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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Remoción de azul brillante de remazol R de soluciones acuosas empleando biomasa de levadura]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The main purpose of this study was to obtain kinetic and equilibrium parameters for the anthraquinone dye r emoval of Remazol Brilliant Blue R dye from aqueous solutions using yeast biomass as biosorbent, and identify the functional groups responsible for biosorption by infrared spectrometry. Biosorption dye kinetics at temperatures of 10 °C, 20 °C, 30 °C and 40 °C were fitted correctly by the pseudo-first and pseudo-second order models. The values of thermodynamic activation parameters indicated that the biosorption process is endothermic and no spontaneous. Sorption isotherm at 20 °C, pH 2,0 and a biomass concentration of 1,0 g L-1 was obtained, finding a value of 127,6 mg g-1 for the saturated monolayer according to the Langmuir model. Infrared studies showed that carboxyl and amide are the main functional groups responsible for dye biosorption.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ARTICULOS</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b><font size="4"><strong>Remoci&oacute;n de azul brillante de remazol R de soluciones acuosas empleando biomasa de levadura</strong></font></b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3"> Removal of remazol brilliant blue R dye from aqueous solutions using yeast biomass as biosorbent</font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Ing.  Karen L. Barreda-Reyes, Ing.  Jocelyn Ortega-L&oacute;pez, Dra. C. Ana E. Ortega-Regules<strong>, Dr. C. Luis A. Santiago-Santiago</strong>, Dra. C. Alma R. Netzahuatl-Mu&ntilde;oz</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Universidad Polit&eacute;cnica de Tlaxcala, Tlaxcala, M&eacute;xico,  <a href="mailto:karenlizbeth.barreda@uptlax.edu.mx">karenlizbeth.barreda@uptlax.edu.mx</a>, <a href="mailto:jos306@hotmail.com">jos306@hotmail.com</a>, <a href="mailto:anaregules@hotmail.com">anaregules@hotmail.com</a>, <a href="mailto:luisalberto.santiago@uptlax.edu.mx">luisalberto.santiago@uptlax.edu.mx</a>, <a href="mailto:almarosa.netzahuatl@uptlax.edu.mx">almarosa.netzahuatl@uptlax.edu.mx</a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El prop&oacute;sito principal de este trabajo fue obtener par&aacute;metros cin&eacute;ticos y en equilibrio para el proceso de remoci&oacute;n de colorante de antraquinona azul brillante de remazol R de soluciones acuosas, empleando biomasa de levadura como biosorbente, as&iacute; como identificar los grupos funcionales responsables de la biosorci&oacute;n por espectrometr&iacute;a de infrarrojo. Las cin&eacute;ticas de biosorci&oacute;n del colorante a temperaturas de 10 &deg;C, 20 &deg;C, 30 &deg;C y 40 &deg;C se ajustaron correctamente a los modelos de seudo-primer y seudo-segundo orden. Los valores de los par&aacute;metros termodin&aacute;micos de activaci&oacute;n calculados indicaron que el proceso es endot&eacute;rmico y no espont&aacute;neo. Se obtuvo la isoterma de sorci&oacute;n a 20 &deg;C, pH 2,0 y 1,0 g de biomasa L<sup>-1</sup>, encontr&aacute;ndose un valor de 127,6 mg g<sup>-1</sup> para la monocapa saturada de acuerdo al modelo de Langmuir. Los estudios de infrarrojo mostraron que los grupos carboxilo y amida son los principales grupos funcionales responsables de la biosorci&oacute;n del colorante.     <br>       <br> </font><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> azul brillante de remazol R, biosorci&oacute;n, biomasa de levadura.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> The main purpose of this study was to obtain kinetic and equilibrium parameters for the anthraquinone dye r emoval of Remazol Brilliant Blue R dye from aqueous solutions using yeast biomass as biosorbent, and identify the functional groups responsible for biosorption by infrared spectrometry. Biosorption dye kinetics at temperatures of 10 &deg;C, 20 &deg;C, 30 &deg;C and 40 &deg;C were fitted correctly by the pseudo-first and pseudo-second order models. The values of thermodynamic activation parameters indicated that the biosorption process is endothermic and no spontaneous. Sorption isotherm at 20 &deg;C, pH 2,0 and a biomass concentration of 1,0 g L<sup>-1</sup> was obtained, finding a value of 127,6 mg g<sup>-1</sup> for the saturated monolayer according to the Langmuir model. Infrared studies showed that carboxyl and amide are the main functional groups responsible for dye biosorption.     <br>       <br> </font><font size="2" face="Verdana"><b>Keywords:</b> remazol R brilliant blue, biosorption, yeast biomass.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3" face="Verdana">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La industria textil es una de las actividades econ&oacute;micas m&aacute;s importantes en el estado de Tlaxcala, M&eacute;xico; esta industria es bien conocida por generar gran cantidad de agua contaminada con colorantes sint&eacute;ticos provenientes principalmente de sus unidades de te&ntilde;ido, lavado y acabado. Las principales caracter&iacute;sticas por la que estos colorantes son utilizados en la industria textil son porque proporcionan una gama brillante de coloraci&oacute;n y pueden ser usados en diferentes m&eacute;todos de aplicaci&oacute;n [1]. Cuando se aplican en fibras dan un color permanente capaz de resistir la decoloraci&oacute;n en exposici&oacute;n al sudor, la luz, el agua y a gran cantidad de productos qu&iacute;micos, incluyendo agentes oxidantes y al ataque microbiano [2]. Sin embargo, los colorantes textiles, as&iacute; como los efluentes de la industria textil tienen efectos t&oacute;xicos y pueden ser carcinog&eacute;nicos, mutag&eacute;nicos o teratog&eacute;nicos