="superscript">1</span> El  an&aacute;lisis del semen en el que se miden &nbsp;concentraci&oacute;n,&nbsp;  ph, volumen, movilidad y&nbsp; normalidad morfol&oacute;gica de los espermatozoides,&nbsp; y que contin&uacute;a siendo la &nbsp;prueba cl&iacute;nica m&aacute;s importante para predecir  infertilidad, no revela defectos en el espermatozoide&nbsp; que afecten la integridad del genoma  masculino. Existen muchas evidencias que  indican una correlaci&oacute;n negativa entre las alteraciones en la organizaci&oacute;n del  material gen&oacute;mico del ADN&nbsp; del&nbsp; espermatozoide y su potencial de fertilizaci&oacute;n,  tanto <em>in</em> <em>vivo</em> como <em>in vitro</em>. Esto  enfatiza el hecho de que la estabilidad del ADN, que es capaz de  descondensarse&nbsp; en el momento justo del  proceso de fertilizaci&oacute;n, &nbsp;&nbsp;es uno de los  criterios a tener en cuenta al considerar si un espermatozoide es f&eacute;rtil o no.<span class="superscript">2-4</span>  Los pacientes pueden tener espermiogramas normales y seguir siendo inf&eacute;rtiles,  pues el origen de la infertilidad puede ser por la presencia de un ADN del  espermatozoide an&oacute;malo, factor que no se mide de forma sistem&aacute;tica. La  integridad del ADN en el espermatozoide se puede considerar como un par&aacute;metro  independiente e indicativo de su calidad.<span class="superscript">5</span> En esta revisi&oacute;n  identificaremos el origen, las causas, el significado cl&iacute;nico del da&ntilde;o al  ADN&nbsp;en la infertilidad masculina, y algunos  m&eacute;todos de an&aacute;lisis de la integridad de la cromatina.</p> <h4 align="justify"><strong>DA&Ntilde;O AL ADN Y EMBARAZO NORMAL</strong></h4>     <p align="justify">La importancia de la  cromatina del espermatozoide se pone m&aacute;s de manifiesto cuando se utilizan  t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida en parejas inf&eacute;rtiles. La principal  desventaja de estas t&eacute;cnicas es que constituyen una forma de evitar la barrera  de selecci&oacute;n natural que ocurre de forma normal en los tractos reproductivos  masculino y femenino, desde la eyaculaci&oacute;n hasta que el espermatozoide penetra  el &oacute;vulo.<span class="superscript">6</span> La naturaleza proporciona de forma natural m&uacute;ltiples  obst&aacute;culos, y solo el espermatozoide m&aacute;s apto llega a alcanzar y a fecundar el  &oacute;vulo. Los espermatozoides da&ntilde;ados gen&eacute;ticamente pueden ser capaces de  fertilizar cuando se inyectan de manera directa dentro del oocito. Si el ADN  del espermatozoide presenta lesiones, puede dar lugar a un desarrollo an&oacute;malo  embrionario, a un fallo de implantaci&oacute;n, o un aborto en fases m&aacute;s tard&iacute;as.  Cuando el da&ntilde;o del ADN esperm&aacute;tico es compatible con la vida, puede dar lugar a  un ni&ntilde;o con diversas anomal&iacute;as.<span class="superscript">7,8</span> La determinaci&oacute;n de los  par&aacute;metros sistem&aacute;ticos del semen no aporta informaci&oacute;n acerca de la calidad  del espermatozoide, especialmente en las t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida. As&iacute;  pues, puede resultar prudente determinar si hay da&ntilde;o en el ADN de pacientes  est&eacute;riles, especialmente en los casos en los que los par&aacute;metros sistem&aacute;ticos de  rutina&nbsp; no hayan evidenciado ninguna  anomal&iacute;a obvia, y previamente a la utilizaci&oacute;n de cualquier t&eacute;cnica de  reproducci&oacute;n asistida.</p>     <p align="justify">El da&ntilde;o al ADN podr&iacute;a  ser reparado por el ovocito despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n. Esto depende  principalmente de la calidad citoplasm&aacute;tica y gen&oacute;mica del ovocito, y del nivel  de da&ntilde;o en las cadenas de ADN del espermatozoide que haya fecundado al ovocito.  Teniendo en cuenta que la capacidad del ovocito de reparar este tipo de da&ntilde;o  disminuye con la edad, y que, al mismo tiempo, el nivel de fragmentaci&oacute;n de ADN  en los espermatozoides aumenta, ello podr&iacute;a explicar, al menos en parte, la  disminuci&oacute;n significativa en la tasa de embarazo que se observa en parejas de  edad avanzada. El da&ntilde;o al ADN puede observarse en embriones con un complemento  cromos&oacute;mico normal. Los&nbsp; fallos en el  embarazo que se produce tras la implantaci&oacute;n de embriones con un cariotipo  normal, podr&iacute;an explicarse debido a la presencia de ADN no reparado por encima  de un nivel cr&iacute;tico.