en varios organismos [3]. Por lo tanto, el tratamiento de efluentes industriales que contienen colorantes y sus metabolitos es necesario para su descarga final al medio ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Existen diversos m&eacute;todos fisicoqu&iacute;micos empleados para la remoci&oacute;n de colorantes en los efluentes, como son la coagulaci&oacute;n-floculaci&oacute;n, oxidaci&oacute;n, filtraci&oacute;n en membrana, fot&oacute;lisis y procesos electroqu&iacute;micos, entre otros. La principal desventaja de los m&eacute;todos fisicoqu&iacute;micos radica en la adquisici&oacute;n continua de agentes qu&iacute;micos, la generaci&oacute;n de gran cantidad de lodo qu&iacute;mico o bien los altos costos de equipo especializado [4, 5]. En a&ntilde;os recientes se ha incrementado el inter&eacute;s por el uso de m&eacute;todos biol&oacute;gicos, en particular, la biosorci&oacute;n se considera uno de los m&eacute;todos m&aacute;s promisorios para la remoci&oacute;n de colorantes de aguas residuales, debido principalmente a su buen desempe&ntilde;o y a su bajo costo [4, 6, 7]; por otra parte, debido a la diversidad gen&eacute;tica, versatilidad metab&oacute;lica y amplia distribuci&oacute;n de los microorganismos, se considera que el uso de su biomasa como material adsorbente es una alternativa viable para remediar los problemas de contaminaci&oacute;n causados por los colorantes [8].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El colorante de antraquinona azul brillante de remazol R (RBBR por sus siglas en ingl&eacute;s) es uno de los m&aacute;s colorantes m&aacute;s importantes en la industria textil [9]. En estudios anteriores se determin&oacute; que el empleo de biomasa de la levadura KB-a1 puede ser apta para la remoci&oacute;n de colorantes sint&eacute;ticos azoicos y antraquinoides [10]; para el caso del RBBR se determin&oacute; que las condiciones de pH &oacute;ptimas para el proceso es 2,0, ya que bajo estas condiciones ambientales el colorante presenta carga negativa, debido a los grupos sulfonato que contiene. Por otra parte, el punto de carga cero de la biomasa de levadura present&oacute; un valor de 6,5, por lo que se encuentra cargada positivamente a valores bajos de pH, favoreciendo la biosorci&oacute;n del colorante [10].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El objetivo de este trabajo fue obtener par&aacute;metros cin&eacute;ticos y en equilibrio para el proceso de remoci&oacute;n de colorante azul brillante de remazol R de soluciones acuosas a pH 2,0 por la biomasa de la levadura KB-a1, as&iacute; como identificar los grupos funcionales responsables de la biosorci&oacute;n mediante espectrometr&iacute;a de infrarrojo.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><em><strong>M&eacute;todos experimentales</strong></em></font></p>     <p align="justify"><em><strong><font size="2" face="Verdana">Material biol&oacute;gico</font></strong></em></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La levadura empleada en este trabajo, denominada KB-a1, se aisl&oacute; de un lote de muestras de suelo contaminado con residuos de una industria textil provenientes de la localidad de San Mateo Ayecatl, municipio de Tepetitla de Lardizabal, en el Estado de Tlaxcala, M&eacute;xico. La biomasa para los experimentos de biosorci&oacute;n se obtuvo al crecer la levadura en un medio de cultivo conteniendo glucosa (1,0 g L<sup>-1</sup>), NH<sub>4</sub> NO<sub>3</sub> (1,0 g L<sup>-1</sup>), K<sub>2</sub> HPO<sub>4</sub> (0,9 g L<sup>-1</sup>), KCl (0,2 g L<sup>-1</sup>), MgSO<sub>4</sub> (0,2 g L<sup>-1</sup>), FeSO<sub>4</sub> (0,002 g L<sup>-1</sup>), MnSO<sub>4</sub> (0,002 g L<sup>-1</sup>) y ZnSO 4 (0,002 g L<sup>-1</sup>); el cultivo se mantuvo en agitaci&oacute;n durante 48 h, posteriormente la biomasa se cosech&oacute; por centrifugaci&oacute;n, se lav&oacute;, se deshidrat&oacute; en un horno a 60 &deg;C por 24 h y se tritur&oacute;.   </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><em><strong>Colorante</strong></em></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Se utiliz&oacute; el reactivo del colorante azul brillante de remazol R con 50 % de pureza (Sigma Aldrich) para preparar una soluci&oacute;n de 1 000 mg L<sup>-1</sup>, a partir de la cual se prepararon las soluciones de concentraci&oacute;n menor al diluirla con agua desionizada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Estudios de remoci&oacute;n de colorante azul brillante de remazol R</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los estudios cin&eacute;ticos se realizaron empleando soluciones de colorante a concentraci&oacute;n inicial de 90 mg L<sup>-1</sup> a pH 2,0 y 1,0 g L<sup>-1</sup> de biomasa de levadura en agitaci&oacute;n constante a temperaturas de 10 &deg;C, 20 &deg;C, 30 &deg;C y 40 &deg;C; en estos estudios se obtuvieron 15 muestras durante 24 min de contacto. En los estudios en equilibrio se pusieron en contacto soluciones de colorante entre 10 mg L<sup>-1</sup> y 500 mg L<sup>-1</sup> a pH 2,0 y 20 &deg;C con biomasa a una concentraci&oacute;n de 1,0 g L<sup>-1</sup> durante 2 h.     <br>       <br> </font><font size="2" face="Verdana"><em><strong>M&eacute;todos an&aacute;liticos</strong></em></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Las muestras se filtraron a trav&eacute;s de membranas de fibra de vidrio (poro de 1,6 µm) y al filtrado se le determin&oacute; la concentraci&oacute;n final de colorante empleando un espectrofot&oacute;metro Cary 300 (Varian Inc.) a 592 nm. El pH se midi&oacute; con un potenci&oacute;metro (Conductronic). Los espectros de infrarrojo se obtuvieron en un espectrofot&oacute;metro Perkin Elmer (Spectrum 2000 FTIR) en el intervalo de 400 cm<sup>-1</sup> a 4 000 cm<sup>-1</sup> y con una resoluci&oacute;n de 4 cm<sup>-1</sup> empleando un aditamento de reflectancia difusa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>C&aacute;lculo de la capacidad de biosorci&oacute;n de colorante</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong> </strong></font><font size="2" face="Verdana"> La cantidad de colorante removido por cada gramo de biomasa de levadura en peso seco q (mg g<sup>-1</sup>) se calcul&oacute; utilizando la ecuaci&oacute;n (<a href="#e1">1</a>):</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e1" id="e1"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0106215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Modelado de las cin&eacute;ticas de biosorci&oacute;n</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los datos experimentales de las cin&eacute;ticas de biosorci&oacute;n fueron analizados empleando los modelos de pseudo-primer y pseudo-segundo orden.</font></p>     <div align="justify"><font size="2" face="Verdana">La expresi&oacute;n representada por la ecuaci&oacute;n (<a href="#e2">2</a>) es la forma no lineal del modelo de pseudo-primer orden [11]:</font></div>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e2" id="e2"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0206215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El modelo de pseudo-segundo orden tiene la forma integrada y no lineal representada en la ecuaci&oacute;n (<a href="#e3">3</a>) [12]:</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e3" id="e3"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0306215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Estudio termodin&aacute;mico</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La energ&iacute;a de activaci&oacute;n se obtuvo a trav&eacute;s de la expresi&oacute;n de la ley de Arrhenius que relaciona la constante de velocidad k con la temperatura (<a href="#e4">4</a>):</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e4" id="e4"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0406215.gif"></font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los valores de los <em>E<sub>a</sub></em> y <em>A </em> se obtuvieron por regresi&oacute;n no lineal de <em>k vs. T </em> empleando el software GraphPad Prism 6 (GraphPad Software Inc.).</font></p>     <div align="justify"><font size="2" face="Verdana">Adem&aacute;s, se calcularon la entalp&iacute;a y entrop&iacute;a de activaci&oacute;n (&Delta;H* y &Delta;S*) empleando la ecuaci&oacute;n (<a href="#e5">5</a>) de la teor&iacute;a del estado de transici&oacute;n [13]:</font></div>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e5" id="e5"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0506215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los valores de los par&aacute;metros de activaci&oacute;n se obtuvieron por regresi&oacute;n no lineal de <em>k/T vs. T </em> empleando el software GraphPad Prism 6 (GraphPad Software Inc.).</font></p>     <div align="justify"><font size="2" face="Verdana">La energ&iacute;a libre de activaci&oacute;n (&Delta;G*) del proceso de sorci&oacute;n se calcul&oacute; para cada temperatura ensayada de acuerdo a la expresi&oacute;n representada por la ecuaci&oacute;n (<a href="#e6">6</a>):</font></div>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e6" id="e6"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0606215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Modelado de las isotermas de biosorci&oacute;n</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los datos experimentales fueron analizados empleando los modelos de Langmuir y de Freundlich. El modelo de Langmuir asume que todos los sitios de sorci&oacute;n son id&eacute;nticos, que cada sitio retiene una mol&eacute;cula y que todos los sitios son energ&eacute;tica y est&eacute;ricamente independientes de la cantidad de soluto adsorbido [14]. La expresi&oacute;n matem&aacute;tica del modelo se representa mediante la ecuaci&oacute;n  (<a href="#e7">7</a>):</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e7" id="e7"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0706215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La isoterma de Freundlich se expresa mediante la ecuaci&oacute;n (<a href="#e8">8</a>):</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e8" id="e8"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/e0806215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los valores de las constantes de los modelos de biosorci&oacute;n en el equilibrio se obtuvieron por regresi&oacute;n no lineal de <em>q<sub>e</sub> vs. C<sub>e</sub></em> empleando el software GraphPad Prism 6 (GraphPad Software Inc.).</font></p>     <p align="justify">&nbsp; </p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><em><strong>Estudios cin&eacute;ticos</strong></em></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Las cin&eacute;ticas de remoci&oacute;n del RBBR a temperaturas de 10 &deg;C, 20 &deg;C, 30 &deg;C y 40 &deg;C se presentan en la <a href="#f1">figura 1</a>. Como puede observarse, la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de colorante en la soluci&oacute;n por la biomasa de la levadura KB-a1 se llev&oacute; a cabo r&aacute;pidamente, despu&eacute;s del primer minuto de contacto la concentraciones se encontraban entre 36 mg L<sup>-1</sup> y 39 mg L<sup>-1</sup> para todas las condiciones de temperataura ensayadas. Hay que se&ntilde;alar que en el experimento llevado a cabo a 40 &deg;C se observ&oacute; que la biomasa formaba agregados que no se dispersaban f&aacute;cilmente, este fen&oacute;meno podr&iacute;a haber dificultado la transferencia del colorante hacia los sitios activos del material biol&oacute;gico. El descenso de la concentraci&oacute;n de colorante despu&eacute;s del primer minuto fue peque&ntilde;a y a partir del minuto 10 y hasta el final del experimento puede considerarse pr&aacute;cticamente constante, es decir, que el sistema alcanz&oacute; el equilibrio aproximadamente a los 10 min, las concentraciones finales de colorante se encontraron entre 29 mg L<sup>-1</sup> y 30 mg L<sup>-1</sup>. En la <a href="#f2">figura 2</a> se aprecia claramente que la capacidad de biosorci&oacute;n alcanzada fue similar para las cuatro condiciones de temperatura con valores entre 60,3 mg g<sup>-1</sup> y 60,9 mg g<sup>-1</sup>, estos valores se encuentran reportados en la <a href="#t1">tabla 1</a> como capacidad experimental en el equilibrio ( <em>q</em><em><sub>exp</sub></em>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f1" id="f1"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/f0106215.