<span class="superscript">9,10</span> Se puede decir que mientras mayor sea el  grado de fragmentaci&oacute;n de ADN transmitido al embri&oacute;n por el genoma del  espermatozoide, m&aacute;s temprano se observar&aacute; en el proceso de desarrollo  embrionario y viceversa; en cambio, &nbsp;cuanto menor sea el da&ntilde;o de ADN, m&aacute;s tarde se  va a manifestar en el desarrollo embrionario y fetal.</p> <h4><strong>&iquest;QU&Eacute; ES ADN ESPERM&Aacute;TICO NORMAL?</strong></h4>     <p align="justify">El ADN esperm&aacute;tico  est&aacute; organizado de forma tal que mantiene la cromatina compacta y estable. Esta  organizaci&oacute;n del ADN no solo permite que se encuentre muy bien empaquetado el  material gen&eacute;tico para ser transferido al huevo, sino que asegura que el ADN  sea entregado en una forma f&iacute;sica y qu&iacute;mica tal, que contribuya al desarrollo  del embri&oacute;n haciendo&nbsp; m&aacute;s accesible&nbsp; la informaci&oacute;n gen&eacute;tica. El esperma f&eacute;rtil tiene  un ADN estable, el cual es capaz de descondensarse en el momento apropiado del  proceso de la fertilizaci&oacute;n y&nbsp; transmitir  el ADN sin defectos.<span class="superscript">11-13</span></p> <h4><strong>ORIGEN DEL DA&Ntilde;O AL ADN DE ESPERMATOZOIDES</strong></h4>     <p align="justify">El origen de las &nbsp;lesiones en el ADN del espermatozoide puede  deberse a m&uacute;ltiples causas, como son, &nbsp;la  presencia de una enfermedad, el uso de f&aacute;rmacos, la presencia de fiebre alta,  una temperatura testicular elevada, la contaminaci&oacute;n atmosf&eacute;rica, el tabaquismo,  los varicoceles, los factores hormonales, o una edad avanzada. El mecanismo  molecular implicado en estas lesiones se encuentra a&uacute;n bajo intensa&nbsp; investigaci&oacute;n. Los principales mecanismos en  consideraci&oacute;n son: empaquetamiento  anormal del ADN esperm&aacute;tico durante el proceso de espermatogen&eacute;sis,<span class="superscript">14,15</span> la  apoptosis abortiva<span class="superscript">16,17</span> y la presencia o acci&oacute;n sobre el ADN de las  especies reactivas de ox&iacute;geno.<span class="superscript">18-21</span> </p>     <p align="justify"><strong>Empaquetamiento anormal del ADN esperm&aacute;tico</strong>  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Este empaquetamiento  an&oacute;malo&nbsp;podr&iacute;a resultar en defectos en la  conformaci&oacute;n&nbsp; de la cromatina y en  fragmentaci&oacute;n de ADN en los espermatozoides. Para que se produzca el  empaquetamiento de la cromatina del espermatozoide, es necesaria la actividad  de nucleasas end&oacute;genas que corten y liguen el ADN durante su protaminaci&oacute;n.<span class="superscript">22</span>  Estos cortes proporcionar&iacute;an una liberaci&oacute;n de estr&eacute;s torsional que ayuda al  empaquetamiento de la cromatina durante el cambio&nbsp; de las histonas por las protaminas.  Anomal&iacute;as en el control de este proceso  podr&iacute;an resultar en brechas&nbsp; de ADN, no  reparadas. Estas alteraciones se producir&iacute;an antes de la espermiaci&oacute;n.<strong></strong></p>     <p align="justify"><strong>La apoptosis abortiva</strong>  </p>     <p align="justify">La apoptosis controla  la superproducci&oacute;n de gametos masculinos y restringe los niveles normales de  proliferaci&oacute;n, para que no sobrepasen la capacidad de apoyo de las c&eacute;lulas de  Sertoli.<span class="superscript">23</span> La apoptosis de c&eacute;lulas germinales ocurre en los  test&iacute;culos durante la espermatogen&eacute;sis, y da como resultado la activaci&oacute;n de  endonucleasas. Esto ocurre  predominantemente en la espermatogonia y en las c&eacute;lulas en divisi&oacute;n, y genera  numerosas roturas en el ADN dentro de la cromatina.  </p>     <p align="justify">La evidencia sugiere que la  apoptosis ocurre en muchos hombres que exhiben par&aacute;metros esperm&aacute;ticos an&oacute;malos.<span class="superscript">24</span> En ciertos hombres la apoptosis abortiva puede fallar en la  separaci&oacute;n de los espermatozoides enmarcados para eliminar por esta v&iacute;a. Por lo tanto, la subsiguiente poblaci&oacute;n de  espermatozoides puede presentar anomal&iacute;as, representativas de c&eacute;lulas en  apoptosis</p>     <p><strong>Especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS)</strong></p>     <p>La presencia de radicales libres  de ox&iacute;geno ha merecido una atenci&oacute;n especial, tanto por su papel en la  fisiolog&iacute;a como por su implicaci&oacute;n en las enfermedades de la reproducci&oacute;n humana.<span class="superscript">25</span> </p>     <p align="justify">La presencia de estr&eacute;s  oxidativo tiene lugar cuando hay una producci&oacute;n excesiva de especies reactivas  de ox&iacute;geno por parte de los leucocitos, o por los espermatozoides anormales,  y/o se produce una disminuci&oacute;n de la capacidad antioxidante del semen. En  diversos estudios se ha descrito que la presencia de radicales libres de  ox&iacute;geno es una causa importante de lesi&oacute;n en el ADN del espermatozoide.<span class="superscript">26,27</span></p> <h4 align="justify"><strong>M&Eacute;TODOS PARA EVALUAR </strong><strong>LA DE FRAGMENTACI&Oacute;N</strong><strong> DE ADN</strong></h4>     <p align="justify">Por  varios a&ntilde;os los investigadores han buscado la mejor forma de cuantificar el  da&ntilde;o al ADN presente en el ADN de espermatozoides humanos relacionado con la  infertilidad. Actualmente se dispone de varias t&eacute;cnicas que miden el da&ntilde;o al  ADN en los espermatozoides. Algunas eval&uacute;an la integridad del ADN esperm&aacute;tico:  el ensayo TUNEL (Terminal Transferase dUTP Nick End  Labeling),<span class="superscript">28-30</span> el ensayo del an&aacute;lisis de la estructura  cromat&iacute;nica del esperma (SCSA),<span class="superscript">10,31,32</span> el ensayo cometa,<span class="superscript">33</span>  y el <em>test</em> de de dispersi&oacute;n del  cromatina esperm&aacute;tica (SCD).<span class="superscript">34-36</span> Otros ensayos identifican  defectos en el&nbsp; empaquetamiento de la  cromatina esperm&aacute;tica: tinci&oacute;n con azul de toluidina, con naranja acridina y  cromomicina A.<span class="superscript">37-39</span></p> <h4><strong>DA&Ntilde;O AL ADN Y PAR&Aacute;METROS SISTEM&Aacute;TICOS DEL SEMEN</strong></h4>     <p align="justify">Los par&aacute;metros  convencionales del espermiograma (motilidad, morfolog&iacute;a y concentraci&oacute;n) se  correlacionan con el la integridad del ADN del espermatozoide. <em>Irvine</em> y otros confirmaron una  correlaci&oacute;n negativa entre&nbsp; la calidad  del semen y el da&ntilde;o al ADN.<span class="superscript">18</span> Otros estudios muestran que  alteraciones en las caracter&iacute;sticas del espermatozoide se asocian con un  aumento del &iacute;ndice de espermatozoides con el ADN fragmentado.<span class="superscript">40,41</span> En  un estudio en la <em>Cleveland   Clinic,</em> de Ohio,  Estados Unidos, par&aacute;metros est&aacute;ndares del semen y de fragmentaci&oacute;n del ADN  medidos por el ensayo SCSA fueron comparados entre donantes f&eacute;rtiles y  pacientes inf&eacute;rtiles con par&aacute;metros anormales en el semen. La &uacute;nica diferencia  significativa&nbsp; entre estos 2 grupos es que  el &iacute;ndice de fragmentaci&oacute;n (IDF) fue m&aacute;s alto entre los pacientes inf&eacute;rtiles.  Por otra parte, no se observaron diferencias en IDF entre los hombres  inf&eacute;rtiles con par&aacute;metros seminales anormales y normales.<span class="superscript">42</span> Basado  en estos resultados fue posible concluir&nbsp;  que el an&aacute;lisis del da&ntilde;o al ADN revela alteraciones ocultas en hombres  con infertilidad clasificada como idiop&aacute;tica, seg&uacute;n los par&aacute;metros  aparentemente normales del espermiograma.<span class="superscript">43</span> </p> <h4><strong>ADN Y EMBARAZO  NATURAL</strong></h4>     <p align="justify">En 2 trabajos se examinaron  &nbsp;la relaci&oacute;n entre da&ntilde;o en el ADN del  espermatozoide, determinado mediante la t&eacute;cnica del SCSA, y la capacidad de una  pareja para concebir.