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f2" id="f2"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/f0206215.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Se llev&oacute; a cabo el an&aacute;lisis de las cin&eacute;ticas de biosorci&oacute;n empleando los modelos cin&eacute;ticos de biosorci&oacute;n de pseudo-primer y pseudo-segundo orden. En la <a href="#t1">tabla 1</a> se aprecia que ambos modelos presentan coeficientes de correlaci&oacute;n con valores superiores a 0,98; en cuanto a los valores de las capacidades en el equilibrio (<em>q<sub>e</sub></em>) que predijeron los modelos, ambos mostraron valores muy cercanos a los valores m&aacute;ximos alcanzados experimentalmente. En relaci&oacute;n con el valor de la constante velocidad, ambos modelos mostraron un incremento al aumentar la temperatura entre 10 &deg;C y 30 &deg;C; sin embargo, se observ&oacute; un ligero descenso a 40 &deg;C, debido a posibles problemas de transferencia de masa causados por la aglomeraci&oacute;n del biomaterial. En la <a href="#f2">figura 2</a> se presentan las l&iacute;neas de tendencia de ambos modelos y se comprueba el buen ajuste que hacen de los datos experimentales.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t1" id="t1"></a><strong>TABLA 1. CONSTANTES CIN&Eacute;TICAS DE LOS MODELOS DE PSEUDO-PRIMER Y    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   PSEUDO-SEGUNDO ORDEN PARA LA BIOSORCI&Oacute;N DE RBBR POR BIOMASA DE LA LEVADURA    <br>   KB-a1 A DIFERENTES CONDICIONES DE TEMPERATURA</strong></font></p>     <div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="89" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Temperatura       </font><font size="2" face="Verdana">(&deg;C)</font></p>       </td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>q<sub>exp    <br>             <br>       </sub></em></font><font size="2" face="Verdana">(mg g<sup>-1</sup>) </font></p>       </td>       <td colspan="3" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Pseudo-primer orden </font></p></td>       <td colspan="4" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Pseudo-segundo orden </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="89" valign="top">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="63" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="61" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>q<sub>e    <br>             <br>       </sub></em></font><font size="2" face="Verdana">(mg g<sup>-1</sup>) </font></p>          </td>       <td width="48" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>k<sub>1     <br>             <br>       </sub></em></font><font size="2" face="Verdana">(h<sup>-1</sup>) </font></p>          </td>       <td width="57" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>R<sup>2</sup></em></font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>q<sub>e</sub></em></font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(mg g<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="93" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>h </em></font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(mg g<sup>-1</sup> h <sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="95" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>k<sub>2</sub></em></font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(g mg<sup>-1</sup> h<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="60" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>R<sup>2</sup></em></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="89" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">10 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">60,4 </font></p></td>       <td width="61" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">58,59 </font></p></td>       <td width="48" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">116,8 </font></p></td>       <td width="57" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,992 5 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">60,08 </font></p></td>       <td width="93" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">20120 </font></p></td>       <td width="95" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">5,574 </font></p></td>       <td width="60" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,995 6 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="89" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">20 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">60,9 </font></p></td>       <td width="61" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">59,29 </font></p></td>       <td width="48" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">122,2 </font></p></td>       <td width="57" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,988 3 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">60,71 </font></p></td>       <td width="93" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">20944 </font></p></td>       <td width="95" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">5,682 </font></p></td>       <td width="60" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,995 5 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="89" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">30 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">60,5 </font></p></td>       <td width="61" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">58,86 </font></p></td>       <td width="48" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">139,3 </font></p></td>       <td width="57" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,991 6 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">59,90 </font></p></td>       <td width="93" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">28375 </font></p></td>       <td width="95" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">7,908 </font></p></td>       <td width="60" valign="bottom">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,999 0 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="89" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">40 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">60,3 </font></p></td>       <td width="61" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">58,74 </font></p></td>       <td width="48" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">123,5 </font></p></td>       <td width="57" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,996 0 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">59,98 </font></p></td>       <td width="93" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">22341 </font></p></td>       <td width="95" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">6,210 </font></p></td>       <td width="60" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,998 0 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>     <p align="justify"> <font size="2" face="Verdana">Para el c&aacute;lculo de los par&aacute;metros termodin&aacute;micos de activaci&oacute;n se consideraron &uacute;nicamente los datos correspondientes a las constantes de velocidad obtenidas a temperaturas de 10 &deg;C, 20 &deg;C y 30 &deg;C. En la <a href="#t2">tabla 2</a> se reportan los resultados obtenidos al ajustar los valores de las constantes de velocidad obtenidas con el modelo de pseudo-primer orden, ya que fueron con los que se obtuvo un mayor coeficiente de correlaci&oacute;n (R<sup>2</sup> = 0,92). El valor de <em>E</em><sub>a</sub> para el proceso de biosorci&oacute;n del colorante (6,443 kJ mol<sup>-1</sup>) sugiere que la adsorci&oacute;n es de tipo qu&iacute;mico, ya que en la adsorci&oacute;n f&iacute;sica la <em>E</em><sub>a</sub> no es superior a 4,2 kJ mol<sup>-1</sup> [15]. El valor positivo de &Delta;H* (6,443 kJ mol<sup>-1</sup>) indica que la reacci&oacute;n es endot&eacute;rmica, mientras que el valor negativo de &Delta;S* (-0,203 4 kJ mol<sup>-1</sup> K<sup>-1</sup>) refleja que no ocurren cambios significativos en la estructura del biosorbente durante el proceso de biosorci&oacute;n [16]. En cuanto a &Delta;G*, este present&oacute; valores positivos entre 64,03 y 68,10 kJ mol<sup>-1</sup>, lo que indica que la reacci&oacute;n no es espont&aacute;nea.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t2" id="t2"></a><strong>TABLA  2. PAR&Aacute;METROS TERMODIN&Aacute;MICOS DE ACTIVACI&Oacute;N PARA LA REMOCI&Oacute;N    <br> DE  RBBR POR BIOMASA DE LA LEVADURA KB-a1</strong></font></p>     <div align="center">   <table width="47%" border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="13%" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">T (&deg;C) </font></p></td>       <td width="17%" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>E</em><sub>a</sub></font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(kJ mol<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="12%" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>A </em></font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(s<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="16%" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">&Delta;H*</font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(kJ mol<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="21%" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">&Delta;S*</font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(kJ mol<sup>-1</sup> K<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="21%" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">&Delta;G*</font></p>               <p align="center"><font size="2" face="Verdana">(kJ mol<sup>-1</sup>) </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="13%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">10 </font></p></td>       <td width="17%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="12%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="16%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="21%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="21%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">64,03 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="13%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">20 </font></p></td>       <td width="17%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">6,443 </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,492 3 </font></p></td>       <td width="16%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">6,443 </font></p></td>       <td width="21%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">-0,203 4 </font></p></td>       <td width="21%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">66,07 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="13%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">30 </font></p></td>       <td