<span class="superscript">9,10</span> En el estudio de <em>Evenson</em> y otros se incluy&oacute; a 200 parejas con deseo gestacional. Se  detect&oacute; que la dificultad para concebir se daba en varones que presentaban  lesiones en el ADN &ge;30 %,<span class="superscript">9</span> mientras que en otro estudio realizado  por <em>Spano</em> y otros se evidenci&oacute; que  cuando el da&ntilde;o en el ADN es &gt;20 %, se observa una disminuci&oacute;n de la  fertilidad. Cuando el grado de lesi&oacute;n en el ADN sobrepasa el 40 %, la  probabilidad de conseguir un embarazo es m&iacute;nima.<span class="superscript">10</span></p> <h4><strong>LESI&Oacute;N EN EL ADN Y FECUNDACI&Oacute;N <em>IN VITRO </em>(FIV)</strong></h4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Existen&nbsp; numerosos estudios que&nbsp; muestran que los da&ntilde;os en el ADN esperm&aacute;tico  afectan a la fertilizaci&oacute;n y al embarazo tras la realizaci&oacute;n de una FIV. <em>Sun</em> y otros determinaron la  fragmentaci&oacute;n del ADN esperm&aacute;tico y hallaron que el 40 % de los espermatozoides  obtenidos&nbsp; de muestras seminales,  procedentes de la consulta de esterilidad, conten&iacute;a dichas fragmentaciones;  asimismo, en la FIV  observaron una correlaci&oacute;n inversa entre el porcentaje de espermatozoides con  fragmentaci&oacute;n del ADN y el &iacute;ndice de fertilizaci&oacute;n e implantaci&oacute;n.<span class="superscript">5</span>  El grado del da&ntilde;o del ADN esperm&aacute;tico podr&iacute;a ser un &iacute;ndice predictivo del &eacute;xito  en la FIV. <em>Henkel</em> y otros han comunicado que, aunque la fragmentaci&oacute;n  del ADN no muestra una correlaci&oacute;n con el &iacute;ndice de fertilizaci&oacute;n ni con la  fragmentaci&oacute;n del embri&oacute;n, la tasa de gestaciones en la FIV es significativamente m&aacute;s baja cuando los  espermatozoides valorados eran positivos para la prueba TUNEL (&gt;36 %  espermatozoides positivos).<span class="superscript">44</span> Estos estudios apoyan los hallazgos  de <em>Twigg</em> y otros, quienes informaron &nbsp;que un espermatozoide con el ADN da&ntilde;ado puede  fertilizar un oocito mediante FIV o inyecci&oacute;n esperm&aacute;tica intracitoplasm&aacute;tica (ICSI)  y formar un pron&uacute;cleo. Sin embargo, dependiendo del grado de alteraci&oacute;n del  ADN, el desarrollo embrionario resulta afectado en fases posteriores, y en  situaciones severas puede conducir a la muerte del embri&oacute;n.<span class="superscript">6</span></p> <h4><strong>DA&Ntilde;O DEL ADN E ICSI</strong></h4>     <p align="justify">El da&ntilde;o del ADN  esperm&aacute;tico, valorado mediante TUNEL, se relaciona inversamente con la tasa de  fertilizaci&oacute;n en la ICSI.<span class="superscript">2</span> La proporci&oacute;n de espermatozoides con  fragmentaci&oacute;n del ADN influye en la tasa de fecundaci&oacute;n e implantaci&oacute;n de los  embriones obtenidos mediante ICSI y la sit&uacute;a cerca del 10 %. No se origin&oacute;  ning&uacute;n embarazo si hab&iacute;a m&aacute;s de un 20 % de espermatozoides recuperados  positivos para TUNEL, lo que sugiere que el da&ntilde;o del ADN puede tener un buen  valor predictivo en los casos de fallo recidivante en la implantaci&oacute;n de embriones  de buena calidad.<span class="superscript">45</span></p>     <p align="justify">Mediante la t&eacute;cnica  SCSA se puede predecir la falta de embarazo cuando los espermatozoides  recuperados muestran un desnaturalizaci&oacute;n del ADN &aacute;cido-inducido &ge;27 % de IDF.<span class="superscript">46</span>  Sin embargo, en algunos estudios no se ha observado el efecto negativo de los  espermatozoides con ADN defectuoso en la fecundaci&oacute;n y el embarazo. <em>Hammadeh</em> y otros&nbsp; no encontraron diferencias significativas en  los &iacute;ndices de fertilizaci&oacute;n, implantaci&oacute;n y embarazo en pacientes a los que se  les realizaba ICSI con diferentes grados de descondensaci&oacute;n nuclear esperm&aacute;tica.<span class="superscript">47</span></p>     <p align="justify">Recientemente se ha  publicado que el grado de fragmentaci&oacute;n del ADN esperm&aacute;tico y su estabilidad,  pueden predecir el &eacute;xito en el recurso a inseminaciones artificiales  intrauterinas. Los autores refirieron que el grado de fragmentaci&oacute;n del ADN  despu&eacute;s de la preparaci&oacute;n esperm&aacute;tica era significativamente inferior en las  muestras que obtuvieron el embarazo, en relaci&oacute;n con las que no lo lograron. No  se consiguieron embarazos en las pacientes en las que se utilizaron muestras  con &gt;12 % de los espermatozoides con el ADN fragmentado.<span class="superscript">48</span></p> <h4><strong>SIGNIFICACI&Oacute;N  CL&Iacute;NICA DEL ESTUDIO DE LESIONES&nbsp; AL ADN ESPERM&Aacute;TICO</strong></h4>     <p align="justify">El espermiograma  convencional no es&nbsp; &uacute;til en los pacientes  con infertilidad idiop&aacute;tica. Tampoco en las t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida  estos par&aacute;metros seminales cl&aacute;sicos tienen mayor importancia. Las t&eacute;cnicas de  reproducci&oacute;n asistida impiden los&nbsp;  mecanismos de selecci&oacute;n esperm&aacute;tica natural, y permiten incrementar las  posibilidades de que un espermatozoide con material gen&oacute;mico alterado pueda  fertilizar un oocito. Las circunstancias obligan al desarrollo de otros  m&eacute;todos&nbsp; para&nbsp; evaluar la calidad esperm&aacute;tica, como es el  caso del estudio del da&ntilde;o del ADN esperm&aacute;tico, procedimiento que adquiere una  mayor relevancia y del que en la actualidad disponemos ya de numerosa  informaci&oacute;n, que lo relaciona con las t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida y con  el embarazo natural. La mayor&iacute;a de los estudios muestran una correlaci&oacute;n  inversa entre el da&ntilde;o del ADN esperm&aacute;tico y el &iacute;ndice de fertilidad, y revelan  una relaci&oacute;n entre los &iacute;ndices de embarazo y la fragmentaci&oacute;n del ADN. Esto  indica la habilidad del embri&oacute;n en utilizar determinados mecanismos para evitar  la transmisi&oacute;n de anomal&iacute;as en el material gen&oacute;mico.</p> <h4><strong>CONCLUSIONES</strong></h4>     <p align="justify">La evidencia en la literatura muestra que el da&ntilde;o al ADN influye  en la fertilidad de las parejas, incluso si el espermatozoide con lesiones en  el ADN fertiliza un &oacute;vulo y origina un nacimiento, ya que es posible que se  produzca una anomal&iacute;a cong&eacute;nita. Por tanto, se debe estudiar el da&ntilde;o al ADN en  pacientes inf&eacute;rtiles. El estudio del ADN  esperm&aacute;tico puede ayudar en la selecci&oacute;n de espermatozoides con la menor  cantidad de da&ntilde;o para su uso en la concepci&oacute;n asistida. </p>     <p align="justify">Un nuevo campo de investigaci&oacute;n ser&iacute;a identificar    y seleccionar el esperma sin da&ntilde;o en el ADN&nbsp; para ICSI, o remover    el semen da&ntilde;ado de la muestra. Los resultados del estudio de fragmentaci&oacute;n    del ADN ayudar&iacute;an al cl&iacute;nico en la evaluaci&oacute;n, y propiciar&iacute;an    mejor consejo a las parejas inf&eacute;rtiles en relaci&oacute;n con sus posibilidades    de lograr una gestaci&oacute;n a t&eacute;rmino y obtener un ni&ntilde;o sin    alteraciones. Esto puede aliviar los problemas emocionales y sociales &nbsp;asociados    con los intentos fallidos en las t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida.    Estas t&eacute;cnicas tambi&eacute;n podr&iacute;an tener efectos positivos    en la disminuci&oacute;n de la mortalidad infantil en reci&eacute;n nacidos    y en ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os. En estos momentos en el Centro Nacional    de Gen&eacute;tica M&eacute;dica, se est&aacute; trabajando en&nbsp; la validaci&oacute;n    y estandarizaci&oacute;n del Ensayo Cometa y el <em>Test</em> de Dispersi&oacute;n    de la Cromatina Esperm&aacute;tica,&nbsp; para ser utilizado&nbsp; en los estudios    de infertilidad masculina idiop&aacute;tica,&nbsp; y en las parejas con abortos    repetitivos de causas desconocidas.