width="17%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="12%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="16%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="21%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="21%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">68,10 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Estudios en equilibrio</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> En la <a href="#f3">figura 3</a> se muestra la isoterma de sorci&oacute;n de RBBR obtenida por la biomasa de levadura a pH 2,0 y 20 &deg;C; a bajas concentraciones de colorante en el equilibrio se observ&oacute; una relaci&oacute;n lineal entre la capacidad de biosorci&oacute;n y la concentarci&oacute;n de colorante; sin embargo, a partir de 60 mg L<sup>-1</sup> la proporci&oacute;n del incremento de la capacidad de biosorci&oacute;n es menor en relaci&oacute;n con el incremento de la concentraci&oacute;n del colorante, lo cual sugiere la posible saturaci&oacute;n de los sitios activos de biosorci&oacute;n. La isoterma se analiz&oacute; con los modelos de Langmuir y Freundlich; en la <a href="#t3">tabla 3</a> se presentan los valores de las constantes correspondientes. Ambos modelos presentaron coeficientes de correlaci&oacute;n altos (R<sup>2</sup> = 0,95), las curvas correspondientes se presentan en la <a href="#f3">figura 3</a> y al compararlas con los valores experimentales se observa que el modelo de Langmuir se ajusta mejor a los datos experimentales a bajas concentraciones de colorante, mientras que el modelo de Freundlich lo hace mejor a concentraciones altas de colorante. Estos resultados podr&iacute;an deberse a la presencia de gran variedad de sitios activos en el material biol&oacute;gico con distinta afinidad al colorante. Un par&aacute;metro importante obtenido para los estudios de biosorci&oacute;n en el equilibrio es el valor de la monocapa saturada; para el proceso de remoci&oacute;n de RBBR por biomasa de la levadura KB-a1 este valor alcanz&oacute; 127,6 mg g-1, superior a 95,2 mg g-1 correspondiente a la reportada para la biosorci&oacute;n de RBBR por biomasa de <em>Scenedesmus quadricauda </em> inactivada con calor e inmovilizada en alginato [9].</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f3" id="f3"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/f0306215.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t3" id="t3"></a><strong>TABLA 3. CONSTANTES DEL MODELADO DE LAS ISOTERMAS DE SORCI&Oacute;N DEL     <br> COLORANTE RBBR POR BIOMASA DE LA LEVADURA KB-a1 </strong></font></p>      <div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td colspan="3" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>Langmuir </em></font></p></td>       <td width="13" valign="top">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td colspan="3" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>Freundlich </em></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="79" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>Q</em><sub>0    <br>       </sub></font><font size="2" face="Verdana">(mg g<sup>-1</sup>) </font></p>          </td>       <td width="76" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>b     <br>       </em></font><font size="2" face="Verdana">(L mg<sup>-1</sup>) </font></p>          </td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>R</em><sup>2</sup></font></p></td>       <td width="13" valign="top">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="149" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>k<sub>F</sub>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>             <br>       </em>(mg g<sup>-1</sup>) (mg L<sup>-1</sup>)<sup>-1/nF</sup></font></p>          </td>       <td width="42" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>n<sub>F</sub></em></font></p>               <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="77" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><em>R</em><sup>2</sup></font></p>               <p align="center">&nbsp; </p></td>     </tr>     <tr>       <td width="79" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">127,6 </font></p></td>       <td width="76" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,039 86 </font></p></td>       <td width="63" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,963 3 </font></p></td>       <td width="13" valign="top">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="149" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">21,50 </font></p></td>       <td width="42" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">3,371 </font></p></td>       <td width="77" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,953 5 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Estudios de espectroscop&iacute;a de infrarrojo</em></strong></font></p>     <p align="justify"> <font size="2" face="Verdana"> En la <a href="#f4">figura 4</a> se presentan los espectros de absorci&oacute;n obtenidos de la regi&oacute;n infrarroja de la biomasa de levadura antes y despu&eacute;s del proceso de biosorci&oacute;n. Los picos m&aacute;s representativos de ambos espectros con su asignaci&oacute;n correspondiente se reportan en la <a href="#t4">tabla 4</a>. Los cambios m&aacute;s notables del espectro de la biomasa con colorante respecto al obtenido en su estado nativo fueron: a) la desaparici&oacute;n del pico a 1 409 cm<sup>-1</sup> correspondiente a las vibraciones sim&eacute;tricas de estiramiento del C=O del carboxilato; b) el corrimiento del pico correspondiente al estiramiento de grupos CH<sub>2</sub> OH, C-O y P-O<sub>2</sub> presentes en los glicop&eacute;ptidos y en la ribosa de 1 080 cm<sup>-1</sup> a 1 032 cm<sup>-1</sup>; c) la disminuci&oacute;n de la banda a 1 659 cm<sup>-1</sup>, que indicar&iacute;a la participaci&oacute;n de los grupos amida I en el proceso de biosorci&oacute;n y d) el ensanchamiento de la regi&oacute;n entre 1 219 cm<sup>-1</sup> y 1 171 cm<sup>-1</sup> correspondiente al estiramiento del enlace C-O en los &aacute;cidos carbox&iacute;licos. Estos resultados sugieren que varios grupos funcionales participan en el proceso de biosorci&oacute;n del colorante RBBR por la biomasa de levadura KB-a1, entre los que destacan los grupos amida, carboxilo y posiblemente fosforilo. Reportes anteriores en la biosorci&oacute;n de colorantes han sugerido la participaci&oacute;n de una gran variedad de grupos funcionales en el proceso de remoci&oacute;n correspondiente [4, 8].