</p> <h4 align="justify">SUMMARY</h4> <h6 align="justify"><strong>Sperm DNA  damage: clinical and biological aspects</strong></h6>     <p align="justify">The DNA integrity is increasingly recognized as a measure independent of its    quality. The sperm DNA integrity is very important in the beginning and maintenance    of a pregnancy at term, both in vivo and in vitro. The routine study of semen    does not identify defects in the architecture of the spermatic chromatin. This    review is aimed at making emphasis on the information related to the origin,    causes and some methods used to study the sperm DNA damage, specially its clinical    significance and its connection with male infertility. The evaluation of the    sperm DNA integrity, besides studying the systematic seminal parameters, may    give additional information about the spermatozoid quality. This could help    to alleviate the social and emotional problems associated with the failed attempts    in the assisted reproductive techniques. </p>     <p><em>Key words:</em> Male infertility, sperm DNA, spermatic chromatin, DNA damage.</p> <h4><strong>REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></h4>     <div align="justify">        ]]></body>
<body><![CDATA[<p>1. Oehninger S. Strategies for the infertile man. Semin Reprod Med. 2001;19:231-7.    </p>       <p>2. Lopes S, Sun JG, Jurisicova A, Meriano J, Casper RF. Sperm deoxyribonucleic      acid fragmentation is increased in poor-quality semen and correlates with      failed fertilization in intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril. 1998;69:528-32.</p> </div>     <div align="justify">       <p>3. Sakkas D, Manicardi GC, Tomlinson M, Mandrioli M, Bizzaro D, Bianchi PG,      et al. The use of the two density gradient centrifugation techniques and the      swim-up method to separate spermatozoa with chromatin and nuclear DNA anomalies.      Hum Reprod. 2000;15:1112-6.</p>       <p>4. Aitken R, Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome.      Reproduction. 2001;122:497-506.</p> </div>     <div align="justify">       <p>5. Sun JG, Jurisicova A, Casper RF. Detection of deoxyribonucleic acid fragmentation      in human sperm: correlation with fertilization in vitro. Biol Reprod. 1997;56:602-7.    </p>       <p>6. Twigg J, Irvine D, Aitken J. Oxidative damage to DNA in human spermatozoa      does not preclude pronucleus formation at intracytoplasmic sperm injection.      Hum Reprod. 1998;13:1864-7.</p> </div>     <div align="justify">       <p>7. Tomsu M, Sharma V, Miller D. Embryo quality and IVF treatmentoutcomes      may correlate with different sperm comet assay parameters. Hum Reprod. 2002;17:1856-62.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>8. Carrell D, Liu L, Peterson C, Jones K, Hatasaka H, Erickson L, et al.      Sperm DNA fragmentation is increased in couples with unexplained recurrent      pregnancy loss. Arch Androl. 2003;49:49-55.</p> </div>     <div align="justify">       <p>9. Evenson DP, Jost LK, Marshall D, Zinaman MJ, Clegg E, Purvis K, et al.      Utility of the sperm chromatin structure assay as a diagnostic and prognostic      tool in the human fertility clinic. Hum Reprod. 1999;14:1039-49.</p>       <p>10. Spano M, Bonde JP, Hjollund HI, Kolstad HA, Cordelli E, Leter G. Sperm      chromatin damage impairs human fertility. The Danish First Pregnancy Planner      Study Team. Fertil Steril. 2000;73:43-50.</p> </div>     <div align="justify">       <p>11. Ward WS, Coffey DS. DNA packaging and organization in mammalian spermatozoa:      comparison with somatic cells. Biol Reprod. 1991;44:569-74.</p>       <p>12. Brewer LR, Corzett M, Balhorn R. Protamine induced condensation and decondensation      of the same DNA molecule. Science. 1999;286:120-3.</p> </div>     <div align="justify">       <p>13. Kosower NS, Katayose H, Yanagimachi R. Thiol-disulfide status and acridine      orange fluorescence of mammalian sperm nuclei. J Androl. 1992;13:342-8.</p>       <p>14. Carrell DT, Liu L. Altered protamine 2 expression is uncommon in donors      of known fertility, but common among men with poor fertilizing capacity, and      may reflect other abnormalities of spermiogenesis. J Androl. 2001;22:604-10.</p> </div>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify">       <p>15. Cho C, Jung-Ha H, Willis WD, et al. Protamine 2 deficiency leads to sperm      DNA damage and embryo death in mice. Biol Reprod. 2003;69:211-7.</p>       <p>16. Singh NP, Muller CH, Berger RE. Effects of age on DNA double-strand breaks      and apoptosis in human sperm. Fertil Steril. 2003;80:1420-30.</p> </div>     <div align="justify">       <p>17. Brinkworth MH, Nieschlag E. Association of cyclophosphamide-induced male-mediated,      foetal abnormalities with reduced paternal germ-cell apoptosis. Mutat Res.      2000;447:149-54.</p>       <p>18. Irvine DS, Twigg JP, Gordon EL, et al. DNA integrity in human spermatozoa:      relationships with semen quality. J Androl. 2000;21:33-44.</p> </div>     <div align="justify">       <p>19. Gomez E, Buckingham DW, Brindle J, et al. Development of an image analysis      system to monitor the retention of residual cytoplasm by human spermatozoa:      correlation with biochemical markers of the cytoplasmic space, oxidative stress,      and sperm function. J Androl. 1996;17:276-87.</p>       <p>20. Ochsendorf FR. Infections in the male genital tract and reactive oxygen      species. Hum Reprod Update. 1999;5:399-420.</p> </div>     <div align="justify">        ]]></body>
<body><![CDATA[<p>21. Smith R, Kaune H, Parodi D, Madariaga M, Rios R, Morales I, Castro A.      Increased sperm DNA damage in patients with varicocele: relationship with      seminal oxidative stress. Hum Reprod. 2006;21(4):986-93. </p>       <p>22. Sakkas D, Mariethoz E, Manicardi G, Bizzaro D, Bianchi PG, Bianchi U.      Origin of DNA damage in ejaculated human spermatozoa. Rev Reprod. 1999;4:31-7.</p> </div>     <div align="justify">       <p>23. Kocak I, Dundar M, Hekimgil M, Okyay P. Assessment of germ cell apoptosis      in cryptorchid rats. Asian J Androl. 2002;4:183-6.</p>       <p>24. The relationship between human semen characteristics and sperm apoptosis:      a pilot study. J Androl. 2006;27(1):112-20.</p> </div>     <div align="justify">        <p>25. Agarwal A, Saleh RA, Bedaiwy MA. Role of reactive oxygen species in the      pathophysiology of human reproduction. Fertil Steril. 2003;79:829-43.</p>       <p>26. Barroso G, Morshedi M, Oehninger S. Analysis of DNA fragmentation, plasma      membrane translocation of phosphatidylserine and oxidative stress in human      spermatozoa. Hum Reprod. 2000;15:1338-44.</p> </div>     <div align="justify">       <p>27. Moustafa MH, Sharma RK, Thornton J, Mascha E, Abdel-Hafez MA, Thomas      AJ Jr, et al. Relationship between ROS production, apoptosis and DNA denaturation      in spermatozoa from patients examined for infertility. Hum Reprod. 2004;19:129-38.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>28. Sailer BL, Jost LK, Evenson DP. Mammalian sperm DNA susceptibility to      in situ denaturation associated with the presence of DNA strand breaks as      measured by the terminal deoxynucleotidyl transferase assay. J Androl. 1995;16:8.</p> </div>     <div align="justify">       <p>29. Kodama H, Yamaguchi R, Fukuda J, et al. Increased oxidative deoxyribonucleic      acid damage in the spermatozoa of infertile male patients. Fertil Steril.      1997;68:519-24.</p>       <p>30. Carrell D, Liu L, Peterson C, Jones K, Hatasaka H, Erickson L, et al.      Sperm DNA fragmentation is increased in couples with unexplained recurrent      pregnancy loss. Arch Androl. 2003;49:49-55.</p> </div>     <div align="justify">       <p>31. Spano M, Kolstad A, Larsen S, Cordelli E, Leter G, Giwercman A, et al.      The applicability of the flow cytometric sperm chromatin structure assay in      epidemiological studies. Hum Reprod. 1998;13:2495-505.</p>       <p>32. Larson K, DeJonge C, Barnes A, Jost L, Evenson D. Sperm chromatin structure      assay parameters as predictors of failed pregnancy following assisted reproductive      techniques. Hum Reprod. 2000;15:1717-22.</p> </div>     <div align="justify">       <p>33. Abu-Hassan D, Koester F, Shoepper B, Schultze-Mosgau A, Asimakopoulos      B, Diedrich K, et al. Comet assay of cumulus cells and spermatozoa DNA status,      and the relationship to oocyte fertilization and embryo quality following      ICSI. Reprod Biomed Online. 2006;12(4):447-52.</p>       <p>34. Fernandez JL, Muriel L, Goyanes V, Segrelles E, Gosalvez J, Enciso M,      et al. Simple determination of human sperm DNA fragmentation with an improved      sperm chromatin dispersion test. Fertil Steril. 2005;84(4):833-42.