</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f4" id="f4"></a><img src="/img/revistas/ind/v27n2/f0406215.jpg"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t4" id="t4"></a><strong>TABLA  4. RESUMEN DE LAS BANDAS DE INFRARROJO ENCONTRADAS EN LA BIOMASA DE     <br> LA LEVADURA KB-a1 ANTES Y DESPU&Eacute;S DEL CONTACTO CON SOLUCI&Oacute;N DEL COLORANTE RBBR</strong>. </font></p>      <div align="center">   <table width="69%" border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td colspan="2">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Banda de frecuencia del infrarrojo (cm<sup>-1</sup>) </font></p></td>       <td width="28%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">Grupo funcional asignado </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Referencia </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Biomasa de levadura    <br>        KB-a1 nativa </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Biomasa de levadura     <br>         despu&eacute;s        del contacto con     <br>       soluci&oacute;n de RBBR </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="12%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">3 300 </font></p></td>       <td width="27%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">3 293 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Estiramiento de O–H </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"> <font size="2" face="Verdana">[17] </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2 959 </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2 959 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Estiramiento asim&eacute;trico de C–H del metileno. Radicales alquilo y otros grupos alif&aacute;ticos saturados </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">[18] </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 659 </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 668 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Estiramiento del C=O del grupo amida I </font></p></td>       <td width="12%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">[4], [19] </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 548 </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 533 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Doblamiento del grupo NH<sub>2</sub> y estiramiento C=N de la amida II </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">[4], [19]</font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 453 </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 455 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Radicales alquilo y otros grupos alif&aacute;ticos saturados </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">[17]</font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 409 </font></p></td>       <td width="27%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Vibraciones sim&eacute;tricas de estiramiento C=O del carboxilato </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">[7]</font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 246 </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 219-1 171 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Estiramiento de C-O en los &aacute;cidos carbox&iacute;licos. </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">[18]</font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="27%">    <p align="center">&nbsp; </p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Estiramiento C-N (amida III) y estiramiento asim&eacute;trico PO<sub>2</sub> - y en menor medida de fosfol&iacute;pidos </font></p></td>       <td width="12%">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">[19]</font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="33%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 080 </font></p></td>       <td width="27%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1 032 </font></p></td>       <td width="28%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Estiramiento de los grupos CH<sub>2</sub> OH, C-O o P-O<sub>2</sub> presentes en los glicop&eacute;tidos y en la ribosa </font></p></td>       <td width="12%">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">[20]</font></p></td>     </tr>   </table> </div>     <p align="justify">&nbsp; </p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El proceso de biosorci&oacute;n del colorante de antraquinona azul brillante de remazol R a pH 2,0 es un proceso endot&eacute;rmico y no espont&aacute;neo que alcanza capacidades de biosorci&oacute;n de saturaci&oacute;n de 127,6 mg g<sup>-1</sup>, lo que lo hace un material atractivo para su uso en el tratamiento de aguas residuales contaminadas con el colorante. En el proceso de biosorci&oacute;n se encuentran involucrados principalmente grupos carboxilo y amida.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. PEARCE, C. I.; LLOYD, J. R.; GUTHRIE, J. T., &quot;The removal of color from textil wastewater using whole bacterial cells: A review&quot;, <em>Dyes Pigments</em>, 2003,  58(3), 179-196.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. RAI, H. S.; BAHATTACHARYYA, M. S., SHING, J., BANSAL, T. K., VATS, P., BANERJEE, U. C., &quot;Removal of dyes from the effluent of textile and dyestuff manufacturing industry: A review of emerging techniques with reference to biological treatment&quot;, <em>Crit. Rev. Environ. Sci. Technol.