</p> </div>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify">       <p>35. Enciso M, Muriel L, Fernandez JL, Goyanes V, Segrelles E, Marcos M, Infertile      men with varicocele show a high relative proportion of sperm cells with intense      nuclear damage level, evidenced by the sperm chromatin dispersion test. J      Androl. 2006;27(1):106-11.</p>       <p>36. Fern&aacute;ndez JL, Muriel L, Rivero MT, Goyanes V, Vazquez R, Alvarez      JG. The sperm chromatin dispersion test: a simple method for the determinationof      sperm DNA fragmentation. J Androl. 2003;24:59&ndash;66.</p> </div>     <div align="justify">       <p>37. Donnelly E, McClure N, Lewis S. The effect of ascorbate and alpha-tocopherol      supplementation in vitro on DNA integrity and hydrogen peroxide-induced DNA      damage in human spermatozoa. Mutagenesis. 1999;14:505-12.</p>       <p>38. Clarkson JS. Significance of reactive oxygen species and antioxidants      in defining the efficacy of sperm preparation techniques. J Androl. 1988;9:367-76.</p> </div>     <div align="justify">       <p>39. Gopalkrishnan K, Hurkadli K, Padwal V, Balaiah D. Use of acridine orange      to evaluate chromatin integrity of human spermatozoa in different groups of      infertile men. Andrologia.1999;31:277-82.</p>       <p>40. Zini A, Bielecki R, Phang D, Zenzes M. Correlations between two markers      of sperm DNA integrity, DNA denaturation and DNA fragmentation, in fertile      and infertile men. Fertil Steril. 2001;75:674-77.</p> </div>     <div align="justify">       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>41. Sakkas D. Interrelationships between seminal parameters and sperm nuclear      DNA damage before and after density gradient centrifugation: implications      for assisted conception. Hum Reprod. 2001;16:2160-5.</p>       <p>42. Agarwal A, Said TM. Role of sperm chromatin abnormalities and DNA damage      in male infertility. Hum Reprod Update. 2003;9:331-45. </p> </div>     <div align="justify">        <p>43. Saleh RA, Agarwal A, Nada EA, El-Tonsy MH, Sharma RK, Meyer A, et al.      Negative effects of increased sperm DNA damage in relation to seminal oxidative      stress in men with idiopathic and male factor infertility. Fertil Steril.      2003;79:Suppl 3:1597-605. </p>       <p>44. Henkel R, Kierspel E, Hajimohammad M, Stalf T, Hoogendijk C, Mehnert      C, et al. DNA fragmentation of spermatozoa and assisted reproduction technology.      Reprod Biomed Online. 2003;7:477-84.</p> </div>     <div align="justify">       <p>45. Benchaib M, Braun V, Lornage J, Hadj S, Salle B, Lejeune H, et al. Sperm      DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive      technique. Hum Reprod. 2003;18:1023-8.</p>       <p>46. Evenson D, Wixon R. Meta-analysis of sperm DNA fragmentation using the      sperm chromatin structure assay. Reprod Biomed Online. 2006 Apr;12(4):466-72.</p> </div>     <div align="justify">       <p>47. Hammadeh ME, Al-Hasani S, Gauss C, Rosenbaum P, Georg T, Diedrich K,      et al. Predictive value of chromatin decondensation in vitro on fertilization      rate after intracytoplasmic sperm injection (ICSI). Int J Androl. 2001;24:311-6.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>48. Duran EH, Morshedi M, Taylor S, Oehninger S. Sperm DNA quality predicts      intrauterine insemination outcome: a prospective cohort study. Hum Reprod.      2002;17:3122-8.</p> </div>     <p>Recibido: 15 de febrero de  2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp; Aprobado: 2 de abril de 2007.<br />   Lic. <em>Reinaldo&nbsp; Guti&eacute;rrez Guti&eacute;rrez.</em> Centro Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica. Calle 146&nbsp;  # 3 102 esquina a&nbsp; ave. 31,  municipio Playa, Ciudad de La Habana, Cuba. E mail:&nbsp;&nbsp; <a href="mailto:rey@infomed.sld.cu">rey@infomed.sld.cu</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;</p>     <p><a href="#autor">&nbsp;<span class="superscript">1</span>Licenciado  en Ciencias Farmac&eacute;uticas. M&aacute;ster en Gen&eacute;tica M&eacute;dica. Investigador Agregado del Centro Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica del  Instituto Superior de Ciencias M&eacute;dicas de La Habana.</a><a name="cargo" id="cargo"></a></p>      ]]></body>
</article>