</em>, 2005,  35(3), 219-238.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. RATNA; PADHI, B., &quot;Pollution due to synthetic dyes toxicity &amp; carcinogenicity studies and remediation&quot;,  <em>Int. J. Environ. Sci.</em>, 2012,  3(3),  940-946.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. CHARUMATHI, D.; DAS, N., &quot;Packed bed column studies for the removal of synthetic dyes from textile wastewater using immobilised dead <em>C. tropicalis&quot;, </em> <em>Desalination</em>, 2012,  285(31),  22-30.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. ASGHER, M., &quot;Biosorption of Reactive Dyes: A Review&quot;, <em>Water Air Soil Poll</em>., 2011,  223(5),  2417–2435.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. KHAMBHATY, Y.; MODY, K.; BASHA, S., &quot;Efficient removal of Brilliant Blue G (BBG) from aqueous solutions by marine <em>Aspergillus wentii</em>: Kinetics, equilibrium and process design&quot;, <em>Ecol. Eng</em>., 2012, 41,  74-83.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. GAO, J. F.; ZHANG, J. H.; WANG, J. H.; WU, X. L.; WANG, S. Y.; PENG, Y. Z., &quot;Contributions of functional groups and extracellular polymeric substances on the biosorption of dyes by aerobic granules&quot;, <em>Biores. Technol</em>., 2011, 102(2),  805-813.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. MONA, S.; KAUSHIK, A.; KAUSHIK, C. P., &quot;Biosorption of reactive dye by waste biomass of <em>Nostoc linckia</em>&quot;, <em>Ecol. Eng</em>., 2011, 37(10),  1589-1594.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. ERGENE, A.; ADA, K.; TAN, S.; KATIRCIOGLU, H., &quot;Removal of Remazol Brilliant Blue R dye from aqueous solutions by adsorption onto immobilized <em>Scenedesmus quadricauda</em>: Equilibrium and kinetic modeling studies&quot;, <em>Desalination</em>, 2009,  249(3),  1308–1314.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. BARREDA REYES, K. L.; MENDOZA CALDER&Oacute;N, E. I.; ORTEGA L&Oacute;PEZ, J.; CRUZ HUERTA, M.; ORTEGA REGULES, A. E.; NETZAHUATL MU&Ntilde;OZ, A. R., &quot;Efecto del pH en la biosorci&oacute;n de colorantes sint&eacute;ticos empleando biomasa de una levadura aislada de suelo contaminado&quot;, en    V&Aacute;ZQUEZ  GARC&Iacute;A, Gloria Ver&oacute;nica; MART&Iacute;NEZ GARC&Iacute;A, Amalia; SOLANO SOSA, Cristina E.; S&Aacute;NCHEZ MORALES, Mar&iacute;a Eugenia (ed.), <em> Memorias del XI encuentro participaci&oacute;n de la mujer en la ciencia </em> (14-16 mayo, 2014), Guanajuato, M&eacute;xico, Centro de Investigaciones en &Oacute;ptica, A. C., 2014, p. 1-5.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. VIJAYARAGHAVAN, K.; YUN, Y., &quot;Bacterial biosorbents and biosorption&quot;, <em>Biotechnol. Advances</em>, 2008, 26(3),  266–291.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. HO, Y. S., &quot;Review of second-order models for adsorption systems&quot;, <em>J. Hazard. Mat.</em>, 2006, 136(3), 681–689.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. LE&Oacute;N TORRES, A.; CUERDA CORREA, E. M.; FERN&Aacute;NDEZ GONZ&Aacute;LEZ, C., ALEXANDRE FRANCO, M. F., G&Oacute;MEZ SERRANO, V., &quot;On the use of a natural peat for the removal of Cr(VI) from aqueous solutions&quot;, <em>J. Colloid Interface Sci.</em>, 2012,  386(1),  325–332.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. LIMOUSIN, G.; GAUDET, J. P.; CHARLET, L.; SZENKNECT, S.; BARTH&Egrave;S, V.; KRIMISSA, M., &quot;Sorption isotherms: A review on physical bases, modeling and measurement&quot;, <em>Appl. Geochem</em>., 2007, <strong> 22</strong>(2), 249–275.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15.&nbsp; AKSU, Z., &quot;Determination of the equilibrium, kinetic and thermodynamic parameters of the batch biosorption of nickel (II) ions onto <em>Chlorella vulgaris</em>&quot;, <em>Process Biochem</em>., 2002,  38(1),  89–99.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. FLORES GARNICA, J. G.; MORALES BARRERA, L.; PINEDA CAMACHO, G., &quot;Biosorption of Ni (II) from aqueous solutions by <em>Litchi chinensis </em> seeds&quot;, <em>Biores.  Technol</em>.,  2013,  136,  635–643.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. COATES, J.,    &quot;Infrared Spectra, a practical approach&quot;, en MEYERS, R. A. (ed.), <em>Encyclopedia of Analytical Chemistry</em>, Chinchester, John Wiley &amp; Sons, 2000., p. 10815-10837, ISBN 978-0-471-97670-7.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18.&nbsp; STUART, B., <em>Infrared spectroscopy: fundamentals and applications</em><em>, </em>Chichester, John Wiley &amp; Sons, 2004,  ISBN 0-470-85427-8.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. TIAN, Y.; JI, C.; ZHAO, M.; XU, M.; ZHANG, Y.; WANG, R., &quot;Preparation and characterization of baker's yeast modified by nano-Fe3O4: Application of biosorption of methyl violet in aqueous solution&quot;, <em>Chem. Eng. J.</em>, 2010,  165,  474–481.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20.&nbsp; DU, L. N.; WANG, B.; LI, G.; WANG, S.; CROWLEY, D. E.; ZHAO, Y. H., &quot;Biosorption of the metal-complex dye Acid Black 172 by live and heat-treated biomass of <em>Pseudomonas </em> sp. strain DY1: kinetics and sorption mechanisms&quot;, <em>J. Hazard. Mat.</em>, 2012, 127(0),  47–54.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido: 15/09/2014    <br> Aceptado: 19/12/2014</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><em>Ing. Karen L. Barreda-Reyes</em>, Universidad Polit&eacute;cnica de Tlaxcala, Tlaxcala, M&eacute;xico, <a href="mailto:karenlizbeth.barreda@uptlax.edu.mx">karenlizbeth.barreda@uptlax.edu.mx</a></font></p>      ]]></body><back>
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